TIẾNG VIỆT

Một phần của tài liệu Phân lập đoạn gen CP từ soybean mosaic virus và phát triển vector chuyển gen mang cấu trúc RNAi phục vụ tạo cây đậu tương chuyển gen kháng bệnh (Trang 110 - 128)

M: Marker 50bp (Thermo Scientific)

TÀI LIỆU THAM KHẢO

TIẾNG VIỆT

1. Ngô Thế Dân, Trần Đình Long, Trần Văn Lài, Đỗ Thị Dung, Phạm Thị Đào (1999), Cây đậu tương. Nxb Nông nghiệp Hà Nội.

2. Nguyễn Danh Đông (1971), Sâu bệnh hại đậu tương và biện pháp phòng trừ,

Nxb Khoa học và Kỹ thuật nông nghiệp.

3. Chu Hoàng Hà, Đỗ Xuân Đồng, Phạm Bích Ngọc, Lâm Đại Nhân, Lê Văn Sơn, Lê Trần Bình (2011), “Nghiên cứu tạo giống đu đủ kháng bệnh đốm vòng ứng dụng cơ chế RNAi”, Hội thảo Quốc gia bệnh hại thực vật Việt nam,

tr. 316–326.

4. Chu Hoàng Hà, Nguyễn Minh Hùng, Bùi Chi Lăng, Lê Trần Bình (2004), “Đánh giá tính đa dạng của các dòng virus gây bệnh đốm vòng đu đủ của Việt Nam thông qua tách dòng, xác định và so sánh trình tự gen mã hoá protein vỏ (CP)”, Tạp chí Công nghệ Sinh học, 2 (4), tr. 451-459.

5. Nguyễn Thu Hiền, Nguyễn Thu Giang, Chu Hoàng Hà, Chu Hoàng Mậu (2013), “ Biểu hiện kháng nguyên của virus H5N1 trong thực vật”, Tạp chí Y học Việt Nam, 411, tr. 219-224.

6. Nguyễn Thu Hiền, Chu Hoàng Mậu, Lê văn Sơn, Chu Hoàng Hà (2012), “Nghiên cứu tạo cây đậu tương chuyển gen mang cấu trúc biểu hiện gen mã hóa kháng nguyên bề mặt của virus H5N1 phục vụ sản xuất vaccine thực vật”,

Tạp chí Khoa học công nghệ Đại học Thái Nguyên, 89 (1), tr. 123-127. 7. Nguyễn Thu Hiền, Chu Hoàng Mậu, Chu Hoàng Hà, Lê văn Sơn (2011),

“Nghiên cứu khả năng tái sinh và biến nạp gen qua nách lá mầm của hai giống đậu tương (Glycine max L.) ĐT12 và DT84 bằng Agrobacterium”, Tạp chí Công nghệ Sinh học, 8 (38), tr. 1305-1310.

8. Trần Thị Cúc Hòa (2007), “Nghiên cứu khả năng đáp ứng chuyển nạp gen của các giống đậu tương trồng ở Việt Nam”, Tạp chí Nông nghiệp và phát triển nông thôn, 18, tr. 11-16.

9. Nguyễn Thị Thúy Hường (2011), Phân lập, tạo đột biến điểm ở gen P5CS liên quan đến tính chịu hạn và thử nghiệm chuyển vào cây đậu tương Việt Nam, Luận án tiến sĩ sinh học, Đại học Thái Nguyên.

10. Nguyễn Thị Thúy Hường, Trần Thị Ngọc Diệp, Nguyễn Thu Hiền, Chu Hoàng Mậu, Lê Văn Sơn, Chu Hoàng Hà (2009), “Phát triển hệ thống tái sinh

in vitro ở cây đậu tương (Glycine max L. Merrill) phục vụ chuyển gen“, Tạp chí Khoa học công nghệ Đại học Thái Nguyên, 52 (4), tr. 82-88.

11. Nguyễn Thị Thúy Hường, Chu Hoàng Mậu, Lê Văn Sơn, Nguyễn Hữu Cường, Lê Trần Bình, Chu Hoàng Hà (2008), “Đánh giá khả năng chịu hạn và phân lập gen P5CS của một số giống đậu tương (Glycine max L.Merrili)”, Tạp chí Công nghệ Sinh học 6 (4), tr. 459-466.

12. Vũ Triệu Mân (2003), Chẩn đoán nhanh bệnh hại thực vật, Nxb Nông nghiệp. 13. Vũ Triệu Mân (1996), “Sử dụng thử nghiệm ELISA và PCR trong chẩn đoán bệnh cây”, Báo cáo khoa học kỹ thuật Trường Đại học Nông nghiệp I Hà Nội, Nxb Nông nghiệp.

14. Chu Hoàng Mậu, Nguyễn Thị Thúy Hường, Nguyễn Vũ Thanh Thanh, Chu Hoàng Hà (2011), Gen và đặc tính chịu hạn của cây đậu tương, Nxb Đại học Quốc gia Hà Nội.

15. Lê Thị Hồng Ngọc, Chu Hoàng Hà, Hà Thị Thanh Bình, Nguyễn Thị Loan, Nguyễn Quốc Thông, Lê Trần Bình (2005), “Giải mã đoạn gen protein vỏ của virus gây bệnh xoăn lá ở vùng chuyên canh cà chua thuộc tỉnh Hưng Yên”,

Tạp chí Công nghệ Sinh học 3, tr. 223-230.

16. Nguyễn Thị Tâm, Nguyễn Vũ Thanh Thanh, Chu Hoàng Mậu (2010), “Phân lập và xác định trình tự gen mã hoá protein vỏ của virus Y ở khoai tây trồng tại Thái Nguyên”, Tạp chí Sinh học, 32 (1), tr. 81-87.

17. Lê Lương Tề, Vũ Triệu Mân (1999), Bệnh vi khuẩn và bệnh virus hại cây trồng, Nxb Giáo dục.

18. Nguyễn Vũ Thanh Thanh, Nguyễn Thu Hồng, Lê Văn Sơn, Chu Hoàng Mậu (2011), “Đặc điểm của gen DREB1 phân lập từ giống đậu tương địa phương (Glycine max (L.) Merrill) Xanh lơ Ba Bể (Bắc Kạn)”, Tạp chí Sinh học, 33 (1), tr. 74-79.

19. Phạm Thị Vân, Nguyễn Văn Bắc, Lê văn Sơn, Chu Hoàng Hà, Lê Trần Bình (2008), “Tạo cây thuốc lá kháng bệnh virus khảm dưa chuột bằng kỹ thuật RNAi”, Tạp chí Công nghệ Sinh học, 6 (4A), tr. 679 – 687.

20. Phạm Thị Vân, Nguyễn Minh Hùng, Lê Trần Bình (2009), “Xác định virus gây bệnh khảm dưa chuột (Cucumber mosaic virus – CMV) trên cây thuốc lá tại Cao Bằng và Hà Tây thông qua tách dòng và giải trình tự gen mã hóa protein MP và CP”, Tạp chí Khoa học và Công nghệ, 47 (3), tr. 1-7.

21. Phạm Thị Vân, Chu Hoàng Hà , Lê Trần Bình (2009), “Cây thuốc lá chuyển gen mang cấu trúc RNAi kháng đồng thời hai loại virus gây bệnh khảm”, Tạp chí Công nghệ Sinh học, 7 (2), tr. 241-249.

22. Đỗ Năng Vịnh (2007), “Công nghệ can thiệp RNAi (RNAi) gây bất hoạt gen và tiềm năng ứng dụng to lớn”, Tạp chí Công nghệ Sinh học, 5 (3), tr. 265- 275.

23. Nguyễn Thị Hải Yến, Phạm Thị Vân, Chu Hoàng Hà, Chu Hoàng Mậu, Lê Trần Bình (2008), “Phân lập gen mã hóa protein vỏ của virus gây bệnh xoăn vàng lá cà chua thu thập trên cây cà chua dại tại tỉnh Thái Nguyên”, Tạp chí Công nghệ Sinh học, 6 (4), tr. 467-474.

24. Nguyễn Thị Hải Yến, Phạm Thị Vân, Chu Hoàng Hà, Chu Hoàng Mậu, Lê Trần Bình (2009), “Thiết kế vector cấu trúc RNAi mang gen của virus gây bệnh xoăn lá cà chua”, Hội nghị Công nghệ Sinh học toàn quốc, tr. 473 - 477. 25. Nguyễn Thị Hải Yến, Phạm Thị Vân, Chu Hoàng Hà, Chu Hoàng Mậu, Lê

Trần Bình (2011), “So sánh tính kháng bệnh xoăn vàng lá của các dòng cà chua chuyển gen mang cấu trúc RNAi đơn gen và đồng thời hai gen của Tomato yellow leaf curl Vietnam virus”, Hội thảo Quốc gia Bệnh hại thực vật Việt Nam 2011, tr. 290 – 299.

26. Nguyễn Thị Hải Yến (2012), Nghiên cứu tạo cây cà chua kháng bệnh xoăn vàng lá do virus bằng kỹ thuật chuyển gen, Luận án tiến sĩ sinh học, Viện Công nghệ Sinh học - VAST.

TIẾNG ANH

27. Adai A., Johnson C., Mlotshwa S., Archer E. S., Manocha V., Vance V., Sundaresan V. (2005), “Computational prediction of miRNAs in Arabidopsis thaliana”, Genome Res., 15, pp. 78–91.

28. Afanasiev M. M., Morris H. E. (1952), “Bean Virus 2 (yellow) on Great Northern bean in Montana”, Phytopathology, 42, pp. 101-104.

29. Ambros V., Bartel B., Bartel D. P., Burge, C. B., Carrington J. C., Chen X., Dreyfuss G., Eddy S. R., Griffiths J.S., Marshall M. (2003), “A uniform system for microRNA annotation”, RNA 9, pp. 277 - 279.

30. Aragão F. J. L., Sarokin L., Vianna G. R., Rech E. L. (2000), “Selection of transgenic meristematic cells utilizing a herbicidal molecule results in the recovery of fertile transgenic soybean [Glycine max (L.). Merril] plants at a high frequency”, Theor. Appl. Genet.,101, pp. 1– 6.

31. Asad S., Haris W. A . A., Bashir A., Zafar Y., Malik K. A., Malik N. N., Lichtenstein C. P. (2003), “Transgenic tobacco expressing geminiviral RNAs are resistant to the serious viral pathogen causing cotton leaf curl disease”,

Arch. Virol. 148, pp. 2341-2352.

32. Barnett O. W. (1991), “Potyviridae, a proposed family of plant viruses”, Arch. Virol. 118, pp. 139 - 141.

33. Bartel B., Bartel D. P. (2003), “MicroRNAs: At the root of plant development”. Plant Physiol 132, pp. 709 – 717.

34. Bartel D. P. (2004), “MicroRNAs: genomics, biogenesis, mechanism and function”, Cell., 116, pp. 281–297.

35. Bateson M., Lines R. E., Revill P., Challprom W., Ha C., Gibbs A., Dale J. L. (2002), “On the evolution and molecular epidem biology of the potyvirus Papaya ringspot virus”, J. Gen. Virol., 83, pp. 2575 - 2585.

36. Baulcombe D. (2004), “RNA silencing in plants”, Nature, 431, pp. 356 - 363. 37. Beijersbergen A., Dulk R. A. D., Schilperoort R. A., Hooykaas P. J. J. (1992),

“Conjugative transfer by the virulence system of Agrobacterium tumefaciens”, Science 256, pp. 1324 – 1327.

38. Berger P. H., Wyatt S., Shiel P. J., Silbernagel M. J., Druffel K., Mink G. I. (1997), “Phylogenetic analysis of the Potyviridae with emphasis on legume- infecting potyviruses”, Arch. Virol., 142, pp. 1979 – 1999.

39. Bonfim K., Faria J. C., Nogueira, E. O., Mendes E. A., Aragão F. J. (2007), “RNAi-mediated resistance to Bean golden mosaic virus in genetically

engineered common bean (Phaseolus vulgaris)”, Mol. Plant Microbe Interact, 20, pp. 717 – 726.

40. Bousalem M., Douzery E. J. P., Fargette D. (2000), “High genetic diversity, distant phylogenetic relationships and intraspecies recom bination events among natural populations of Yam mosaic virus: a contribution to understanding potyvirus evolution”, J. Gen. Virol., 81, pp. 243-255.

41. Bowers G. R., Goodman R. M. (1979), “Soybean mosaic virus: Infection of soybean seed parts and seed transmission”, Phytopathology, 69 (6), pp. 569 - 572

42. Bramley P. M., Elmadfa I., Kafatos A., Kelly F. J., Manios Y., Roxborough H. E., Schuch W., Sheehy P. J. A., Wagner K. H. (2000), “Vitamin E”, J. Sci. Food Agric., 80, pp. 13–938.

43. Brasileiro A. C. M., Aragao F. J .L. (2001), “Marker genes for in vitro

selection of transgenic plants”, Plant Biotech, 3, pp.113–121.

44. Brunt A. A., Crabtree K., Dallwitz M. J., Gibbs A. J., Watson L., Zurcher E. J. (2003), Plant Viruses Online, Descriptions and Lists from the VIDE Database. Version: 20th August 1996.

45. Bubner B., Gase K., Baldwin I. T. (2004), “Two - fold differences are the detection limit for determining transgene copy numbers in plants by real - time PCR”, BMC Biotechnology, 4, pp. 4-14

46. Cahoon E. B., Ripp K. G., Hal S. E., McGonigle B. (2002), “Transgenic production of epoxy fatty acids by expression of a cytochrome P450 enzyme from Euphorbia lagascae seed”, Plant Physiol., 128, pp. 615–624.

47. Carrington J. C., Jensen P. E., Schaad M. C. (1998), “Genetic evidence for an essential role for potyvirus CI protein in cell-to-cell movement”, Plant J., 14, pp. 393 - 400.

48. Chiera J. M., Finer J. J., Grabau E. A. (2004), “Ectopic expression of a soybean phytase in developing seeds of Glycine max to improve phosphorus availability”, Plant Mol. Biol., 56, pp. 895–904.

49. Cho E. K. and Goodman R. M. (1982), “Evaluation of resistance in soybeans to soybean mosaic virus strains”, Crop Sci., 22, pp. 1133-1136.

50. Christou P., McCabe D. E., Swai W. F. (1988), “Stable transformation of soybean callus by DNA-coated gold particles”, Plant Physiol., 87, pp. 671– 674.

51. Chu Hoang Lan, Nguyen Tuan Anh, Nguyen Vu Thanh Thanh, Nguyen Hiep Hoa, Chu Hoang Mau (2010), “Characterization of the GmDREB5 gene isolated from the soybean cultivar Xanh Tiendai, Vietnam”, IEEE, pp. 354- 358.

52. Chu Hoang Mau, Nguyen Thuy Huong, Chu Hoang Lan, Nguyen Tuan Anh, Le Van Son, Chu Hoang Ha (2011), “Characteristics of the gene encoding pyrroline-5-carboxylate synthase (P5CS) in Vietnam soybean cultivars (Glycine max L. Merrill)”, IACSIT Press., pp. 319-323.

53. Chu Hoang Mau, Nguyen Tuan Anh, Pham Thi Thanh Nhan, Dinh Thi Ngoc, Bui Thi Tuyet (2010), “The characteristics of chaperonin gene isolated local soybean cultivars (Glycine max L. Merrill) grown in Tay Nguyen region, Viet Nam”, CCEA, pp. 452-456.

54. Chyi Y., Jorgense R. A., Goldstein D., Tanksley S. D., Figueroa L. F. (1986), “Locations and stability of Agrobacterim-mediated T-DNA insertions in the Lycopersicon genome”, Mol. Gen Genet., 204, pp. 64 – 69.

55. Cunha N. B., Murad A. M., Cipriano T. M., Araújo A. C. G., Aragão F. J. L., Leite A., Vianna G. R., McPhee T. R., Souza G. H. M. F., Waters M. J.(2011), “Expression of f unctional recombinant human growth hormone in transgenic soybean seeds”, Transgenic Res., 20, pp. 811–826.

56. Dahmer M. L., Collins G. B., and Hildebrand D. F. (1991), “Lipid content and composition of soybean somatic embryos”, Crop Sci., 31, pp. 741–746.

57. Dahmer M. L., Hildebrand D. F., Collin, G. B. (1992), “Comparative protein accumulation patterns in soybean somatic and zygotic embryos”, In Vitro Cell. Dev. Biol, 28, pp. 106–114.

58. DeCleene M. and DeLey J. (1976), “The host range of crown gall”, Bot. Rev., 42, pp. 389–466.

59. Denli A. M., Tops B. B. J., Plasterk R. H. A., Ketting R. F., Hannon G. J. (2004), “Processing of primary microRNAs by the Microprocessor complex”, Nature 432, pp. 231235.

60. DeRonde J. A., Laurie R. N., Caetano T., Greyling M. M., Kerepesi I. (2004), “Comparative study between transgenic and non-transgenic soybean lines proved transgenic lines to be more drought tolerant”, Euphytica,138, pp. 123– 132.

61. Dougherty W., Parks, D. (1991), “Post-translational processing of the tobacco etch virus 49-kDa small nuclear inclusion polyprotein: Identification of an internal cleavage site and delimitation of VPg and proteinase domains”,

Virology, 183, pp. 449-456.

62. Dugas D. V., Bartel, B. (2004), “MicroRNA regulation of gene expression in plants”, Curr. Opin Plant Biol., 7, pp. 512–520.

63. Elbashir S. M., Lendeckel W., Tuschl T. (2001), “RNA interference is mediated by 21- and 22- nucleotide RNAs”, Genes Dev., 15, pp. 188–200. 64. Eun A. J. C., Seoh M. L., Wong S. M. (2000), “Sim ultaneous quantitation of

two orchid viruses by the TaqMan real-time RT-PCR”, J. Virol. Meth., 87, pp. 151-160.

65. FAO/WHO (1990), Expert consultation on protein quality evaluation. Food and Agriculture Organization of the United Nations, Rome.

66. Finer J. J., Nagasawa A. (1988), “Development of an embryogenic suspension culture of soybean (Glycine max Merrill.)”, Plant Cell Tissue and Organ Cult., 15, pp. 125–136.

67. Fire A., Xu S., Montgomery M. K., Kostas S. A., Driver S. E., Mello C. C. (1998), “Potent and specific genetic interference by double-stranded RNA in Caenorhabditis elegans”, Nature, 391, pp. 806-811.

68. Fondong V. N., Pita J. S., Rey M. E. C., de Kochko A., Beachy R. N., Fauquet C. M. (2000) “Evidence of synergism between African cassava mosaic virus and a new double-recombinant geminivirus infecting cassava in Cameroon”, J. Gen Virol., 81, pp. 287–297

69. Fuentes A., Ramos P.L., Fiallo E., Callard D., Sánchez Y., Peral R., Rodríguez R., Pujol, M. (2006), “Intron-hairpin RNA derived from replication associated protein C1 gene confers immunity to Tomato yellow leaf curl virus infection in transgenic tomato plants”, Transgenic Res.,15, pp. 291-304.

70. Furutani N., Yamagishi N., Hidaka S., Shizukawa Y., Kanematsu S., Kosaka Y. (2007), “Soybean mosaic virus resistance in transgenic soybean caused by post-transcriptional gene silencing”, Breed. Sci., 57, pp. 123–128.

71. Furutani N., Hidaka S., Kosaka Y., Shizukawa Y., Kanematsu S., (2006), “Coat protein gene - mediated resistance to soybean mosaic virus in transgenic soybean”, Breed. Sci., 56, pp. 119–124.

72. Gelvin S. B. (2010), “Plant proteins involved in Agrobacterium - mediated genetic transformation”, Annu. Rev. Phytopathol., 48, pp. 45–68.

73. Gibbs A., Harrison B. (1976), Plant virology the principles, Edward Amold. 74. Gillings M., Broadbent P., Indsto J., Lee, R. (1993), “Characterisation of

isolates and strains of citrus tristeza clostero virus using restriction analysis of the coat protein gene amplified by the polymerase chain reaction”, J. Virol. Meth., 44, pp. 305-317.

75. Gough K. H., Shukla D. D. (1992), “Major sequence variations in the N - terminal region of the capsid protein of a severe strain of passion fruit woodiness potyvirus”, Arch. Virol., 124, pp. 389-396.

76. Hamilton J. H., Baulcombe D. C. (1999), “A species of small antisense RNA in post - transcriptional gene silencing in plants”, Science, 286, pp. 950-952. 77. Hammond R. W., Crosslin J. M., Pasini R., Howell W. E., Mink G. I. (1999),

“Differentiation of closely related but biologically distinct cherry isolates for prunus necrotic ringspot virus by polymerase chain reaction”, J. Virol. Meth., 80, pp. 203-212.

78. Hammond S. M., Bernstein E., Beach D., Hannon G. J. (2000), “An RNA- directed nuclease mediates post - transcriptional gene silencing in Drosophila

cells”, Nature, 404, pp. 293 - 296.

79. Hansen G., Wright M. S. (1999), “Recent advances in the transformation of plants”, Trends Plant Sci., 4, pp. 226–231.

80. Hartman G. L., Sinclair J. B., Rupe J. C. (1999), Compendium of Soybean Diseases, Fourth Edition, The American Phytopathological Society Press, Minnesota, USA.

81. Hartman G. L., West E. D., Herman, T. K. (2011), “Crops that feed the World 2. Soybean-worldwide production, use and constraints caused by pathogens and pests”, Food Sec., 3, pp. 5–17.

82. Herbers K., Meuwly P., Frommer W. B., Metraux J. P., Sonnewald U. (1996), “Systemic acquired resistance mediated by the ectopic expression of invertase: Possible hexose sensing in the secretory pathway”, Plant Cell, 8 (5), pp. 793–803.

83. Herbers K. (2003), “Vitamin production in transgenic plants”, J. Plant Physiol., 160, pp. 821–829.

84. Herman E. M., Helm R. M., Jung R., Kinney A. J. (2003), “Genetic modification removes an immunodominant allergen from soybean”, Plant Physiol., 132, pp. 36–43.

85. Hill J., Bailey T. B., Benner H. I., Tachibana H., Durand D. P. (1987), “Soybean mosaic virus: Effects of primary disease incidence on yield and seed quality”, Plant Disease, 71, pp. 237-239.

86. Hill J. H. (1999), Soybean mosaic virus. In Compendium of Soybean Diseases, 4th edn, pp. 70–71, Edited by G. L. Hartman J. B. Sinclair & J. C. Rupe. St Paul, MN: American Phytopathological Society

87. Hinchee M. A. W., Conner W. D. V., Newell C. A., McDonnell R. E.,. Sato S. J, Gasser C. S., Fischhoff D. A., Re D. B., Fraley R. T., Horsch R. B. (1988), “Production of transgenic soybean plants using Agrobacterium-mediated

DNA transfer”, Nat. Biotechnol., 6, pp. 915–922.

88. Homrich M. S., Strohm B. W., Weber R. L. M., Zanettini M. H. B. (2012), “Soybean genetic transformation: A valuable tool for the functional study of

Một phần của tài liệu Phân lập đoạn gen CP từ soybean mosaic virus và phát triển vector chuyển gen mang cấu trúc RNAi phục vụ tạo cây đậu tương chuyển gen kháng bệnh (Trang 110 - 128)