Nghiên Cứu Ảnh Hưởng Của Tỉ Lệ Dinh Dưỡng NP Đến Sinh Trưởng Của Tảo Và Loại Bỏ Dinh Dưỡng Trong Nước Thái Sinh Hoạt Bởi Tảo CHLORELLA VULGARIS

Trong quá trình xử lý, tảo sử dụng dinh dưỡng Nitơ, Phốtpho dưới dạngion vô cơ từ quá trình phân hủy hợp chất hữu cơ để sinh trưởng phát triển, từđó loại bỏ những dinh dưỡng này khỏi nướ

Trang 1

HỌC VIỆN NÔNG NGHIỆP VIỆT NAM

KHOA MÔI TRƯỜNG

TRONG NƯỚC THẢI SINH HOẠT BỞI TẢO CHLORELLA VULGARIS”

Người thực hiện : Đinh Phương Thảo

Trang 2

Tôi xin gửi lời cảm ơn sâu sắc tới thầy TS Đỗ Thủy Nguyên, cô ThS.Nguyễn Thị Thu Hà, giảng viên bộ môn Công nghệ môi trường, khoa Môi trường, thầy cô đã chỉ bảo và giúp đỡ tôi rất nhiều trong quá trình nghiên cứu

Tôi xin trân trọng cảm ơn toàn thể các quý thầy, cô giáo bộ môn Công nghệ Môi trường – Học viện Nông nghiệp Việt Nam đã tạo điều kiện giúp đỡ tôi trong thời gian thực tập tại bộ môn.

Tôi xin chân thành cám ơn sự giúp đỡ nhiệt tình của anh Trần Minh Hoàng, chị Đặng Thị Thanh Hương, anh Nguyễn Việt Vương, bạn Phạm Đình Nghĩa trong suốt quá trình thực hiện nghiên cứu.

Cuối cùng tôi xin bày tỏ sự cảm ơn sâu sắc tới bố mẹ, gia đình và bạn

bè đã động viên, giúp đỡ, tạo mọi điều kiện cho tôi thực hiện khóa luận này.

Tôi xin chân thành cảm ơn !

Hà Nội, ngày tháng 1 năm 2016.

Sinh viên

Đinh Phương Thảo

Trang 3

MỤC LỤC

LỜI CẢM ƠN i

MỤC LỤC ii

DANH MỤC BẢNG iv

DANH MỤC HÌNH v

Phần 1.ĐẶT VẤN ĐỀ 1

1.1 Tính cấp thiết của đề tài 1

1.2 Mục tiêu nghiên cứu 2

2.1 Đặc điểm sinh học của tảo chlorella vulgarıs 3

2.2 Tổng quan về ứng dụng tảo trong xử lý nước thải sinh hoạt 10

2.2.1 Tính chất của nước thải sinh hoạt 10

2.2.2 Ứng dụng tảo trong xử lý nước thải 12

2.3 Ứng dụng của tảo Chlorella trong cuộc sống con người 17

PHẦN 3.ĐỐI TƯỢNG, NỘI DUNG VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU 20

3.1 Đối tượng nghiên cứu 20

3.2 Phạm vi nghiên cứu 20

3.3 Nội dung nghiên cứu 20

3.4 Phương pháp sử dụng trong nghiên cứu 20

3.4.1 Phương pháp thu thập tài liệu thứ cấp: 20

3.4.2 Phương pháp bố trí thí nghiệm 20

3.4.3 Phương pháp xác định mật độ tảo bằng phương pháp đếm số lượng tế bào bằng buồng đếm Burker – Turk: 22

3.4.4 Phương pháp xác định hằng số tốc độ tăng trưởng K 22

3.4.5 Phương pháp phân tích Chlorophyll – a 22

3.4.6 Phương pháp phân tích trong phòng thí nghiệm: 22

3.4.7 Phương pháp so sánh 23

3.4.8 Phương pháp xác định hiệu xuất loại bỏ N, P trong nước thải 23

Trang 4

3.4.9 Phương pháp xử lý số liệu và trình bày kết quả: 23

PHẦN 4 KẾT QUẢ NGHIÊN CỨU VÀ THẢO LUẬN 24

4.1 Tính chất nước thải sinh hoạt sử dụng trong nghiên cứu 24

4.2 Đánh giá ảnh hưởng của tỉ lệ N:P tới khả năng sinh trưởng của tảo Chlorella vulgaris trong điều kiện thí nghiệm 25

4.2.1 Quá trình sinh trưởng của tảo Chlorella vulgaris trong nước thải sinh hoạt 26

4.2.2 Biến động của các yếu tố ảnh hưởng đến sự phát triển của tảo điều kiện thí nghiệm 30

4.3 Đánh giá hiệu quả loại bỏ dinh dưỡng N, P trong nước thải 40

PHẦN 5.KẾT LUẬN VÀ KİẾN NGHỊ 45

5.1 Kết luận 45

5.2 Kiến nghị 46 TÀI LIỆU THAM KHẢO

Trang 5

DANH MỤC BẢNG

Bảng 2.1: Thành phần hóa học của tảo Chlorella (% trọng lượng khô) 6

Bảng 2.3: Hiệu quả loại bỏ Nito, Photpho ở các khoảng tỉ lệ khác nhau theo nghiên cứu của Hee Jeong Choi (2014) 17

Bảng 3.1:Bảng điều kiện thí nghiệm trong các công thức 21

Bảng 4.1: Tính chất nước thải sử dụng nghiên cứu 24

Bảng 4.2 Bảng tốc độ sinh trưởng (k) của tảo ở các công thức 29

Bảng 4.3 Giá trị trung bình các thông số môi trường trong thời gian nghiên cứu 31

Bảng 4.4 Tốc độ giảm nồng độ NO3- ở các công thức trong 2 giai đoạn 35

Bảng 4.5 Kết quả kiểm định sai khác có nghĩa của việc loại bỏ NH4+ trong 2 giai đoạn ở các công thức 38

Bảng 4.6 Hiệu quả loại bỏ N, P trong nước thải 40

Trang 6

DANH MỤC HÌNH

Hình 2.1: Hình thải tảo Chlorella vulgaris 4

Hình 4.1: Sự biến động mật độ tảo theo thời gian giữa các công thức 27Hình 4.2: Sự biến động nồng độ Chlorophyll-a theo thời gian giữa các công

thức 27Hình 4.3 Biến động thông số DO theo thời gian 33Hình 4.4 Biến động thông số pH theo thời gian 34Hình 4.5 Diễn biến thay đổi nồng độ NO3- ở các công thức đối chứng, công

thức có tỉ lệ N:P = 5:1 và N:P = 12:1 36Hình 4.6 Diễn biến thay đổi nồng độ NH4+ ở các công thức đối chứng, công

thức có tỉ lệ N:P = 5:1 và N:P = 12:1 37Hình 4.7 Diễn biến thay đổi nồng độ PO43- ở các công thức đối chứng, công

thức có tỉ lệ N:P = 12:1; N:P = 16:1 và N:P = 30:1 40

Trang 7

Phần 1 ĐẶT VẤN ĐỀ

1.1 Tính cấp thiết của đề tài

Nước thải sinh hoạt không được xử lý hoặc xử lý không triệt để thườngchứa hàm lượng cao các chất hữu cơ, Nitơ (N), Photpho (P), vi sinh vật và vikhuẩn gây bệnh Nước thải khi được đổ vào thủy vực là nguyên nhân dẫn tớisuy thoái chất lượng, ảnh hưởng đến sức khỏe con người Sự dư thừa các chấtdinh dưỡng này sẽ thúc đẩy sự phát triển của các loài tảo, rong, rêu và cácthực vật thân mềm trong nước và cuối cùng sẽ ảnh hưởng đến sự cân bằngsinh học của nước

Có nhiều công nghệ xử lý nước thải đã và đang được áp dụng Tuynhiên, việc lựa chọn giải pháp xử lý phụ thuộc nhiều vào quy phạm pháp luật

và mức độ đầu tư Hiện tại đối với các nhà máy, xí nghiệp, giải pháp xử lýchính được áp dụng là công nghệ sinh học hiếu khí hoặc công nghệ bán hiếukhí kết hợp Nhưng đối với các khu vực dân cư và hộ gia đinh giải pháp xử lýnước thải hiện áp dụng chính vẫn là sử dụng bể tự hoại Xử lý nước thải bằng

bể tự hoại chỉ được cho là giải pháp mang tính tạm thời, lý do, khả năng xử lýcủa hệ thống không cao

Ứng dụng tảo trong xử lý nước thải đã được nghiên cứu và chứng minh

là đem lại hiệu quả tích cực, tiết kiệm năng lượng và thân thiện với môitrường Nhiều loài tảo đã được nghiên cứu nhằm phục vụ cho mục đích này

như: Chlorella (Gonzale và cs., 1997), Scenedesmus (Martinez và cs., 1999), Spirulina (Olguin và cs., 2003) Liang Wang cs (2009) đã nghiên cứu sử dụng tảo Chlorella xử lý nước thải sinh hoạt, tổng N và tổng P giảm được

trong nghiên cứu lần lượt là 76% và 65%, Liandong Zhu Cs (2013) cũngnghiên cứu với nước thải chăn nuôi cho thấy giá trị này lần lượt là 76% và65%

Trang 8

Trong quá trình xử lý, tảo sử dụng dinh dưỡng Nitơ, Phốtpho dưới dạngion vô cơ từ quá trình phân hủy hợp chất hữu cơ để sinh trưởng phát triển, từ

đó loại bỏ những dinh dưỡng này khỏi nước thải Tuy vậy do nhu cầu dinhdưỡng của tế bào của tảo, tỷ lệ N:P là một trong những yếu tố ảnh hưởng đếnhiệu suất loại bỏ các dinh dưỡng trong nước thải Tỷ lệ N:P không phù hợpkhiến cho N hoặc P trở thành yếu tố cản trở hoạt động của tảo Thực tế chothấy, các nguồn nước thải giàu dinh dưỡng thường có tỉ lệ N:P không đồngđều, nước thải sinh hoạt thường có tỷ lệ N:P từ 5:1 – 12:1 (R Crites, G.Tchobanoglous, 1998), nước thải chăn nuôi 8:1 – 23:1 (Y S Choi, 2002),nước thải thủy sản, nước thải công nghiệp chế biến thực phẩm 3:1 – 11:1 (J.Takeda, 1998), đòi hỏi trong quá trình xử lý cần điều chỉnh tỷ lệ dinh dưỡngcho phù hợp hợp nhu cầu của tảo nhằm đảm bảo hiệu suất xử lý

Xuất phát từ thực tiễn đó chúng tôi đề xuất và tiến hành thực hiện đề tài:

“Nghiên cứu ảnh hưởng của tỉ lệ dinh dưỡng N:P đến sự sinh trưởng và loại bỏ dinh dưỡng trong nước thải sinh hoạt bởi tảo Chlorella vulgaris”

1.2 Mục tiêu nghiên cứu

Nghiên cứu ảnh hưởng của tỉ lệ dinh dưỡng N:P đến sự sinh trưởng và

phát triển của tảo Chlorella vulgaris.

Xác định tỉ lệ dinh dưỡng N:P thích hợp cho việc loại bỏ dinh dưỡng (N,P) trong nước thải sinh hoạt

Trang 9

PHẦN 2 TỔNG QUAN TÀI LIỆU NGHIÊN CỨU

2.1 Đặc điểm sinh học của tảo chlorella vulgarıs

a Đặc điểm phân loại

− Giống: Chlorella (Bold anh Wynne, 1978)

Chlorella là một chi của tảo lục đơn bào, thuộc về ngành Chlorophyta Chlorella có màu xanh lá cây nhờ sắc tố quang hợp

Chlorophyll -a và b trong lục lạp Thông qua quang hợp nó phát triểnnhanh chóng chỉ cần lượng khí CO2, nước, ánh sáng mặt trời và một lượngnhỏ các khoáng chất để tái sản xuất

b Hình thái cấu tạo

Chlorella là loại tảo đơn bào, không có tiêm mao, không có khả năng di

động chủ động, tế bào có dạng hình cầu hoặc hình ovan Kích cỡ tế bào từ 5µm tùy loài Màng tế bào có vách cellulose bao bọc, có khả năng chịu đượcnhững tác động cơ học nhẹ Sự thay đổi của các điều kiện môi trường như ánhsáng, nhiệt độ, thành phần các chất hóa học trong môi trường sẽ ảnh hưởngđến hình thái và chất lượng của tế bào tảo (Trần Văn Vĩ, 1995)

Trang 10

2-Hình 2.1: 2-Hình thải tảo Chlorella vulgaris

Vĩ, 1995) Do vậy về mặt lý thuyết một tế bào ban đầu sau một ngày đêmnuôi trong huyền phù rất loãng có thể cho 64 - 4096 tế bào con

Trong điều kiện thuận lợi về cung cấp ánh sáng và khí CO2 khi trong môi

trường nuôi có một lượng khá nhiều muối khoáng thì tế bào Chlorella sống

với số lượng 1-2 triệu tế bào/ml chất lỏng, bắt đầu sinh trưởng nhanh, sau vàingày mật độ huyền phù đạt tới 50-500 triệu tế bào/ml huyền phù (có thể caohơn) (Trương Văn Lung, 2004)

Trang 11

d Các giai đoạn phát triển của quần thể tảo.

Tamiya (1963) trong nghiên cứu về vòng đời của tảo Chlorella đã chia

vòng đời của tảo làm 4 giai đoạn:

Giai đoạn tăng trưởng: Ở giai đoạn này cá bào tử sẽ tăng nhanh về kích

thước nhờ các sản phẩm sinh tổng hợp

Giai đoạn bắt đầu chín: Tế bào mẹ chuẩn bị quá trình phân chia.

Giai đoạn chín mùi: Tế bào nhân lên trong điều kiện có ánh sáng hoặc

Pha chậm: Do sự giảm trao đổi chất của tảo giống, tế bào tảo gia tăng

kích thước nhưng ko có sự phân chia

Pha tăng trưởng: tế bào phân chia rất nhanh và liên tục tuỳ thuộc vào

kích thước tế bào, cường độ ánh sáng, nhiệt độ…

Pha tăng trưởng chậm: Sự sinh trưởng của tảo bị ức chế do sự thay đổi

của một yếu tố nào đó

Pha quân bình: do cạn kiệt dinh dưỡng, tảo bị suy tàn.

e Thành phần dinh dưỡng

Tảo Chlorella vulgaris là loài Chlorella thuần được nuôi đầu tiên vào

năm 1890 bởi M N Beijercrinck Từ đó các thí nghiệm nuôi và nghiên cứu

về Chlorella được thực hiện liên tục.

Các nhà nghiên cứu đã xác minh trong Chlorella vulgaris có chứa rất nhiều chất dinh dưỡng Thành phần hóa học của tảo Chlorella tùy thuộc theo

tốc độ sử dụng môi trường dinh dưỡng trong quá trình phát triển Bảng 2.1.

Trang 12

Tế bào Chlorella có chứa 23 amino acid trong đó có các amio acid

không thay thế như lysine, methionine, tryptophan, arginic, leucine…

Bảng 2.1: Thành phần hóa học của tảo Chlorella (% trọng lượng khô)

Trang 13

f Các yếu tố ảnh hưởng đến quá trình sinh trưởng của Chlorella

 Nhiệt độ

Theo Karin và cs , (2006), các loài vi tảo thường phát triển tốt trongkhoảng nhiệt độ từ 15 – 25oC Nhiệt độ tăng làm tăng sự phát triển của tảo chođến khi đạt nhiệt độ tối ưu (Soeder , 1981) Tăng nhiệt độ quá mức tối ưu làm

giảm khả năng tổng hợp protein do đó làm giảm tốc độ tăng trưởng Chlorella vulgaris tăng trưởng tối ưu ở nhiệt độ 25oC (Konopka và cs , 1978)

 Ánh sáng

Cũng như các loài thực vật khác, tảo cũng cần ánh sáng cho quá trìnhquang tổng hợp vật chất hữu cơ từ CO2 Không chỉ vậy nó còn là nguồnnăng lượng chính trong giai đoạn tăng trưởng quang tự dưỡng Các sinh vật

sử dụng năng lượng ánh sáng để chuyển đổi CO2 vào các hợp chất hữu cơtrong tế bào Tảo khắc phục hạn chế ánh sáng bằng cách giảm độ bão hòacủa màng lục lạp Khi cường độ ánh sáng quá cao, vượt mức độ bão hòa sẽ

gây ra hiện tượng photoinhibition - hiện tượng ức chế ánh sáng Điều này có

thể làm bất hoạt các enzym tham gia vào quá trình cố định CO2 (Iqbal và cs.,2012) Cường độ ánh sáng thích hợp thay đổi rất lớn tuỳ theo điều kiện nuôicấy, Nuôi trong bình thuỷ tinh dung tích nhỏ cần cường độ ánh sáng là 1000LUX, với bể nuôi lớn cường độ ánh sáng cần cung cấp vào khoảng 5000 –

10000 LUX

 pH

Một trong những yếu tố quan trọng nhất trong nuôi cấy tảo là pH vì nóquyết định khả năng hòa tan và hàm lượng sẵn có của CO2 cũng như các chấtdinh dưỡng thiết yếu trong môi trường pH có một tác động đáng kể tới quátrình trao đổi chất của tảo (Chen và cs ,1994) Trong quá trình sinh trưởng,tảo hấp thu cacbon vô cơ khiến cho pH tăng lên đáng kể trong suốt quá trìnhnuôi (Hansen và cs ,2002) Mức tăng trưởng tối ưu của tảo đạt được trongkhoảng pH trung tính (7 – 7,6)

Trang 14

pH là yếu tố chính chi phối nồng độ tương đối của dạng cacbon trongnước Ở giá trị pH cao, hàm lượng CO2 có sẵn trong nước nhỏ, làm hạn chế sựtăng trưởng của tảo (Azov và cs ,1982) Do pH cao làm tăng tính linh hoạt củathành tế bào mẹ, ngăn ngừa sự phá vỡ của nó và ức chế việc hình thành các tựbào tử, từ đó làm tăng thời gian hoàn thành của chu kỳ tế bào (Guckert và cs ,1990) Ở giá trị pH thấp, điều kiện có tính axit làn thay đổi sự hấp thu chất dinhdưỡng (Gensemer và cs , 1993) hoặc làm tăng khả năng phát tán kim loại độc(Sunda và cs , 1975) và do đó làm ảnh hưởng tới sự phát triển của tảo.

Sục khí

Theo Person (1980) nhận xét giữa các chế độ sục khí liên tục bán liên tục

và không sục khí đã nhận thấy năng suất của bể sục khí cao hơn 30% so vớikhông sục khí Đối với vi tảo, CO2 đóng vai trò quan trọng đặc biệt trong quátrình quang hợp, nó có thể được cung cấp bởi nguồn CO2 trong khí quyển, từkhói thải của nhà máy, trong các muối carbonate hòa tan như NaHCO3

(Devgoswami, cs, 2011) Khi sục khí CO2 ở nồng độ quá lớn cũng có ảnhhưởng ức chế đến quá trình sinh trưởng của tảo

Ảnh hưởng của dinh dưỡng đến sinh trưởng phát triển của tảo

Cacbon là một trong những chất dinh dưỡng quan trọng cần phải đượccung cấp trong quá trình sinh trưởng của tảo Nó là yếu tố cần thiết cho quanghợp và sinh sản Tỷ lệ cố định cacbon thấp sẽ làm giảm tốc độ tăng trưởng củatảo Cacbon có thể được sử dụng dưới các hình thức của cacbonat hoặcbicacbonat CO2 trong nước có thể có mặt ở bất kỳ hình thức nào tùy thuộc vào

pH, nhiệt độ và hàm lượng dinh dưỡng Ở những giá trị pH cao, lượng cacbonattăng và bicacbonat giảm (Chen và cs 1994) Ở những giá trị pH trung bình(pH=8,2) , 90 % cacbon hiện diện trong HCO3-, chỉ có 1% tồn tại như CO2 phân

tử và phần còn lại là bicacbonat (Eshaq và cs , 2010) Khi hàm lượng CO2 quácao có thể làm giảm nồng độ tương đối của protein và các sắc tố trong tế bào

Trang 15

nhưng làm gia tăng hàm lượng carbohydrate Sự thay đổi trong thành phần tếbào này làm giảm năng suất sinh khối tối đa (Gordillo và cs., 1998).

Trong thủy vực tảo có khả năng tổng hợp chất vô cơ thành chất hữu cơcho cơ thể thông qua quá trình quang hợp Trong các thủy vực tự nhiên sự pháttriển của tảo phụ thuộc vào 3 yếu tố chính là nước, ánh sáng và muối vô cơ màchủ yếu là Photpho và Nitơ Do đó tại một thời điểm chỉ cần hạn chế một trong

ba nhân tố trên là có thể giới hạn sự sinh trưởng của tảo Tuy nhiên nguồn giớihạn này có thể thay đổi và việc xác định đúng nguồn nhân tố giới hạn từ banguồn trên trong điều kiện thực tế của ao nuôi tảo cũng như các nguồn nướcthải là điều cần thiết cho việc quản lý sự phát triển của tảo (Lucc và cs 1990).Theo Round (1975) khi bất kì nhóm tảo nào phát triển chiếm ưu thế, điều này

có liên quan đến khả năng dự trữ Nitơ và Photpho trong tế bào tảo

Nitơ và phốtpho là hai chất dinh dưỡng quan trọng cho sự tăng trưởng và

sự trao đổi chất của các tế bào tảo Tuy nhiên trong nước thải sau khi xử lýbằng các quá trình hiếu khí hoặc yếm khí vẫn còn chứa nhiều Nitrat (NO3-),amon (NH4+), phosphate (PO43-), dẫn đến hiện tượng phú dưỡng ở ao hồ gây

nở hoa tảo độc hại (Sawayama et al., 1998) Prasad (1982) và Geddes (1984)

đã xem xét P và N là chìa khóa của hiện tượng phú dưỡng Vì vậy, cần nghiêncứu xử lý 2 dinh dưỡng này trong nước để ngăn chặn hiện tượng phú dưỡngnguồn nước (Sawayama et al., 2000) Theo Smith (1982) và Downing (1997)thì N và P là hai chất dinh dưỡng được cho là có ảnh hưởng đến việc hạn chếsinh trưởng, phát triển của thực vật phù du (Klausmeier CA và cs 2011).Nitơ là một yếu tố dinh dưỡng góp phần quan trọng trong việc sản xuấtsinh khối tảo và tham gia vào thành phần của tế bào như axit amin, protein,amino axit… và chiếm 7% đến 20% trọng lượng khô của tế bào (Hu Q ,2004) Hầu hết các loài vi tảo có khả năng sử dụng nhiều nguồn nitơ gồm cónitơ hữu cơ (ure, glutamin, glyxin,…) và nitơ vô cơ (amoni, nitrat và nitrit).Các dạng nitơ vô cơ trong nước được tảo hấp thụ và đồng hóa thành các hợp

Trang 16

chất sinh hóa trong cơ thể và được các tế bào sử dụng để đáp ứng các thay đổicủa nhu cầu sinh lý Tác động chủ yếu của tình trạng thiếu nitơ trong môitrường nuôi tảo là việc giảm hàm lượng protein (Morris và cs 1997) và tăngkhả năng tích tụ các chất béo (Thompson và cs , 1996).

Phốt pho là một phần dinh dưỡng chính đóng một vai trò quan trọngtrong quá trình trao đổi chất của tế bào như chuyển giao năng lượng, sinhtổng hợp acid nucleic, DNA cần thiết cho sự tăng trưởng và phát triển bìnhthường của tảo Phốtpho thường chiếm 1% trọng lượng khô của tảo (Hu Q ,2004) Một số nghiên cứu đã chỉ ra rằng, trong môi trường tự nhiên, phốtpho

là yếu tố giới hạn đối với sự phát triển của tảo (Borchardt và cs , 1968) Hàmlượng phốtpho thấp trong môi trường cũng dẫn đến sự tích tụ các chất béo

Tổng litpit trong tảo Scendesmus sp tăng từ 23% lên 53%, đồng thời với việc

giảm nồng độ phốtpho trong nước từ 0,1 – 2,0 mg/L ( Li và cs , 2010)

2.2 Tổng quan về ứng dụng tảo trong xử lý nước thải sinh hoạt

2.2.1 Tính chất của nước thải sinh hoạt

Nước thải sinh hoạt là nước thải phát sinh từ các hoạt động sinh hoạt củacộng đồng dân cư như: khu vực đô thị, trung tâm thương mại, khu vực vuichơi giải trí, công sở… Thành phần của nước thải sinh hoạt gồm 2 loại:

- Nước nhiễm bẩn do chất bài tiết của con người từ hệ thống vệ sinh.

- Nước thải nhiễm bẩn do các chất thải sinh hoạt, các hoạt động sinh

hoạt như giặt giũ, nấu nướng tắm rửa

Hợp chất Nito có trong nước thải chủ yếu là các hợp chất amoniac,protein, peptid, axit amin,… cũng như các thành phần khác trong chất thải rắn

và lỏng Mỗi người hàng ngày tiêu thụ 516 g Nitơ dưới dạng protein và thải rakhoảng 30% trong số đó Hàm lượng nitơ thải qua nước tiểu lớn hơn trongphân khoảng 8 lần (A Mulder 2003) Các hợp chất chứa Nitơ, đặc biệt làprotein, và urin trong nước tiểu bị thuỷ phân rất nhanh tạo thànhamoni/amoniac Trong các bể phốt xảy ra quá trình phân huỷ yếm khí các

Trang 17

chất thải, quá trình phân huỷ này làm giảm đáng kể lượng chất hữu cơ dạngcarbon nhưng tác dụng giảm hợp chất nitơ không đáng kể, trừ một phần nhỏtham gia vào cấu trúc tế bào vi sinh vật Hàm lượng hợp chất nitơ trong nướcthải từ các bể phốt cao hơn so với các nguồn thải chưa qua phân huỷ yếm khí.Trong nước thải sinh hoạt, nitrat và nitrit có hàm lượng rất thấp do lượng oxyhoà tan và mật độ vi sinh tự dưỡng thấp Thành phần amoni chiếm 60 - 80%hàm lượng nitơ tổng trong nước thải sinh hoạt (R Crites, G Tchobanoglous.

1998 và WEF 1998)

Nguồn phát thải Photpho quan trọng nhất trong nước thải sinh hoạt làphân, thức ăn thừa, chất tẩy rửa tổng hợp Lượng Photpho có nguồn gốc từphân được ước tính là 0,2 - 1,0 kg P/người/năm hoặc trung bình là 0,6 kg.Lượng photpho từ nguồn chất tẩy rửa tổng hợp được ước tính là 0,3 kg/người/năm Sau khi hạn chế hoặc cấm sử dụng photpho trong thành phần chất tẩyrửa, lượng photpho trên giảm xuống, còn khoảng 0,1 kg/người/năm (Lê VănCát, 2007) Thức ăn thừa: sữa, thịt, cá hoặc dụng cụ nấu ăn, đựng các loại trênkhi vào nước cũng thải ra một lượng photpho đáng kể

Nồng độ hợp chất nitơ, photpho trong nước thải sinh hoạt biến độngtheo lưu lượng nguồn nước thải: mức độ sử dụng nước của cư dân, mức độtập trung các dịch vụ công cộng, thời tiết, khí hậu trong vùng, tập quán ănuống sinh hoạt (thức ăn nguội, tự nấu nướng), thay đổi mạnh theo chu kỳ thờigian ngày tháng cũng như mức sống và tiện nghi của cộng đồng Lượng chấtthải vì vậy thường được tính theo đầu người (khối lượng khô) hoặc nồng độsau khi đã được pha loãng với mức nước sử dụng trên đầu người (ở các nướccông nghiệp khoảng 190 lít/người/ngày) hoặc trong các cống rãnh thải (450lít/người/ngày) Nồng độ pha loãng được gọi là nồng độ tại điểm xả hoặctrong cống thải (Lê Văn Cát, 2007)

Trang 18

2.2.2 Ứng dụng tảo trong xử lý nước thải

Tảo đơn bào sử dụng năng lượng ánh sáng để tổng hợp nên sinh khối tếbào từ CO2 và nước bởi việc kết hợp Cacbon (C) với Nitơ (N) và Phốtpho (P)tại các tỉ lệ tương đối ổn định (Klausmeier CA và cs., 2004) Công thức cânbằng hóa học cho các yếu tố phổ biến nhất trong một tế bào tảo trung bình là

C106H18O45N16P Sự tăng trưởng tối ưu của tảo đòi hỏi sự cân bằng của các yếu

tố này với tỷ lệ trên trong môi trường nuôi cấy (Klausmeier CA và cs., 2004)

Để tảo tăng trưởng tối ưu, môi trường nuôi cấy cũng phải được bổ sung đầy

đủ dinh dưỡng Chúng bao gồm một số chất dinh dưỡng như Cacbon, Nitơ,Phốtpho, Lưu huỳnh và Kali; một số nguyên tố vi lượng như Co, Mo, Mn,vitamin

Tỷ lệ N:P là một yếu tố quan trọng trong việc loại bỏ N và P trong hệthống xử lý nước thải vì nó không chỉ xác định năng suất tiềm năng mà cònđóng vai trò quan trọng trong việc xác định loài chiếm ưu thế trong môitrường nuôi (Richmond A., 2004) Các tỷ lệ N:P không giống nhau đối vớicác loại nước thải khác nhau

Trang 19

Bảng 2.2: Các nghiên cứu vể sử dụng tảo trong xử lý nước thải trên thế giới và ở Việt Nam

dưỡng N:P

Kết quả

Hee Jeong Choi &

Seung Mok Lee

(2014)

Chlorella vulgaris Nước thải sinh hoạt 1:1-11:1 Sinh trưởng đạt cực đại, 2,97mg/l.

20:1-30:1 Sinh khối giảm dần từ 0,4-0,78mg/l và không đổi.

11:1 – 30:1 Hàm lượng Nito được loại bỏ khá cao khoảng 82% ngoài

khoảng này là từ 75-78%.

16:1 Nito được loại bỏ là cao nhất 96%.

5:1 Nito là yếu tố giới hạn sinh trưởng.

1:1 -20:1 TP giảm 80% ngoài khoảng này là dưới 60%.

Richard Geider, Julie La

Roche

(2011)

Chlorella Nước thải sinh hoạt 16:1 Tảo Chlorella sinh trưởng cực đại

<16:1 Nito là yếu tố giới hạn

>16:1 Photpho là yếu tố giới hạn Rhee GY, Gotham IJ

(1980).

Võ Thị Kiều Thanh và

cs (2012).

Chlorella sp Nước thải chăn nuôi 3:1 Tốc độ sinh trưởng đạt 0,107-0,125/ngày

Khả năng loại bỏ dinh dưỡng Nito là 87,5%

TP giảm 46%

13

Trang 20

(2013) TP giảm 65%

Guilford và Hecky

(2000).

Ao hồ nước ngọt >50:1 Photpho là yếu tố giới hạn sinh trưởng

<20:1 Nito là yếu tố giới hạn sinh trưởng M.A.Aziz & W.J.Ng

Trang 21

Theo Redfield (1963) tỷ lệ C:N:P được sử dụng trong hải dương học đểtính toán sản lượng xuất khẩu dựa vào năng suất dinh dưỡng Tuy nhiên,Falkowski (1998) đã cho rằng ranh giới của tỷ lệ này không được xác địnhmột cách rõ ràng Tỷ lệ C:N:P tối ưu cho việc xử lý nước thải bằng tảo chưađược đưa ra một cách cụ thể.

Ở Mỹ, khi nghiên cứu về yếu tố dinh dưỡng hạn chế sự phát triển của tảotrên 49 hồ thì thấy rằng Nitơ là yếu tố giới hạn sự phát triển của tảo ở 8 hồtrong khi đó Photpho là yếu tố giới hạn tảo ở 35 hồ và các yếu tố dinh dưỡngkhác hạn chế ở 6 hồ còn lại Cũng trong nghiên cứu trên cho thấy trong nướcngọt, Photpho thường được dùng chủ yếu hơn Nito, nhưng cả hai yếu tố dinhdưỡng Photpho và Nito đều được xem là nhân tố giới hạn tảo ở môi trườngnước mặn (Miller và cs.,1974)

Ngoài ra, theo Guilford và Hecky (2000) nghiên cứu cả hai môi trườngnước ngọt và nước mặn nhận thấy khi tỷ lệ N:P>50:1 Photpho là nhân tố giớihạn, với tỷ lệ N:P<20 thì Nito là nhân tố giới hạn đối với quá trình sinhtrưởng phát triển của tảo Tỷ lệ giữa N:P trung gian giữa 20 và 50 thì khôngthể xác định nhân tố nào giới hạn tảo một cách rõ ràng

Như vậy, trong phần lớn các thuỷ vực Photpho và Nito là 2 nhân tố dinhdưỡng dùng để hạn chế sự phát triển của tảo mà trong đó phần lớn người tadùng Photpho là nhân tố giới hạn chủ yếu (Hutchison, 1967; Edmondson,1969)

Hee Jeong Choi Cs (2014) cũng chỉ ra rằng tỷ lệ N:P ảnh hưởng khá lớnđến việc tăng trưởng của tảo cũng như loại bỏ dinh dưỡng trong nước thải.Theo ông khi thay đổi tỉ lệ N:P từ 1:1 đến 11:1 thì sự sinh trưởng của tảo tăngliên tục và đạt cực đại về sinh khối Khi tỉ lệ này tăng đến khoảng từ 20:1 -30:1 thì giá trị này giảm dần và đạt một giá trị sinh khối không đổi khoảng0,40-0,78 g/l/ngày Theo kết quả này sự chuyển tiếp về giới hạn của tỉ lệ N:Pđến sinh trưởng của tảo nằm trong khoảng từ 10:1-30:1 trong khi Rhee và

Trang 22

Gotham (1980) cho rằng tỉ lệ phù hợp nằm trong khoảng từ 5:1-80:1 còn củaRedfield là 16:1 Tuy nhiên các khoảng tỉ lệ tối ưu này sẽ thay đổi tùy vào đặctinh nước thải và điều kiện sinh thái

Theo Redfield, tỉ lệ N:P thường được sử dụng như một tiêu chuẩn đểphân biệt khoảng giới hạn từ điểm Nito là yếu tố giới hạn đến Photpho là yếu

tố giới hạn, trong nghiên cứu này tỉ lệ đó là 16:1 và nó thiết lập một khoảngtrên các tỉ lệ N:P khác nhau (Falkowski, 1997; Tyrrell, 1999; Lenton &Watson, 2000) Theo ông khi tỉ lệ N:P trong nước thải nhỏ hơn 16:1 thì Nitochính là yếu tố giới hạn cản trở hoạt động sử dụng dinh dưỡng trong nước thải

để sinh trưởng phát triển của tảo, điều đó đồng nghĩa với việc hạn chế quátrình loại bỏ dinh dưỡng trong nước thải của tảo, khi tỉ lệ này lớn hơn 16:1Photpho trở thành yếu tố giới hạn Trong nghiên cứu của Hee Jeong Choi khi

tỉ lệ N:P xuống thấp đến 5:1 thì Nito trở thành yếu tố giới hạn còn khi tỉ lệnày là 30:1 thì Photpho là yếu tố giới hạn đối với quá trinh này

Trong nước thải chăn nuôi lợn khi tỉ lệ N:P là 3:1 thì tốc độ sinh trưởng

của C vulgaris từ 0,107-0,125/ngày (Võ Thị Kiều Thanh và cs 2012).

Khi tỉ lệ N:P thay đổi từ 11:1-30:1 thì lượng Nito tổng số được loại bỏ làkhá cao đạt 82% và nằm ngoài khoảng này thì giảm còn 75-78% Tỉ lệ N:P là16:1 cho kết quả loại bỏ Nito cao nhẩt đạt 96% (Hee Jeong Choi Cs 2014).đây cũng là tỷ lệ gây nên hiện tượng phú dưỡng trong các ao hổ và cũng là tỉ

lệ phổ biến trong một tế bào tảo trung bình (Klausmeier CA, 2004) và theo

Richard (2004) đây là tỉ lệ cho tảo Chlorella sinh trưởng cực đại Trong nghiên cứu của Liandong Zhu Cs (2013) sử dụng tảo Chlorella zofingiensis

xử lý nước thải chăn nuôi ở tỉ lệ này có thể xử lý tổng Nitơ (TN) tới 76%.Tổng Nitơ trong nước thải chăn nuôi lợn giảm 87,5% khi được xử lý bằng

Chlorella sp với tỉ lệ N:P ban đầu là 3:1 (Võ Thị Kiều Thanh và cs 2012).

Trong nghiên cứu của Hee Jeong Choi (2014) tổng Photpho (TP) giảmđến 80% ở tỉ lệ N:P trong khoảng 1-20, nằm ngoài khoảng này hiệu suất xử lý

Trang 23

TP dưới 60% Trong nghiên cứu của Võ Thị Kiều Thanh (2012) TP giảm47% ở tỉ lệ N:P là 3:1, Liandong Zhu Cs (2013) TP giảm 65% đối với việc sử

dụng C zofingiensis xử lý nước thải chăn nuôi tỉ lệ 5:1 và kết quả này trong

nghiên cứu của Võ Thị Kiều Thanh và cs (2012) là 46%

Hee Jeong Choi cho rằng khi tăng tỉ lệ N:P sẽ làm giảm hiệu quả loại bỏPhotpho tuy nhiên không tìm ra được mối quan hệ giữa tỉ lệ N:P và hiệu quảloại bỏ Nito

Bảng 2.3: Hiệu quả loại bỏ Nito, Photpho ở các khoảng tỉ lệ khác nhau

theo nghiên cứu của Hee Jeong Choi (2014)

Hiệu suất loại

bỏ (%) - TN

78.35 ±8.23

83.90 ±2.90

82.81 ±2.81

78.08 ±3.08

72.40 ±2.40

73.29 ±3.29Hiệu suất loại

bỏ (%) - TP

88.54 ±4.54

80.98 ±3.98

59.00 ±8.35

44.15 ±7.15

34.00 ±4.36

23.10 ±3.10

(Nguồn: Hee Jeong Choi 2014)

2.3 Ứng dụng của tảo Chlorella trong cuộc sống con người.

Vi tảo Chlorella là sinh vật quang tự dưỡng, có kích thước hiển vi, là

thành phần chủ yếu tạo nên năng suất sơ cấp của thuỷ vực và giữ vai trò quantrọng trong việc duy trì sự phát triển của hệ sinh thái nước Trong tự nhiên, vitảo là mắt xích đầu tiên trong chuỗi thức ăn nên chúng là nguồn thức ănkhông thể thiếu của nhiều đối tượng thuỷ sản như ở hầu hết các giai đoạn pháttriển của nhuyễn thể, giai đoạn ấu trùng của giáp xác và cá Ngoài ra, chúngcòn được sử dụng để nuôi sinh khối động vật phù du, làm thức ăn cho các giaiđoạn ấu trùng của giáp xác và cá Vi tảo là nguồn thực phẩm chức năng quantrọng cho con người và động vật nuôi, là nguồn phân bón, có khả năng loại bỏcác chất gây ô nhiễm, bảo vệ môi trường và cố định CO2

Hiện nay, trên trái đất có khoảng 20.000 loài vi tảo và đã có hàng trămloài được thử nghiệm làm thức ăn, nhưng cho đến nay chỉ khoảng hơn 40 loài

Trang 24

tảo đơn bào được phân lập và nuôi cấy thuần chủng trong các hệ thống thâmcanh, được sử dụng rộng rãi làm thức ăn trong nuôi trường thủy sản Chúngthuộc 8 lớp và 32 giống, có kích thước từ vài μm đến hơn 100 μm.m đến hơn 100 μm đến hơn 100 μm.m.

Ưu điểm của vi tảo là có kích thước phù hợp, dễ tiêu hoá, ít gây ô nhiễmmôi trường, không có độc tố, có thể chuyển hoá trong chuỗi thức ăn, có tỷ lệphát triển nhanh, có khả năng nuôi sinh khối lớn, cung cấp đầy đủ chất dinhdưỡng cần thiết cho động vật nuôi Năm 1999, sản phẩm từ vi tảo sử dụng chonuôi trồng thủy sản đạt 1000 tấn (trong đó 62% cho động vật thân mềm, 21%cho tôm và 16% cho cá) (Muller-Feuga A ,2004) Brown và cs (1997),Becker (2004 a, b) đã công bố về thành phần dinh dưỡng của hơn 40 loài vi

tảo và ứng dụng của chúng trong nuôi trồng thủy sản Trong tảo Chlorella có

chứa hàm lượng cao protein và các axit amin không bị thay đổi nhiều trongcác pha phát triển và điều kiện chiếu sáng Do vậy, sự khác nhau về chấtlượng protein là một nhân tố tạo nên sự khác nhau về giá trị dinh dưỡng củacác loài vi tảo

Tảo Chlorella vulgaris có khả năng tích lũy chất béo trong tế bào lên đến

35,86% có khả năng cho dầu lên đến 45 tấn/ha/năm (Trương Vĩnh, 2009)

Thành phần acid béo của chất béo từ vi tảo C.vulgaris được nuôi cấy ở điều

kiện thích hợp phân bố từ C15 đến C20, và tập trung chủ yếu là palmitic acidmethyl ester (C16:0) và linoleic acid methyl ester (C18:2) Đây là loại chấtbéo chủ yếu để tổng hợp Biodiesel (Hồ Quốc Phong và cs, 2014) Với thànhphần acid béo tự do chiếm hơn 54%, các phương pháp như xúc tác hai giaiđoạn, tới hạn hay cận tới hạn đều có thể sử dụng để tổng hợp biodiesel từ vitảo Do đó, qua nghiên cứu này cho thấy vi tảo có tiềm năng rất lớn để làmnguồn nguyên liệu tổng hợp Biodiesel

Trong Chlorella có chứa nhiều β-Carotene, là chất chống oxy hóa, sửa

chữa DNA hư hỏng có tác dụng ngăn ngừa và phá hủy tế bào ung thư Ngoài

Trang 25

Caroten ra, còn có nhiều Vitamin C, Vitamin E và Selenium, cũng là nhữngchất chống oxy hóa.

Chlorella nâng cao lượng Interferon, là nhân tố tự nhiên quan trọng bậc

nhất của cơ thể, là vũ khí phòng chống ung thư, có tác dụng kích thích sự hoạtđộng của tế bào Lympho-T và đại thực bào Macrophages Từ đó tăng cườngkháng thể, không những chống lại những tế bào ung thư mà còn cả vi khuẩn,virus, chất hóa học và protein lạ

Trang 26

PHẦN 3 ĐỐI TƯỢNG, NỘI DUNG VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU

3.1 Đối tượng nghiên cứu.

− Tảo Chlorella vulgaris.

− Nước thải sinh hoạt

3.2 Phạm vi nghiên cứu.

Phạm vi không gian: Tiến hành trong điều kiện phòng thí nghiệm Phạm vi thời gian: từ tháng 9 năm 2015 đến tháng 1 năm 2016.

3.3 Nội dung nghiên cứu.

− Tính chất nước thải sinh hoạt sử dụng trong nghiên cứu

− Nghiên cứu ảnh hưởng của tỉ lệ N:P tới khả năng sinh trưởng của tảo

Chlorella vulgaris trong điều kiện thí nghiệm.

− Đánh giá khả năng loại bỏ dinh dưỡng của tảo Chlorella vulgaris

trong nước thải sinh hoạt

3.4 Phương pháp sử dụng trong nghiên cứu.

3.4.1 Phương pháp thu thập tài liệu thứ cấp:

Thu thập tổng hợp tài liệu, thông tin về các kết quả nghiên cứu từ sáchbáo tài liệu chuyên khảo trong và ngoài nước liên quan đến sử dụng tảo

Chlorella xử lý nước thải, mối quan hệ về dinh dưỡng và sinh trưởng của tảo,

ứng dụng thu hồi tảo phục vụ đời sống

3.4.2 Phương pháp bố trí thí nghiệm

a Thiết bị sử dụng.

- Máy sục khí lưu lượng 0,9 l/h

- Bình nhựa PE trong suốt thể tích 5l

- Đèn huỳnh quang

Trang 27

Các công thức được tiến hành trong cùng một điều kiện nhiệt độ, sục khíliên tục, thời gian chiếu sáng là 16:8 (chiếu sáng từ 15h chiều hôm trước đến7h sáng hôm sau) Thí nghiệm lặp 3 lần Tiến hành đo các chỉ tiêu DO, pH,nhiệt độ, Chlorophyl, xác định mật độ tảo và lấy mẫu phân tích vào 7h sángmỗi ngày Mẫu sau khi lấy được đem đi ly tâm tách tảo và phân tích các chỉtiêu NO3-, NH4+, PO43, tổng N, tổng P.

Bảng 3.1:Bảng điều kiện thí nghiệm trong các công thức

Công thức Tỉ lệ N:P Điều kiện thí nghiệm Cơ sở lựa chọn tỉ lệ

Công thức 1

(Đối chứng)

12:1 3,5 lít nước thải ban đầu

Sục khí liên tục Thời gian sáng:tối = 16:8

Dùng để kiểm tra đối chứng kết quả với các công thức có tảo

Công thức 2 5:1 3 lít nước thải

0,2 lít tảo 0,3 lít NaH 2 PO 4 nồng độ 70,34 mg/l

Tỉ lệ dinh dưỡng thường thấy xuất hiện trong nhiều loại nước thải, là tỉ lệ Nitơ là yếu tố giới hạn đối với quá trình sinh

trưởng của tảo (Seung-Mok Lee, 2014)

0,2 lít tảo 0,3 lít nước cất Sục khí liên tục Thời gian sáng:tối = 16:8

Tỉ lệ ban đầu của nước thải.

Tỉ lệ gần với N:P = 11:1 là tỉ lệ sinh trưởng phát triển tốt nhất của nước thải (Hee Jong Choi, 2014)

0,2 lít tảo 0,3 lít NH 4 NO 3 nồng độ 249,4 mg/l

Tỉ lệ trong công thức tế bào chung của các loài tảo (Redfield, 1963), tỉ lệ khả năng loại bỏ tổng Nitơ lên đến 96% (Seung-Mok Lee, 2014)

0,2 lít tảo 0,3 lít NH 4 NO 3 nồng độ

Là tỉ lệ giới hạn cho việc tăng sinh trưởng của tảo, giảm giả năng loại

bỏ Nito trong nước thải.

Trang 28

1014,4 mg/l Sục khí liên tục Thời gian sáng:tối = 16:8

Là tỉ lệ mà Photpho trở thành yếu tố giới hạn sinh trưởng của tảo (Hee Jong Choi, 2014)

3.4.3 Phương pháp xác định mật độ tảo bằng phương pháp đếm số lượng tế bào bằng buồng đếm Burker – Turk:

Dụng cụ để xác định hàm lượng tế bào là kính hiển vi Olympus CX21(Mỹ), buồng đếm Burker – Turk (Đức) Số lượng tế bào đếm được trong 5 ôvuông lớn được dùng để tính mật độ tế bào theo công thức sau:

D = A*X*104

Trong đó: D: Mật độ tế bào (tb/ml)

A: Tổng số tế bào trong cả buồng đếm

X: Hệ số pha loãng (chú ý: đối với các mẫu có khả năngchuyển động trước khi đếm mẫu phải cố định bằng dung dịch 100% Ethanolhoặc 4% Foocmon)

3.4.4 Phương pháp xác định hằng số tốc độ tăng trưởng K

Tốc độ sinh trưởng của tảo là số thế hệ sinh ra trong đơn vị thời gian,thường biểu thị bằng số thế hệ trong 1 giờ được tinh toán bằng công thức:

k = log N t−log N0

0,301∗t

Trong đó: k : hằng số tốc độ sinh trưởng (thế hệ tảo/giờ)

Nt : Số tế bào tảo ở thời gian t

N0 : Số tế bào tảo ban đầu

t : Thời gian xác định mật độ tảo

3.4.5 Phương pháp phân tích Chlorophyll – a

Hàm lượng sắc tố Chlorophyll-a được xác định theo phương pháp đoquang phổ ở các bước sóng tương ứng, so màu và tính theo công thức mô tảtrong Experimental phycology: A Laboratory Manual của Christopher vàcộng sự (1988)

Trang 29

3.4.6 Phương pháp phân tích trong phòng thí nghiệm:

− Xác định pH: TCVN 6492:2011 (ISO 10523:2008) Chất lượng nước

− Xác định hàm lượng oxy hòa tan: TCVN 7325:2004 - Chất lượng

nước Phương pháp đầu đo điện hoá

− Xác định hàm lượng Photpho: TCVN 6202:2008 (ISO 6878:2004)

Chất lượng nước - Xác định phôt pho - Phương pháp đo phổ dùng amonimolipdat

− Xác định hàm lượng N-NH4+: Phương pháp so màu ở bước sóng 667

nm bằng máy đo quang phổ UV-VIS

− Xác định hàm lượng Nitrat: TCVN 6180: 1996 (ISO 7890/3: 1988),

Chất lượng nước Phương pháp trắc phổ dùng axitosunfosalixylic

− Xác định nồng độ Chlorophyll-a: TCVN 6662:2000 - Chất lượng

nước Phương pháp đo phổ xác định nồng độ Chlorophyll-a

3.4.7 Phương pháp so sánh

- Tính chất nước thải được so sánh với QCVN 14-2008/BTNMT – Quychuẩn kỹ thuật quốc gia về nước thải sinh hoạt, cột B

3.4.8 Phương pháp xác định hiệu xuất loại bỏ N, P trong nước thải

Hiệu xuất loại bỏ chất N và P trong nước thải được tính theo công thức:

Trong đó :

H là hiệu quả loại bỏ (N hoặc P)

Co là nồng độ ban đầu của (N hoặc P)

Ce là nồng độ sau khi kết thúc thí nghiệm (N hoặc P) trong mẫu nước

3.4.9 Phương pháp xử lý số liệu và trình bày kết quả:

− Phương pháp xử lý số liệu: thống kê mô tả; kiểm định; tương quan

− Phương pháp kiểm định: phân tích phương sai (ANOVA) – xác định

sự sai khác giữa các nhóm ở mức ý nghĩa α = 0.05

Trang 30

− Phần mềm sử dụng xử lý số liệu: Excel 2013, phần mềm R.

Định dạng
Số trang	60
Dung lượng	2,26 MB