HOÀN THIỆN QUI TRÌNH SẢN XUẤT GIỐNG NHÂN TẠO CÁ LĂNG HẦM (MYSTUS FILAMENTUS Fang and Chaux, 1949)

Bên cạnh việc dùng các GnRHa tiêm một lần hay hai lần gần nhau để kích thích rụng trứng và sinh sản ở cá, các chất này có thể được cấy vào cá ở những giai đoạn khác nhau để thúc đẩy sự t

KHOA THỦY SẢN

(MYSTUS FILAMENTUS Fang and Chaux, 1949)

KHÓA: 2001-2005

SINH VIÊN THỰC HIỆN: TRẦN VĂN LEO

THÀNH PHỐ HỒ CHÍ MINH

-2005-

(MYSTUS FILAMENTUS Fang and Chaux, 1949)

Thực hiện bởi

Trần Văn Leo

Cao Văn Nguyên

Luận văn được đệ trình để hoàn tất yêu cầu cấp bằng Kỹ Sư Thủy Sản

Giáo viên hướng dẫn: Ngô Văn Ngọc

Thành phố Hồ Chí Minh

-2005-

ii

Đề tài được tiến hành từ tháng 3/2005 đến tháng 7/2005 Cá lăng hầm bố mẹ được nuôi vỗ tại trại thực nghiệm thủy sản, trường Đại Học Nông Lâm Thành Phố Hồ Chí Minh Cá được cho ăn bằng thức ăn công nghiệp ( Greenfeed) với khẩu phần 2-3% trọng lượng thân Cho cá sinh sản bằng hình thức gieo tinh nhân tạo Chất kích thích sử dụng cho cá lăng hầm sinh sản là LH-RHa và HCG, với liều lượng như sau:

- LH-RHa ( NT I): 150 µg LH-RHa + 10 mg DOM/kg cá cái

- HCG ( NT II): 5.500 IU/kg cá cái

Ương nuôi cá bột lên cá giống được chia làm hai giai đoạn:

Giai đoạn I ( cá từ 3 – 6 ngày tuổi ), cá bột được ương trong bể composite,

thức ăn trong giai đoạn này là Moina

Giai đoạn II (cá từ 6 – 27 ngày tuổi ), cá từ 6 đến 20 ngày tuổi thức ăn cá hoàn toàn là trùng chỉ, thức ăn của cá từ 20 đến 27 ngày tuổi vẫn là trùn chỉ có bổ sung thêm thức ăn viên (Greenfeed) Cá ương ở giai đoạn này được chia làm hai nghiệm thức:

- NT I: cá được ương trong bể composite

- NT II: cá được ương ngoài ao đất

Kết quả nghiên cứu đạt được như sau: Cá lăng hầm là loài đẻ trứng dính, trứng có màu vàng đậm Hệ số thành thục cá lăng hầm đực dao động từ 0,387-0,604% Sức sinh sản thực tế dao động từ 15.600-40.300 trứng/kg cá cái

Sử dụng LH-RHa + DOM và HCG đều có tác dụng rụng và đẻ trứng tương đương nhau Ở cá lăng hầm với hình thức gieo tinh nhân tạo, sử dụng liều 150 µg LH-RHa + 10 mg DOM/ cá cái và 5.500 IU/kg cá cái là tốt nhất Thời gian hiệu ứng khoảng 6 giờ 40 phút đến 7 giờ 30 phút ở 29 – 330C Thời gian phát triển phôi từ 20 giờ 10 phút đến 21 giờ 45 phút Kết quả ương cá ở ao đất tăng trưởng nhanh hơn khi ương trong bể composite

iii

A study was carried out from 3/2005 to 7/2005 Adult of Mystus filamentus

(Fang and Chaux, 1949) was reared in an earthen pond at Experimental Farm for Aquaculture, Faculty of Fisheries, Nong Lam University in Ho Chi Minh city The brooders were daily fed by pellet (Greenfeed) with 3-4% of body weight

Spawning was carried out by artifical insemination Breeders were induced by two treatments following LH-RHa (NT I) and HCG (NT II)

- LH-RHa (NT I): 150 µg/kg of female

- HCG (NT II) : 5,500 UI/kg of female

Nursing was carried out by two stages:

- Stage I (from 3 to 6 – days old) In this stage, the fry was nursed in composite

tanks with fed on Moina

- Stage II (from 6 to 27 – days old), the fingerlings from 6 to 20 days old were

nursed with Tubifex and Tubifex plus small pellet

The result of the study shows that the eggs of Mystus filamentus are adhesive,

brown-yellow in color GSI ranges from 0.387 – 0.604%, real fecundity is 15,600 – 40,300 eggs/kg of body weight

Using LH-RHa + DOM and HCG to induce ovulation of Mystus filamentus are

completely successful The best dose is at 150 µg LH-RHa /kg of female and 5,500 IU/kg of female

Latency time is around 6.40 – 7.30 hours at 29 – 330C for two hormones Hatchling time ranges from 20.10 to 21.45 hours

The result of nursing shows that the fingerlings of the earthen pond are bigger than of those composite tank

iv

Chúng tôi xin chân thành cảm ơn:

Ban Giám Hiệu Trường Đại Học Nông Lâm Thành Phố Hồ Chí Minh

Ban Chủ Nhiệm cùng toàn thể Quý Thầy Cô Khoa Thủy Sản đã tận tình giảng dạy và truyền đạt những kiến thức cần thiết cho chúng tôi trong suốt khóa học, đồng thời cũng giúp đỡn tận tình trong thời gian thực hiện đề tài

Đặc biệt, tỏ lòng biết ơn sâu sắc gởi đến thầy Ngô Văn Ngọc đã tận tình hướng dẫn, chỉ bảo và giúp đỡ chúng tôi trong suốt quá trình học tập cũng như thực hiện đề tài tốt nghiệp này

Đồng thời, cũng xin gởi lời cảm ơn đến các anh công nhân và kỹ sư của Trại Thực Nghiệm Thủy Sản Trường Đại Học Nông Lâm Thành Phố Hồ Chí Minh đã tạo mọi điều kiện và giúp đỡ chúng tôi thực hiện nghiên cứu này

Xin chân thành cảm ơn các bạn sinh viên Thủy Sản 27 đã động viên giúp đỡ chúng tôi trong những năm học tập và thời gian thực hiện đề tài

Do kiến thức chuyên môn còn hạn chế và thời gian thực hiện đề tài ngắn nên chúng tôi không thể tránh khỏi những thiếu sót Rất mong đón nhận những ý kiến đóng góp từ quý thầy cô và các bạn để quyển luận văn được hoàn chỉnh hơn

v

2.2 Chất Kích Thích Sinh Sản Dùng Cho Cá Sinh Sản Nhân Tạo 5

2.3 Ảnh Hưởng của Các Yếu Tố Bên Ngoài Lên Sự Phát Triển 7

Tuyến Sinh Dục của Cá Bố Mẹ

2.4.1 Moina 9

vi

3.2 Vật Liệu và Trang Thiết Bị Dùng Trong Nghiên Cứu 11

3.3.3 Kỹ thuật sinh sản nhân tạo cá lăng hầm 12

IV KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN 18

4.2.4 Mối tương quan giữa chiều dài và trọng lượng 42 4.3 Quy Trình Sản Xuất Giống Nhân Tạo Cá Lăng Hầm 44

V KẾT LUẬN VÀ ĐỀ NGHỊ 48

TÀI LIỆU THAM KHẢO

PHỤ LỤC

vii

Bảng Nội Dung

Bảng 4.1 Hệ số thành thục của cá lăng hầm đực

Bảng 4.2 Sức sinh sản thực tế của cá lăng hầm

Bảng 4.3 Kết quả gieo tinh nhân tạo cá lăng hầm ở NT I

Bảng 4.4 Kết quả gieo tinh nhân tạo cá lăng hầm ở NT II

Bảng 4.5 Kết quả ấp trứng trong bình weis

Bảng 4.6 Tỷ lệ nở của cá lăng hầm ở NT I và NT II

Bảng 4.7 Tỷ lệ sống của cá lăng hầm 3 ngày tuổi

Bảng 4.8 Các yếu tố môi trường trong bể composite và ao đất

Bảng 4.9 Kết quả tăng trưởng trung bình của cá lăng hầm

ĐỒ THỊ

Đồ thị 4.1 Tỷ lệ rụng trứng của cá lăng hầm ở NT I và NT II

Đồ thị 4.2 Tỷ lệ thụ tinh của cá lăng hầm ở NT I và NT II

Đồ thị 4.3 Tỷ lệ nở của cá lăng hầm ở NT I và NT II

Đồ thị 4.4 Tốc độ tăng trưởng về chiều dài ở NT I và NT II

Đồ thị 4.5 Tốc độ tăng trọng ở NT I và NT II

Đồ thị 4.6 Mối tương quang giữa chiều dài và trọng lượng ở NT I Đồ thị 4.7 Mối tương quang giữa chiều dài và trọng lượng ở NT II

HÌNH ẢNH

Hình 2.1 Kích thước cá lăng hầm cái tham gia sinh sản

Hình 4.1 Chọn cá bố mẹ cho sinh sản

Hình 4.2 Tiêm chất kích thích sinh sản cho cá lăng hầm

Hình 4.3 Vuốt trứng cá lăng hầm

Hình 4.4 Ấp trứng bằng bình weis

Hình 4.5 Bể composite ương cá giai đoạn 1 và ương cá ở NT I

Hình 4.6 Máng ăn sử dụng cho cá ương ao đất

Hình 4.7 Cá lăng hầm 3 ngày tuổi

Hình 4.8 Cá lăng hầm 13 ngày tuổi ương ao đất

Hình 4.9 Cá lăng hầm 20 ngày tuổi ương trong bể composite

Hình 4.10 Cá lăng hầm 27 ngày tuổi ương ao đất

Hình 4.11 Cá lăng hầm 15 ngày tuổi được chăm sóc trong bể composite

I GIỚI THIỆU

1.1 Đặt Vấn Đề

Trong những năm gần đây ngành thủy sản đã và đang phát triển mạnh mẽ: Trong đó ngành nuôi cá nước ngọt cũng góp phần không nhỏ trong vấn đề cung cấp thực phẩm cho nhân dân và xuất khẩu Trong các loài cá bản địa có kinh tế thì cá lăng hầm được các nhà nghiên cức quan tâm vì chúng có nguồn đạm giàu protein, ít cholesterol nên có thể thây thế dần cho các loại thịt của gia súc gia cầm Đặt biệt chúng có thịt thơm ngon, không có xương dăm và có tiềm năng rất lớn trong nuôi trồng thủy sản

Trước đây sản lượng cá ngoài tự nhiên rất cao và đa dạng Nhưng do dân số ngày một gia tăng dẫn đến nhu cầu tiêu thụ cá ngày càng cao làm cho việc lạm thát các loài cá này càng trở nên trầm trọng

Song hiện nay nhu cầu về con giống và cá thịt lăng hầm rất cao nhưng nguồn giống ngoài tự nhiên đang cạn kiệt dần Do đó việc nghiên cứu sản xuất giống nhân tạo cá lăng hầm là vấn đề cấp thiết

Xuất phát từ tình hình trên, để đảm bảo nguồn cung cấp cá lăng hầm một cách chủ động và có hiệu quả, thì việc sản xuất giống nhân tạo cá lăng hầm là một nhiệm vụ cần được đặt lên hàng đầu

Dựa vào việc nghiên cứu thiết lập quy trình sản xuất giống nhân tạo cá lăng hầm thành công trước đây của Khoa Thủy Sản, Trường Đại Học Nông Lâm Thành Phố Hồ Chí Minh, đựơc sự đồng ý của Khoa Thủy Sản, Trường Đại Học Nông Lâm

Thành Phố Hồ Chí Minh, chúng tôi tiếp tục tiến hành thực hiện đề tài: “HOÀN

THIỆN QUY TRÌNH SẢN XUẤT GIỐNG NHÂN TẠO CÁ LĂNG HẦM (Mystus filamentus Fang and Chaux, 1949)”

1.2 Mục Tiêu Đề Tài

Đề tài được thực hiện với các mục tiêu sau:

- Xác định các thông số kỹ thuật sinh sản và ương nuôi cá lăng hầm

- Từ đó hoàn thiện quy trình sản xuất giống nhân tạo loài cá này với mục đích cuối cùng là ứng dụng vào thực tiễn sản xuất nhằm đa dạng hóa đối tượng nuôi giúp gia tăng sản lượng thủy sản và bảo vệ nguồn gen

II TỔNG QUAN TÀI LIỆU

2.1 Đặc Điểm Sinh Học Cá Lăng Hầm

Phân loại

Ngành: Chordata (có dây sống)

Ngành phụ: Vertebrata (có xương sống)

Lớp: Osteichthyes (cá xương)

Bộ: Siluriformes

Họ: Bagridae

Giống: Mystus

Loài: Mystus filamentus (Fang và Chaux,1949)

Tên Việt Nam: Lăng hầm, lăng địa

2.1.2 Sơ lược đặc điểm hình thái

Cá lăng hầm có đầu hình nón, đỉnh đầu nhám hơi dẹp ngang Mắt trung bình nằm gần đỉnh đầu, màng mang tách khỏi eo mang và phần lớn tách rời nhau Răng lá mía tạo thành một dãy cong Thân cá lăng hầm dài dẹp bên về đuôi, có màu vàng đến vàng nhạt và có nhiều đốm không đồng nhất nằm khắp thân

Râu cá lăng hầm có bốn đôi: râu hàm trên, râu hàm dưới, râu mũi và râu cằm Râu hàm trên dài đến gốc vây bụng Râu hàm dưới dài đến tận vây ngực Râu mũi ngắn nằm gần mắt Râu cằm ngắn hơn râu hàm dưới và chưa tới vây ngực

Xương chẩm của cá lăng hầm có gốc nhọn, dài khoảng ¼ từ cuối xương chẩm đến đầu gốc vây lưng Vây lưng có tia vi mềm, phân nhánh Đầu tia vi mềm kéo dài, sau đó lõm vào nên viền ngoài của vây lưng lồi lõm, nằm chệch về phía đuôi và

không liên tục như các loài cá khác của Mystus Vây lưng của cá lăng hầm cũng cao

hơn các loài cá lăng khác

Ngoài ra, cá lăng hầm còn có ba tia vi cứng, một nằm ở vây lưng và hai nằm ở vây ngực

Cá lăng hầm có màu đen hoặc xanh đen ở lưng, hai bên thân có màu vàng Vây lưng và vây đuôi có màu xanh đen Rìa vây bụng và vây hậu môn có màu trắng, bên trong màu hồng Vây ngực có màu vàng (Smith, 1945; trích bởi Mai Thị Kim Dung, 1998)

Lê Hoàng Yến (2004) cho rằng, cá lăng hầm có thân thon dài, nhỏ dần phía đuôi Đầu hình chóp có mõm hơi tù, phía trên đầu rộng và gần như phẳng Khoảng cách hai mắt lớn Miệng rất rộng Vây lưng và vây ngực đều có tia gai cứng mang răng cưa ở mặt sau Phần lưng của cá có màu xám hoặc xám nhạt, hai bên thân có màu vàng hoặc vàng nhạt Phần bụng có màu trắng hai bên thân có màu vàng Đường bên chạy thẳng từ gốc nắp mang đến vây đuôi Trên thân có nhiều chấm bông nằm rải rác toàn thân Có vây mỡ nằm giữa vây lưng và vây đuôi, nhưng nằm lệch về phía vây đuôi Vây ngực và vây hậu môn có màu hơi đen, đôi khi có màu vàng nhạt, vây bụng có màu trắng hơi vàng Vây đuôi phân thùy sâu, mép thùy trên dài hơn mép thùy dưới

2.1.3 Phân bố

Cá lăng hầm hiện diện chủ yếu ở các sông lớn, suối, hồ chứa từ thượng nguồn đến vùng cửa sông Sống đáy nơi có dòng chảy nhẹ và sâu, thường chui rút vào hang hốc, bụi cây, gần chân cầu để ẩn nấp và bắt mồi

Cá lăng hầm phân bố rộng rãi ở Ấn Độ và nhiều nước Đông Nam Á chủ yếu

ở Malaysia, Thái Lan đến Indônesia Ở nước ta, cá lăng hầm được tìm thấy trên các sông suối, kênh rạch ở miền Nam Phân bố nhiều ở các tỉnh Đắc Lắc, Đồng Nai, Tây Ninh và các tỉnh Đồng Bằng Sông Cửu Long

Cáù lăng hầm phân bố rộng rãi, hiện diện hầu hết các nước Đông Nam Á, Châu Á Ở Việt Nam, cá lăng hầm chỉ hiện diện ở phía Nam, phân bố ở các sông lớn như Sông Tiền, Sông Hậu, Sông Đồng Nai, Sông Sài Gòn, Sông Vàm Cỏ Đông từ thượng nguồn đến hạ nguồn, có nhiều ở hồ Trị An, hồ Dầu Tiếng, thường sống ở đáy những nơi có nước chảy chậm và sâu (Mai Thị Kim Dung, 1998)

2.1.4 Đặc điểm dinh dưỡng

Theo Sterba (1962; trích bởi Mai Thị Kim Dung, 1998) đã phát biểu cá lăng hầm là loài ưa tối, sống đáy, chui rúc vào những bụi rậm, hốc đá, hang, không thích hợp nuôi trong bể kiếng Cá lăng hầm được xếp vào loài cá dữ có tập tính ăn tạp thiên về động vật Thức ăn của nó bao gồm cá, giáp xác giun, xác thực vật mùn bã hưu cơ Cá lăng hầm rất thích ăn mồi sống

Ngô Trọng Lư và Thái Bá Hồ (2001) đã khẳng định cá lăng thuộc nhóm cá dữ Khi còn nhỏ, cá ăn côn trùng có trong nước, ấu trùng muỗi, giun ít tơ, rễ cây, … Khi lớn cá ăn cả tôm, tép, cua và cá con Tập tính cá lăng thường kiếm ăn ở nơi chân cầu bến phà, thường sống ở các hang hốc, vùng tối ven bờ, chúng thích sống nơi có bóng râm và chủ động kiếm ăn

Qua khảo sát trong ao nuôi cũng cho thấy, cá lăng hầm có phổ thức ăn rộng hơn nhưng cá có thể ăn được động vật nhỏ sống trong nước, thức ăn công nghiệp và thức ăn chế biến Đặt biệt cá lăng hầm lớn có thể ăn cả cá lăng hầm con

2.1.5 Đặc điểm sinh sản

2.1.5.1 Mùa vụ sinh sản

Cá lăng hầm có mùa sinh sản kéo dài quanh năm (Ngô Trọng Lư và Thái Bá Hồ, 2001)

Mai Thị Kim Dung (1998) thì cho rằng, mùa vụ sinh sản của cá lăng hầm kéo dài quanh năm, không xác định được thời vụ cụ thể Cá có chiều dài khoảng từ 30cm trở lên có thể tham gia sinh sản

Hình 2.1 Kích thước cá lăng hầm cái tham gia sinh sản

Theo Rainboth (1996) nói, cá lăng hầm vào rừng ngập nước để sinh sản, ở Tonlé Sap cá con được tìm thấy vào tháng 8 và trở ra sông vào tháng 10 đến tháng 12

Theo Smith (1945) thì mùa vụ sinh sản của cá lăng hầm kéo dài quanh năm và không xác định được đỉnh điểm Có thể thu được mẫu cá đang trong thời kỳ sinh sản vào tháng 11 Ở chiều dài 32 cm là cá đã tham gia sinh sản Đường kính trứng đã chín mùi đạt đến 1 mm

Có thể tìm thấy đàn cá con vào cuối tháng 8 Tập tính sinh sản của cá là từ sông di cư vào rừng ngập nước để sinh sản, đến khoảng tháng 10 – 12 cá trở ra sông (Rainboth,1996)

Qua khảo sát cho thấy, mẫu buồng trứng và buồn sẹ giai đoạn IV bắt đầu thu được từ tháng 4 và kết thúc vào tháng 9 Mẫu buồng trứng vào giai đoạn II – IV của cá mới đẻ thu được từ cuối tháng 4 đến đầu tháng 9 trùng với mùa mưa Đường kính trứng chín mùi đạt đến 1,3 mm

2.1.5.2 Sức sinh sản

Cá lăng hầm (Mystus filamentus) có sức sinh sản thực tế dao động từ 35.000 –

40.000 trứng/kg cá cái (Ngô Văn Ngọc, 2004)

Theo Phạm Báu và Nguyễn Đức Tuân (1998) thì khẳng định rằng cá lăng hầm có sức sinh sản thấp, hệ số thành thục trung bình 7,48%, sức sinh sản tuyệt đối tăng theo tuổi, cá từ 3 – 11 tuổi đạt: 6.342 – 54.575 trứng, sức sinh sản tương đối trung bình đạt 3.750 trứng/kg

2.2 Chất Kích Thích Sinh Sản (CKTSS) Dùng cho Cá Sinh Sản Nhân Tạo

Trong sinh sản nhân tạo, để kích thích sự rụng trứng và tiết tinh ở cá làm cho cá đẻ được Người ta thường sử dụng các chất kích thích sinh sản (CKTSS) trên cá Các chất kích thích sinh sản thường dùng như não thùy, HCG, LH-RHa và một số chất khác

2.2.1 Não thùy

Theo Marcel (1980) thì não thùy có thể được lấy từ nhiều loài cá khác nhau như: cá chép, trắm, mè, trê, , đã thành thục còn tươi sống Ở cá đã chết sau vài giờ, hoạt tính kích dục chỉ còn 50%

Blane và Abraham (1968) cho rằng, trong trường hợp cùng thể trọng và mức độ thành thục thì não thùy của cá chép cái có hoạt tính cao gấp hai lần so với não thùy cá đực cùng loài

Cá có hệ số thành thục cao, càng gần thời điểm sinh sản thì hoạt tính kích dục của não thùy càng cao

Não thùy cá chép được coi là loại chế phẩm kích dục tố mạnh cho nhiều loài cá kể cả các đối tượng khác họ và cả các loài cá biển

2.2.2 HCG (Human Chorionic Gonadotropin)

HCG là kích dục tố được chiết xuất từ màng đệm của nhau thai hay chiết xuất từ nước tiểu của phụ nữ mang thai vào đầu thai kỳ và được phát hiện bởi Zondec và Ascheis vào năm 1927

HCG có tác dụng duy trì thể vàng, bản chất là một glycoprotein vì thế việc chiết xuất HCG dựa vào nguyên lý tách protein tan trong nước

HCG là loài kích dục tố dị chủng được dùng có hiệu quả cho nhiều loài cá

Ngoài các loài cá mè, cá trê, HCG còn có tác dụng gây rụng trứng cho các loài cá khác như: cá vền, cá trôi, cá bống, cá vàng, cá chình, cá bơn, cá bống tượng, cá chạch cá da trơn

HCG có đơn vị tính là IU/kg cá cái

2.2.3 GnRH (Gonadotropin Releasing Hormone)

GnRH là hormone phóng thích kích dục tố từ tuyến yên Là một hoạt chất tổng hợp tương tự một loại hormone trong não bộ, GnRH không có tác dụng trực tiếp lên tuyến sinh dục (buồng trứng, buồng tinh) mà thông qua não thùy (tuyến yên) để kích thích sự phát triển của tuyến sinh dục cũng như gây chín và rụng trứng Khi tiêm GnRH cho cá, não thùy của cá tiết ra kích dục tố và chính kích dục tố nội sinh của cá kích thích cá đẻ Do tác dụng gián tiếp này mà GnRH có thời gian hiệu ứng dài hơn

so với các loại kích dục tố

Từ việc xác định trình tự amino acid (aa) trong cấu trúc của các GnRH, người

ta đã tạo ra những chất tương đồng gọi là GnRHa (analog) có hoạt tính đặc biệt cao được dùng trong thực tiễn sản xuất

GnRHa trên cơ bản giống với các GnRH tự nhiên nhưng có một số mắt xích amino acid trên chuỗi peptid được thay đổi Các chất tổng hợp này thường chỉ có 9aa Chính nhờ sự thay thế các aa tại một số vị trí mà phân tử GnRHa ít bị phân giải bởi các enzym cho nên hoạt tính được tăng lên hàng chục đến hàng trăm lần các hợp chất tự nhiên

Có thể khẳng định tất cả các GnRH đều có tác dụng gây phóng thích kích dục tố ở cá, vì thế chúng có thể được dùng làm chất kích thích sinh sản cho tất cả các loài

Bên cạnh việc dùng các GnRHa tiêm một lần hay hai lần gần nhau để kích thích rụng trứng và sinh sản ở cá, các chất này có thể được cấy vào cá ở những giai đoạn khác

nhau để thúc đẩy sự tạo noãn hoàng, sự thành thục và cho chúng đẻ đồng loạt

GnRH có lợi thế giá rẻ, hoạt tính ổn định nếu được bào chế và bảo quản tốt, không gây phản ứng miễn dịch Tuy nhiên, cá bố mẹ sau khi tiêm GnRH và đã đẻ xong thì tuyến yên không còn kích dục tố dẫn đến kéo dài thời gian tái thành thục

Đơn vị tính của LH-RHa là µg/kg cá cái

2.2.4 Chất kháng Dopamine

Dopamine là một trong những chất dẫn truyền thần kinh (Neurotransmitter), có tác dụng ức chế sự tiết kích dục tố của tuyến yên

Hầu hết cá biển và các loài cá thuộc họ cá hồi có thể chỉ kích thích sinh sản bằng LH-RHa đơn độc

Đối với các loài cá khác như họ cá chép, họ cá da trơn thì dopamine giữ vai trò rất quan trọng trong việc ức chế sự tiết kích dục tố từ não thùy của chúng Vì thế việc sử dụng đồng thời LH-RHa và chất kháng dopamine mới có hiệu quả gây rụng trứng trên các loài cá này

Các chất kháng dopamine gồm: Domperidone (DOM), Pimozide, Sulpiride, Metoclopramide

2.3 Ảnh Hưởng của Các Yếu Tố Bên Ngoài lên Sự Phát Triển Tuyến Sinh Dục của Cá Bố Mẹ

Các yếu tố tác động bên ngoài đóng vai trò rất quan trọng trong sự phát triển tuyến sinh dục của cá Để cá bố mẹ có thể thành thục tốt, có hệ số thành thục cao ngoài điều kiện dinh dưỡng tốt cần phải có môi trường thích hợp cho sự phát triển tuyến sinh dục của cá Do vậy, trong quá trình nuôi vỗ, các yếu tố bên ngoài rất quan trọng Tuy nhiên, các yếu tố này cũng ảnh hưởng đáng kể đến quá trình chín, rụng trứng và tiết tinh ở cá

Môi trường cho sự thành thục tuyến sinh dục và sự sinh sản của cá là một phức hợp bao gồm nhiều yếu tố vật lý, hóa học, sinh học và cả sự tác động của người nuôi

2.3.1 Nhiệt độ

Nhiệt độ ảnh hưởng đến các phản ứng sinh hóa trong cơ thể của cá Cá chỉ hoạt động bình thường trong một khoảng nhiệt độ thích hợp, nếu nhiệt độ thấp quá hay cao quá, cá không còn bắt mồi được và tuyến sinh dục là nguồn chất dự trữ để duy trì sự sống của cá Trong trường hợp này, tuyến sinh dục ngưng phát triển và tiêu biến, sự sinh sản bị ảnh hưởng xấu

Trong phạm vi nhiệt độ thích hợp, khi nhiệt độ càng cao càng rút ngắn thời gian nuôi vỗ cá bố mẹ Đối với cá đã thành thục hoàn toàn, sự thay đổi nhiệt độ môi

trường trong thời gian ngắn có ý nghĩa như một yếu tố kích thích chuyển sang tình trạng sinh sản, hoạt hóa bộ máy nội tiết sinh sản

Đối với mỗi loài cá có một khoảng nhiệt độ thích hợp cho sự phát triển tuyến sinh dục và sinh sản Ngoài khoảng nhiệt độ đó, cá có thể sống nhưng không thể thành thục và sinh sản được hoặc thời gian sinh sản kéo dài hơn

Yếu tố dòng nước là một thành tố của môi trường giúp nhiều loài cá thành thục và chuyển sang tình trạng sinh sản nhưng nó không có khả năng thay thế toàn bộ phức hợp của các yếu tố ngoại cảnh cần thiết cho sự sinh sản của cá

2.3.5 Các yếu tố khác

Những yếu tố hữu sinh và yếu tố vô sinh có ảnh hưởng nhất định đến sự sinh sản của cá

pH là một trong những yếu tố quan trọng ảnh hưởng trực tiếp lên quá trình sinh trưởng của cá pH tác động đến quá trình thẩm thấu giữa cơ thể cá với môi trường bên ngoài, làm thây đổi quá trình trao đổi chất trong cơ thể cá

Hàm lượng oxy hòa tan (DO): rất cần cho sự sống của cá, phản ứng oxy hóa – khử tạo năng lượng và sự phát triển của tuyến sinh dục, thiếu oxy hoạt động của cá bị rối loạn, cá bỏ ăn dẫn đến tuyến sinh dục chậm phát triển

Điều kiện thổ nhưỡng ảnh hưởng đến chất lượng nước trong ao nuôi, làm hô hấp của cá trở nên khó khăng hơn

Giới tính của cá: đối với những loài cá có thể sinh sản trong ao thì không nên nuôi chung đực, cái

Để cá thành thục tốt thì mật độ và tỷ lệ nuôi vỗ phải phù hợp

2.4 Thức Ăn trong Quá Trình Ương Nuôi Cá

Ở giai đoạn ương nuôi cá bột lên cá giống, ngoài ảnh hưởng của các yếu tố môi trường thì thức ăn cho cá giữ vai trò rất quan trọng Đối với một số loài cá dữ nếu không được cung cấp thức ăn kịp thời hoặc thức ăn không phù hợp có thể dẫn đến tình trạng cá ăn lẫn nhau Hiệu quả dinh dưỡng chỉ cao khi cá ăn được loại thức ăn có kích cỡ phù hợp với miệng của nó

2.4.1 Moina

Moina hay còn gọi là bo bo thuộc nhóm động vật không xương sống, lớp giáp

xác thấp (Entomostroca) sống chủ yếu ở các thủy vực nước ngọt như sông, suối, ao, hồ Thân hình có kích thước nhỏ 0,7 – 1 mm hình bầu dục hoặc hình gần tròn, có vỏ giáp trong suốt bao bọc cơ thể, không phân đốt rõ rệt, sống lơ lửng, bơi chậm, tập trung thành từng đám

Moina là một loại thức ăn quan trọng không thể thay thế được bằng các loại

thức ăn công nghiệp khác đối với hầu hết các loài cá ở giai đoạn cá mới biết ăn

So với Artemia thì Moina có ưu điểm là dễ tìm, sẵn có, giá thành rẻ hơn, đem

lại hiệu quả kinh tế cao hơn và đặc biệt là giá trị dinh dưỡng không kém so với

Artemia

2.4.2 Trùn chỉ

Trùn chỉ (Tubifex tubifex) là động vật đáy, thuộc nhóm giun ít tơ (Oligochaeta),

có màu hồng, hình sợi mảnh, dài và sống chung thành tập đoàn gồm nhiều cá thể kết lại với nhau thành búi, chùm tỏa tròn hoạt động uốn lượn trong nước để trao đổi khí và bài tiết Thường sống ở những nơi có mùn bã hữu cơ, những nơi nước chảy liên tục như cống rãnh, ao, hồ, sông, nước thải sinh hoạt

Kích thước của trùn chỉ nhỏ, đường kính khoảng 0,1 – 0,3 mm, chiều dài 1 – 40

mm, thích hợp cho miệng cá con và các loài cá có kích thước nhỏ

Theo Davies (1964), trùn chỉ khác với những thức ăn nhân tạo, khi còn thừa sẽ

bị hư và làm môi trường nước bị dơ gây ô nhiễm và sản sinh nhiều vi khuẩn, thức ăn là trùn chỉ vẫn còn sống ngay cả khi nhiệt độ nước còn 21,50C

Trùn chỉ sẽ tập trung thành đám trên nền đáy và tiếp tục làm thức ăn cho cá (Ivlev và Protasov, 1948) (trích bởi Đào Dương Thanh và ctv., 2004)

III VẬT LIỆU VÀ PHƯƠNG PHÁP THÍ NGHIỆM

3.1 Thời Gian và Địa Điểm Thực Hiện Đề Tài

Đề tài được tiến hành từ 3/2005 – 7/2005, tại Trại Thực Nghiệm Thủy Sản, Trường Đại Học Nông Lâm Thành Phố Hồ Chí Minh

3.2 Vật Liệu và Trang Thiết Bị Dùng trong Nghiên Cứu

Chất kích thích sinh sản: LH-RHa và HCG

Chất kháng dopamine: Domperidone (DOM)

Hóa chất: formol, nước muối sinh lý, Tanin

Ao đất, bể xi măng, bể composite, bình weis, thau nhựa

Vợt lọc Moina, ống nhựa xiphong

3.3 Phương Pháp Nghiên Cứu

3.3.1 Nguồn gốc cá bố mẹ

Cá lăng hầm được thu mua từ những bè nuôi và của người dân đánh bắt từ hồ Trị An Cá được vận chuyển hở có sục khí đưa về Trại Thực Nghiệm Thủy Sản Cá được thuần dưỡng và nuôi vỗ trong ao

3.3.2 Các chỉ tiêu nghiên cứu

Chúng tôi tiến hành nghiên cứu một vài thông số kỹ thuật: thời gian hiệu ứng, hệ số thành thục, tỷ lệ rụng trứng, tỷ lệ thụ tinh, tỷ lệ nở và tỷ lệ sống được xác định theo công thức sau:

Thời gian hiệu ứng (TGHƯ) của chất kích thích sinh sản (CKTSS): tính từ khi tiêm liều quyết định đến khi cá đẻ đồng loạt, đơn vị là giờ

Trọng lượng tuyến sinh dục

Hệ số thành thục (%) = x100

Trọng lượng cá bỏ nội quan

Số cá cái rụng trứng

Số cá cái tham gia sinh sản

Số trứng đẻ ra Sức sinh sản thực tế =

(trứng/kg) Trọng lượng cá cái đẻ trứng

Số trứng thụ tinh

Số trứng được đẻ ra

Số cá bột mới nở

Số trứng đã thụ tinh

Số cá cuối thí nghiệm

Số cá ban đầu

3.3.3 Kỹ thuật sinh sản nhân tạo cá lăng hầm

3.3.3.1 Nuôi vỗ cá bố mẹ

Cá bố mẹ được nuôi vỗ trong ao đất, diện tích 300 – 1200 m2, độ sâu mực nước 1 – 1,5 m Nuôi vỗ chung đực cái Thức ăn nuôi vỗ cá bố mẹ là thức ăn công nghiệp (Greenfeed) với thành phần dinh dưỡng : đạm tối thiểu 18%, độ béo tối thiểu 2%, xơ tối thiểu 7%, muối 0,5 – 2%, canxi 1 – 2,5%, photpho 1%, độ ẩm 10% Ngoài

ra còn có cá rô phi nuôi ghép chung với cá bố mẹ

Hằng ngày cho cá ăn ba lần vào buổi sáng, chiều và tối, khẩu phần 2-3% trọng lượng thân

3.3.3.2 Thí nghiệm cho cá sinh sản

a/ Thiết bị cho cá sinh sản

Sử dụng bể xi măng kích thước 1,5 x 4 x1,2 m cho cá sinh sản

Trước khi cho cá vào bể chuẩn bị đẻ phải vệ sinh bể thật sạch, cấp nước vào bể khoảng 0,4 – 0,6 m, kích thích nước chảy nhẹ

b/ Chọn cá bố mẹ cho sinh sản

Chọn cá bố mẹ là một khâu rất quan trọng trong việc sinh sản của cá Để đánh giá mức độ thành thục của cá Người ta thường dựa vào các yếu tố bên ngoài như màu sắc cơ thể, độ mềm của bụng hoặc sự sưng lên của gai sinh dục Đối với cá lăng hầm có thể chọn cá bố mẹ bằng cách sau:

Cá đực: có gai sinh dục dài, to và có màu ửng hồng ở đầu mút gai sinh dục

Cá cái: khỏe mạnh, ngoại hình đẹp, không dị tật, lỗ sinh dục lồi và màu hơi hồng, bụng to mềm đều và có tính đàn hồi Thường dùng que thăm trứng để kiểm tra, cá có trứng đạt giai đoạn bốn được chọn vào bể xi măng chuẩn bị cho sinh sản

Sau khi, chọn cá bố mẹ xong, đưa cá vào bể đẻ đã chuẩn bị sẵn, cho cá nghỉ ngơi 12 hoặc 24 giờ, sau đó tiến hành tiêm CKTSS

c/ Hình thức sinh sản

Cho cá sinh sản bằng hình thức: gieo tinh nhân tạo

Qua những lần nghiên cứu trước, kết quả cho thấy đối với các loài cá lăng dùng LH-RHa cho kết quả tốt Do đó, chúng tôi thực hiện cho cá bố mẹ sinh sản bằng cách tiêm hai loại CKTSS là HCG và LH-RHa nhằm tìm hiểu xem HCG có hiệu quả kích dục trên cá lăng hầm hay không ?

Sau khi đã chọn những cá thể bố mẹ đủ tiêu chuẩn, tiến hành tiêm LH-RHa (NT I) và HCG (NT II)

Cá được tiêm CKTSS xong thả cá lại bể có kích thích nước chảy nhẹ, theo dõi nhiệt độ để dự đoán được thời điểm rụng trứng Kiểm tra cá khi trứng đã rụng đồng loạt thì tiến hành bắt cá đực ra mổ lấy buồng tinh lau sạch máu và nước rồi bỏ vào cối, vớt cá cái ra gây mê và tiến hành vuốt trứng Tỷ lệ đực cái cho sinh sản là 1/3, tỷ lệ này tùy thuộc vào chất lượng sản phẩm sinh dục của cá đực

Áp dụng hình thức gieo tinh bán khô, sử dụng nước muối sinh lí cho gieo tinh Khi vuốt trứng cá cái xong tiến hành nghiền buồng tinh cá đực và gieo tinh Sau đó, trứng được khử dính bằng dung dịch Tanin rồi đem ấp trứng trong các bình weis

d/ Bố trí thí nghiệm sinh sản

Sử dụng hình thức sinh sản gieo tinh nhân tạo Thí nghịêm được chia làm hai nghiệm thức theo CKTSS, gồm có nghiệm thức I là LH-RHa và nghiệm thức II là HCG Thí nghiệm được bố trí như sau:

Thời gian tiêm liều quyết định cách liều sơ bộ là 4 giờ và cách liều dẫn 24 giờ Để đảm bảo tính xác của nghiên cứu, thí nghiệm được chúng tôi lặp lại năm lần Trong quá trình cho cá lăng hầm sinh sản thường xuyên theo dõi nhiệt độ nước

3.3.3.3 Ấp trứng

Trứng được ấp trong các bình weis sau khi được khử dính bằng dung dịch Tanin Mật độ ấp 10.000 – 12.000 trứng/ lít, lưu tốc nước 1 –1,2 L/ phút

Khoảng hai giờ theo dõi nhiệt độ nước một lần

3.3.4 Ương nuôi cá bột

3.3.4.1 Chuẩn bị thức ăn

a/ Moina

Moina khi mua về được chứa trong bể nước sạch và sục khí liên tục

Ngoài ra, còn có thể gây nuôi trong ao để sử dụng làm thức ăn cho cá bột

Trước khi cho ăn Moina phải được lọc thật sạch để loại bỏ địch hại

b/ Trùn chỉ

Trùn chỉ khi mua về phải được loại bỏ các chất bẩn rồi sau đó được chứa trong các khay nhựa hình chữ nhật có dòng chảy liên tục Trước khi cho ăn, trùn chỉ được rửa sạch để tránh lây lan mầm bệnh cho cá

Ương nuôi cá được chia làm hai giai đoạn:

- Giai đoạn I: cá từø khi mới nở đến 6 ngày tuổi

- Giai đoạn II: cá từ 6 ngày tuổi đến 27 ngày tuổi Giai đoạn này được chia làm hai nghiệm thức (NT)

+ NT I: ương trong bể composite

+ NT II: ương ao đất

3.3.4.2 Ương trong bể composite (NT I)

Ương trong bể composite có thể tích 1 m3, lượng nước là 3/4 bể Thức ăn trong giai đoạn này được bố trí như sau:

- Cá 3 ngày tuổi đến 6 ngày tuổi, thức ăn hoàn toàn là Moina

- Cá 6 ngày tuổi đến 27 ngày tuổi, thức ăn là trùn chỉ và thức ăn viên (Greenfeed) Cho cá ăn 3 – 4 lần/ngày Vệ sinh bể 2 lần/ngày

Theo dõi nhiệt độ vào sáng, trưa, chiều

Theo dõi thời gian cá tiêu hết noãn hoàng và tỷ lệ sống ở cuối giai đoạn Cứ 7 ngày thì tiến hành cân đo chiều dài và trọng lượng

3.3.4.3 Ương ao đất (NT II)

Ương ao đất với diện tích 300 m2, thức ăn được bố trí hoàn toàn giống với ương trong bể composite

Cho ăn 3 – 4 lần/ngày

Theo dõi các yếu tố: nhiệt độ, DO, pH, độ trong

3.3.4.4 Theo dõi các chỉ tiêu thủy, lý, hóa

Các chỉ tiêu thủy, lý, hóa được theo dõi hàng ngày

Nhiệt độ được theo dõi ngày ba lần vào lúc 7 giờ sáng, 12 giờ trưa và 5 giờ chiều bằng nhiệt kế thủy ngân

pH được đo bằng pH test, tuần đo một lần

DO được đo bằng DO test, tuần đo một lần

Sử dụng đĩa secchi đo độ trong, tuần đo một lần

3.3.4.5 Kiểm tra tốc độ tăng trưởng của cá

Để theo dõi tốc độ tăng trưởng của cá định kì 7 ngày kiểm tra cá một lần vào buổi sáng Không cho cá ăn vào buổi chiều hôm trước để tránh cá bị mệt, sốc, chết ảnh hưởng đến những lần kiểm tra sau và ảnh hưởng đến tỷ lệ sống của cá sau khi kết thúc thí nghiệm Mỗi lần kiểm tra bắt ngẫu nhiên 30 cá thể để đo chiều dài bằng giấy kẻ ô li và, cân trọng lượng bằng cân điện tử với hai số lẻ Sau đó, lấy giá trị trung bình để đánh giá tốc độ tăng trưởng của cá

3.3.4.6 Mối quan hệ giữa chiều dài và trọng lượng

Trọng lượng và chiều dài cá quan hệ với nhau bởi công thức của Le Gren (1951)

P = a x Ln

Trong đó:

L : Chiều dài cá (cm)

P : Trọng lượng cá (g)

a, n: Các thông số đặc thù cuả loài

3.3.4.7 Chăm sóc và quản lý thí nghiệm

Hằng ngày, phải quan sát kỹ hoạt động của cá và chất lượng nước đồng thời phát hiện kịp thời số cá chết để xác định số cá còn lại ở hai NT sau khi kết thúc quá trình ương

Mỗi ngày, cho cá ăn ba lần vào sáng, trưa, chiều, cho ăn từ 4 – 5% trọng lượng thân Thường xuyên theo dõi khả năng bắt mồi của cá, trước khi cho ăn, trùn chỉ phải được rửa thật sạch bằng nước

Thức ăn thừa và chất bẩn phải được siphon ra ngoài bể composite nhằm giúp môi trường nước ít bẩn hơn, hạn chế sự phát triển của các loài vi khuẩn gây bệnh Mỗi ngày thay nước hai lần vào buổi sáng và buổi chiều

3.4 Phương pháp xử lý thống kê

Các dữ liệu về sinh sản và tăng trưởng như chiều dài và trọng lượng được phân tích theo trắc nghiệm F, thiết lập bảng ANOVA để tìm hiểu sự tác động giữa hai yếu tố (thức ăn và môi trường) lên sự tăng trưởng của cá Nếu giá trị F khác nhau có ý nghĩa về mặt thống kê thì dùng trắc nhgiệm LSD để so sánh giữa hai nghiệm thức, giữa các đợt sinh sản với nhau Sử dụng phần mềm Statgraphics 7.0 để xử lí

IV KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN

4.1 Kỹ Thuật Sinh Sản Nhân Tạo

4.1.1 Kết quả nuôi vỗ cá bố mẹ

Trong sản xuất giống nhân tạo cá lăng hầm, quy trình nuôi vỗ là một trong những khâu quan trọng quyết định đến sự thành công hay thất bại của công tác sản xuất giống Nuôi vỗ nhằm mục đích giúp cho cá có đày đủ về nhu cầu dinh dưỡng cần thiết để cá phát triển tuyến sinh dục nhanh hơn đồng thời tham gia sinh sản Cá được nuôi vỗ tốt thì tỷ lệ thành thục cũng như hệ số thành thục sẽ được nâng cao dẫn đến sản xuất giống cho kết quả khả thi hơn

Thức ăn là một trong những yếu tố quan trọng ảnh hưởng đến sự thành thục của cá, là nguồn cung cấp dưỡng chất cho cá, nguyên liệu để tích lũy noãn hoàng Trong nuôi vỗ, thức ăn sử dụng chủ yếu là cá tạp và bổ sung thêm thức ăn công nghiệp (Greenfeed) Cá được cho ăn ngày hai lần, sáng và chiều tối với khẩu phần 5% trọng lượng thân

Ngoài chất và lượng thức ăn thì các yếu tố thủy, lí, hóa cũng đóng một vai trò quan trọng trong quá trình nuôi vỗ Nguyễn Kim Quang và Nguyễn Khoa Diệu Thu,

1976 (trích bởi Võ Xuân Nhơn, 1996) thì nhấn mạnh rằng, ngoài vấn đề kích thích hay thuần hoá cá trong ao nuôi vỗ, các yếu tố môi trường và chế độ chăm sóc thì thức ăn là yếu tố quyết định đến sự thành thục của cá

Nhiệt độ cũng là yếu tố quan trọng ảnh hưởng trực tiếp lên cá, nhiệt độ ảnh hưởng đến các phản ứng sinh hóa trong cơ thể của cá Nhiệt độ càng cao thì thời gian phát dục của cá càng ngắn và ngược lại ở nhiệt độ quá thấp cá sẽ ít hoạt động, kém ăn đồng thời các phản ứng sinh hoá trong cơ thể diễn ra chậm dẫn đến làm chậm quá trình phát triển tuyến sinh dục của cá Qua kết quả khảo sát nuôi vỗ cho thấy, nhiệt độ thích hợp cho cá trong quá trình nuôi vỗ là 29 – 310 C

pH trong khoảng từ 6 – 9 thì hoạt động của cá lăng hầm diễn ra bình thường Cá

bị tác động bởi pH quá cao hay quá thấp sẽ làm thây đổi độ thẩm thấu của màng tế bào, làm rối loạn quá trình trao đổi chất giữa cơ thể với môi trường Vì vậy khi pH vượt quá giới hạn chịu đựng thì cá sẽ có những hoạt động bất thường dẫn đến thời gian nuôi vỗ kéo dài hơn hoặc cá sẽ chết pH thích hợp trong quá trình nuôi vỗ là 6,5 – 7,5

Qua khảo sát cho thấy hàm lượng oxy hoà tan trong ao nuôi vỗ khoảng 3 đến

4 mg/L là phù hợp cho sự phát triển tuyến sinh dục của cá

Vì cá lăng hầm không thể tự bắt cặp và sinh sản tự nhiên trong ao được Do đó phải tiến hành nuôi vỗ chung đực cái với mật độ là 0,5 – 1 kg/m2 trong ao đất có diện tích 300 – 1200 m2, đồng thời nuôi ghép chung với cá rô phi để sử dụng cá rô phi con làm thức ăn cho cá bố mẹ, độ sâu mực nước nuôi vỗ trong khoảng 1 – 1,5 m Cho cá bố mẹ ăn thức ăn công nghiệp (Greenfeed) với khẩu phần 2-3% trọng lượng thân Kết quả là sau 3 tháng nuôi vỗ, tỷ lệ thành thục đạt khoảng 70%

Sau khi cá sinh sản xong, tiến hành nuôi vỗ tái thành thục với khẩu phần thức ăn (Greenfeed) 2 – 3% trọng lượng thân Chúng tôi ghi nhận sau 2,5 – 3 tháng nuôi vỗ, hầu hết số cá này đã thành thục tốt và có cho khả năng sinh sản được

4.1.1.1 Hệ số thành thục của cá lăng hầm đực

Bảng 4.1 Hệ số thành thục của cá lăng hầm đực

0,402 0,429 0,604 0,415 0,387

Chú thích:

P (g): Trọng lượng cá đực

Po (g): Trọng lượng cá đực bỏ nội qua

Ptsd (g): Trọng lượng tuyến sinh dục HSTT: Hệ số thành thục, tính theo phần trăm

Qua kết quả thu được từ Bảng 4.1, chúng tôi cũng khẳng định rằng hệ số thành thục của cá lăng hầm đực phụ thuộc vào trọng lượng cơ thể cá Cá có trọng lượng cao nhất thì hệ số thành thục cũng cao nhất, kế đến trọng lượng cá giảm dần thì hệ số thành thục cũng giảm dần Cụ thể là cá có trọng lượng nặng nhất 700 g thì hệ số thành thục lớn nhất là 0,604%, kế đến cá có trọng lương 560 g có hệ số thành thục là 0,429%, kế tiếp là cá có trọng lượng 510 g và 420 g thì có hệ số thành thục tương ứng là 0,415% và 0,402%, cho đến cá có trọng lượng thấp nhất 350 g khi đó hệ số thành thục của cá cũng nhỏ nhất là 0,387%

4.1.1.2 Sức sinh sản thực tế của cá lăng hầm

Sức sinh sản thực tế là tỷ lệ giữa số trứng đẻ ra và trọng lượng cá cái đẻ trứng

Sức sinh sản thực tế của cá lăng hầm cao hay thấp còn phụ thuộc vào các yếu tố như tuổi của cá bố mẹ, kích thước ban đầu mà cá tham gia sinh sản, điều kiện sinh sản, chu kỳ phát dục của tuyến sinh dục và lượng trứng có trong buồng trứng (Nguyễn Hữu Trường, 1993; Lê Hoàng Yến, 2000)

Qua các đợt sinh sản, để xác định sức sinh sản thực tế của cá lăng hầm, chúng tôi tiến hành cân tổng số gam trứng được vuốt ra và đếm số trứng trung bình của một gam trứng từ đó ta tính được tổng số trứng được vuốt ra, và kết quả được chúng tôi ghi nhận như sau

Bảng 4.2 Sức sinh sản thực tế của cá lăng hầm

Số cá cái P (g) Trọng lượng trứng

thu được (g)

Số trứng đếm được (trứng)

SSS thực tế (trứng/kg cá cái)

16.600 17.100 15.600 40.300 30.400 26.000 31.700

Chú thích :

P(g): Trọng lượng cá cái tham gia sinh sản

SSS : Sức sinh sản Từ kết quả thu được này cho thấy, cá lăng hầm có sức sinh sản thực tế khá cao, dao động từ 16.600 – 40.300 trứng/kg cá cái Tuy nhiên theo chúng tôi nhận thấy

sức sinh sản thực tế của cá lăng hầm có thể còn cao hơn Vì trong quá trình chúng tôi thí nghiệm cho sinh sản, có một số cá thể chưa thành thục tốt nên trứng chính và rụng không đều vì vậy số trứng vuốt không hết Để nghiên cứu sức sinh sản thực tế của cá lăng hầm một cách chính xác hơn Theo chúng tôi là nên chọn những cá thể đã thành thục tốt, rồi xác định sức sinh sản thực tế bằng cách mổ cá cân trọng lượng buồng trứng từ đó xác định số trứng sẽ chính xác hơn

Như vậy, qua kết quả khảo sát hệ số thành thục và sức sinh sản thực tế của cá lăng hầm trong điều kiện nuôi vỗ, chúng tôi nhận định rằng cá lăng hầm không những là một đối tượng nuôi thủy sản nước ngọt đơn thuần mà rất có tiềm năng trong việc phát triển nuôi trồng thủy sản nước ngọt trong những năm tới đây

4.1.2 Thí nghiệm cho cá lăng hầm sinh sản

4.1.2.1 Chuẩn bị bể đẻ

Bể đẻ: trước khi kiểm tra cá bố mẹ cho vào bể chuẩn bị sinh sản, bể phải được vệ sinh sạch sẽ Sau đó, cho nước vào, độ sâu mực nước từ 0,4 – 0,6 m, sau khi kiểm tra cá xong thả vào bể, kích thích nước chảy nhẹ Nước sử dụng cho cá đẻ, ấp trứng và ương nuôi đều sử dụng chung một nguồn nước được cấp từ hầm đất và được chứa trong bể lắng

4.1.2.2 Chọn cá bố mẹ cho sinh sản

Trong sinh sản nhân tạo ở hầu hết các loài cá, khâu chọn cá bố mẹ thành thục hoàn toàn cho sinh sản rất quan trọng bởi vì nó ảnh hưởng đến kết quả sinh sản mà ta thu được Thông thường việc đánh giá mức độ thành thục có sự khác nhau giữa các loài cá Tuy nhiên, để đánh giá mức độ thành thục chủ yếu phụ thuộc vào các yếu tố bên ngoài như độ căng và tính đàn hồi của bụng hoặc màu sắc và sự phồng lên của gai sinh dục Ngoài ra một giải pháp hiệu quả cho nhiều loài cá là dùng que thăm trứng cá cái để quan sát trứng có đạt những tiêu chuẩn hay không như nhân có sự cực hoá, kích thước trứng tối đa của loài, màu sắc đặc trưng cho loài, độ rời và kích thước đồng đều của trứng

Trong các loài cá cho sinh sản nhân tạo, thường cá đực được kiểm tra độ thành thục bằng cách vuốt tinh là tiêu chuẩn quan trọng nhất để chọn cá cho sinh sản Như các loài cá mè, trắm, chép việc vuốt tinh tương đối đơn giản Nhưng đối với cá lăng hầm do buồng tinh phân làm nhiều túi nhỏ rất khó khăng trong việc vuốt tinh nên việc chọn cá đực cho sinh sản chỉ có thể dựa vào hình dạng bên ngoài và gai sinh dục của cá

Chọn cá lăng hầm cho sinh sản nhân tạo cần phải đạt những tiêu chuẩn sau:

- Với cá đực: khỏe mạnh, thân cá không bị sây sát có gai sinh dục dài và đầu mút gai sinh dục nhọn đồng thời có màu ửng hồng, có nhiều mạch máu ở bụng

- Đối với cá cái: về ngoại hình thân không bị sây sát, bụng to căng đều và có tính đàn hồi, lỗ sinh dục ửng hồng, da bụng mỏng, đặc biệt cá còn khoẻ mạnh

Hình 4.1 Chọn cá bố mẹ cho sinh sản

4.1.2.2 Tiêm chất kích thích sinh sản

Sau khi đã chọn được cá bố mẹ đủ tiêu chuẩn cho sinh sản, chúng tôi tiến hành tiêm CKTSS cho cá

Đối với cá lăng hầm, chúng tôi áp dụng phương pháp tiêm 3 liều Liều dẫn , liều sơ bộ và liều quyết định, vị trí tiêm là vùng cơ lưng và mũi kim tiêm hợp với thân cá một góc 450

Liều lượng và thời gian tiêm như sau

- Liều lượng:

I

II

Liều dẫn: HCG (500 IU/kg cá cái) hoặc LH-Rha (20 µg/kg cá cái) Liều sơ bộ: HCG (1.000 IU/kg cá cái) hoặc LH-Rha (30 µg/kg cá cái) Liều quyết định: HCG (4.000 IU/kg cá cái) hoặc LH-Rha (120 µg/kg cá cái)

- Thời gian: liều quyết định cách liều sơ bộ 4 giờ và cách liều dẫn 24 giờ

Hình 4.2 Tiêm chất kích thích sinh sản cho cá lăng hầm

4.1.3 Hình thức cho cá lăng hầm sinh sản

Trong thí nghiệm cho cá lăng hầm sinh sản, chúng tôi cho cá sinh sản bằng hình thức gieo tinh nhân tạo

Hình thức sinh sản gieo tinh nhân tạo: cá bố mẹ được tiêm các CKTSS là HCG và LH-RHa kết hợp với DOM Sau khi tiêm CKTSS xong thì thả cá vào bể có kích thích nước chảy nhẹ Khi kiểm tra cá cái, thấy trứng rụng đồng loạt thì tiền hành bắt cá đực mổ lấy buồng tinh lau sạch máu và bỏ vào cối sứ Vớt cá cái ra gây mê và tiến hành vuốt trứng

Hình 4.3 Vuốt trứng cá lăng hầm

Tỷ lệ đực cái cho sinh sản là 1:3 Áp dụng hình thức sinh sản gieo tinh bán khô Sau khi gieo tinh xong, tiến hành khử dính trứng bằng dung dịch Tanin (0.7-1.5%) rồi đem trứng ấp trong các bình weis

Thao tác khử dính trứng:

Sau khi gieo tinh xong, cho nước cất vào thau chứa trứng khuấy đều bằng lông gà trong vòng 10 giây Sau đó, rửa trứng lại bằng nước sạch, cho dung dịch Tanin vào thau trứng, khuấy đều thật nhanh khoảng 10 giây Đổ dung dịch Tanin đi và rửa lại bằng nước sạch, tiếp tục lại đổ Tanin vào và dùng lông gà khuấy đều Cứ tiếp tục thực hiện thao tác trên cho đến khi trứng không còn dính nữa thì cho trứng vào các bình weis để ấp

4.1.4 Kết quả cho cá lăng hầm sinh sản

Trong thí nghiệm cho cá sinh sản, chúng tôi sử dụng hình thức sinh sản gieo tinh nhân tạo Hình thức sinh sản này, thường được áp dụng ở một số loài cá như : Cá tra, basa, trê, thác lác, …, cá lăng hầm cũng được cho sinh sản bằng hình thức này Tuy nhiên, vì buồng tinh cá lăng hầm phân nhiều túi nhỏ nên vuốt tinh không ra Vì vậy, trước khi gieo tinh phải mổ cá đực để lấy buồng tinh, điều đó có nghĩa là muốn duy trì sản xuất giống lâu dài thì cần một số lượng cá đực đáng kể Đây cũng là mặt hạn chế của hình thức sinh sản gieo tinh nhân tạo

Tuy nhiên, theo Ngô Trọng Lư và Thái Bá Hồ (2003), ở Trung Quốc, khi tiến

hành sinh sản nhân tạo cá lăng chấm (Mystus guttatus), họ không giết chết cá đực Sau

khi mổ lấy buồng tinh, cá được sát trùng vết thương và khâu lại ngay rồi thả vào ao

nuôi vỗ tiếp, tỷ lệ sống đạt trên 80% Điều này đặt ra một vấn đề là làm sao phải

nghiên cứu và ứng dụng được giải pháp trên vào việc sinh sản và nuôi vỗ Nhằm tăng

tính khả thi và hiệu quả kinh tế khi áp dụng ở nước ta đồng thời bảo vệ và hạn chế lãng

phí tài nguyên

4.1.4.1 Gieo tinh nhân tạo bằng LH-RHa (NT I)

Trong nghiên cứu này, chúng tôi áp dụng hình thức gieo tinh bán khô Kết quả

thu được trong quá trình gieo tinh nhân tạo bằng LH-RHa (NT I) được thể hiện qua

CKTSS: Chất kích thích sinh sản

TLRT: Tỷ lệ rụng trứng

TGHƯ: Thời gian hiệu ứng

Qua Bảng 4.3 cho thấy, tỷ lệ rụng trứng trong các đợt sinh sản là không có sự

khác biệt, đều đạt tỷ lệ 100% Như vậy, qua 5 đợt sinh sản bằng chất kích thích là

LH-Rha với liều lượng 150 µg/kg cá cái đều cho tỷ lệ rụng trứng tốt nhất là100%

4.1.4.2 Gieo tinh nhân tạo bằng HCG (NTII)

Cùng với gieo tinh nhân tạo bằng LH-Rha Chúng tôi tiến hành thử nghiệm

gieo tinh nhân tạo cho cá lăng hầm bằng HCG với một liều 5.500 IU/kg cá cái Kết

quả thu được thể hiện qua Bảng 4.4 như sau

Bảng 4.4 Kết quả gieo tinh nhân tạo cá lăng hầm ở NT II

Đợt SS Nghiệm

thức

Số cá cái Liều lượng

HCG (IU /kg cá cái)

TGHƯ: Thời gian hiệu ứng

Đồ thị 4.1 Tỷ lệ rụng trứng của cá lăng hầm ở NT I và NT II

Qua Bảng 4.4, chúng tôi thu được tỷ lệ rụng trứng giữa các đợt sinh sản là có

sự khác nhau nhưng không đáng kể, cụ thể như sau: tỷ lệ rụng trứng của đợt I, đợt III

và đợt V đều cho kết quả tốt nhất là 100% Ở đợt sinh sản II và IV cho kết quả là 89% và 90%

Mặt khác, qua phân tích thống kê chúng tôi nhận thấy tỷ lệ rụng trứng giữa các đợt sinh sản sự sai khác không có ý nghĩa về mặt thống kê (p>0,05) Điều đó có nghĩa là khi sử dụng HCG với liều lượng 5.500 IU/kg cá cái cho sinh sản nhân tạo thì tỷ lệ rụng có sự khác nhau giữa các đợt nhưng sự khác nhau này không quá lớn

Mục đích của nghiên cứu là tìm ra CKTSS phù hợp nhất trong gieo tinh nhân tạo cá lăng hầm, chúng tôi so sánh hiệu quả khi sử dụng LH-RHa và HCG với liều tốt nhất qua các đợt thí nghiệm, cụ thể là 150 µg LH-RHa/kg cá cái và 5.500 IU/kg cá cái

Qua phân tích thống kê, chúng tôi nhận thấy với hai CKTSS với liều lượng như trên thì tỷ lệ rụng trứng của cá lăng hầm không có sự khác biệt về mặt thống kê (p>0,05)

Ngoài ra, trong quá trình cho cá lăng hầm sinh sản chúng tôi còn nhận thấy có sự khác biệt về thời gian hiệu ứng giữa hai loại CKTSS Ở đợt sinh sản I, nhiệt độ từ

28 – 29,50C, khi sử dụng HCG với liều lượng 5.500 IU/kg cá cái thì thời gian hiệu ứng là 7giờ 30 phút, còn đối với LH-RHa (150 µg/ kg cá cái) là 7 giờ 10 phút Ở đợt sinh sản II, nhiệt độ 29 – 300C, khi sử dụng HCG và LH-RHa với liều lượng như trên thì thời gian hiệu ứng lần lượt là 7 giờ 10 phút và 6 giờ 50 phút Ở đợt sinh sản III, nhiệt độ 29 – 310C với HCG là 7 giờ và LH-RHa là 6 giờ 40 phút Tương tự ở các đợt IV và

V, cùng một nhiệt độ là 28 – 300C nhưng thời gian hiệu ứng của hai loại CKTSS HCG và LH-RHa cũng khác nhau như bảng trên Từ những kết quả này chúng tôi nhận thấy, thời gian hiệu ứng phụ thuộc vào loại CKTSS, cụ thể khi sử dụng LH-RHa thời gian hiệu ứng sẽ ngắn hơn khi sử dụng HCG

Vì vậy, để đưa vào sản xuất đại trà theo chúng tôi nên sử dụng LH-RHa với liều 150 µg/kg cá cái trong gieo tinh nhân tạo nhằm giảm chi phí sản xuất giống, nâng cao hiệu quả kinh tế và tiết kiệm được thời gian

4.1.5 Kết quả ấp trứng

Trước khi đổ trứng vào bình weis, nước trong bình không nên quá đầy vì nếu không trứng sẽ bị tràn ra ngoài

Hình 4.4 Ấp trứng bằng bình weis

Trong quá trình ấp trứng, phải thường xuyên theo dõi nhiệt độ nước, theo dõi bình weis để không có sự cố xảy ra Kết quả thu được thể hiện qua bảng sau

Bảng 4.5 Kết quả ấp trứng trong bình weis