Khảo sát một số đặc tính kích thích sinh trưởng thực vật của một số chủng xạ khuẩn

HỌC VIỆN NÔNG NGHIỆP VIỆT NAM KHOA CÔNG NGHỆ SINH HỌC -*** KHOÁ LUẬN TỐT NGHIỆP ĐỀ TÀI: KHẢO SÁT ĐẶC ĐIỂM SINH HỌC VÀ KHẢ NĂNG KÍCH THÍCH SINH TRƢỞNG THỰC VẬT CỦA MỘT SỐ CHỦNG XẠ KHUẨN HÀ NỘI - 2023 HỌC VIỆN NÔNG NGHIỆP VIỆT NAM KHOA CÔNG NGHỆ SINH HỌC -*** KHOÁ LUẬN TỐT NGHIỆP ĐỀ TÀI: KHẢO SÁT MỘT SỐ ĐẶC TÍNH KÍCH THÍCH SINH TRƢỞNG THỰC VẬT CỦA MỘT SỐ CHỦNG XẠ KHUẨN Sinh viên thực : ĐẶNG XUÂN TÙNG Lớp : K64CNSHA MSV : 641587 Giảng viên hƣớng dẫn : PGS.TS NGUYỄN VĂN GIANG Bộ môn : CÔNG NGHỆ VI SINH Hà Nội - 2023 LỜI CAM ĐOAN Tơi xin cam đoan cơng trình nghiên cứu khoa học thực thời gian từ 08/2022 – 02/2023 hướng dẫn PGS.TS Nguyễn Văn Giang – giảng viên Bộ môn Công nghệ Vi sinh – Khoa Công nghệ Sinh học – Học viện Nông nghiệp Việt Nam Tất số liệu kết nghiên cứu khóa luận trung thực chưa công bố cơng trình nghiên cứu ngồi nước Các tài liệu trích dẫn nêu mục tài liệu tham khảo Hà Nội, ngày tháng năm 2023 Sinh viên Đặng Xuân Tùng i LỜI CẢM ƠN Lời xin cảm ơn Ban Giám đốc Học viện Nông nghiệp Việt Nam, đội ngũ giảng viên, cán giảng dạy công tác Học viện Nông nghiệp Việt Nam Tôi vô biết ơn thầy, cô khoa Công nghệ sinh học giảng dạy, hướng dẫn tạo điều kiện để tơi hồn thành chương trình học, thực tập nghề nghiệp khố luận tốt nghiệp Tơi xin bày tỏ kính trọng biết ơn sâu sắc tới PGS.TS Nguyễn Văn Giang định hướng nghiên cứu, tận tình dạy, giúp đỡ, hỗ trợ tơi suốt q trình thực khóa luận Tôi xin cảm ơn đến thầy PGS.TS Nguyễn Xuân Cảnh, cô Th.S Trần Thị Đào, cô Th.S Nguyễn Thanh Huyền, cô Th.S Trần Thị Hồng Hạnh, nghiên cứu viên Nguyễn Thị Thu, Dương Văn Hoàn, Tạ Hà Trang giúp đỡ tơi thời gian thực khố luận Cuối muốn gửi lời cảm ơn đến Bố, Mẹ, gia đình bạn bè thực khố luận môn Công nghệ vi sinh khuyến khích, động viên, hỗ trợ, tạo điều kiện tốt để tơi hồn thành tốt khố luận tốt nghiệp Tôi xin chân thành cảm ơn! Hà Nội, ngày tháng năm 2023 Sinh viên Đặng Xuân Tùng ii MỤC LỤC Lời cam đoan i Lời cảm ơn ii Mục lục iii Danh mục bảng vi Danh mục hình vii Danh mục từ viết tắt ix Tóm tắt x PHẦN I: MỞ ĐẦU 1.1 Đặt vấn đề 1.2 Mục đích nội dung nghiên cứu 1.2.1 Mục đích nghiên cứu 1.2.2 Đối tượng nghiên cứu 1.2.3 Nội dung nghiên cứu 1.3 Ý nghĩa khoa học ý nghĩa thực tiễn đề tài 1.3.1 Ý nghĩa khoa học 1.3.2 Ý nghĩa thực tiễn PHẦN II TỔNG QUAN TÀI LIỆU 2.1 Tổng quan xạ khuẩn 2.1.1 Phân bố tự nhiên 2.1.2 Đặc điểm sinh học xạ khuẩn 2.1.3 Sự hình thành bào tử xạ khuẩn 2.2 Phân loại xạ khuẩn 2.2.1 Phân loại theo đặc điểm hình thái tính chất ni cấy 2.2.2 Đặc điểm hóa phân loại (Chemotaxonomy) 2.2.3 Đặc điểm sinh lý, sinh hóa 10 2.2.4 Phân loại số (Numerical Taxonomy) 10 2.2.5 Phân loại xạ khuẩn phương pháp giải trình tự gene 16S-rDNA 12 iii 2.3 Vai trò xạ khuẩn trồng 13 2.3.1 khả sinh phytohormone kích thích sinh trưởng thực vật 13 2.3.2 Khả phân giải phosphate khó tan 14 2.3.3 Khả cố định nitơ 15 2.3.4 Khả sinh siderophore 16 2.3.5 Khả đối kháng vi sinh vật gây bệnh thực vật 17 2.3.6 Xạ khuẩn tác nhân phân hủy sinh học/xử lý sinh học 18 2.4 Tình hình nghiên cứu xạ khuẩn có khả kích thích sinh trưởng thực vật nước giới 19 2.4.1 Tình hình nghiên cứu xạ khuẩn có khả kích thích sinh trưởng thực vật Việt Nam 19 2.4.2 Tình hình nghiên cứu xạ khuẩn có khả kích thích sinh trưởng thực vật giới 20 PHẦN III VẬT LIỆU VÀ PHƢƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU 22 3.1 Đối tượng, vật liệu nghiên cứu 22 3.1.1 Thời gian, địa điểm nghiên cứu 22 3.1.2 Đối tượng nghiên cứu 22 3.1.3 Dụng cụ thiết bị nghiên cứu 22 3.1.4 Các hóa chất pha môi trường 23 3.2 Phương pháp nghiên cứu 24 3.2.1 Nghiên cứu đặc điểm sinh học chủng xạ khuẩn 24 3.2.2 Phương pháp khảo sát khả tổng hợp IAA 25 3.2.3 Phương pháp khảo sát khả phân giải phosphate khó tan 27 3.2.4 Khảo sát khả sinh Siderophore 28 3.2.5 Khả kháng nấm chủng xạ khuẩn 29 3.2.6 Phương pháp xác định hoạt tính enzyme ngoại bào 29 3.2.7 Khảo sát số phản ứng hóa sinh chủng xạ khuẩn 29 3.2.8 Khảo sát kích thích sinh trưởng thực vật chủng xạ khuẩn 32 iv PHẦN IV KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN 33 4.1 Đặc điểm sinh học chủng xạ khuẩn 33 4.1.1 Đặc điểm nuôi cấy 33 4.1.2 Đặc điểm bào tử, cuống sinh bào tử 42 4.1.3 Khả đồng hóa nguồn cacbon 43 4.1.4 Khả đồng hóa nguồn nitơ 45 4.2 Khảo sát khả sinh IAA chủng xạ khuẩn 47 4.3 Khả phân giải phosphate chủng xạ khuẩn 49 4.4 Khảo sát khả sinh Siderophore chủng xạ khuẩn 52 4.5 Khả đối kháng nấm Sclerotium rolfsii gây bệnh thối gốc mốc trắng lạc chủng xạ khuẩn 53 4.6 Khả sinh enzyme ngoại bào 55 4.7 Khảo sát số phản ứng hóa sinh chủng xạ khuẩn 58 4.7.1 Phản ứng catalase 58 4.7.2 Phản ứng MR (Methyl Red) 59 4.7.3 Phản ứng VP (Voges-Proskauer) 59 4.7.4 Khả biến dưỡng citrate 60 4.7.5 Khả khử nitrate 61 4.8 Khảo sát ảnh hưởng chủng xạ khuẩn đến hoạt động sinh lý trồng 61 4.8.1 Khả kích thích nảy mầm hạt 62 PHẦN V KẾT LUẬN VÀ KIẾN NGHỊ 64 5.1 Kết luận 67 5.2 Kiến nghị 67 TÀI LIỆU THAM KHẢO 68 v DANH MỤC BẢNG Bảng 2.1 Một số chất kháng sinh sinh từ xạ khuẩn có khả kiểm sốt số tác nhân gây bệnh thực vật (Bhatti & cs, 2017) 18 Bảng 4.1 Đặc điểm hình thái chủng xạ khuẩn 34 Bảng 4.2 Đặc điểm nuôi cấy chủng xạ khuẩn môi trường khác 35 Bảng 4.3 Hình dạng bào tử chủng xạ khuẩn 42 Bảng 4.4 Khả đồng hóa nguồn cacbon chủng xạ khuẩn 44 Bảng 4.5 Khả đồng hóa nguồn nitơ chủng xạ khuẩn 46 Bảng 4.6 Kết dựng đường chuẩn IAA 47 Bảng 4.7 Kết dựng đồ thị đường chuẩn phosphate 50 Bảng 4.8 Hoạt tính kháng nấm chủng vi khuẩn với nấm Sclerotium rolfsii gây bệnh lạc sau ngày 53 vi PHẦN V KẾT LUẬN VÀ KIẾN NGHỊ 5.1 Kết luận Tất chủng xạ khuẩn thí nghiệm có khả sinh IAA phân giải phosphate khó tan Hàm lượng IAA sinh tổng hợp chủng xạ khuẩn dao động từ 12,31 - 38,49 µg/ml chủng V29 có khả sinh cao Hoạt độ phân giải phosphate khó tan chủng dao động khoảng 2,79 - 23,53mg/l chủng V68 có khả phân giải phosphate mạnh Có chủng số chủng xạ khuẩn có khả đối kháng với nấm Sclerotium rolfsii gây bệnh thối gốc mốc trắng lạc Trong chủng V29 có khả đối kháng cao với phần trăm đối kháng 42,62 ± 0,98% đánh giá khả đối kháng phương pháp đồng nuôi cấy Ngồi ra, có tổng số chủng xạ có khả sinh siderophore hầu hết chủng xạ khuẩn dương tính với phản ứng sinh hóa catalase, MR, VP, sinh enzyme protease, cellulase, chitinase Hai chủng xạ khuẩn có khả tổng hợp IAA, phân giải phosphate khó tan, sinh siderophore, đối kháng nấm Sclerotium rolfsii, có khả sinh enzyme protease, cellulase, chitinase cao V68, V29 lựa chọn để tiến hành khảo sát khả kích thích đến nảy mầm hạt sinh trưởng Kết cho thấy nồng độ pha loãng thấp 1% 10% dịch ni cấy kích thích nảy mầm hạt dịch nuôi cấy chủng xạ khuẩn không ảnh hưởng xấu đến phát triển thân mầm mà ngược lại chúng làm cho thân mầm phát triển dài hơn, kích thước thân mầm đạt từ 23,69 - 26,66mm cao so với đối chứng đạt 21,06mm 5.2 Kiến nghị Nghiên cứu thêm điều kiện môi trường để chủng xạ khuẩn có hoạt tính kích thích sinh trưởng thực vật tốt Ứng dụng khả sinh chất kích thích sinh trưởng thực vật chủng xạ khuẩn để tạo loại phân bón sinh học chế phẩm sinh học 67 TÀI LIỆU THAM KHẢO Tài Liệu Tiếng Việt Trịnh Thới An (2014) Phân lập tuyển chọn chủng xạ khuẩn có khả sinh chất kháng nấm Pythium sp Tạp chí Khoa học ĐHSP TPHCM tr 113-121 Nguyễn Minh Chơn, 2004 Giáo trình chất điều hịa sinh trưởng thực vật, Trường Đại học Cần Thơ Nguyễn Lân Dũng (2010) Vi sinh vật học NXB Giáo dục Việt Nam Nguyễn Lân Dũng, Phạm Văn Ty, Nguyễn Đình Quyến (1998) Vi sinh vật học Nhà xuất Giáo dục Nguyễn Lân Dũng, Phạm Thị Trân Châu, Nguyễn Thanh Hiền, Lê Đình Lương, Đồn Xn Mượu, Phạm Văn Ty (1978), Một số phương pháp nghiên cứu vi sinh vật học - tập 3, NXB KH KT, Hà Nội Nguyễn Lân Dũng, Phạm Thị Trân Châu (1978) Một số phương pháp nghiên cứu vi sinh vật học - Tập III Nhà xuất Khoa học Kỹ thuật, Hà Nội Egorov N.X., Thực tập Vi sinh vật, NXB Mir, Maxcơva Nguyễn Lân Dũng dịch, NXB ĐH&THCN Hà Nôi, 1983 Đỗ Thu Hà (2004) Nghiên cứu xạ khuẩn sinh chất kháng sinh chống nấm phân lập từ đất Quảng Nam - Đà Nẵng Luận án tiến sĩ Khoa Học, ĐHSP Hà Nội Lê Thị Hiền, Đinh Văn Lợi, Vũ Thị Vân, Nguyễn Văn Giang (2014) “Phân lập tuyển chọn chủng xạ khuẩn (Streotomyces spp) đối kháng nấm bệnh cây” Tạp chí Khoa học Phát triển, 12(5), tr.656-664 10 Nguyễn Văn Hiếu, Nguyễn Phương Nhuệ, Vũ Thị Hạnh Nguyên, Phan Thị Hồng Thảo, Phạm Thanh Huyền, Phí Quyết Tiến, Lê Gia Hy (2013), “Nghiên cứu chủng xạ khuẩn HLD 3.16 có hoạt tính kháng khuẩn phân 68 lập từ vùng ven bờ biển Việt Nam”, Tạp chí Khoa học Cơng nghệ, 51(1), tr.29-41 11 Lê Thị Hoa, 1998 – Nghiên cứu khả sinh chất kich thích sinh trưởng thực vật (IAA) xạ khuẩn - luận án thạc sĩ, Hà Nội 12 Lê Gia Hy (1994), Nghiên cứu xạ khuẩn thuộc chi Streptomyces sinh chất kháng sinh chống nấm gây bệnh đạo ôn thối rễ phân lập Việt Nam, Luận án phó tiến sĩ khoa học Sinh học, viện CNSH, Trung tâm KHTN CN Quốc Gia, Hà Nội 13 Lan, N T P., Ngân, V T T., Lộc, T P., & Anh, T H (2015) Tuyển chọn chủng xạ khuẩn (Streptomyces spp.) đối kháng nấm Pyricularia grisea gây bệnh đạo ơn hại lúa Tạp chí Khoa học Phát triển, 13(8), 1442-1451 14 Chu Văn Mẫn (2011), Tin học Công nghệ Sinh học, NXB Giáo Dục Việt Nam, Hà Nội 15 Nguyễn Hoài Nam, Nguyễn Minh Trang, Đặng Phú Hoàng, Nguyễn Văn Hùng, Nguyễn Xuân Cảnh, Tống Văn Hải, Nguyễn Đức Bách (2015) Sàng lọc xạ khuẩn Actinimyces có khả đối kháng với nấm gây bệnh khơ vằn Rhzoctonia solani Tạp chí Khoa học Phát triển 2015, 13 (8): tr.1474-1480 16 Đinh Trường Sơn, Nguyễn Thị Thanh Mai, Nguyễn Thị Thu, Nguyễn Thanh Hải, Trần Thị Đào, Ngô Thị Vân Anh, Nguyễn Xuân Cảnh (2022) Nghiên cứu đặc tính đối kháng với nấm Fusarium oxysporum gây bệnh chuối chủng xạ khuẩn Streptomyces sp VNUA27 Tạp chí Khoa học Nơng nghiệp Việt Nam 2022, 20(8): 1042-1053 17 Thái, Đ H., & Tường, L M (2016) Khảo sát khả đối kháng xạ khuẩn nấm Phytophthora sp gây bệnh cháy lá, thối thân sen Tạp chí Khoa học Trường Đại học Cần Thơ, (CĐ Nông nghiệp 2016), 20-27 69 18 Phan Thị Hồng Thảo , Nguyễn Vũ Mai Linh, Nguyễn Văn Hiếu, Nguyễn Thị Hồng Liên (2016) “Đặc điểm sinh học khả sinh tổng hợp chất kích thích sinh trưởng thực vật xạ khuẩn nội sinh Streptomyces hebeiensis TQR8-7”, Tạp chí khoa học cơng nghệ, 54(4A) tr.31-39 19 Toản P V (2013) Nghiên cứu phát triển phân bón vi sinh vật Việt Nam Hội thảo quốc gia nâng cao hiệu quản lý sử dụng phân bón Việt Nam 592-608 20 Phạm Thu Trang, Lê Gia Hy, Phí Quyết Tiến, Hồ Tuyên, Nguyễn Văn Giang, Nguyễn Phương Nhuệ (2014) “Đặc điểm sinh học chủng xạ khuẩn biển VD111 sinh chất kháng khuẩn”, Tạp chí Khoa học Phát triển, 12(8), tr.1258-1265 21 Trần Thị Trinh, Trần Thị Huế, Chu Đức Hà, Phạm Phương Thu, Nguyễn Văn Giang (2018) “Khảo sát số đặc tính sinh học chủng xạ khuẩn biển có khả kháng vi khuẩn gây bệnh” Tạp chí Khoa học Cơng nghệ Việt Nam, 60(10), tr.13-17 22 TCVN 8565:2010 Phân bón vi sinh vật - Phương pháp xác định hoạt tính phân giải phốt phát vi sinh vật 23 TCVN 10784:2015 Vi sinh vật - Xác định khả sinh tổng hợp axit 3indol-axetic (IAA) Tài liệu Tiếng Anh Abd-Alla M H, El-Sayed E S A., Rasmey A H M - Indole-3-acetic acid (IAA) production by Streptomyces atrovirens isolated from rhizospheric soil in Egypt, J Biol Earth Sci (2) (2013) 182-193 Abo-Zaid G., Abdelkhalek A., Matar S., Darwish M & Abdel-Gayed M (2021) Application of bio-friendly formulations of chitinase-producing Streptomyces cellulosae Actino 48 for controlling peanut soil-borne diseases caused by Sclerotium rolfsii Journal of Fungi 7(3): 167 70 Adhilakshmi, M., Latha, P., Paranidharan, V., Balachandar, D., Ganesamurthy, K., & Velazhahan, R (2014) Biological control of stem rot of groundnut (Arachis hypogaea L.) caused by Sclerotium rolfsii Sacc with actinomycetes Archives of Phytopathology and Plant Protection, 47(3), 298-311 Ahemad, M., Kibret, M., 2014 Mechanisms and applications of plant growth promoting rhizobacteria: current perspective J King Saud Univ Sci 26, 1–20 Ahmad, F.; Ahmad, A.I.; Khan, M.S (2008) Screening of free-living rhizospheric bacteria for their multiple plant growth promoting activities Microbiol Res 163: 173-181 Anandan, R., Dharumadurai, D., & Manogaran, G P (2016) An introduction to actinobacteria In Actinobacteria-Basics and Biotechnological Applications: IntechOpen Asma Absar Bhatti, Shamsul Haq, Rouf Ahmad Bha (2017) Actinomycetes benefaction role in soil and plant health Microbial Pathogenesis 111: 458-467 Attimarad S.L., et al (2012), “Screening, isolation and purification of antibacterial agents from marine actinomycetes”, Int Cur Pharm J., 1(12), pp.394-402 Baskaran, B., & Muthukumarasamy, A (2015) Enhanced control strategy for lab scale fermentation process of actinomycetes sp and its antibacterial activity Paper presented at the 2015 Online International Conference on Green Engineering and Technologies (IC-GET) 10 Barka E A., Vatsa P., Sanchez L., Gaveau-Vaillant N., Jacquard C., Klenk H.-P., Clément C., Ouhdouch Y & van Wezel G P (2016) Taxonomy, physiology, and natural products of Actinobacteria Microbiology and Molecular Biology Reviews 80(1): 1-43 71 11 Bello C., Gomez R., Evaluacion de mecanismos directos relacionados la promocion de crecimiento vegetal por parte de actinomicetos nativos colombianos y de su interaccion Glomus sp [thesis], Pontifificia Universidad Javeriana, Bogota D.C, 2009, 168 pp 12 Bergey's (1989), Manual of Systematic Bacteriology, Vol Williams Wilkins 13 Bhattacharya D., Nagpure A & Gupta R K (2007) Bacterial chitinases: properties and potential Critical reviews in biotechnology 27(1): 21-28 14 Bhattacharyya P.N., Jha D.K (2012) Plant growth-promoting rhizobacteria (PGPR): emergence in agriculture World J Microbiol Biotechnol 28: 1327-1350 15 Boukaew S., Chuenchit S & Petcharat V (2011) Evaluation of Streptomyces spp for biological control of Sclerotium root and stem rot and Ralstonia wilt of chili pepper BioControl 56(3): 365-374 16 Britschgi T B & Giovannoni S J (1991) Phylogenetic analysis of a natural marine bacterioplankton population by rRNA gene cloning and sequencing Applied and Environmental Microbiology 57(6): 1707-1713 17 Buchanan R E & Gibbons N E (1974) Bergey’s manual of determinative bacteriology, eighth edition the Williams & Wilkins company/ Baltimore 18 Buchanan, Charles & Buchanan, Norma & Carty, Susan & Kuo, ChungMing & Lambert, Juanelle & Malcolm, Michael & Posey-Dowty, Jessica & Watterson, Thelma & Wood, Matthew & Lindblad, Margaretha (2015) Cellulose interpolymers and method of oxidation 19 Campos E V., Proenỗa P L., Oliveira J L., Bakshi M., Abhilash P & Fraceto L F (2019) Use of botanical insecticides for sustainable agriculture: Future perspectives Ecological Indicators 105: 483-495 72 20 Chaudhary, H S., Soni, B., Shrivastava, A R., & Shrivastava, S (2013) Diversity and versatility of actinomycetes and its role in antibiotic production Journal of Applied Pharmaceutical Science, 3(8), S83-S94 21 Costacurta A., and J Vanderleyden - Synthesis of phytohormones by plant-associated bacteria, Crit Rev Microbiol 21 (1995) 1-18 22 Datta C., Basu P - lndole acetic acid production by a Rhizobium species from root nodules of a leguminous shrub, Cajanus cajan, Microbiol Res 155 (2) (2000) 123 – 127 23 De Schrijver A., De Mot R (1999) A subfamily of MalT-related ATPdependent regulators in the LuxR family, Microbiology 145: 1287-1288 24 Dhanasekaran, D., Panneerselvam, A., & Thajuddin, N (2012) Applications of actinobacterial fungicides in agriculture and medicine: INTECH Open Access Publisher 25 Doumbou, C.; Hamby, S.M.; Crawford, D (2001) Actinomycetes, promising tools to control plant diseases and to promote plant growth Phytoprotection 82(3): 85-102 26 El Hussein, A A., Alhasan, R E., Abdelwahab, S A., & El Siddig, M A (2014) Isolation and identification of Streptomyces rochei strain active against Phytopathogenic Fungi Br Microbiol Res J, 4(10), 1057-1068 27 Franco, M 2008 Evaluación de caracteres PGPR en Actinomicetos e interacciones de estas rizobacterias hongos formadores de micorrizas Tesis de doctorado, Universidad de Granada, Granada España 261 pp 28 Gangwar M., Dogra S., Gupta U P., Kharwar R N - Diversity and biopotential of endophytic actinomycetes from three medicinal plants in India, African Journal of Microbiology Research (2) (2014) 184-191 29 Glickmann, E., & Dessaux, Y (1995) A critical examination of the specificity of the Salkowski reagent for indolic compounds produced by 73 phytopathogenic bacteria Applied and environmental microbiology, 61(2), 793-796 30 Goodfellow M., Williams S.T (1983) Ecology of actinomycetes, Annu Rev Microbiol 37: 189-216 31 Gopalakrishnan, S., S Pande, M Sharma, P Humayun, B.K Kiran, D Sandeep, M.S Vidya, K Deepthi and O Rupela (2011) Evaluation of actinomycete isolates obtained from herbal vermicompost for the biological control of Fusarium wilt of chickpea Crop Protection 30: 10701078 32 Gopalakrishnan, s., s Vadlamudi, p Bandikinda, A Sathya, R Vijayab harathi, o Rupela, B Kudapa, K Katta and R K Varshney (2014) Evaluation of Streptomyces strains isolated from herbal vermicompost for their plant growth-promotion traits in rice MicrobiologyResearch, 169: 40 - 48 33 Hamdali, H.; Bouizgarne, B.; Hafidi, M.; Lebrihi, A.; Virolle, M.J.; Ouhdouch, Y (2008) Screening for rock phosphate solubilizing Actinomycetes from Moroccan phosphate mines Appl Soil Ecol 38, 12–19 34 Hawaladar S., Nandan M., Vinaykumar H., Hadimani R H., Hiremath S., Venkataravanappa V., Basha C & Reddy C (2022) Morphological and molecular characterization of Sclerotium rolfsii associated with stem rot disease of groundnut (Arachis hypogaea L.) Indian Phytopathology 75(1): 25-36 35 Hider RC, Kong X (2010) "Chemistry and biology of siderophores" Natural Product Reports 27 (5): 637–57 36 Horbach, R., Navarro-Quesada, A R., Knogge, W., & Deising, H B (2011) When and how to kill a plant cell: infection strategies of plant pathogenic fungi Journal of plant physiology, 168(1), 51-62 74 37 Hoster F., Schmitz J E & Daniel R (2005) Enrichment of chitinolytic microorganisms: isolation and characterization of a chitinase exhibiting antifungal activity against phytopathogenic fungi from a novel Streptomyces strain Applied Microbiology and Biotechnology 66(4): 434442 38 Inomata T.,Eguchi H., Matsumoto K., Funahashi Y., Ozawa T., Masuda H (2007) Adsorption of microorganisms onto an artififitial siderophoremodifified Au substrate, Biosens Bioelectron 23 751-755 39 Jendrossek V., Kugler W., Erdlenbruch B., Eibl H., Lang F., Lakomek M (2001) Erucylphosphocholine-induced apoptosis in chemoresistant glioblastoma cell lines: involvement of caspase activation and mitochondrial alterations Anticancer Res 21: 3389-3396 40 Johnsen A.R., Winding A., Karlson U., Roslev P (2002), Linking of microorganisms to phenanthrene metabolism in soil by analysis of labaled cell lipids, Appl Environ Microbiol 68: 6106-6113 41 Kandpal K C., Jain D A., Kumar U., Tripathi R., Kumar T S - Isolation and screening of endophytic actinomycetes producing antibacterial compound from Citrus aurantifolia Fruit, Eur J Exp Biol (5) (2012) 1733-1737 42 Kator, L., Hosea, Z Y., & Oche, O D (2015) Sclerotium rolfsii: Causative organism of southern blight, stem rot, white mold and sclerotia rot disease Annals of Biological Research, 6(11), 78-89 43 Kenza Boubekri, Abdoulaye Soumare, Ilham Mardad, Karim Lyamlouli, Mohamed Hafifidi, Yedir Ouhdouch and Lamfeddal Kouisni (2021) The Screening of Potassium- and Phosphate Solubilizing Actinobacteria and the Assessment of Their Ability to Promote Wheat Growth Parameters Microorganisms (470) 75 44 Keswanit J and Whitman W.B (2001), “Relationship of 16S rRNA sequence similarity to DNA hybridization in prokaryotes”, International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, 51, 667 – 678 45 Khamna S., Yokota A., Peperdy J., Lumyong S - Indole-3-acetic acid production by Streptomyces sp isolated from some Thai medicinal plant rhizosphere soils, Eur Asian J Biol Sci (2010) 23-32 46 Khan A A., Jilani G., Akhtar M S., Naqvi S M S & Rasheed M (2009) Phosphorus solubilizing bacteria: occurrence, mechanisms and their role in crop production J agric biol sci 1(1): 48-58 47 Khushboo, N K Screening of Endophytic Actinomycetes for their Plant Growth Promoting Activity and for Biocontrol in Chilli (Capsicum annum) against Sclerotium Rolfsii 48 Kim, J., Rees, D.C., 1994 Nitrogenase and biological nitrogen fixation Biochemistry 33, 389–397 49 Kitani S., Miyamoto K.T., Takamatsu S., Herawati E , Iguchi H., Nishitomi K (2011) Avenolide, a Streptomyces hormone controlling antibiotic production in Streptomyces avermitilis, Proc Natl Acad Sci 108: 16410-16415 50 Korenblum E.I , WeidV, Santos A.L.S (2005) Production of antimicrobial substances by Bacillus subtilis LFE-1, B fifirmus H2O-1 and B licheniformis T6-5 isolated from an oil reservoir in Brazil, J Appl Microbio 98 667-675 51 Kunova A., Bonaldi M., Saracchi M., Pizzatti C., Chen X & Cortesi P (2016) Selection of Streptomyces against soil borne fungal pathogens by a standardized dual culture assay and evaluation of their effects on seed germination and plant growth BMC microbiology 16(1): 1-11 52 Lee, L.-H., Zainal, N., Azman, A.-S., Eng, S.-K., Ab Mutalib, N.-S., Yin, W.-F., & Chan, K.-G (2014) Streptomyces pluripotens sp nov., a 76 bacteriocin-producing streptomycete that inhibits meticillin-resistant Staphylococcus aureus International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, 64(Pt_9), 3297-3306 53 Lekshmi M., Jayadev A & Navamani S (2014) Isolation and screening of actinomycete from marine samples for enzyme production 54 Liang J., Xu Z., Liu T., Lin J & Cen P (2008) Effects of cultivation conditions on the production of natamycin with Streptomyces gilvosporeus LK-196 Enzyme and microbial technology 42(2): 145-150 55 Manivasagan, P., Venkatesan, J., Sivakumar, K., & Kim, S.-K (2018) Marine actinobacterial metabolites: Current status and future perspectives (Retraction Article, vol 168, pg 311, 2013)(Retraction of Vol 6, Pg 311, 2013) In: ELSEVIER GMBH, URBAN & FISCHER VERLAG OFFICE JENA, PO BOX 100537, 07705 JENA … 56 Madigan MT, Martinko JM, Parker J and Brock TD Biology of microorganisms (Vol 985) 1987, Prentice Hall, Upper Saddle River, NJ 57 Mason M.G., Ball A.S., Reeder B.J., Silkstone G., Nicholls P., Wilson M.T (2001).Extracellular heme peroxidases in actinomycetes: a case of mistaken identity, Appl Environ Microbiol 67: 4512-4519 58 Masoomi-Aladizgeh F., Jabbari L., Nekouei R K & Aalami A (2016) A simple and rapid system for DNA and RNA isolation from diverse plants using handmade kit 59 Matsukawa E., Nakagawa Y., Iimura Y., Hayakawa M - Stimulatory effect of indole-3- acetic acid on aerial mycelium formation and antibiotic production in Streptomyces spp., Actinomycetologica 21 (2007) 32-39 60 McDevitt, S (2009) Methyl red and voges-proskauer test protocols American Society for Microbiology, 77 61 Miethke M, Marahiel MA (2007) Siderophore-based iron acquisition and pathogen control Microbiology and Molecular Biology Reviews 71 (3): 413–51 62 Miyadoh S., Tsuchizaki N., Ishikawa J & Hotta K (1997) Digital Atlas of Actinomycetes Tokyo, Japan, Society for Actinomycetes Japan Akasura Publication 244 63 Mohite B - Isolation and characterization of indole acetic acid (IAA) producing bacteria from rhizospheric soil and its effect on plant growth, J Soil Sci Plant Nutr 13 (3) (2013) 638-649 64 Nafis, A.; Raklami, A.; Bechtaoui, N.; El Khalloufi, F.; El Alaoui, A.; Glick, B.R.; Hafidi, M.; Kouisni, L.; Ouhdouch, Y.; Hassani, L (2019) Actinobacteria from Extreme Niches in Morocco and Their Plant GrowthPromoting Potentials Diversity , 11, 139 65 Newman D.J., Cragg G.M (2016), “Natural products as sources of new drugs from 1981 to 2014”, J Nat Prod., 79(3), pp.629-661 66 Paul R Jensen, Tracy J Mincer, Philip G Williams, William Fenical (2005), “Marine actinomycete diversity and natural product discovery”, Antonie van Leeuwenhoek, 43-48 67 Paul R Jensen, Dwight R., and Fenical W (1991), “Distribution of Actinomycetes in Near-Shore Tropical Marine Sediments”, Applied and Environmental Microbiology, Vol 57, No 4, 1102-1108 68 Pattern C L., Glick B R - Role of Pseudomanas putida indo lactic acid in development of the host plant root system, Appl Environ Microbiol 68 (2002) 3795-3801 69 Qin, Z., Peng, K., Zhou, X., Liang, R., Zhou, Q., Chen, H., Deng, Z (1994) Development of a gene cloning system for Streptomyces hygroscopicus subsp yingchengensis, a producer of three useful 78 antifungal compounds, by elimination of three barriers to DNA transfer Journal of bacteriology, 176(7), 2090-2095 70 Sambrook J and Rusell W.D (2001), Molecular cloning – Laboratory manual, vol 2, 3nd, pp 8.4 – 8.25, Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, Newyork 71 Schwyn B & Neilands J (1987) Universal chemical assay for the detection and determination of siderophores Analytical biochemistry 160(1): 47-56 72 Sharma P., Jha A á., Dubey R S & Pessaraklim R O S (2012) Oxidative Damage and Antioxidative Defense Mechanism in Plants under Stressful Conditions Journal of Botany 2012: 1-26 73 Sharma M., Gat Y., Arya S., Kumar V., Panghal A & Kumar A (2019) A review on microbial alkaline protease: an essential tool for various industrial approaches Industrial Biotechnology 15(2): 69-78 74 Shirling, E T., & Gottlieb, D (1966) Methods for characterization of Streptomyces species International journal of systematic bacteriology, 16(3), 313-340 75 Shekhar S K., Godheja J., Modi D & Peter J K (2014) Growth potential assessment of Actinomycetes isolated from petroleum contaminated soil Journal of Bioremediation & Biodegredation 5(7): 76 Shutsrirung A., Chromkaew Y., Pathom-Aree W., Choonluchanon S., Boonkerd N - Diversity of endophytic actinomycetes in mandarin grown in northern Thailand, their phytohormone production potential and plant growth promoting activity, Soil Sci Plant Nutr 59 (3) (2013) 322–330 77 Singh D., Sharma A & Saini G K (2013) Biochemical and molecular characterisation of the bacterial endophytes from native sugarcane varieties of Himalayan region Biotech 3(3): 205-212 79 78 Singh S., Sharma H & Sahoo D (2019) Actinomycetes from soil of Lachung, a pristine high altitude region of Sikkim Himalaya, their antimicrobial potentiality and production of industrially important enzymes Advances in Microbiology 9(08): 750 79 Singh S., Nain L (2014) Microorganisms in the conversion of agricultural wastes to compost, Proc Indian Natn Sci Acad 80 473-481 80 Sirisha, B., Haritha, R., Jaganmohan, Y., Sivakumar, K., & Ramana, T (2013) Bioactive compounds from marine actinomycetes isolated from the sediments of Bay of Bengal International Journal of Pharmaceutical, Chemical and Biological Sciences, 3(2), 256-264 81 Sneath P.H & Sokal R.R (1973) Number classification The principles and implementation of classification types 82 Soares A C F., Sousa C d S., Garrido M d S., Perez J O & Almeida N S d (2006) Soil streptomycetes with in vitro activity against the yam pathogens Curvularia eragrostides and Colletotrichum gloeosporioides Brazilian Journal of Microbiology 37: 456-461 83 Subhashini, D., & Kumar, A (2004) Phosphate solubilising Streptomyces spp obtained from the rhizosphere of Ceriops decandra of Corangi mangroves 84 Sudhakara Rao, A., Donald, D., & Ramachandra Reddy, K (1997) Effect of temperature on rust and leaf spot disease development in groundnut Journal of Oilseeds Research, 14, 249-255 85 Suginta W, Robertson PAW, Austin B, Fry SC & Fothergill Gilmore LA (2000) Chitinases from Vibrio: activity screening and purification of Chi A from Vibrio carchariae J Appl Microbiol 89, 76-84 86 Roosenberg JM, Lin YM, Lu Y, Miller MJ (2000) "Studies and syntheses of siderophores, microbial iron chelators, and analogs as potential drug delivery agents" Current Medicinal Chemistry 7(2): 159–97 80 87 Resslar, P (1980) A review of the nomenclature of the genus Arachis L Euphytica, 29(3), 813-817 88 Tresner H D., E.J.B (1963) System of Color Wheels for Streptomycete Taxonomy Appl Microbiol., 11: 89 Tu C & Kimbrough J (1978) Systematics and phylogeny of fungi in the Rhizoctonia complex Botanical Gazette 139(4): 454-466 90 Wibowo, R H., Sipriyadi, S., Mubarik, N R., Rusmana, I., & Suhartono, M T (2020) Isolation and Screening of Soil Chitinolytic Actinobacteria as the Anti-Fungal Producer of Plant Pathogens Elkawnie: Journal of Islamic Science and Technology, 6(2), 273-286 91 Williams, S T., Goodfellow, M., Alderson, G., Wellington, E M H., Sneath, P H A & Sackin, M J (1983) Numerical classification of Streptomyces and related genera J Gen Microbiol 129, 1743–1813 92 Zhao Y (2010) Auxin biosynthesis and its role in plant development, Annu Rev Plant Biol 61: 49-64 93 Živković S., Stojanović S., Ivanović Ž., Gavrilović V., Popović T & Balaž J (2010) Screening of antagonistic activity of microorganisms against Colletotrichum acutatum and Colletotrichum gloeosporioides Archives of Biological Sciences 62(3): 611-623 81