Đánh giá hiệu quả xử lý nước thải hầm ủ biogas bằng ao thâm canh tảo spirulina sp

Đánh giá hiệu quả xử lý nước thải hầm ủ biogas bằng ao thâm canh tảo spirulina sp Đánh giá hiệu quả xử lý nước thải hầm ủ biogas bằng ao thâm canh tảo spirulina sp Đánh giá hiệu quả xử lý nước thải hầm ủ biogas bằng ao thâm canh tảo spirulina sp Đánh giá hiệu quả xử lý nước thải hầm ủ biogas bằng ao thâm canh tảo spirulina sp Đánh giá hiệu quả xử lý nước thải hầm ủ biogas bằng ao thâm canh tảo spirulina sp Đánh giá hiệu quả xử lý nước thải hầm ủ biogas bằng ao thâm canh tảo spirulina sp Đánh giá hiệu quả xử lý nước thải hầm ủ biogas bằng ao thâm canh tảo spirulina sp

XÁC NHẬN CỦA CÁN BỘ HƯỚNG DẪN

Cần Thơ, ngày 27 tháng 11 năm 2015

Cán bộ hướng dẫn

Lê Hoàng Việt

LỜI CẢM ƠN

Gia đình đã khuyến khích, động viên và tạo mọi điều kiện thuận lợi cho chúng tôi trong suốt quá trình học tập và thực hiện đề tài luận văn tốt nghiệp

Thầy Lê Hoàng Việt đã tận tình hướng dẫn và truyền đạt những kinh nghiệm quý báu

để chúng tôi có thể hoàn thành tốt đề tài luận văn này

Quý thầy, cô thuộc khoa Môi Trường & Tài Nguyên Thiên Nhiên đã tận tình giúp đỡ

và tạo mọi điều kiện thuận lợi cho chúng tôi trong thời gian qua

Tất cả bạn bè của lớp Kỹ Thuật Môi Trường khóa 38 đã động viên và giúp đỡ chúng tôi rất nhiều

Trong quá trình thực hiện đề tài, mặc dù đã cố gắng để hoàn thành tốt đề tài nhưng do thời gian và kiến thức hạn chế nên không thể tránh khỏi những sai sót Kính mong nhận được sự đóng góp ý kiến của quý Thầy, Cô và các bạn để đề tài được hoàn thiện hơn

Xin chân thành cám ơn!

Cần Thơ, tháng 11 năm 2015

Sinh viên thực hiện

Đỗ Thị Ngọc Điệp Lê Nguyễn Bích Như

Trong quá trình học tập suốt ba năm ở trường và 6 tháng thực hiện đề tài luận văn

“Đánh giá hiệu quả xử lý nước thải hầm ủ Biogas bằng ao thâm canh tảo

Spirulina sp.” Chúng tôi nhận được sự hướng dẫn tận tình và sự giúp đỡ qúy báu của

thầy cô, các anh chị và các bạn Qua đó, giúp chúng tôi cũng cố lại được những kiến thức cần thiết, từ đó đúc kết được rất nhiều kinh nghiệm bổ ích cho công việc sau này Bên cạnh đó, chúng tôi cũng gặp không ít khó khăn, nhờ có sự động viên từ gia đình, thầy cô và bạn bè chúng tôi đã hoàn thành luận văn đúng tiến độ Nhân đây, chúng tôi xin gửi lời cám ơn chân thành và sâu sắc nhất đến:

TÓM TẮT ĐỀ TÀI

Nước thải chăn nuôi sau khi xử lý bằng hầm ủ Biogas vẫn còn chứa nhiều chất hữu cơ

dễ phân hủy sinh học, các dưỡng chất và các mầm bệnh Loại nước thải này có thể xử

lý bằng ao thâm canh tảo để vừa giảm thiểu các tác động của nó đến môi trường, vừa tái sử dụng các dưỡng chất tạo ra sản phẩm phục vụ cho sản xuất nông nghiệp Chính

vì vậy, nghiên cứu “Đánh giá hiệu quả xử lý nước thải hầm ủ Biogas bằng ao thâm

canh tảo Spirulina sp.” được tiến hành nhằm đánh giá khả năng sử dụng ao thâm canh

quần thể tảo trội Sprulina sp để làm giảm các chất ô nhiễm và tái sử dụng các dưỡng chất trong nước thải của hầm ủ Biogas Do tảo Spirulina có khuynh hướng sử dụng

đạm ni-trát hơn là sử dụng đạm a-môn, trong khi đó nước thải hầm ủ Biogas chứa chủ yếu là đạm a-môn Vì vậy, các thí nghiệm của đề tài được tiến hành để xác định hiệu quả của việc cải thiện tính chất nước thải hầm ủ Biogas (bằng cách sục khí) trước khi đưa vào ao tảo đến khả năng xử lý nước thải và sinh khối tảo Các kết quả cho thấy với nước thải Biogas đã qua sục khí 30 phút, vận hành ở thời gian tồn lưu nước là 3 ngày, tải nạp nước là 0,1 m3/m2*ngày, tải nạp BOD5 là 0,075 kg/m2*ngày, nước thải sau khi

xử lý đã giảm bớt một phần khá lớn chất ô nhiễm ở các chỉ tiêu theo dõi trong đề tài Nồng độ các chỉ tiêu liên quan đến chất lượng nước thải sau xử lý hầu hếtkhông khác biệt có ý nghĩa (mức 5%) Về mặt sinh khối, nghiệm thức có sục khí 30 phút cho sinh khối cao hơn hẳn so với nghiệm thức không có sục khí và khác biệt có ý nghĩa (mức 5%) so với nghiệm thức không sục khí Khi tăng thời gian sục khí lên 45 phút, lượng sinh khối tạo ra không khác biệt có ý nghĩa (mức 5%) so với thời gian sục khí 30 phút Như vậy, nếu chỉ chú trọng đến việc làm giảm chất ô nhiễm trong nước thải thì có thể vận hành ao tảo với nước thải đầu vào không sục khí; còn nếu chú trọng đến cả hai yếu

tố là hiệu quả xử lý nước thải và lượng sinh khối tảo thu được thì nên vận hành ao tảo với nước thải đầu vào có sục khí trong 30 phút

LỜI CAM ĐOAN

Chúng tôi xin cam đoan luận văn này được hoàn thành dựa trên kết quả nghiên cứu của chúng tôi Số liệu và kết quả nghiên cứu này chưa được dùng cho bất cứ luận văn nào trước đây

Sinh viên thực hiện

Đỗ Thị Ngọc Điệp Lê Nguyễn Bích Như

MỤC LỤC

XÁC NHẬN CỦA CÁN BỘ HƯỚNG DẪN i

LỜI CÁM ƠN ii

TÓM TẮT ĐỀ TÀI iii

LỜI CAM ĐOAN iv

MỤC LỤC v

DANH SÁCH BẢNG vii

DANH SÁCH HÌNH viii

DANH MỤC TỪ VIẾT TẮT ix

CHƯƠNG I GIỚI THIỆU 1

CHƯƠNG II LƯỢC KHẢO TÀI LIỆU 3

2.1 TỔNG QUAN VỀ NƯỚC THẢI CHĂN NUÔI HEO VÀ NƯỚC THẢI HẦM Ủ BIOGAS 3

2.1.1 Nước thải từ chăn nuôi heo 3

2.1.2 Nước thải hầm ủ Biogas 5

2.1.3 Đặc điểm của Ni-tơ trong nước thải 5

2.2 CÁC PHƯƠNG PHÁP XỬ LÝ NƯỚC THẢI 5

2.3 XỬ LÝ VÀ TÁI SỬ DỤNG CHẤT HỮU CƠ TRONG NƯỚC THẢI BẰNG AO THÂM CANH TẢO 6

2.3.1 Khả năng xử lý nước thải của tảo 6

2.3.2 Ưu và nhược điểm của việc xử lý nước thải bằng tảo 6

2.3.3 Cơ chế xử lý nước thải của ao tảo 8

2.3.4 Một số loại hình tảo 9

2.3.5 Ao thâm canh tảo 10

2.4 TẢO SPIRULINASP 12

2.4.1 Đặc điểm sinh trưởng của Spirulina sp 12

a) Đặc điểm phân loại 12

b) Các điều kiện nuôi tảo 13

c) Lượng BOD nạp cho ao tảo 17

d) Giá trị của tảo Spirulina sp 17

2.4.2 Ưu thế của tảo Spirulina sp 17

2.5 MỘT SỐ NGHIÊN CỨU TRONG VÀ NGOÀI NƯỚC 18

2.5.2 Ở trong nước 18

CHƯƠNG III PHƯƠNG PHÁP VÀ PHƯƠNG TIỆN NGHIÊN CỨU 19

3.1 ĐỊA ĐIỂM VÀ THỜI GIAN THỰC HIỆN 19

3.2 ĐỐI TƯỢNG 19

3.3 PHẠM VI NGHIÊN CỨU 20

3.4 CÁC BƯỚC TIẾN HÀNH 21

3.4.1 Chế tạo mô hình 21

3.4.2 Bố trí mô hình 23

3.4.3 Tiến hành thí nghiệm 23

3.5 PHƯƠNG PHÁP VÀ PHƯƠNG TIỆN PHÂN TÍCH MẪU 26

CHƯƠNG IV KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN 28

4.1 ĐẶC ĐIÊM CỦA NƯỚC THẢI BIOGAS ĐẦU VÀO 28

4.1.1 Đặc tính lý học của nước thải làm thí nghiệm 28

4.1.2 Đặc tính hóa học của nước thải làm thí nghiệm 28

4.2 KẾT QUẢ THÍ NGHIỆM 29

4.2.1 Điều kiện môi trường trong các ngày tiến hành thí nghiệm 29

a) Ánh sáng 30

b) Nhiệt độ 31

c) pH 32

d) DO 33

4.2.2 Các thông số vận hành 34

4.2.3 Khả năng làm giảm nồng độ chất ô nhiễm trong nước thải sau xử lý của ao thâm canh tảo 34

4.3 Kết quả thí nghiệm 2 41

CHƯƠNG V KẾT LUẬN VÀ KIẾN NGHỊ 43

5.1 KẾT LUẬN 43

5.2 KIẾN NGHỊ 43

TÀI LIỆU THAM KHẢO 44

PHỤ LỤC 49

DANH SÁCH BẢNG

Bảng 2.1 Lượng phân heo thải ra trong 24h 3

Bảng 2.2 Thành phần hoá học cơ bản phân gia súc, gia cầm 4

Bảng 2.3 Thành phần nước thải chăn nuôi heo 4

Bảng 3.1 Các phương pháp phân tích mẫu 26

Bảng 3.2 Các phương pháp và phương tiện phân tích mẫu tại khoa 26

Bảng 4.1 Thành phần hoá học của nước thải Biogas 28

Bảng 4.2 Thành phần hoá học của nước thải Biogas sau khi lắng và lọc 29

Bảng 4.3 Các thông số vận hành ao thâm canh tảo ở Thí nghiệm 1 34

Bảng 4.4 Nồng độ pH, DO trong nước thải Biogas trước và sau khi xử lý 34

Bảng 4.5 Nồng độ các chất ô nhiễm trước và sau xử lý 34

Bảng 4.6 Nồng độ SS, VSS và Chlorophyll ở thí nghiệm 1 39

Bảng 4.7 Các thông số vận hành ao thâm canh tảo ở Thí nghiệm 2 41

Bảng 4.8 Nồng độ SS, VSS và Chlorophyll ở thí nghiệm 2 42

DANH SÁCH HÌNH

Hình 2.1 So sánh năng lượng sử dụng của một số hệ thống xử lý nước thải 7

Hình 2.2 Chu trình cộng sinh vi khuẩn - tảo trong hệ thống xử lý nước thải 9

Hình 2.3 Ao thâm canh tảo 11

Hình 2.4 Tảo Spirulina sp 12

Hình 3.1 Vị trí lấy nước thải đầu ra của túi ủ Biogas 19

Hình 3.2 Ảnh chụp tảo Spirulina sp ở vật kính X4 20

Hình 3.3 Kích thước mô hình ao thâm canh tảo 21

Hình 3.4 Mô hình ao thâm canh tảo sau khi chế tạo 22

Hình 3.5 Bố trí mô hình 23

Hình 3.6 Sơ đồ bố trí thí nghiệm 25

Hình 4.1 Diễn biến cường độ ánh sáng theo thời gian (n = 3 ngày) 30

Hình 4.2 Diễn biến nhiệt độ theo thời gian (n = 3 ngày) 31

Hình 4.3 Diễn biến nồng độ pH theo thời gian (n = 3 ngày) 32

Hình 4.4 Diễn biến nồng độ DO theo thời gian (n = 3 ngày) 33

Hình 4.5 Nồng độ BOD5, COD trong nước thải Biogas trước và sau khi xử lý 36

Hình 4.6 Nồng độ TKN, N-NH4+, N-NO3-, TP trong nước thải Biogas trước và sau xử lý 37

Hình 4.7 Nồng độ Coliform trong nước thải Biogastrước và sau khi xử lý 38

Hình 4.8 Nồng độ SS, VSS và Chlorophyll ở thí nghiệm 1 39

Hình 4.9 Ảnh chụp tảo Spirulina sp ở vật kính X10 40

Hình 4.10 Ảnh chụp các đoạn tảo Spirulina sp đang phân chia ở vật kính X10 40

Hình 4.11 Tảo Spirulina kết cụm khi không có khuấy trộn 41

Hình 4.12 Nồng độ SS, VSS và Chlorophyll ở thí nghiệm 2 42

DANH MỤC TỪ VIẾT TẮT

BNN-PTNT Bộ Nông nghiệp và Phát triển Nông thôn

MT & TNTN Môi Trường và Tài Nguyên Thiên Nhiên

CHƯƠNG I GIỚI THIỆU

Chăn nuôi là một trong những ngành kinh tế quan trọng của nông dân Việt Nam ở Đồng Bằng Sông Cửu Long (ĐBSCL) Đây cũng là ngành kinh tế giúp cho nông dân tăng thu nhập, giải quyết được công ăn việc làm cho người lao động, góp phần thúc đẩy nền kinh tế nước ta ngày càng phát triển Cùng với sự phát triển của nền kinh tế thị trường, ngành chăn nuôi cũng ngày càng phát triển ổn định, đạt tốc độ tăng trưởng 5,3%/năm và chiếm tỷ trọng cao trong nông nghiệp là 24,6% vào năm 2013 (Bộ Nông nghiệp và PTNT, 2013) Theo Tổng cục Thống kê (2014), giá trị sản xuất ngành chăn nuôi theo nhóm gia súc đạt 102.590 tỷ đồng, tăng gần một nghìn tỷ đồng so với năm

2012

Song song với những lợi ích đạt được thì vấn đề ô nhiễm do lượng nước thải phát sinh trong quá trình chăn nuôi cũng ảnh hưởng không nhỏ đến môi trường tự nhiên Theo BNN-PTNT (2013), cả nước có 4,13 triệu hộ chăn nuôi lợn quy mô nhỏ Trước thực trạng đó, việc sử dụng hầm ủ Biogas qui mô hộ gia đình để xử lý chất thải chăn nuôi được xem là giải pháp hữu hiệu cho phép kết hợp hài hòa giữa cung cấp năng lượng với giảm thiểu ô nhiễm môi trường ở nước ta Theo thống kê sơ bộ của Trung tâm Hợp tác Công nghệ Môi trường (Swedish Centec Vietnam, 2012), cho đến năm 2012 đã có khoảng 500.000 hầm ủ Biogas ở qui mô hộ gia đình, hầu hết có quy mô nhỏ (dưới 10m3) Riêng chương trình Khí sinh học cho ngành chăn nuôi Việt Nam, do chính phủ

Hà Lan tài trợ, tính đến năm 2011 đã xây được 15.678 hầm quy mô nhỏ Mặc dù không

có con số chính thức, nhưng người ta ước tính rằng có chưa đến 100 hầm Biogas thương mại, với dung tích từ 100–200 m3 (Swedish Centec Vietnam, 2012)

Nước thải chăn nuôi chứa hàm lượng các chất gây ô nhiễm hữu cơ cao Vấn đề này được khắc phục bằng nhiều biện pháp: sinh học, hóa lý, cơ học Trong đó, biện pháp sinh học được sử dụng rộng rãi do có nhiều ưu điểm nhưan toàn, dễ thực hiện, giá thành rẻ… Đặc biệt là biện pháp ủ yếm khí (Biogas) được nhiều người áp dụng, ngoài việc cải thiện tình trạng ô nhiễm còn có thể thu khí mê-tan làm nhiên liệu Những lợi ích do công nghệ yếm khí ủ Biogas đem lại là không thể phủ nhận, tuy nhiên các chỉ tiêu ô nhiễm vẫn còn ở mức khá cao (Hồ Thanh Tâm & Cao Ngọc Điệp, 2014) Vì vậy, việc tiếp tục xử lý nước thải sinh ra từ hầm ủ Biogas trước khi thải ra môi trường là rất cần thiết Trên thế giới nói chung và Việt Nam nói riêng, nước thải Biogas thường được tái sử dụng cho mục đích trồng trọt, chăn nuôi, nuôi trồng thủy sản nhằm để vừa giảm bớt nồng độ chất gây ô nhiễm thải vào môi trường và tận dụng lại các giá trị về dưỡng chất của nó (Lê Hoàng Việt & Nguyễn Võ Châu Ngân, 2015) Một trong các biện pháp xử lý sinh học vừa đáp ứng được yêu cầu trên vừa tận dụng được cácdưỡng chất còn lại trong nước thải là ao thâm canh tảo; do tảo có tốc độ sinh trưởng nhanh, chịu đựng được các thay đổi của môi trường, có khả năng phát triển trong nước thải, có giá trị dinh dưỡng và hàm lượng prô-tê-in cao Các hoạt động sinh học trong các ao nuôi tảo lấy đi các chất hữu cơ và dinh dưỡng của nước thải chuyển đổi thành các chất

tách tảo thường có nồng độ các chất ô nhiễm thấp (Lê Hoàng Việt & Nguyễn Võ Châu Ngân, 2015) Những loại tảo có khả năng xử lý và tái sử dụng chất dinh dưỡng trong

nước thải là Spirulina sp., Chlorella sp Trong đó, tảo Spirulina sp với những ưu điểm

vượt trội đã được sử dụng rộng rãi để làm thực phẩm chức năng, nguồn dinh dưỡng bổ

sung thiết yếu, thuốc chữa bệnh, mỹ phẩm, thức ăn chăn nuôi (Belay, 2002; Ahsan et al., 2008; Dương Thị Hoàng Oanh et al., 2002; Falquet, 1997; Richmond, 1986) Theo Đỗ Thị Thanh Hương (2006), tảo Spirulina sp thường sử dụng đạm ni-trát hơn

đạm a-môn, trong khi đó nước thải của hầm ủ Biogas chứa chủ yếu là đạm a-môn Do

đó, đề tài "Đánh giá hiệu quả xử lý nước thải hầm ủ Biogas bằng ao thâm canh tảo

Spirulina sp." được tiến hành trên mô hình ao thâm canh tảo qui mô phòng thí nghiệm

nuôi quần thể tảo trội là Spirulina sp nhằm xác định khả năng sử dụng nước thải từ

hầm ủ Biogas để nuôi loại tảo này cũng như hiệu quả của việc cải thiện tính chất của nước thải trước khi đưa vào ao nuôi tảo và khả năng làm giảm nồng độ các chất gây ô nhiễm trong nước thải của hầm ủ Biogas Đây là một trong những tiền đề để thiết lập quy trình công nghệ nuôi sinh khối loài tảo này để xử lý nước thải ở quy mô hộ gia đình

CHƯƠNG II LƯỢC KHẢO TÀI LIỆU 2.1 TỔNG QUAN VỀ NƯỚC THẢI CHĂN NUÔI HEO VÀ NƯỚC THẢI HẦM

Ủ BIOGAS

2.1.1 Nước thải từ chăn nuôi heo

Một khảo sát trên gần 1.000 trại chăn nuôi heo quy mô vừa và nhỏ ở một số tỉnh phía Nam cho thấy hầu hết các cơ sở chăn nuôi đều sử dụng một khối lượng lớn nước cho gia súc Cứ 1 kg chất thải chăn nuôi do heo thải ra được pha thêm với từ 20 đến 49kg nước Lượng nước lớn này có nguồn gốc từ các hoạt động tắm cho gia súc hay dùng để

vệ sinh chuồng nuôi hàng ngày Việc sử dụng nước tắm cho gia súc hay vệ sinh chuồng

đã làm tăng lượng nước thải đáng kể, gây khó khăn cho việc thu gom và xử lý nước thải sau này (Trương Thanh Cảnh, 2010)

Trong các chuồng trại phân gia súc, gia cầm thường tồn tại ở dạng phân lỏng hay trung gian giữa lỏng và rắn hay tương đối rắn Các dạng này chứa các chất dinh dưỡng, đặc biệt là các hợp chất giàu ni-tơ và phốt-pho, là nguồn cung cấp dinh dưỡng cho cây trồng và làm tăng độ màu mỡ của đất Do đó, trước khi dùng để bón cho cây trồng phân được đem ủ, vừa tận dụng được nguồn dinh dưỡng, vừa làm giảm lượng chất thải phát tán trong môi trường Tùy theo từng chuồng, trại và phương thức chăn nuôi mà phân gia súc, gia cầm có thành phần vật lý và hoá học khác nhau Thành phần hoá học

cơ bản của một số loại phân gia súc, gia cầm không lẫn tạp chất được trình bày trong bảng sau:

Bảng 2.1 Lượng phân heo thải ra trong 24h

(Lăng Ngọc Quỳnh, 2003)

Bảng 2.2 Thành phần hoá học cơ bản phân gia súc, gia cầm

Hàm lượng K2O (%)

Tỷ lệ C/N

(Nguyễn Đức Lượng & Trương Thị Thuỳ Dương, 2003)

Nước thải chăn nuôi là hỗn hợp bao gồm cả nước tiểu, nước tắm gia súc, rửa chuồng Theo Ngô Kế Sương & Nguyễn Lân Dũng (1997), nước thải từ các trại chăn nuôi là một trong các loại nước thải đặc trưng giàu chất hữu cơ, chất dinh dưỡng như ni-tơ và phốt-pho Trong thành phần chất rắn của nước thải chăn nuôi heo chất hữu cơ chiếm 70-80% gồm các chất carbohydrat, a-xít amin, chất béo và các dẫn xuất của chúng có trong phân, nước tiểu và thức ăn thừa Chất vô cơ chiếm 20-30% gồm cát, đất, muối clorua, SO42-…, đặc biệt là hàm lượng đạm trong nước thải rất cao do hệ tiêu hóa của heo hấp thu kém thành phần ni-tơ (Nguyễn Thị Thu Hà, 2008) Thành phần nước thải chăn nuôi heo được thể hiện trong bảng 2.3

Bảng 2.3 Thành phần nước thải chăn nuôi heo

Ptổng mg/L 36 - 72

(Trương Thanh Cảnh, 2010)

2.1.2 Nước thải hầm ủ Biogas

Nước thải từ hầm ủ Biogas chứa các thành phần COD, N,… rất cao, do đó không thể thải vào nguồn tiếp nhận Ở các nông hộ nước thải từ hầm ủ Biogas sẽ tiếp tục được xử

lý và tái sử dụng cho các hoạt động sản xuất khác; ở các xí nghiệp nước thải từ hầm ủ Biogas sẽ được tiếp tục xử lý bằng các qui trình hiếu khí và các công đoạn khác (lắng, khử trùng), để đạt tiêu chuẩn xả thải vào môi trường tiếp nhận Theo các nghiên cứu của Trung tâm Năng Lượng Mới - Đại học Cần Thơ, một hầm ủ cỡ 3m3 với thời gian ủ

20 ngày, trung bình cho ra một lượng nước thải là 100 lít/ngày tương đương với khoảng 80 kg N, 120 kg P2O5 và 45 kg K2O trong một năm (Lê Hoàng Việt & Nguyễn

Võ Châu Ngân, 2014b).Vì vậy, nước thải từ hầm ủ Biogas chứa một hàm lượng ni-tơ

cao là nguồn dinh dưỡng chủ yếu của nhiều loài tảo

2.1.3 Đặc điểm của Ni-tơ trong nước thải

Ni-tơ là nguyên tố cần thiết cho sự phát triển của sinh vật nguyên sinh và thực vật thủy sinh trong môi trường nước Trong thủy vực, ni-tơ vô cơ bao gồm các dạng chủ yếu như NH3, NH4+, NO2-, NO3-, chúng là sản phẩm của quá trình khoáng hoá các hợp chất ni-tơ dưới vai trò vi sinh vật (Đặng Kim Chi, 1998)

Đạm ni-trát (N-NO3-) là sản phẩm cuối cùng của sự phân hủy các chất chứa ni-tơ, nếu nước chứa chủ yếu các chất ni-tơ ở dạng ni-trát chứng tỏ quá trình ô-xy hóa đã kết thúc (Đặng Kim Chi, 1998) Ni-trát chỉ bền ở điều kiện hiếu khí, trong điều kiện thiếu khí ni-trát nhanh chóng bị khử thành ni-tơ tự do và tách ra khỏi nước Hàm lượng NH4+

phụ thuộc vào pH và nhiệt độ, khi pH và nhiệt độ giảm thì hàm lượng NH4+ tăng và ngược lại Hàm lượng NH4+ cũng biến đổi theo chu kỳ ngày đêm, vào ban ngày khi pH

và nhiệt độ tăng thì hàm lượng NH4+ giảm và giảm đến mức thấp nhất khi pH và nhiệt

độ đạt cực đại lúc 14h - 16h, hàm lượng NH4+ đạt giá trị cao nhất khi pH và nhiệt độ giảm đến mức thấp nhất vào lúc 6h (Trương Quốc Phú, 2007)

2.2 CÁC PHƯƠNG PHÁP XỬ LÝ NƯỚC THẢI

Dựa vào bản chất của phương pháp xử lý nước thải, người ta có thể chia chúng thành phương pháp lý học, hóa học và sinh học Một hệ thống xử lý hoàn chỉnh thường hợp

đủ ba thành phần kể trên Tuy nhiên, tùy theo tính chất của nước thải, mức độ tài chính

và yêu cầu xử lý mà người ta chọn phương pháp xử lý thích hợp (Lê Hoàng Việt &

Nguyễn Võ Châu Ngân, 2014a)

Trong đó, phương pháp sinh học là phương pháp xử lý thứ cấp được tiến hành sau giai đoạn xử lý lý học, phương pháp này chủ yếu dựa vào hoạt động phân hủy các chất hữu

cơ của vi sinh vật trong điều kiện hiếu khí hay yếm khí Các quá trình sinh học có thể diễn ra trong các khu vực tự nhiên hoặc các ao được thiết kế và xây dựng để phục vụ cho việc xử lý nước thải (Trần Đức Hạ, 2002)

2.3 XỬ LÝ VÀ TÁI SỬ DỤNG CHẤT HỮU CƠ TRONG NƯỚC THẢI BẰNG

AO THÂM CANH TẢO

2.3.1 Khả năng xử lý nước thải của tảo

Theo Lê Hoàng Việt & Nguyễn Võ Châu Ngân (2015), tảo có tốc độ sinh trưởng nhanh, chịu đựng được các thay đổi của môi trường, có khả năng phát triển trong nước thải, có giá trị dinh dưỡng và hàm lượng prô-tê-in cao, do đó người ta đã lợi dụng các đặc điểm này của tảo để xử lý và tái sử dụng các chất hữu cơ có trong nước thải

Tương tự, theoPromya (2000), tảo Spirulina đã làm giảm bớt N, P trong nước thải

Biogas Ông đã tiến hành thí nghiệm xử lý nước thải bằng tảo với thời gian lưu 3 ngày trong 30 ngày và kết quả thu được là hơn 98,99% NH3-N đã được loại bỏ khỏi nước thải, COD giảm 97,113% trong nước thải đã được pha loãng 30%

2.3.2 Ưu và nhược điểm của việc xử lý nước thải bằng tảo

 Ưu điểm:

- Xử lý và tái sử dụng chất dinh dưỡng: khi nuôi tảo, các hoạt động sinh học trong ao

sẽ làm giảm các chất hữu cơ và dinh dưỡng của nước thải thông qua quá trình phân hủy của các vi khuẩn, và sau đó chuyển hóa các sản phẩm này thành chất dinh dưỡng trong

tế bào tảo thông qua quá trình quang hợp Thêm vào đó quá trình quang hợp của tảo làm cho pH nước ao tăng dẫn đến tăng sự chuyển hóa NH4+ thành NH3 bay ra khỏi nước thải, và pH cao cũng góp phần kết tủa phốt-pho, kim loại nặng trong nước thải tốt hơn Một số loài tảo còn có khả năng hấp thu kim loại nặng trong nước thải (Larsdotter, 2006) Qui trình xử lý nước thải bằng tảo cũng ít phóng thích N2O vào khí quyển hơn các qui trình xử lý truyền thống (Demirbas & Demirbas, 2010) Qui trình xử

lý nước thải bằng tảo cũng sử dụng ít năng lượng và tạo ít bùn hơn các qui trình xử lý truyền thống (Oilgae, 2009)

Hình 2.1 So sánh năng lượng sử dụng của một số hệ thống xử lý nước thải

(Noue et al., 1992)

- Tiêu diệt các mầm bệnh: Thông qua việc xử lý nước thải bằng cách nuôi tảo các

mầm bệnh có trong nước thải sẽ bị tiêu diệt do các yếu tố sau đây:

+ Sự thay đổi pH trong ngày của ao tảo diễn ra do ảnh hưởng của quá trình quang hợp Theo cơ chế này, ban ngày tảo quang hợp lấy CO2 trong nước làm cho pH của nước tăng, ban đêm tảo hô hấp thải ra CO2 hòa tan vào trong nước làm cho pH nước giảm Nhiều vi sinh vật gây bệnh không thể tồn tại ở pH cao, thêm vào đó sự thay đổi pH theo chu kì ngày và đêm làm cho các vi sinh vật gây bệnh chết đi do không kịp thích nghi

+ Các độc tố tiết ra từ một số loài tảo tiêu diệt các mầm bệnh

+ Sự tiếp xúc của các mầm bệnh với bức xạ mặt trời (UV) chiếu xuống ao

- Biến năng lượng mặt trời sang năng lượng trong các cơ thể sinh vật: Năng lượng

mặt trời là nguồn năng lượng sơ cấp cho các cơ thể sống Thực vật dùng năng lượng mặt trời để quang hợp tạo nên đường, tinh bột, chất béo Tảo có tỉ lệ diện tích bề mặt trên một đơn vị thể tích cao hơn thực vật trên cạn, thêm vào đó tảo có cấu trúc tế bào đơn giản và nằm trong nước, CO2 và các dưỡng chất Vì vậy, việc chuyển hóa năng

lượng mặt trời bằng sinh khối của tảo hiệu quả hơn thực vật trên cạn

Sinh khối chứa ba thành phần chính là các-bon-hi-đờ-rát, prô-tê-in và chất béo Một số loại tảo có thể cho ra nhiều biodiesel hơn những loại hạt cho dầu khác Việc sản xuất từ tảo sẽ đảm bảo an ninh năng lượng trong tương lai (khi các nguồn nhiên liệu hóa thạch đang dần cạn kiệt) Người ta ước tính rằng 1 ha diện tích nuôi tảo có thể tạo ra lượng cao từ 10 - 100 lần lượng tạo ra từ 1 ha các loại cây cho dầu khác Ngoài ra, tảo có thể dùng sản xuất Biogas sử dụng để sản xuất một số loại nhựa sinh học Các sinh khối tảo thừa từ các qui trình trên có thể sử dụng để làm phân bón, cải tạo đất, nuôi cá hay gia súc

Việc sản xuất tảo có các ưu điểm như không đòi hỏi về chất lượng đất (như vậy nó sẽ không cạnh tranh quỹ đất nông nghiệp), sinh khối tảo được sản xuất liên tục và thu hoạch hàng ngày, tảo có thể nuôi cả trong môi trường nước mặn hay nước ngọt, nguồn

cung cấp cho quá trình nuôi tảo có thể lấy từ chất thải (Rosch et al., 2009)

Việc sản xuất tảo cũng là một giải pháp làm giảm thiểu các tác động của biến đổi khí hậu do tảo cố định CO2 trong khí quyển vào trong sinh khối của chúng Người ta ước tính rằng việc sản xuất 100 tấn sinh khối tảo có thể cố định khoảng 183 tấn CO2

(Demirbas & Demirbas, 2010)

 Nhược điểm:

- Tảo cần ánh sáng mặt trời để quang hợp và tăng trưởng, do đó để tối ưu năng suất của tảo, các ao tảo phải là các ao cạn và khuấy trộn tốt, vì vậy cần một diện tích khá lớn cho các ao này (Borowitzka, 1998)

- Thời gian nhân đôi của tảo khá dài, do đó các ao nuôi tảo phải lớn để đảm bảo thời gian lưu của tảo trong ao, điều này cũng dẫn đến việc cần diện tích lớn cho ao tảo

- Tảo có kích thước rất nhỏ, và mật độ tảo trong nước thấp, do đó các công nghệ thu hoạch tảo rất phức tạp và đắt tiền

- Ngoại trừ Spirulina, các loại tảo có thành tế bào rất dày, do đó các động vật (trừ động

vật nhai lại) rất khó tiêu hóa chúng Vì vậy, trước khi sử dụng chúng phải được xử lý bằng nhiệt, cơ học hoặc hóa học A-xít nucleic trong tế bào tảo (4 - 6%) có thể gây hại

cho người (Becker, 1981) Do các yếu tố trên, tảo Spirulina thường được nuôi để làm

2.3.3 Cơ chế xử lý nước thải của ao tảo

Theo Lê Hoàng Việt & Nguyễn Võ Châu Ngân (2015), ở các hệ thống tự nhiên tảo sẽ cùng với vi khuẩn tạo thành hệ cộng sinh giữa tảo và vi khuẩn, trong đó vi khuẩn sử dụng ô-xy cung cấp của tảo để phân huỷ chất hữu cơ, tảo sử dụng các hợp chất từ quá trình phân huỷ của vi khuẩn để quang hợp tạo thành tế bào tảo mới và giải phóng ô-xy cho vi khuẩn sử dụng Vào ban ngày tảo quang hợp để tạo ô-xy làm hàm lượng DO của nước thải tăng lên và pH giảm xuống, vào ban đêm tảo hô hấp chúng sẽ làm DO của nước thải giảm thấp đồng thời pH sẽ tăng lên

Hình 2.2 Chu trình cộng sinh vi khuẩn - tảo trong hệ thống xử lý nước thải

(Oswald & Gotaas, 1953) Quá trình cộng sinh được mô tả như sau: khi chất thải hữu cơ được đưa vào trong các

ao tảo, hệ vi khuẩn hiếu khí trong ao sẽ sử dụng ô-xy để ô-xy hóa một phần các chất hữu cơ, tạo ra các chất chủ yếu là CO2, H2O, NH4+, Trong đó, CO2 và NH4+ là nguồn các-bon và ni-tơ chủ yếu để cho tảo sử dụng sắc tố (Chlorophyll) để hoàn thành quá trình quang hợp, tổng hợp nên các tế bào tảo mới Một sản phẩm khác của quá trình quang hợp là O2, nguồn O2 này sẽ được vi khuẩn sử dụng để phân hủy chất hữu cơ trong nước thải (Oswald & Gotaas, 1953)

2.3.4 Một số loại hình nuôi tảo

Theo (Lê Hoàng Việt & Nguyễn Võ Châu Ngân, 2014b), để nuôi tảo và việc có 3 hệ thống nuôi tảo và chế biến tảo chính tuỳ theo nguyên liệu để nuôi tảo và việc sử dụng sinh khối tảo đạt được:

- Hệ thống nuôi các dòng tảo được chọn lọc sử dụng các nguồn nước tự nhiên, chất khoáng, dinh dưỡng, CO2 Tảo do hệ thống này sản xuất được sử dụng để làm thực phẩm cho người

- Hệ thống nuôi tảo bằng nước cống rãnh hoặc nước thải công nghiệp Trong hệ thống này, quần thể tảo gồm nhiều loài khác nhau và có sự hiện diện của một số lớn vi khuẩn

Hệ thống này được dùng để xử lý nước thải, tảo sản xuất được dùng để làm thức ăn cho gia súc hoặc sản xuất năng lượng

- Hệ thống nuôi tảo trong một hệ thống kín bằng ánh sáng tự nhiên hoặc nhân tạo

Hệ thống nuôi tảo bằng nước cống rãnh hoặc nước thải công nghiệp phù hợp với mục tiêu xử lý nước thải Các chất hữu cơ trong nước thải hay bùn đưa vào hệ thống được phân huỷ bởi vi khuẩn, nguồn ô-xy cho hệ thống phân huỷ này được sản sinh từ quá trình quang hợp của tảo Tảo sử dụng năng lượng mặt trời và các chất dinh dưỡng sản

sinh từ quá trình phân huỷ chất hữu cơ của vi khuẩn để tổng hợp sinh khối tảo bằng quá trình quang hợp

2.3.5 Ao thâm canh tảo

Ao thâm canh tảo là một ao chia ra làm nhiều rãnh dài có trang bị hệ thống sục khí và khuấy trộn Nó có tỉ lệ diện tích/thể tích lớn, độ sâu chỉ từ 0,2 - 0,6 m để cho ánh sáng

có thể khuếch tán tới đáy ao Hệ thống này có thể được nạp nước thải liên tục trong vòng 12 tiếng đồng hồ (khoảng thời gian có ánh sáng mặt trời) Nước chảy ra từ hệ thống này chứa hàm lượng tảo cao thường được đưa vào một hệ thống tách tảo Nước thải sau khi xử lý và tách tảo thường có nồng độ các chỉ tiêu thấp Thời gian lưu tồn (HRT) tối thiểu của nước thải trong hệ thống nên lớn hơn 1,8 ngày vì đây là tuổi thọ tối thiểu của một thế hệ tảo trong hệ thống Thời gian lưu tối đa của nước thải trong hệ thống phải nhỏ hơn 8 ngày vì nếu HRT quá 8 ngày thì hệ thống sẽ hoạt động dưới tải (thiếu chất dinh dưỡng), đưa đến năng suất tảo thấp (Lê Hoàng Việt & Nguyễn Võ Châu Ngân, 2015)

Mặc dù các nhân tố chính ảnh hưởng đến hệ thống nuôi tảo thâm canh là cường độ ánh sáng và nhiệt độ, nhưng thông số kỹ thuật dùng để điều chỉnh môi trường tối ưu cho hệ thống là kích thước của ao (mà chủ yếu là diện tích và độ sâu) Thông số này dùng để thiết kế HRT của ao tảo theo 3 phương pháp sau:

- Thời gian lưu tồn cố định (thích hợp cho khu vực nhiệt đới vì trong điều kiện khí hậu nhiệt đới: bức xạ mặt trời và nhiệt độ biến động rất ít) Phương pháp này giúp tiết kiệm được diện tích

- Thời gian lưu tồn hoặc độ sâu của ao thay đổi (thích hợp cho khu vực ôn đới) Vào mùa hè, nhiệt độ cao thì HRT và độ sâu của ao nhỏ hơn vào mùa đông Phương pháp này đòi hỏi diện tích hơn phương pháp một 25%

- Thời gian lưu tồn thay đổi bằng cách sử dụng ao làm đồng thời 2 nhiệm vụ: xử lý nước thải vào mùa đông và nuôi cá vào mùa hè

Hình 2.3 Ao thâm canh tảo

(Lê Hoàng Việt & Nguyễn Võ Châu Ngân, 2014b)

Hệ thống ao nuôi tảo hở phù hợp cho mục đích xử lý nước thải và tái sử dụng chất thải hữu cơ Do đó, hệ thống sẽ được giới thiệu sâu hơn ở phần này:

Trong xử lý nước thải có 2 loại ao nuôi tảo thường được sử dụng đó là ao tùy nghi (facultative pond) và ao thâm canh tảo (high rate algal pond)

- Ao tùy nghi thường có độ sâu ngập nước hơn 1m và tảo thường phát triển ở lớp nước mặt của ao nơi có đầy đủ ánh sáng, phần dưới đáy ao thường có điều kiện thiếu khí

- Ao thâm canh tảo được triển khai từ những năm 1950 với mục đích đầu tiên là tạo

điều kiện hiếu khí trong ao mà không cần đến khuấy trộn nhiều (Rawat et al., 2011)

Ao thâm canh tảo thường có độ sâu ngập nước dưới 1m và được khuấy trộn vừa phải, điều kiện hiếu khí được duy trì từ mặt ao xuống tới đáy ao (Larsdotter, 2006) Ao thâm canh tảo được bố trí dòng chảy theo đường vòng, trong ao có thiết bị khuấy để khuấy trộn hỗn hợp nuôi cấy và duy trì dòng chảy trong ao Trong các loại ao này có sự cộng sinh giữa tảo và vi khuẩn

Theo một số tác giả nếu các ao thâm canh tảo được thiết kế và vận hành tốt có thể loại

bỏ được 90% BOD và 80% N và P

Hệ thống hở có nhược điểm là không thể nuôi tảo thuần, sản phẩm dễ bị nhiễm bẩn do các chất ô nhiễm được gió đưa đến, nước trong ao nuôi bị thất thoát nhiều do bay hơi

Để giải quyết vấn đề này Chaumont (1993) đã đưa ra 3 phương án:

- Điều khiển môi trường trong ao nuôi tảo để tạo điều kiện thuận lợi cho các dòng tảo

mong muốn chiếm ưu thế trội Ví dụ, Spirulina phát triển trong môi trường có ankalinity cao, môi trường có hàm lượng muối cao có Dunaliella phát triển mạnh Các loài tảo thường được sản xuất trong ao hở là Spirulina, Chlorella, Haematococus, Dunaliella, Anabaena và Nostoc

- Tập trung vào nuôi những dòng tảo thường chiếm ưu thế ở các ao nuôi tảo hở (có thể những loài này không đạt hiệu quả biến dưỡng cao)

- Duy trì điều kiện vô trùng cho mẻ nuôi ở giai đoạn đầu để sản phẩm không bị nhiễm bởi các dòng tảo khác và tạo điều kiện cho các dòng tảo nuôi phát triển chiếm ưu thế ngay từ đầu

2.4 TẢO SPIRULINA SP

2.4.1 Đặc điểm sinh trưởng của Spirulina sp

a) Đặc điểm phân loại

Spirilina sp là một loài vi tảo có dạng xoắn hình lò xo (nhìn qua kính hiển vi), màu

xanh lam với kích thước chỉ khoảng 0,25 mm, mắt thường không thể nhìn thấy

Theo Nguyễn Đức Lượng (2002), tảo Spirulina thuộc:

Ngành: Cyanobeateria (tảo lam)

Spirulina có nhiều loài (hơn 35 loài), sự thay đổi về hình thái của chi tảo này đã làm

cho việc phân loại khó khăn Trong đó có 2 loài quan trọng là:

- Spirulina platensis đồng nghĩa với nó là Spirulina jenneri và Arthrospira platensis

- Spirulina geitleri đồng nghĩa với nó là Spirulina maxima và Oscillatoria platensis

(Richmond, 1986)

Spirulina là tảo lam hay còn gọi là vi khuẩn lam, dạng sợi, đa bào Dạng xoắn ốc của

sợi hoặc các tảo bào đoạn là đặc trưng của chi và được duy trì trong môi trường lỏng

hoặc môi trường nuôi trồng (Trần Văn Nhị et al., 1982)

Theo Vonshak (1997), Spirulina có khả năng tạo ra các không bào khí nhỏ có đường

kính cỡ 70 nm và được cấu tạo bằng các sợi prô-tê-in bện lại Không bào khí sẽ nạp

đầy khi sợi Spirulina muốn nổi lên trên bề mặt để nhận ánh sáng cho quá trình quang

hợp Đến cuối ngày là lúc tế bào tạo ra một lượng lớn các-bon-hi-đờ-rát, lúc đó các tế bào sẽ tụ tập lại và tạo ra một áp suất thẩm thấu cao bên trong cơ thể, sau đó các không bào khí sẽ không thể duy trì áp suất thẩm thấu lâu bên trong tế bào và chúng sẽ vỡ, giải phóng ra các khí làm cho sợi tảo chìm xuống đáy và tại đây xảy ra quá trình chuyển hoá các-bon-hi-đờ-rát thành prô-tê-in

Sợi tảo có độ dài từ 50 – 500 µm và chiều rộng từ 3 – 8 µm Sợi tảo không được bao phủ bằng bao nhầy như ở tảo lam nói chung Điều này giải thích sự không bám chặt

của vi khuẩn hoặc các vi sinh vật khác với tế bào Spirulina (Trương Văn Lung, 2004)

b) Các điều kiện nuôi tảo

Tảo Spirulina platensis là một loài tảo lam có giá trị dinh dưỡng rất cao, đặc biệt là

hàm lượng prô-tê-in chiếm tới 56 - 77% khối lượng khô, giàu vitamin, chất khoáng, axít amin và các axít béo thiết yếu (Belay, 2002; Falquet, 1997) Ngoài ra, khả năng thích ứng tốt với các yếu tố môi trường, điều kiện và kỹ thuật nuôi khá đơn giản cũng

là một trong những lợi thế khi nuôi sinh khối loài tảo này (Ahsan et al., 2008) Các yếu

tố môi trường, ngoài ni-tơ, được duy trì trong phạm vi thích hợp với sinh trưởng của

tảo Spirulina sp.: nhiệt độ, pH, chế độ chiếu sáng, sục khí, cường độ ánh sáng

Trong nuôi tảo nói chung, nguồn tảo giống, chất dinh dưỡng và điều kiện môi trường nuôi là những yếu tố ảnh hưởng rất lớn đến sinh trưởng và thành phần sinh hóa của tảo Các thành phần dinh dưỡng đa lượng (các-bon, ni-tơ, phốt-pho) và vi lượng ảnh hưởng rất lớn đến sinh trưởng của tảo, đặc biệt trong điều kiện nuôi với mật độ cao (Vonshak

et al., 1996; Richmond et al., 1986)

Theo Vonshak (1997), nghiên cứu đầu tiên về phản ứng với ánh sáng của tảo Spirulina

đã được thực hiện Trong thí nghiệm khá đơn giản của mình, ông đi đến kết luận rằng

cường độ ánh sáng thích hợp nhất cho Spirulina nằm trong khoảng 25.000 – 30.000

lux

 Nhiệt độ

Theo Lê Hoàng Việt & Nguyễn Võ Châu Ngân (2015), nhiệt độ tăng sẽ làm cho tốc độ sinh trưởng của tảo tăng, tuy nhiên khi nhiệt độ tăng quá ngưỡng giới hạn trên thì tốc

độ sinh trưởng của tảo sẽ giảm nhanh Nhiệt độ là một trong những nhân tố chủ yếu

kiểm soát quá trình nhân đôi của các loài tảo Spirulina (Tomaselli et al., 1993) Spirulina chỉ bắt đầu phát triển đáng kể trên 200C Tốc độ tăng trưởng nhanh nhất là khoảng 35–370C Trên nhiệt độ đó, tế bào có thể bị ảnh hưởng nghiêm trọng (việc đó là không thể tránh khỏi sau vài giờ trên 43 – 440C) (Jourdan, 2001) Theo Lê Văn Khoa (1995), nguồn nhiệt làm cho môi trường nước ấm lên được cung cấp chủ yếu cho nước

là bức xạ mặt trời, ngoài ra còn có thể do năng lượng sinh ra trong các quá trình ô-xy hoá các hợp chất hữu cơ, vô cơ trong nước Nhiệt độ sinh trưởng tối ưu cho tảo

Spirulina platensis từ 35-370C dưới điều kiện phòng thí nghiệm Ở ngoài trời, nếu nhiệt

độ tăng tới 390C trong vài giờ cũng không làm hại đến tảo và khả năng quang hợp của

nó Những dòng tảo Spirulina ưa nhiệt và chịu nhiệt có thể nuôi trồng ở 35 - 400C Đặc điểm đó có lợi là thải loại vi khuẩn ưa nhiệt trung bình tạp nhiễm Nhiệt độ tối thiểu

đối với sinh trưởng của Spirulina là khoảng 150C vào ban ngày Ban đêm, Spirulina có

thể chịu được nhiệt độ tương đối thấp (Richmond, 1986) Tương tự, theo Gershiwin &

Belay (2008), nhiệt độ tối ưu cho sự phát triển của tảo Spirulina là 35 - 380C, trong khi nhiệt độ tối thiểu cần thiết để duy trì tốc độ tăng trưởng là 15 - 200C Và theo Oliveira

et al (1999), sinh khối tảo Spirulina sp phát triển cực đại ở mức nhiệt độ từ 25 - 300C

còn đối với tảo Spirulina maxima là từ 30 - 350C

Hầu hết các loài tảo nuôi có thể sống trong phạm vi pH dao động từ 7 – 9 Ngưỡng pH tối ưu dao động từ 8,2 – 8,7 Trong trường hợp nuôi với mật độ cao có thể bổ sung CO2

để tăng pH trong ao nuôi (Theo Trương Sĩ Kỳ, 2004)

Theo Richmon (1986), tảo Spirulina thuộc nhóm tảo hấp thu chủ yếu HCO3- cho quá trình quang hợp, nên phát triển mạnh ở môi trường pH cao và pH của thí nghiệm pH

từ 9,8 – 10,3 nằm trong khoảng thích hợp cho tảo phát triển

Tảo Spirulina sống trong môi trường giàu bi-các-bon-nát (HCO3-) và theo (Trương Văn Lung, 2004) độ kiềm pH từ 8,3 – 10,3 nhưng lại có một số tài liệu khác thì pH nằm trong khoảng 8,5 - 11 (Zarrouk, 1966) và có thể chịu đựng được sự tăng pH Lưu ý

rằng các giá trị pH của nước có xu hướng gia tăng khi Spirulina phát triển Từ khoảng

8,5 tảo bắt đầu giai đoạn phát triển, pH có thể tăng lên đến 10 hoặc thậm chí 11 (Jourdan, 2001)

 Vòng đời phát triển (sinh sản)

Các sợi tảo trưởng thành bị cắt ra thành vài đoạn tảo (hormogonia), mỗi đoạn tảo có từ

2 – 4 tế bào, nhờ sự thành lập của vài tế bào đặc biệt, gọi là hoại bào Hoại bào có màu

vàng, dễ nhuộm đỏ với congo và bị thuỷ giải để cho các tế bào hình đãi tách rời có hai mặt lỏm (Phạm Hoàng Hộ, 1972)

Theo Boussiba (1989), các đoạn tảo con, sau khi tách rời, trượt nhẹ khỏi sợi cha mẹ Hai đầu xa của đoạn tảo, mất đi phần dính của hoại bào, trở nên tròn với vách mỏng

Số tế bào trong các đoạn tảo gia tăng bởi sự cắt đôi tế bào, hay chính xác hơn là sự phân chia xen giữa Qua quá trình này, các sợi kéo dài tới mức trưởng thành và có dạng xoắn kiểu mẫu Trong các điều kiện tăng trưởng tốt nhất, thời gian tăng gấp đôi của

Spirulina là 9,3 giờ

 Dưỡng chất cần thiết

Tảo là sinh vật tự dưỡng, tức là chúng có thể tự tổng hợp các chất hữu cơ, các phân tử

từ các chất vô cơ Một trong những công thức đại diện cho các yếu tố phổ biến nhất trong một tế bào tảo trung bình là C106H181O45N16P, và các yếu tố nên có mặt trong các

tỉ lệ trong các phương tiện truyền cho sự phát triển tối ưu (Oswald, 1988)

Theo Lê Hoàng Việt & Nguyễn Võ Châu Ngân (2015) a-môn là nguồn đạm chính cho tảo tổng hợp nên prô-tê-in của tế bào thông qua quá trình quang hợp Phốt-pho, Mangan và Kali cũng là các dưỡng chất ảnh hưởng đến sự phát triển của tảo Tỉ lệ P,

Mg và K trong các tế bào tảo là 1,5: 1 : 0,5

● Nguồn Các-bon: chủ yếu là CO2 và NaHCO3 Môi trường có NaHCO3 thuận lợi cho tảo phát triển hơn Na2CO3 Trong quá trình nuôi cấy, khi thổi CO2 phải kết hợp đồng thời với việc cung cấp muối bi-các-bon-nát tạo ra pH thích hợp cho tảo phát triển Vì nếu chỉ thổi CO2 mà môi trường không có muối các-bon-nát nào khác thì pH sẽ giảm, khi đó tảo sẽ chết rất nhanh Như vậy nguồn các-bon chủ yếu là NaHCO3, còn CO2 chỉ

là nguồn bổ sung phụ Nguồn các-bon để nuôi dưỡng Spirulina ở khoảng 1,2 – 16,8

NaHCO3/L (Nguyễn Thị Thanh Hiền, 2010) Theo Trương Văn Lung (2004), lại cho

rằng: Spirulina cũng như đa số loại tảo lam khác, là loài quang tự dưỡng bắt buộc,

nghĩa là nó không thể sinh trưởng trong tối trên môi trường chứa các hợp chất các-bon

hữu cơ Sản phẩm quang hợp đồng hóa chủ yếu của Spirulina là glycogen

● Nguồn Ni-tơ: trong quá trình phát triển của tảo Spirulina, ni-tơ đóng vai trò rất quan

trọng, nó là nguyên liệu quan trọng để sinh tổng hợp prô-tê-in Spirulina không có khả

năng sử dụng ni-tơ dạng khí N2 mà sử dụng dưới dạng ni-trát (NO3-), với ngưỡng 10mg N/L, trung bình 4-12mg N/L (theo môi trường Zarrouk C) Nếu thiếu ni-trát, sinh khối tảo sẽ giảm đi rất nhanh và khi hàm lượng ni-trát quá cao sẽ tạo hiện tượng tảo nở

30-hoa từ đó sẽ làm thay đổi chất lượng nước (Boyd et al, 2002).Spirulina cố định và khử

N khí quyển thông qua phản ứng do enzyme nitrogenase xúc tác (Trương Văn Lung, 2004)

Các mức ni-tơ khác nhau ảnh hưởng lớn đến sinh trưởng của tảo nói chung và tảo

Spirulina sp đã được đề cập trong nhiều nghiên cứu Dư thừa hay thiếu hụt ni-tơ đều

làm giảm sinh trưởng, khả năng trao đổi chất, chất lượng dinh dưỡng của nhiều loài tảo

trong đó có tảo Spirulina sp (Hu, 2004; Bulut, 2009; Azov & Goldman, 1982; Zhila et al., 2005; Pruvost et al., 2009)

Ngoài ra, môi trường nuôi (nước ngọt hay nước mặn) và nguồn ni-tơ khác nhau (NO3-,

NO2-, NH4+…) cũng ảnh hưởng đến nhu cầu ni-tơ của tảo (Prabakaran & Ravindran,

2012; Li et al 2008)

● Nguồn Phốt-pho: phốt-pho cũng là yếu tố không thể thiếu trong nhu cầu của tảo

Tảo yêu cầu về phốt-pho với hàm lượng rất thấp so với đạm, nhưng lân vẫn là yếu tố bắt buộc và cần thiết (Trần Văn Vỹ, 1995) Tảo sử dụng lân chủ yếu ở dạng phốt-phát

để tổng hợp ATP, a-xít nucleic, các hợp chất cấu tạo khác

● Dinh dưỡng khác: sắt cần thiết cho quá trình tạo diệp lục, song với là vai trò của

nguyên tố vi lượng Fe cần cho phát triển của tảo nhưng ở hàm lượng thấp chỉ vài mg/L, khi hàm lượng quá cao muối Fe có thể gây ra độc cho thuỷ sinh vật (Đặng Ngọc

Thanh, 1974), với Spirulina sắt thích hợp là 0,56 – 50 mg/L Ngoài ra, nhu cầu về các

chất dinh dưỡng khác như K là 5 g/L, Na là 5 g/L

● Chế độ thổi khí: chế độ thổi khí CO2 với liều lượng 2% liên tục dưới một chế độ ánh sáng mạnh và có mặt của HCO3- sẽ là điều kiện tối ưu cho tảo phát triển Nó là điều

cần thiết, ít nhất là từ 2 - 4 lần một ngày, để khuấy trộn trong quá trình nuôi spirulina

sp Điều này giúp đảm bảo các cá thể Spirulina có thể được tiếp xúc đều với chất lỏng

và ánh nắng Nếu sự khuấy trộn quá lớn, sẽ gây đứt đoạn Spirulina và gây ra bọt xuất

hiện Đối với thể tích nhỏ nuôi cấy có thể khuấy trộn với một máy nén nhỏ sử dụng cho các ao nuôi cá (Jourdan, 2001) Theo Lê Hoàng Việt & Nguyễn Võ Châu Ngân (2014b) quá trình khuấy trộn trong các ao tảo rất cần thiết nhằm ngăn không cho các tế bào tảo lắng xuống đáy và tạo điều kiện cho các dinh dưỡng tiếp xúc với tảo thúc đẩy quá trình quang hợp Trong các ao tảo lớn khuấy trộn còn ngăn được quá trình phân tầng nhiệt độ trong ao tảo và yếm khí ở đáy ao tảo Nhưng việc khuấy trộn cũng tạo nên bất lợi vì nó làm cho các cặn lắng nổi lên và ngăn cản quá trình khuếch tán ánh sáng vào ao tảo

Theo Vũ Thành Lâm (2006), ao nuôi cấy Spirulina phải được khuấy trộn liên tục trong

suốt quá trình nuôi (vào lúc có ánh sáng) vì:

- Để đảm bảo rằng dinh dưỡng trong môi trường nuôi cấy được cung cấp thường xuyên

và đầy đủ cho tảo

- Để di chuyển các sợi tảo từ dưới lên trên giúp cho chúng tiếp xúc được với ánh sáng mặt trời và tiến hành quang hợp

- Cũng để di chuyển các sợi tảo nằm bên dưới cột nước vì tại đó không gây ra quang phân giải sắc tố của sợi tảo

- Để tảo không bện thành đám dày đặc vì như vậy chúng không tiếp xúc được với ánh sáng và chất dinh dưỡng dẫn đến tiêu hoá một lượng lớn chất đường đã tích luỹ, từ đó chúng sẽ chết Đây lại là nguyên nhân khiến cho vi khuẩn phát triển trong môi trường nuôi

c) Lượng BOD nạp cho ao tảo

Theo Lê Hoàng Việt & Nguyễn Võ Châu Ngân (2015), lượng BOD nạp cho ao tảo ảnh hưởng đến năng suất tảo vì nếu lượng BOD nạp quá cao môi trường trong ao tảo sẽ trở nên yếm khí ảnh hưởng đến quá trình cộng sinh của tảo và vi khuẩn Một số thí nghiệm

ở Thái Lan cho thấy trong điều kiện nhiệt đới độ sâu của ao tảo là 0,35 m, HRT là 1,5 ngày và lượng BOD nạp là 336 kg/(ha/ngày) là tối ưu cho các ao tảo và năng suất tảo đạt được là 390 kg/(ha/ngày)

Tảo Spirulina sp có khả năng làm giảm BOD của nước thải có chứa các-bon cao (Kaushik et al., 2006)

d) Giá trị của tảo Spirulina sp

Theo Trương Văn Lung (2004), một nhóm các nhà khoa học ở trường Đại học Haward

(Mỹ) nhận thấy các chế phẩm chiết từ tảo Spirulina có tác dụng rất tốt với hệ thống

miễn dịch cơ thể người trong chống bệnh ung thư

Ứng dụng quan trọng của sắc tố lam trong việc chẩn đoán và phát hiện một số bệnh (Callegari, 1989)

Tảo Spirulina được sử dụng rộng rãi làm thực phẩm chức năng, nguồn dinh dưỡng bổ

sung thiết yếu, thuốc chữa bệnh (ung thư, HIV/AIDS, viêm gan, tiểu đường, ), mỹ phẩm (chăm sóc da và tóc), thức ăn chăn nuôi và xử lý nước thải (Belay, 2002; Ahsan

et al., 2008; Dương Thị Hoàng Oanh et al., 2002; Falquet, 1997; Richmond, 1986)

2.4.2 Ưu thế của tảo Spirulina sp

Theo Trương Văn Lung (2004), thành tế bào Spirulina ít cellulose so với Tảo Lục có nhân (Chlorella, Scenedesmus) vì vậy Spirulina dễ tiêu hoá Cường độ đồng hoá của prô-tê-in của Spirulina rất cao: sau 18h hơn 58% prô-tê-in tiêu hoá và đồng hoá Thức

ăn trong đó Spirulina cung cấp tới 100% prô-tê-in cho một số loài động vật đã tạo ra

tốc độ sinh trưởng giống như dùng thức ăn tiêu chuẩn

Nhiều phân tích được tiến hành ở viện Dầu mỏ Pháp cũng như ở Italia, Nhật Bản,

Mexico trên các mẫu Spirulina sinh trưởng trong điều kiện phòng thí nghiệm hoặc thu

thập trong môi trường tự nhiên đã khẳng định những tài liệu của những nhà khảo cứu người Bỉ: 65% là prô-tê-in (hơn nhiều so với Đậu nành),19% là glucid, 6% là sắc tố, 4% là lipid, 3% là sợi, 3% là tro

Thành phần dưới đây của bột tảo Spirulina sản xuất ở Thái lan do công ty tảo Xiêm

công bố năm 1985 là: 4 - 6% độ ẩm; 55 - 70% prô-tê-in thô ; 5 - 7% lipid thô ; 5 - 7% sợi thô ; 3 - 6% tro; 15 - 20% dịch chiết N tự do; 16- 20% phycocyanin; 800 – 2000 µg% Chlorophyll; 200 – 400 mg% carotenoid; 110 - 200 mg% provitamin A; 3 - 4 mg% vitamin B1; 2,5 - 3,5 mg% vitamin B2; 0,5 - 0,7 mg% vitamin B6; 0,15 - 0,25 mg% vitamin B12; 2,5 - 3,8 mg% vitamin E; 0,5 - 0,8 mg% a-xít pantothenic; 9 – 12 mg% a-xít nicotinic; 80 - 100 mg% isositol; 4 – 5 µg% a-xít folic; 1000 – 1400 mg%

Ka-li; 45 – 500 mg% Na-tri; 100 - 400 mg% Can-xi; 300 – 700 mg% Phot-pho;

100-200 mg% Magie; 30 - 50 mg% Sắt

Trong Spirulina có chứa những chất có hoạt tính sinh học như phycopiliprô-tê-in (sắc

tố lam) có vai trò quan trọng trong y học (Callegari, 1989)

2.5.1 Ở ngoài nước

Năm 1983, Ciferri đã nuôi trồng Spirulina platensis và Spirulina maximatrong ống

nhựa để thuận tiện cho việc thu nhận ánh sáng biện pháp này giúp việc tăng về trồng và sản xuất tảo mùa đông ở Ý Tuy vậy, nuôi trong ống nhựa thì quá nóng trong mùa hè,

vì vậy phải chọn giống chịu nhiệt để trồng vào mùa hè

Năm 1997, Falquet đã nghiên cứu về hàm lượng các chất dinh dưỡng có trong tảo khi

ta bổ sung Spirulina vào các loại thức ăn đối với chuột và sự ảnh hưởng của các độc tố lên chuột khi họ cho ăn bằng tảo Spirulina là nguồn prô-tê-in duy nhất

Nghiên cứu của Suad (2013), đã phát hiện ra rằng tảo có khả năng giảm thiểu chất hữu

cơ thông qua việc hình thành cơ bản của CaCO3 trung gian qua quá trình vôi hóa cũng như tiêu thụ các loại tảo cho CO2 trong nước rất cần thiết cho quá trình quang hợp

2.5.2 Ở trong nước

Theo nghiên cứu của Đỗ Thị Thanh Hương (2006), cường độ ánh sáng từ 1500 - 5250 lux tảo có thể sinh trưởng và phát triển, trong đó cường độ ánh sáng từ 3000 - 3500 lux, tảo sinh trưởng và phát triển tốt nhất Bên cạnh đó, muối bi-các-bon-nát cũng ảnh hưởng đến quá trình phát triển của tảo Và ở môi trường 1mL rỉ đường + 16,8g NaHCO3 và môi trường 1,5 mL rỉ đường + 16,8 NaCHO3 có thể thay thế được cơ bản Zarrouk mà hàm lượng sinh khối tảo vẫn cao

Khả năng xử lý nước thải của tảo Spirulina cũng đã được Khoa Thuỷ sản, trường Đại

học Cần Thơ nghiên cứu cho thấy nước thải Biogas và nước thải sinh hoạt, tảo phát triển với mật độ cao nhất (87.775±41.688 ct/ml) và làm giảm các yếu tố dinh dưỡng trong nước thải sinh hoạt một cách có hiệu quả nhất (hàm lượng TAN giảm 96,2%;

NO3-giảm 76,1%; PO43- giảm 98,1%; COD giảm 72,5%) (Trích Dương Thị Hoàng Oanhet al., 2011)

CHƯƠNG III PHƯƠNG PHÁP VÀ PHƯƠNG TIỆN NGHIÊN CỨU

3.1 ĐỊA ĐIỂM VÀ THỜI GIAN THỰC HIỆN

Các thí nghiệm về ao thâm canh tảo được tiến hành tại phòng thí nghiệm thuộc Bộ môn

Kỹ thuật Môi trường – Khoa Môi trường và Tài nguyên Thiên nhiên – Trường Đại học Cần Thơ từ tháng 8/2015 đến tháng 12/2015 Các chỉ tiêu cần theo dõi trong đề tài được phân tích tại Trung tâm phân tích và kiểm định hàng hóa XNK Viacimex, chi nhánh Công ty TNHH thiết bị KHKT Hải Ly, lô A8, đường số 1, KDC Phú An, P Phú Thứ, Q Cái Răng, Tp Cần Thơ và tại Khoa Môi trường và Tài nguyên Thiên nhiên – Trường Đại học Cần Thơ

3.2 ĐỐI TƯỢNG

Nước thải hầm ủ Biogas:

Nước thải được lấy từ túi ủ Biogas tại hộ ông Thái Văn Sáu (Địa chỉ: tổ 50, ấp Mỹ Long, xã Mỹ Khánh, huyện Phong Điền, Tp Cần Thơ) với thời gian lấy mẫu vào lúc 6h sáng hằng ngày, trùng với thời gian vệ sinh chuồng trại của hộ này Mẫu được lấy từ ống dẫn nước thải đầu ra của các túi ủ Biogas (hình 3.1)

Hình 3.1 Vị trí lấy nước thải đầu ra của túi ủ Biogas (20-8-2015)

Tảo giống:

Nguồn tảo giống sử dụng trong đề tài là Spirulina sp được lấy từ phòng thí nghiệm

Khoa Thủy sản – Trường Đại học Cần Thơ, tảo được lấy có độ mặn từ 20‰ với số lượng là 4L Tiến hành hạ độ mặn môi trường nuôi xuống còn 0‰ và tạo thích nghi cho tảo bằng nước thải hầm ủ biogas Mỗi ngày độ mặn được giảm xuống 5‰ Lượng nước thải Biogas cần sử dụng để hạ độ mặn được tính toán bằng công thức 3.1 Trong quá trình nhân giống Soda (NaHCO3) và ni-trát na-tri (NaNO3) được bổ sung để duy trì

pH và cung cấp nguồn đạm cho tảo Sau khi hạ độ mặn xuống 0‰ tiếp tục nhân giống tảo đến 20 lít, sau đó cấy tảo vào hai ao thâm canh (mỗi ao 10L) để tạo quần thể tảo trội

Trong đó:

C1, C1: là nồng độ muối trong dung dịch nuôi tảo trước và sau khi pha loãng (0%0)

V1, V2: là thể tích dung dịch nuôi tảo trước và sau khi pha loãng (lít)

Sau đó lấy V2 – V1 ta được lượng nước cần sử dụng

Kiểm tra sự phát triển tảo Spirulina sp

Để kiểm tra quần thể tảo Spirulina sp có thể phát triển thành quần thể tảo trội trong ao hay không, tiến hành lấy mẫu nước trong ao tảo Spirulina sp để quan sát dưới kính

hiển vi

Hình 3.2 Ảnh chụp tảo Spirulina sp ở vật kính X4

Hình 3.2 cho thấy tảo Spirulina sp chiếm ưu thế trong thị trường quan sát, ngoài ra còn

có các chất bẩn trong nước thải lẫn vào trong mẫu

3.3 PHẠM VI NGHIÊN CỨU

Đề tài được tiến hành trên quy mô phòng thí nghiệm bằng mô hình ao thâm canh tảo tự chế tạo; sử dụng nguồn tảo phòng thí nghiệm của Khoa Thủy sản - ĐHCT

3.4 CÁC BƯỚC TIẾN HÀNH

3.4.1 Chế tạo mô hình

Các thí nghiệm được tiến hành trên mô hình ao thâm canh tảo được làm bằng kính cókích thước dài × rộng × cao là 0,8 m × 0,6 m × 0,4 m, được chia làm 6 ngăn mỗi ngăn rộng 0,1 m; thành ngoài và đáy của ao tảo được chế tạo từ kính dày 8 mm, các tấm kính ngăn để tạo rãnh trong mô hình có chiều dày 5 mm

Hình 3.3 Kích thước mô hình ao thâm canh tảo

Hình 3.4 Mô hình ao thâm canh tảo sau khi chế tạo

Từ các kích thước của mô hình, các đặc trưng của mô hình được tính toán như sau: Tổng thể tích hoạt động của ao là:

Vao = 0,8× 0,6 × 0,3= 0,144 m3 = 144L

Tỉ lệ diện tích/thể tích là 0,48 m2/0,144 m3=3,3:1

Tổng chiều dài đường đi của nước thải là 4,7 m

Ngoài ra mô hình còn có thể các thiết bị phụ trợ là bộ lọc cát dùng để lọc nước thải đầu vào Bình Ma-ri-ốt (bình nhựa composite 200L) để cung cấp nước cho mô hình theo một lưu lượng ổn định Bơm nước chìm Aquarium Power Heads để khuấy trộn, tạo dòng chảy, và cung cấp khí cho ao

3.4.2 Bố trí mô hình

Mô hình được bố trí ngoài trời như Hình 3.5

Hình 3.5 Bố trí mô hình 3.4.3 Tiến hành thí nghiệm

Thí nghiệm được tiến hành với nước thải túi ủ Biogas để lắng 30 phút trong thùng chứa

và sau đó cho qua bộ lọc cát để giảm bớt chất rắn lơ lửng, tránh ảnh hưởng của nó đến quá trình khuếch tán của ánh sáng vào nước làm giảm năng suất tảo Ngoài ra do nồng

độ các chất ô nhiễm trong nước thải Biogas khá cao, do đó nước thải còn được pha loãng với nước máy với tỉ lệ 2 nước thải : 1 nước máy

Theo Đỗ Thị Thanh Hương (2006), tảo Spirulina sp thường sử dụng đạm ni-trát hơn

đạm a-môn, trong khi đó nước thải của hầm ủ Biogas chứa chủ yếu là đạm a-môn Vì vậy, thí nghiệm 1 được tiến hành với 2 nghiệm thức: một nghiệm thức sục khí 30 phút

và một nghiệm thức không sục khí, mục đích của sục khí ở nghiệm thức 1 là để chuyển

một phần đạm a-môn trong nước thải Biogas thành ni-trát Ngoài ra, việc sục khí cũng giúp giảm màu của nước thải từ đó tăng khả năng khuếch tán của ánh sáng vào ao tảo

Cả hai ao được vận hành với cùng chế độ nạp nước là 12/24 giờ (6h sáng đến 6h chiều) với lưu lượng 67 mL/phút ứng với thời gian lưu là 3 ngày (thời gian lưu nước 3 ngày

được lựa chọn để tiến hành thí nghiệm vì đây là thời gian tối thiểu để tảo Spirulina sp

trong hệ thống nhân đôi) Sau khi vận hành ao thâm canh tảo trong điều kiện thí nghiệm 10 ngày, mẫu nước thải đầu vào và đầu ra của hệ thống được thu để phân tích các chỉ tiêu về chất lượng nước, nước thải đầu ra được thu theo kiểu mẫu gộp vào lúc 6h sáng và 12h chiều (hai khoảng thời gian có ánh sáng thấp nhất và cao nhất trong ngày) Mẫu đầu ra được phân thành hai phần: một phần dùng để phân tích trực tiếp SS, VSS và Chlorophyll để đánh giá sinh khối tảo; phần còn lại được tách tảo bằng cách lọc qua cát Sau đó, các mẫu nước được đem đi phân tích các chỉ tiêu (TKN, COD, BOD5, TP, N-NH4+, N-NO3-, tổng Coliform)

Trong quá trình thí nghiệm cường độ chiếu sáng, nhiệt độ trong và ngoài ao thâm canh tảo, pH và DO của nước trong ao tảo được theo dõi liên tục 2h đo một lần để ghi nhận các điều kiện hoạt động của hệ thống

Sau khi thí nghiệm 1 kết thúc, nghiệm thức cho kết quả tốt hơn về mặt chất lượng nước thải sau xử lý và sinh khối tảo sẽ được chọn để bố trí thí nghiệm 2 (Hình 3.6)

Hình 3.6 Sơ đồ bố trí thí nghiệm

Sục khí (30 phút), nạp nước thải bán liên tục 12/24h, thời gian lưu

là 3 ngày

Không sục khí, nạp nước thải

bán liên tục 12/24h, thời gian

TP, N-NH4+, N-NO3-, tổng Coliform

Phân tích SS, VSS,

Chlorophyll

Phân tích SS, VSS,

3.5 PHƯƠNG PHÁP VÀ PHƯƠNG TIỆN PHÂN TÍCH MẪU

Các chỉ tiêu như pH, DO, ánh sáng, nhiệt độ được đo tại nơi đặt mô hình Chỉ tiêu SS, VSS, Chlorophyll được phân tích theo chỉ dẫn của Standard Methods for the Examination of Water and Wastewater (APHA, 1995) tại các phòng thí nghiệm thuộc Khoa Môi trường & Tài nguyên Thiên nhiên – Trường Đại học Cần Thơ, tất cả các chỉ tiêu còn lại được phân tích tại Trung tâm Viacemax Phương pháp, phương tiện phân

tích các chỉ tiêu được thể hiện trong bảng 3.1

Bảng 3.1 Các phương pháp phân tích mẫu

Bảng 3.2 Các phương pháp và phương tiện phân tích mẫu tại Khoa

DO Ðo trực tiếp bằng máy đo

Máy đo pH (WTW 340i)

Ánh sáng Đo trực tiếp bắng máy đo Light meter - Lutron LX107

Nhiệt độ Đo trực tiếp bằng nhệt kế Nhiệt kế rượu

SS Phương pháp lọc và đo bằng

trọng lượng (TCVN 6625:2000)

Giấy lọc, máy hút chân không, tủ sấy