Vài đặc điểm sinh học của vi tảo Vi tảo = tảo đơn bào -Tảo là lớp thấp nhất trong hệ thực vật: quang hợp!
Trang 1SINH HỌC VÀ KỸ THUẬT NUÔI VI TẢO
I Vài đặc điểm sinh học của vi tảo
Vi tảo = tảo đơn bào
- Tảo là lớp thấp nhất trong hệ thực vật: quang hợp !
AS
6CO 2 + 12H 2 O (CH2O)CH2O) 6 + 6H 2 O + 6O 2
- Thành phần sinh hoá của tảo: giàu dinh dưỡng
+ Protein + HUFA (axit béo cao phân tử không no): đặc biệt quan trọng đối với ấu trùng tôm cá biển
+ Vitamine C
Trang 2Tăng trưởng quần thể tảo
Giai đoạn đầu
Giai đoạn tăng trưởng nhanh
Giai đoạn tăng trưởng chậm
Giai đoạn quân bình
Giai đoạn suy tàn
Điểm thu hoạch tối ưu
Trang 3Một số loài tảo quan trọng
• Hình dạng: tảo đơn bào, hình cầu, không có tiêm
mao, không có khả năng di chuyển chủ động Màng
tế bào có vách cellulose bao bọc
Trang 4Thành phần dinh dưỡng
• Bột đường: 20-30 %
• Chất béo: 10-20 % với đa số các acd béo không no
• Đạm: 50 % chứa hầu hết acid amin thiết yếu
•Vitamin: chứa hầu hết các vitamin, vitamin C (0,3-0,6 μm m)
•Chất kháng khuẩn: Chlorellin
•Chất tăng trưởng CGF (Chlorella growth factor)
• Thành phần dinh dưỡng phụ thuộc vào sự có mặt của nitơ trong môi trường Môi trường thiếu đạm, hàm lượng đạm
trong Chlorella giảm, carbohydrate tăng lên.
Trang 5• Dunaliella là tảo lục đơn bào, hai
roi có chiều dài bằng nhau, không
có màng cellulose
• Hình dạng: đa dạng có hình cầu,
hình oval, hình phểu, hình elip,
hình trứng, hình quả lê và thay đổi
theo điều kiện môi trường
• Kích thước tế bào thay đổi theo
điều kiện nuôi và cường độ ánh
sáng, thông thường từ 9-11m
• Có tính hướng quang,
Hình 3: Tảo Dunaliella
Ngành: Chlorophyta Lớp: Chlorophyceae Bộ: Volvocales
Họ: Dunaliellaceae Giống Dunaliella Teodorescco, 1904
Trang 6+ Điều kiện môi trường :
- Hàm lượng glycerol cao giúp Dunaliella tồn tại trong môi trường có nồng độ muối cao.
Dunaliella (tt)
Trang 7-hàm lượng carotene được tế bào Dunaliella tích luỹ và chúng bao bọc vùng ngoại biên của lục lạp vì vậy có thể hoạt động như một màng
lọc ánh sáng
- Hàm lượng glycerol bên trong tế bào cao có thể xem như chất hoà tan có thể điều hoà áp suất thẩm thấu
Hàm lượng glycerol và carotene trong tế bào
tảo sinh ra cao nhất khi nuôi trong điều kiện bất lợi (glycerol trong nồng độ muối cao) tuy nhiên
n ng suất tảo thu được cao nhất ở nồng độ ăng suất tảo thu được cao nhất ở nồng độ
muối thấp hơn Vì vậy, trong điều kiện sản
xuất glycerol và carotene nên chia làm 2 giai
đoạn: đầu tiên nuôi trong điều kiện tối ưu để
sản xuất lượng sinh khối tảo cao nhất sau đó
chuyển sang nồng độ muối cao hơn, hàm lượng dinh dưỡng thấp để kích thích sự tạo thành
glycerol và carotene
Trang 8Spirulina
• Spirulina là tảo lam, đa bào, dạng sợi
có hình xoắn (môi trường lỏng), hình
trôn ốc (môi trường đặc) Đường
kính tế bào từ 1-12m Chiều dài
chiều dài chuỗi có thể đến 110m
Trang 9Tetraselmis
• Tetraselmis là tảo lục, đơn bào
với 4 roi có chiều dài bằng
nhau, có khả năng di chuyển
Hai tế bào con mang đầy đủ
roi trước khi tách khỏi vỏ
Hình 5:
Tetraselmis
• Tetraselmis thường di chuyển nhanh theo đường thẳng,
cơ thể xoay tròn Đa số các loài có tính hướng quang
•Trứng nghỉ (4 tb con) hình thành trong điều kiện môi
trường bất lợi (thiếu dinh dưỡng kéo dài 6-8 tuần hoặc
pH < 6 hoặc > 9).
Ngành: Prasinophyta Lớp: Prasinophyceae Bộ: Pyramymonadales Họ: Platymonadaceae Giống:Tetraselmis
Trang 10• Skeletonema costatum là tảo khuê dạng chuỗi
(4-15m) Tế bào có vỏ silic
• Khi phân chia tế bào, kích cỡ tế bào giảm dần
7m bào tử có kích cỡ rất to chuỗi tế bào sẽ
Họ:Skeletonemaceae Giống:Skeletonema
Trang 11Chaetoceros
• C cancitrans và C gracilis là
tảo những tế bào tảo khuê
trung tâm đơn bào có hình
Họ:Chaetocerotaceae Giống:Chaetoceros
Trang 12Isochrysis galbana
có 2 roi, có khả năng di chuyển
lượng DHA cao
thì gặp nhiều khó khăn (bổ sung
vitamin, nhiệt độ ổn định)
Hình 8: Isochrysis galbana
Ngành:Haptophyta Lớp:Prymnesiophyceae Bộ:Isochrysidales
Họ: Isocchrysidaceae Giống:Isochrysis galbana
Trang 13Thănh phần sinh hóa của tảo
Hà m lượ ng cá c chấ t (% trọ ng lượ ng khô) Loà i tả o
Protein Lipid Carbohydrate Tham khả o
Chaetoceos gracilis 12 4,7 7,2 P Cotteau (1996)
Chaetoceros calcirans 34.0 6.0 16 P Cotteau (1996)
Chlorella vulgaris 51-58 14-22 12-17 Trubachev(1976)
Dunadiella salina 57.0 6.0 32.0 Parson (1961)
Euglena gracilis 39-61 14.20 14-18 Collyer (1955)
Isochrysis aff galbana 23 6 20 P Cotteau (1996)
Nannochloris atomus 30 23 21 P Cotteau (1996)
Skeletonema sp 37.0 4.7 20.8 Parson (1961)
Spirulina platensis 46-50 4-9 8-14 Tipnis (1960)
Trang 14Thành phần sinh hóa của tảo (tt)
8,25
12,1-17,8 0,2
3,9
6 19-28 11,1
0.3 8.3
2 0,8
Mourente 1989 Volkman 1989 Mourente 1989 Volkman 1989
Su 1988 Volkman 1989
Trang 15Vi khuẩ n Tả o Tá c giả
C lauderi T.suecica
Phaeodactylum tricornutum Skeletonema costatum
C lauderi Phaeodactylum tricornutum Skeletonema costatum
1992 Gauthier 1978 Austin&Day1990, Austin1992
Cooper 1983 Cooper 1983
Gauthier 1978 Cooper 1983 Cooper 1983 Austin&Day1990, Austin1992 Austin&Day1990, Austin1992
Viso 1987 Kogure 1979 Austin&Day1990, Austin1992 Austin&Day1990, Austin1992
Khả năng hạn chế sự phât triển của Vibrio (Nanvier, 1999)
Trang 16Kỹ thuật nuôi vi tảo
1 Yêu cầu chung trong nuôi tảo
a. Điều kiện môi trường nuôi
b. Môi trường dinh dưỡng nuôi tảo
Trang 17Yêu cầu chung trong nuôi tảo
a. Điều kiện môi trường
- Nhiệt độ: thích hợp 20-24°C ,khoảng chịu đựng 16-35°C
- Độ mặn: tốt nhất 20-24‰ cho tảo biển
- Ánh sáng: thích hợp 1.000-10.000 lux , ánh sang nhân tạo
tốt nhất là đèn neon với chu kỳ chiếu sáng ≥ 16 giờ/ngày
* Tiếp xúc đều với ánh sáng và dinh dưỡng
* Ổn định nhiệt độ
* Cung cấp CO2 và O2
Trang 18Yêu cầu chung trong nuôi tảo
- Gồm hỗn hợp các chất đa lượng và vi lượng
Silicate (đối với tảo khuê)
vitamine
- Một số môi trường dinh dưỡng phổ biến là: Walne,
Conway, Liao
Trang 19Thành phần các chất trong môi trường Walne
Trang 20Hệ thống cung cấp khí
Bộ lọc khí (Fox, 1983)
Trang 21Yêu cầu chung trong nuôi tảo
c. Dụng cụ phương tiện
trại với mái che trong suốt hay ngoài trời
giá đỡ, máy điều hoà nhiệt độ và một số máy khử trùng (UV, Ozone)
vật liệu khác nhau như ống nghiệm, bình tam giác, keo lớn (cho nuôi tảo trong phòng thí nghiệm), thùng hay bể 200 lít-
cũng được dùng nuôi tảo rất tốt
bảo tảo nuôi được sục khí liên tục
Trang 22Yêu cầu chung trong nuôi tảo
d. Khử trùng và vô trùng
tảo giống nhằm tránh tảo bị nhiễm tạp Các dụng cụ và phương pháp cũng
thí nghiệm bệnh học
bình tam giác, keo thuỷ tinh, que cấy cần được khử trùng bằng cách cho
hấp tiệt trùng (Autoclave) với nhiệt độ 120°C và áp suất 20 psi Thời gian hấp là 15 phút đối với thể tích nhỏ hơn 1 lít hay 20-45 phút với thể tích lớn
Chlorine với liều lượng 1-2ppm Nếu có điều kiện nên xử lý nước bằng đèn
Trang 23Kỹ thuật nuôi tảo
Có 3 phương pháp phân lập tảo như sau
- Phương pháp pha loãng
- Phân lập bằng Pipette mao dẫn
- Phân lập trên môi trường dinh dưỡng agar
Ngoài ra, việc phân lập tảo còn có thể áp dụng phương pháp như dùng kháng sinh, phương pháp chiếu sáng để tách những loài tảo có tính hướng quang và có khả năng di động
Trang 24Phân lập tảo giống
Pha loãng lần thứ hai Pha loãng lần thứ nhất
Pha loãng lần thứ ba
Trang 25- Phân lập bằng Pipette mao dẫn
Trang 26Đĩa petri Giọt mẫu
Agar dinh duỡng
- Phân lập trên môi trường dinh dưỡng agar
Trang 27Kỹ thuật nuôi tảo
b. Phương pháp giữ tảo giống
Trên môi trường thạch hoặc trong
Trang 28Phương pháp giữ và nhân giống tảo
Trang 29Kỹ thuật nuôi tảo
Nuôi kín – nuôi hở
Nuôi trong phòng – nuôi ngoài trời
Nuôi từng đợt – nuôi bán liên tục – liên tục
Nuôi chung – nuôi riêng
Trang 30Các hệ thống nuôi tảo
Trang 31Các hệ thống nuôi tảo (tt)
Trang 32Sơ đồ hệ thống nuôi tảo liên tục
(1)Bể chứa nước biển có dinh dưỡng (4) Điện trở phụ thuộc vào ánh sáng (2) Máy bơm (5) Bộ lọc (0,45 µm)
(3) Rơle cảm ứng (6) Bể nuôi tảo (40L)
(7) 6 bóng đèn huỳnh quang 80 W
Các hệ thống nuôi tảo (tt)
Trang 33Thu hoạch và sử dụng tảo
Ước đoán tuổi thu hoạch
C ách thu hoạch
FeCl3, NaOH: tảo kết tủa kích thước, tính chất không thích hợp cho các loài ăn lơ lửng
B ảo quản - sử dụng
(5%) dimethylsulphoxide (5-8%), glycerol, glucose
Trang 35Hà m lượ ng cá c chấ t (% trọ ng lượ ng khô) Loà i tả o
Protein Lipid Carbohydrate Tham khả o
Chaetoceos gracilis 12 4,7 7,2 P Cotteau (1996)
Chaetoceros calcirans 34.0 6.0 16 P Cotteau (1996)
Chlorella vulgaris 51-58 14-22 12-17 Trubachev(1976)
Dunadiella salina 57.0 6.0 32.0 Parson (1961)
Euglena gracilis 39-61 14.20 14-18 Collyer (1955)
Isochrysis aff galbana 23 6 20 P Cotteau (1996)
Nannochloris atomus 30 23 21 P Cotteau (1996)
Skeletonema sp 37.0 4.7 20.8 Parson (1961)
Spirulina platensis 46-50 4-9 8-14 Tipnis (1960)