Luận án thành phần loài, phân bố, đặc điểm sinh thái và sự nhạy cảm của véc tơ sốt rét với các hóa chất sử dụng trong phòng chống sốt rét ở miền trung tây nguyên (2014 2017

MỤC LỤC ĐẶT VẤN ĐỀ CHƯƠNG 1: TỔNG QUAN TÀI LIỆU 1.1 Thành Phần Loài Và Phân Bố Muỗi Anopheles 1.1.1 Thành phần loài phân bố muỗi Anopheles giới 1.1.2 Thành phần loài phân bố muỗi Anopheles Việt Nam 1.2 Sinh thái, tập tính, vai trị truyền bệnh muỗi Anopheles 1.2.1 Sinh thái, tập tính, vai trị truyền bệnh muỗi Anopheles giới 1.2.2 Sinh thái, tập tính vai trị truyền bệnh Anopheles Việt Nam 12 1.3 Phòng chống véc tơ sốt rét 15 1.3.1 Phòng chống véc tơ sốt rét giới 15 1.3.2 Phòng chống véc tơ sốt rét Việt Nam 16 1.4 Kháng hóa chất diệt trùng véc tơ sốt rét 19 1.4.1 Định nghĩa kháng hóa chất 19 1.4.2 Cơ sở sinh học tính kháng hóa chất diệt trùng 20 1.4.3 Một số chế kháng côn trùng 20 1.5 Tình hình kháng hóa chất diệt trùng véc tơ sốt rét 21 1.5.1 Tình hình kháng hóa chất diệt trùng véc tơ sốt rét giới 21 1.5.2 Tình hình kháng hóa chất diệt trùng véc tơ sốt rét Việt Nam 25 1.6 Tình hình sốt rét miền Trung - Tây Nguyên 26 CHƯƠNG 2: ĐỐI TƯỢNG VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU 29 2.1 Đối tượng, thời gian, địa điểm nghiên cứu 29 2.1.1 Đối tượng nghiên cứu 29 2.1.2 Thời gian nghiên cứu 29 2.1.3 Địa điểm nghiên cứu 30 2.2 Vật liệu nghiên cứu 35 2.3 Phạm vi nghiên cứu 36 2.4 Phương pháp nghiên cứu 36 2.4.1 Thiết kế nghiên cứu 36 2.4.2 Các kỹ thuật sử dụng nghiên cứu 37 2.4.3 Các số đánh giá 43 2.4.4 Xử lý phân tích số liệu 44 2.4.5 Đạo đức nghiên cứu 45 CHƯƠNG 3: KẾT QUẢ NGHIÊN CỨU 46 3.1 Thành phần loài Anopheles, phân bố, đặc điểm sinh thái vai trò truyền bệnh véc tơ sốt rét miền Trung-Tây Nguyên 46 3.1.1 Thành phần loài muỗi Anopheles phân bố véc tơ điểm nghiên cứu miền Trung-Tây nguyên 46 3.1.2 Một số đặc điểm sinh thái học vai trò truyền bệnh véc tơ sốt rét điểm nghiên cứu miền Trung - Tây Nguyên 52 3.1.3 Vai trò truyền bệnh véc tơ sốt rét 02 điểm nghiên cứu có sốt rét lưu hành nặng khu vực miền Trung - Tây Nguyên 76 3.2 Đánh giá nhạy cảm véc tơ sốt rét với hóa chất sử dụng phòng chống sốt rét miền Trung -Tây Nguyên 80 3.2.1 Nhạy cảm véc tơ sốt rét với hóa chất huyện Vân Canh, tỉnh Bình Định 80 3.2.2 Nhạy cảm véc tơ sốt rét với hóa chất Khánh Vĩnh-Khánh Hòa 84 3.2.3 Nhạy cảm véc tơ sốt rét với hóa chất huyện Krơng Pa - Gia Lai 88 3.2.4 Nhạy cảm véc tơ sốt rét với hóa chất huyện Bắc Ái - Ninh Thuận 89 3.2.5 Nhạy cảm véc tơ sốt rét với hóa chất huyện Krông - Na, tỉnh Đắk Lắk 92 3.2.6 Nhạy cảm véc tơ sốt rét với hóa chất huyện Ngân Thủy Quảng Bình 93 CHƯƠNG 4: BÀN LUẬN 95 4.1 Thành phần loài Anopheles, phân bố, đặc điểm sinh thái vai trò truyền bệnh véc tơ sốt rét miền Trung-Tây Nguyên 95 4.1.1 Thành phần loài muỗi Anopheles điểm nghiên cứu miền Trung - Tây nguyên 95 4.1.2 Phân bố véc tơ sốt rét điểm nghiên cứu miền Trung - Tây nguyên 97 4.1.3 Tập tính vai trị truyền bệnh véc tơ sốt rét điểm nghiên cứu miền Trung-Tây Nguyên 103 4.2 Sự nhạy cảm véc tơ sốt rét với hóa chất sử dụng phòng chống sốt rét miền Trung - Tây Nguyên 114 4.2.1 Độ nhạy cảm An minimus với hóa chất diệt trùng 114 4.2.2 Độ nhạy cảm An dirus với hóa chất diệt trùng 116 4.2.3 Độ nhạy cảm véc tơ phụ với hóa chất diệt trùng 116 KẾT LUẬN 119 KIẾN NGHỊ 121 TÍNH KHOA HỌC VÀ TÍNH MỚI CỦA ĐỀ TÀI CÁC CƠNG TRÌNH KHOA HỌC LIÊN QUAN ĐẾN NỘI DUNG CỦA LUẬN ÁN ĐÃ ĐƯỢC CÔNG BỐ TÀI LIỆU THAM KHẢO PHỤ LỤC DANH MỤC BẢNG Bảng 3.1 Thành phần loài Anopheles số điểm khu vực 46 Bảng 3.2 Số lượng tỷ lệ % số loài Anopheles 48 Bảng 3.3 Phân bố véc tơ sốt rét theo khu vực 49 Bảng 3.4 Phân bố véc tơ sốt rét theo sinh cảnh khu vực nghiên cứu 50 Bảng 3.5 Phân bố véc tơ sốt rét theo khu vực 51 Bảng 3.6 Mật độ véc tơ sốt rét qua phương pháp điều tra xã Ngân Thủy, huyện Lệ Thủy, tỉnh Quảng Bình 52 Bảng 3.7 Hoạt động đốt người nhà nhà Anopheles đêm xã Ngân Thủy, tỉnh Quảng Bình 53 Bảng 3.8 So sánh hoạt động đốt người muỗi Anopheles 54 Bảng 3.9 Mật độ véc tơ sốt rét qua phương pháp 54 Bảng 3.10 Hoạt động đốt người nhà nhà véc tơ sốt rét 56 Bảng 3.11 So sánh hoạt động đốt người véc tơ SR đêm xã Canh Hòa, huyện Vân Canh, tỉnh Bình Định 57 Bảng 3.12 Mật độ véc tơ sốt rét qua phương pháp điều tra xã Phước Thành - Ninh Thuận 57 Bảng 3.13 Hoạt động đốt người nhà nhà véc tơ sốt rét 58 Bảng 3.14 So sánh hoạt động đốt người véc tơ An dirus đêm xã Phước Thành, Bác Ái - Ninh Thuận 58 Bảng 3.15 Mật độ véc tơ sốt rét thu qua phương pháp điều tra Easo, Eaka, tỉnh Đắk Lắk 59 Bảng 3.16 Mật độ trú đậu véc tơ SR nhà rẫy huyện Khánh Vĩnh 60 Bảng 3.17 Mật độ trú đậu véc tơ nhà rẫy xã Khánh Phú, 61 Bảng 3.18 So sánh mật độ véc tơ SR trú đậu vách vách nhà nhà rẫy xã Khánh Phú, huyện Khánh Vĩnh 62 Bảng 3.19 Mật độ trú đậu véc tơ sốt rét 62 Bảng 3.20 So sánh mật độ véc tơ SR trú đậu vách vách nhà nhà rẫy xã Sơn Thái, huyện Khánh Vĩnh 62 Bảng 3.21 Mật độ đốt người trong, nhà rẫy 63 Bảng 3.22 Mật độ đốt người trong, nhà rẫy 64 Bảng 3.23 So sánh mật độ véc tơ sốt rét đốt người 64 Bảng 3.24 Mật độ đốt người véc tơ nhà rẫy 65 Bảng 3.25 So sánh mật độ véc tơ SR đốt người nhà nhà nhà rẫy xã Sơn Thái, huyện Khánh Vĩnh 65 Bảng 3.26 Hoạt động đốt người đêm véc tơ sốt rét 66 Bảng 3.27 Thành phần tỷ lệ bọ gậy Anopheles Khánh Vĩnh 67 Bảng 3.28 Mật độ véc tơ trú đậu đốt người nhà rẫy huyện Krông Pa 67 Bảng 3.29 Mật độ véc tơ trú đậu đốt người nhà rẫy Ia Mlah 68 Bảng 3.30 Mật độ véc tơ trú đậu vách nhà rẫy xã Chư R Căm 69 Bảng 3.31 Mật độ véc tơ sốt rét đốt người 69 Bảng 3.32 So sánh mật độ véc tơ SR đốt người 70 Bảng 3.33 Mật độ muỗi đốt người nhà rẫy 70 Bảng 3.34 So sánh mật độ véc tơ sốt rét đốt người nhà nhà nhà rẫy xã Ia Mlah huyện Krông Pa, Gia Lai 71 Bảng 3.35 Mật độ muỗi đốt người nhà rẫy véc tơ sốt rét 71 Bảng 3.36 So sánh mật độ muỗi đốt người nhà nhà nhà 72 Bảng 3.37 Mật độ véc tơ sốt rét đốt người đêm nhà rẫy Ia Mlah 72 Bảng 3.38 Mật độ đốt người đêm véc tơ sốt rét nhà rẫy 73 Bảng 3.39 Thành phần tỷ lệ bọ gậy Anopheles nhà rẫy Krông Pa 74 Bảng 3.40 So sánh số lượng bọ gậy thủy vực khu vực nhà rẫy Krông Pa 75 Bảng 3.41 Tuổi thọ trung bình quần thể véc tơ 76 Bảng 3.42 Tuổi thọ trung bình quần thể véc tơ sốt rét 76 Bảng 3.43 Số lượng muỗi nhiễm ký sinh trùng sốt rét 77 Bảng 3.44 Tỷ lệ muỗi nhiễm KSTSR khu vực nhà rẫy - Khánh Vĩnh 78 Bảng 3.45 Tỷ lệ muỗi nhiễm ký sinh trùng sốt rét 79 Bảng 3.46 Chỉ số lan truyền véc tơ điểm nghiên cứu 80 Bảng 3.47 Nhạy cảm An minimus với lambda - cyhalothrin 81 Bảng 3.48 Nhạy cảm An aconitus với alpha - cypermethrin 81 Bảng 3.49 Nhạy cảm An aconitus với lambda - cyhalothrin 82 Bảng 3.50 Nhạy cảm An maculatus với alpha - cypermethrin 83 Bảng 3.51 Nhạy cảm An maculatus với lambda - cyhalothrin 83 Bảng 3.52 Nhạy cảm An aconitus với lambda - cyhalothrin 84 Bảng 3.53 Nhạy cảm An aconitus với alpha - cypermethrin 85 Bảng 3.54 Nhạy cảm An maculatus với lambda - cyhalothrin 86 Bảng 3.55 Nhạy cảm An maculatus với alpha - cypermethrin 86 Bảng 3.56 Nhạy cảm An dirus với alpha - cypermethrin 87 Bảng 3.57 Nhạy cảm muỗi An maculatus 88 Bảng 3.58 Thử nhạy cảm An aconitus với alpha – cypermethrin 88 Bảng 3.59 Nhạy cảm An maculatus với alpha - cypermethrin 89 Bảng 3.60 Nhạy cảm An maculatus với lambda - cyhalothrin 90 Bảng 3.61 Nhạy cảm An dirus với lambda - cyhalothrin 91 Bảng 3.62 Nhạy cảm An aconitus với alpha - cypermethrin 92 Bảng 3.63 Nhạy cảm An maculatus với alpha-cypermethrin 93 DANH MỤC HÌNH Hình 1.1 Phân bố véc tơ sốt rét giới (Sinka, 2012) Hình 1.2 Tình hình kháng hóa chất véc tơ sốt rét 23 Hình 2.1 Sơ đồ địa điểm nghiên cứu 34 Hình 3.1 So sánh mật độ đốt người véc tơ sốt rét phương pháp mồi người nhà phương pháp mồi người ngồi nhà Vân CanhBình Định 56 Hình 3.2 Mật độ đốt người đêm véc tơ SR nhà rẫy huyện Khánh Vĩnh 66 Hình 3.3 Thời gian đốt người đêm véc tơ nhà rẫy Ia Mlah 73 Hình 3.4 Thời gian đốt người đêm véc tơ nhà rẫy Chư R Căm 74 Hình 3.5 Tỉ lệ % An aconitus ngã gục theo thời gian sau tiếp xúc hóa chất alpha - cypermethrin lambda - cyhalothrin 83 Hình 3.6 Tỉ lệ An maculatus ngã gục theo thời gian sau tiếp xúc hóa chất alpha - cypermethrin lambda - cyhalothrin 84 Hình 3.7 Tỉ lệ % An aconitus ngã gục sau tiếp xúc hóa chất alpha cypermethrin lambda - cyhalothrin 85 Hình 3.8 Tỉ lệ % An maculatus ngã gục theo thời gian sau tiếp xúc hóa chất alpha - cypermethrin lambda - cyhalothrin 87 Hình 3.9 Tỉ lệ % An maculatus An aconitus ngã gục theo thời gian sau tiếp xúc hóa chất alpha - cypermethrin 89 Hình 3.10 Tỉ lệ % An maculatus ngã gục theo thời gian sau tiếp xúc hóa chất alpha - cypermethrin lambda - cyhalothrin 91 Hình 3.11 Tỉ lệ % An dirus ngã gục theo thời gian sau tiếp xúc hóa chất lambda - cyhalothrin 92 Hình 3.12 Tỉ lệ % An aconitus ngã gục theo thời gian sau tiếp xúc hóa chất alpha - cypermethrin 93 Hình 3.13 Tỉ lệ % An maculatus ngã gục theo thời gian sau tiếp xúc hóa chất alpha – cypermethrin 94 ĐẶT VẤN ĐỀ Bệnh sốt rét (SR) bệnh truyền nhiễm nguy hiểm người, số loài ký sinh trùng thuộc giống Plasmodium gây ra; năm giới có hàng trăm triệu người mắc bệnh hàng trăm nghìn người chết SR Ký sinh trùng sốt rét (KSTSR) truyền từ người bệnh sang người lành loài muỗi thuộc giống Anopheles (An.) Bệnh SR phân bố giới từ 64 vĩ độ Bắc đến 32 vĩ độ Nam, đặc biệt nước thuộc Châu Phi, khu vực Nam Mỹ khu vực châu Á - Thái Bình Dương Theo báo cáo Tổ chức Y tế giới (WHO), năm 2015 [117] có khoảng 3,2 tỷ người sống vùng sốt rét lưu hành (SRLH), bệnh lan truyền 97 quốc gia vùng lãnh thổ, có khoảng 214 triệu ca mắc SR, 438.000 trường hợp tử vong Riêng khu vực Tây Thái Bình Dương, có 10 quốc gia có SRLH, với khoảng 870 triệu người nguy mắc SR, 60 triệu người sống vùng có tỷ lệ mắc SR >1/1.000 dân Đến nay, giới xác định có khoảng 420 lồi muỗi thuộc giống Anopheles, có khoảng 70 loài véc tơ sốt rét cho người điều kiện tự nhiên [21] Ở Việt Nam xác định khoảng 64 lồi Anopheles có 15 loài véc tơ sốt rét, với véc tơ sốt rét An dirus, An minimus An epiroticus [21] Việt Nam nước nằm vùng nhiệt đới, gió mùa có nhiều điều kiện thuận lợi cho bệnh SR trì phát triển quanh năm Trước đây, Việt Nam bệnh sốt rét lưu hành nặng, vùng sốt rét chiếm tới 2/3 diện tích, khoảng 50% dân số sống vùng SRLH, Việt Nam tiến hành chương trình Tiêu diệt SR từ năm 1958 đến năm 1975, từ 1976 đến năm 1990 chuyển sang chương trình Thanh tốn SR từ 1991 chuyển hướng sang chương trình Phịng chống sốt rét (PCSR) Khu vực miền Trung-Tây Nguyên (MT-TN) có 70% dân số sống vùng có nguy SR với di biến động dân cư lớn Đây khu vực có tình hình SR phức tạp Việt Nam: hàng năm số bệnh nhân sốt rét (BNSR) chiếm gần 50%; KSTSR chiếm 75%; sốt rét ác tính tử vong sốt rét chiếm 80 % so với nước Trong năm 2015, 15 tỉnh miền MT - TN có 7.644 BNSR chiếm 39,7% 6.500 KSTSR chiếm 69,7% so với nước; Gia Lai có 2.245 BNSR chiếm 29,4%, 2.215 KSTSR chiếm 34,1%; Khánh Hịa có 767 BNSR chiếm 10,0% 756 KSTSR chiếm 11,6% toàn khu vực MT - TN Đa số BNSR người dân tộc thiểu số chiếm 80%, có đến 21,3% dân số vùng sốt rét trọng điểm có hoạt động ngủ rẫy, có 15% thường xuyên rừng, ngủ rẫy khai thác lâm thổ sản [54] Do vậy, qua nhiều năm tiến hành PCSR việc đánh giá: Thành phần loài Anopheles, phân bố, đặc điểm sinh thái nhạy cảm véc tơ sốt rét với hóa chất sử dụng phịng chống sốt rét khu vực miền Trung - Tây Nguyên 2014 - 2017 cần thiết, nhằm làm sở liệu xây dựng kế hoạch phòng chống véc tơ (PCVT) góp phần giảm tỷ lệ mắc, tỷ lệ chết, khống chế bệnh sốt rét tỉnh nói riêng nước nói chung Mục tiêu nghiên cứu: Xác định thành phần loài Anopheles, phân bố, sinh học, sinh thái vai trò truyền bệnh véc tơ sốt rét khu vực miền Trung-Tây Nguyên 2014-2017 Đánh giá nhạy cảm véc tơ sốt rét với lambda – cyhalothrin alpha cypermethrin điểm nghiên cứu CHƯƠNG 1: TỔNG QUAN TÀI LIỆU 1.1 Thành phần loài phân bố muỗi Anopheles 1.1.1 Thành phần loài phân bố muỗi Anopheles giới Đầu kỷ XX, người tin rằng tiêu diệt sốt rét bằng cách diệt muỗi, nên muỗi Anopheles xem đối tượng nghiên cứu quan trọng PCSR tồn giới Do vậy, có hàng loạt cơng trình nghiên cứu hình thái, phân loại, khu hệ muỗi sốt rét nghiên cứu Theo Ralph Harbach (2008), họ muỗi Culicidae Meigen 1818, thuộc phân Nematocera (Râu dài), Diptera (Hai cánh), chia thành hai phân họ: Anophelinae (gồm giống) Culicinae (gồm 92 giống) [75] Riêng phân họ Anophelinae Grassi, 1900 xác định 547 loài thuộc giống giới, bao gồm: – Giống Anopheles Meigen, 1818 có 464 lồi 50 thành viên chưa định danh phức hợp loài, chia phân giống Anopheles (189 loài), Baimaia (1 loài), Cellia (217 loài), Kerteszia (12 loài), Lophopodomyia (6 loài), Nyssorhynchus (31 loài) Stethomyia (5 loài) – Giống Bironella Theobald, 1905: có lồi, chia phân giống Bironella (2 loài), Brugella (3 loài) Neobironella (3 loài) – Giống Chagasia Cruz, 1906: Có lồi [75] Baimai Green (1984), ghi nhận có dạng An maculatus: A, B, C G [59] Baimai (1992) cho rằng An dirus phức hợp loài gồm dạng: A, B, C, D, E F Các nghiên cứu di truyền quần thể phát rằng An dirus phức hợp loài, nay, loài thuộc phức hợp An.dirus ghi nhận: An dirus A, An dirus B, An dirus C, An dirus D, An dirus E, An nemophilous An takasagoensis Sallum (2005) muỗi An minimus sau ngừng phun DDT”, Kỷ yếu cơng trình nghiên cứu khoa học 1981-1986, Viện Sốt rét- KST-CT Hà Nội, NXB Y học, 1, tr 212-218 51 Nguyễn Thọ Viễn, Nguyễn Đức Mạnh, Trần Đức Hinh, Vũ Khắc Đệ, Lê Xuân Hợi, Nguyễn Tuyên Quang, Nguyễn Văn Quyết ctv (1992), ‘‘Nghiên cứu muỗi Anopheles (cellia) minimus Theobald biện pháp phòng chống chúng Việt Nam (Giai đoạn 1986-1990)’’, Kỷ yếu cơng trình nghiên cứu khoa học 1992 Viện sốt rét KST-CT Hà Nội, NXB Y học, tr.127-140 52 Nguyễn Thọ Viễn, Bùi Đình Bái, Nguyễn Văn Ngọ, Vũ Tuấn Mão, Tạ văn Thông, Nguyễn Tuyên Quang, Lê Xuân Hợi, Vũ Khắc Đệ, Hồ Đình Trung, Phạm văn Có, Nguyễn Tân, Nguyễn Văn Đồng, Phạm Văn Cầu ctv (1992), ‘‘Biện pháp giải ổ sốt rét Vân Canh nơi có ký sinh trùng kháng thuốc, muỗi truyền sốt rét An minimus, An dirus trú ẩn ngồi nhà’’, Kỷ yếu cơng trình nghiên cứu khoa học 1992 Viện sốt rét KST-CT Hà Nội, NXB Y học, -1 tr 152-161 53 Nguyễn Thọ Viễn, Ron P Marchand, Nguyễn Sơn Hải ctv (2005), “Xác định số lan truyền sốt rét khu thôn bản, bìa rừng rừng già nguyên sinh xã Khánh Phú”, Tạp chí Phịng chống bệnh sốt rét bệnh ký sinh trùng, (4), tr 3-10 54 Viện sốt rét KST-CT Quy Nhơn (2015), Báo cáo Hội nghị sơ kết cơng tác phịng chống, loại trừ sốt rét giun sán năm 2014 khu vực MT-TN 55 Viện Sốt rét-KST-CT Trung ương (2011), Cẩm nang kỹ thuật phòng chống bệnh sốt rét, NXB Y học 56 Viện Sốt rét - Ký sinh trùng - Côn trùng Trung ương (2016), Báo cáo cơng tác phịng chống sốt rét, ký sinh trùng, côn trùng năm 2015 triển khai kế hoạch năm 2016 Tiếng Anh 57 Anchana Sumarnrote, Hans J Overgaard, Nattapol Marasri, Bénédicte Fustec, Kanutcharee Thanispong, Theeraphap Chareonviriyaphap and Vincent Corbel (2017), Status of insecticide resistance in Anopheles mosquitoes in Ubon Ratchathani province, Northeastern Thailand, Malaria Journal, 16:299, DOI 10.1186/s12936-017-1948-z 58 Arata K (2007), Malaria control elimination or eradication, Malaria control in the Mekong region challenges and oppotunities 59 Baimai V., Kijichalao U., Sawadwongporn P and Green C.A (1988), Geographic distribution and biting behavior of four species of Anopheles dirus complex (Diptera: Culicidae) in Thailand, Southeast Asia J.Trop.Med Pub Health, Vol.19 (1), pp.151-161 60 Barnes K.G., Helen I., Martin C., Themba M (2016), Restriction to gene flow is associated with changes in the molecular basis of pyrethroid resistance in the malaria vector Anopheles funestus, PNAS Early Edition, 6pp 61 Binka F.N., Kubaje A., Adijuik M (1996), Impact of permethrin impregnated bednets on child mortality in Kassena – Nankana district, Ghana: a randomized controlled trial, Tropical Medicine and Internation Health, (2), pp 137 – 138 62 Bortel W.V., Trung H.D., Thuan L.K., Tho S., Duong S., Chalao S., Visut B., Kalouna K., Phompida S., Patricia R., Leen D., Katrijn V., Valerie O and Marc C (2008), The insecticide resistance status of malaria vectors in the Mekong region, Malaria Journal, 7:102doi:10.1186/1475-2875-7-102 63 Brandyce St Laurent, Kolthida Oy, Becky Miller, Elizabeth B Gasteiger, Eunjae Lee, Siv Sovannaroth, Robert W Gwadz, Jennifer M Anderson and Rick M Fairhurst (2016), Cow-baited tents are highly efective in sampling diverse Anopheles malaria vectors in Cambodia, Malaria Journal, 15:440, DOI 10.1186/s12936-0161488-y 64 Brandyce St Laurent, Timothy A Burton, Siti Zubaidah, Helen C Miller, Puji B Asih et al (2017), Host attraction and biting behaviour of Anopheles mosquitoes in South Halmahera, Indonesia, Malaria Journal, 16:310, DOI 10.1186/s12936-017-1950-5 65 Chambers M., Thuy T.Q., Farrar J et al (2005), Malaria transmission and occupational risk factors in rural south-west Vietnam: A report of entomological and epidemiological studies in Dak O commune, Binh Phuoc province, 2003-2004, The 5th Vietnam National Conference on Entomology, Hanoi, 11-12 April 2005 66 Chen B, Harbach R.E., Butlin R.K (2002), Molecular and morphological studies on the Anopheles minimus group of mosquitoes in southern China: taxonomic review, distribution and malaria vector status, Medical and Veterinary Entomology, Vol.16, Issue 3, 2002, pp: 253–265 67 Dash A.P., Hazra R.K., Mahapatra N and Tripathy H.K (2000), Disappearance of malaria vector Anopheles sundaicus from Chilika Lake area of Orissa State in India, Medical Veterinary Entomology, Vol 14 (4), pp: 445-449 68 Dev V (1996), Anopheles minimus: its bionomics and role in the transmission of malaria in Assam, India, Bulletin of the World Health Organization, 74(1), pp 61-66 69 EC Mekong malaria forum, 1999, 30(4), pp 53-56 70 Emmanuel H., Corine K., Dunia M., Gad I (2016), Susceptibility of Anopheles gambiae to insecticides used for malaria vector control in Rwanda, Malaria Journal, 15:582 71 Eyles D.E., Wharton R.H., Cheong W.H & Warren M (1964), Studies on malaria and Anopheles balabacensis in Cambodia, Bulletin of the World Health Organization, 30(1), pp 7-21 72 Foley H Desmond, Leopoldo M Rueda, A Townsend Peterson, and Richard C Wilkerson (2008), Potential Distribution of Two Species in the Medically Important Anopheles minimus Complex (Diptera: Culicidae), Journal of Medical Entomology, 45(5), pp: 852-860 73 Gingrich J.B., Weatherhead A., Sattabongkot J., Pilakasiri C & Wirtz R.A (1990), Hyperendemic malaria in a Thai village: Dependence of year-round transmission on focal and seasonally circumscribed mosquito (Diptera: Culicidae) habitats, Journal of Medical Entomology, 27, pp 1016-1026 74 Harbach, R.E., Garros C., Duc Manh N., and Manguin S (2007), Formal taxonomy of species C of the Anopheles minimus sibling species complex (Diptera: Culicidae), Zootaxa 1654, pp: 41-54 75 Harbach R.E (2008), Family Culicidae Meigen 1818, http://mosquitotaxonomic –inventory.info/family –culicidse –meigen -1818 76 Harrison B.A (1980), Medical entomology studies-XIII The MyzomyiaSeries of Anopheles (Cellia) in Thailand, with emphasis on intra-interspecific variations (Diptera Culicidae), Constribution of the American Entomological Institute, 17, pp 1-195 77 Ho Dinh Trung (2003), Malaria vectors in Southeast Asia: Identification, Malaria transmission, Behavior and Control, Dissertation for the degree of Doctor in Science at the University of Antwerp 78 Htay-Aung, Min S., Thaung S Myam M.M., Than S.M., Hlaing T., Soe-Soe, Druilhe P & Queuche F (1999), Well-breeding Anopheles dirus and their role in malaria transmission in Myanmar, Southeast Asian Journal of Tropical Medicane and Public Health, 30(3), pp 447- 453 79 Ismail I.A.H., Notananda V & Schepens J (1974), Studies on malaria and responses of Anopheles balabacensis and Anopheles minimus to DDT residual spraying in Thailand, Part I: Pre-spraying observations, Acta Tropic, 31, pp 129-164 80 Ismail I.A.H., Notansda V & Schepens J (1975), Studies on malaria and responses of Anopheles balabacensis and Anopheles minimus to DDT residual spraying in Thailand, PartII: Post-spraying observations, Acta Tropica, 32, pp 206-299 81 Kengluecha A., Rongnoparut P., Boonsuepsakul S., Sithiprasasna R., Rodpradit P., and Baimai V (2005), Geographical distribution of Anopheles minimus species A and C in western Thailand, Journal of the Society for Vector Ecology, 30(2), pp: 225-230 82 Kittayapong P., Edman J.D., Harrison B.A et al (1992), Female body size, parity and malaria infection of An maculatus in Peninsular Malaysia, Journal of Medical Entomology, 29(3), pp 379-383 83 Kondrashin, Jung R.K., Akiyama J (1991), Ecological Aspects of Forest Malaria in Southeast Asia, Proceedings of an Informal Consultative Meeting WHO/MRC 18-22 February 1991, New Delhi, pp.1-28 84 Krajana Tainchum, Wanapa Ritthison, Tipwara Chuaycharoensuk, Michael J Bangs et al (2014), Diversity of Anopheles species and trophic behavior of putative malaria vectors in two malaria endemic areas of northwestern Tailand, Journal of Vector Ecology, 39 (2), pp 424-436 85 Linton Y M, Dusfour I, Howard T M, Ruiz L F, Nguyen Duc Manh, Trung Ho Dinh, Sochata T, Cooseman M, Harbach R E (2005), Anopoheles (cellia) epiroticus (Diptera: Culicidae), a new malaria vector species in the southeast Asian sundaicus Complex, Bulletin of entomological research, Vol 95, pp 329 – 339 86 Loong, K.P., Chiang G.L and Yap H.H (1988), Field studies of the bionomics of Anopheles maculatus and its role in malaria tranmission in Malaysia, Southeast Asian J Trop Med Public Health, 19(4), pp 724 87 MCNV (2005), The Khanh Phu Malaria Research Project An Overview (1994-2004), Internal report of the Medical Committee Netherlands-Vietnam 88 Mehdi Zare1, Moussa Soleimani Ahmadi, Sayed Hossein Davoodi and Alireza Sanei-Dehkordi (2016), Insecticide susceptibility of Anopheles stephensi to DDT and current insecticides in an elimination area in Iran, Parasites & Vectors, 9:571 89 Moreno M., Vicente J.L., Cano J., Berzosa P.J., de Lucio A., Nzambo S., Bobuakasi L., Buatiche J.N., Ondo M., Micha F., Do Rosario V.E., Pinto J., Benito A (2008), Knockdown resistance mutations (kdr) and insecticide susceptibility to DDT and Pyrethroids in Anopheles gambiae from Equatorial Guinea, Tropical Medicine & International Health, Vol 13, 3, pp: 430-433 90 Myo Paing, Tun Lin W & Sebatian A.A (1988), Behaviour of Anopheles minimus (Theobald) in relation to its role as vector of malaria in a forested foothill area of Burma, Tropical Biomedicine, 5, pp.161-166 91 Overgaard H.J., Ekbom B., Suwonkerd W et al (2003), Effect of landscape structure on Anopheline mosquito density and diversity in northern Thailand: Implication for malaria transmission and control, Landscape Ecology, 18, pp 605-619 92 Ratanatham S., Upatham E.S., Prasittisuk C., Rojanasunan W., Theerasilp N., Tremongkol A & Viyanant V (1988), Bionomics of Anopheles minimus and its role in malaria transmission in Thailand, Southeast Asian Journal of Tropical Medicine and Public Health, 19(2), pp 283-289 93 Rattanarithikul R, Linthicum KJ, Konishi E (1996), Seasonal abundance and parity rates of Anopheles species in southern Thailand, J Am Mosq Control Assoc, 12:75 - 83 94 Rodriguez M.M, Bisset J Ruiz M and Soca A (2000), Crossreistance to pyrethroid and organophosphate insecticides, selection with temephos in Aedes aegypti in Cuba 95 Rosenberg R., Maheswary N.P (1982), Forest malaria in Bangladesh II Transmission by Anopheles dirus, American Journal of Tropical Medicine and Hygiene, 31(2), pp 183-191 96 Rosenberg R., Andre R.G., Somchit L (1990), Highly efficient dry season transmission of malaria in Thailand, Transactions of the Royal Society of Tropical Medicine and Hygiene, 84(1), pp 22-28 97 Sallum M A M; Peyton E L; Wilkerson R C (2005), Six new species of the Anopheles leucosphyrus group, reinterpretation of An elegans and vector implication, Med Vet Entomol, (19), pp 158 – 199 98 Scanlon J.E & Sandhinand U (1965), The distribution and biology of Anopheles balabacensis in Thailand (Diptera: Culicidae), Journal of Medical Entomology, 2(1), pp 61-69 99 Sébastien Marcombe, Julie Bobichon, Boutsady Somphong, Nothasin Phommavan et al (2017), Insecticide resistance status ofmalaria vectors in Lao PDR, PLoS ONE, 12(4): e0175984 100 Sharma V.P., Kondrashin A.V (1991), Forest Malaria in Southeast Asia, Proceedings of an Informal Consultative Meeting WHO/MRC, 234 pp 101 Sinka ME., Bangs MJ., Manguin S et al (2012), A global map of dominant malaria vectors, Parasites & Vectors, 5:69 doi: 10.1186/1756-3305-5-69 102 Suntorn Pimnon and Adisak Bhumiratana (2018), Adaptation of Anopheles Vectors to Anthropogenic Malaria-Associated Rubber Plantations and Indoor Residual Spraying: Establishing Population Dynamics and Insecticide Susceptibility, Canadian Journal of Infectious Diseases and Medical Microbiology, Volume 2018, 17 pp 103 Taye Gari, Oljira Kenea, Eskindir Loha, Wakgari Deressa, Alemayehu Hailu et al (2016), Malaria incidence and entomological findings in an area targeted for a cluster-randomized controlled trial to prevent malaria in Ethiopia: results from a pilot study, Malaria Journal, 15:145 104 Valérie Obsomer, Pierre Defourny and Marc Coosemans (2007), The Anopheles dirus complex spatial distribution and environmental drivers, Malar J., (6) p: 26 105 Van Bortel W., Trung H.D., Roelants P., Harbach R.E., Backeljau T & Coosemans M (2000), Molercular identification of Anopheles minimus s.l beyond distinguishing the members of the species complex, Insect Molercular Biology, 9(3), pp 335-340 106 Vas Dev, Tridibes Adak, Om P Singh, Nutan Nanda & Bimal K Baidya (2015), Malaria transmission in Tripura: disease distribution & determinants, Indian J Med Res, 142 (Supplement), pp.12-22 107 Victor Chaumeau, Dominique Cerqueira, John Zadrozny, Praphan Kittiphanakun, Chiara Andolina et al (2017), Insecticide resistance in malaria vectors along the Thailand-Myanmar border, Parasites & Vectors, DOI 10.1186/s13071-017-2102-z 108 Vinod P.S (1991), Environmental management in malaria control in India, London schoool of Hyglene and tropical medicine, public health Forum, 181h Edition, pp – 24 109 Wanjala Christine L., Guofa Zhou, Jernard Mbugi, Jemimah Simbauni (2015), Insecticidal decay effects of long-lastinginsecticide nets and indoor residual spraying on Anopheles gambiae and Anopheles arabiensis in Western Kenya, Parasites & Vectors, 8:588 110 WHO (1975), Manual on Practical Entomology in Malaria: Part I – Vector Bionomics and organization of antimalaria activities; part II – Methods and Techniques, WHO offset publications, No 13, Geneva 111 WHO (1998), Techniques to detect insecticide resistance mechanism, WHO/CDS/CPC/MAL/98.6 112 WHO, (2013), Test procedures for insecticide resistance monitoring in malaria vector mosquitoes 113 WHO (2016), World malaria report, 186 pp 114 Wilkinson R.N., Gould D.J., Boonyakanists P & Segal H.E (1978), Observations on Anopheles balabacensis (Diptera: Culicidae) in Thailand, Journal of Medical Entomology, 14(6), pp 666-671 115 World Health Organization (1994), Entomologycal laboratory techniques for malaria control, Part I, WHO, Geneve, 160 p 116 World Health Organization (1994), Entomologycal laboratory techniques for malaria control, Part II, WHO, Geneve, 72 p 117 World malaria report 2015, Geneva, Switzerland 118 Yap H.H (1996), Effect of formulations containing soap DEET and permethrin as personal protection against outdoor mosquitoes in Malaysia, Journal of the American Mosquito Control Association, (2), pp.63-67 119 Yoshimasa Maeno, Nguyen Tuyen Quang, Richard Culleton, Satoru Kawai, Gaku Masuda, Shusuke Nakazawa, and Ron P Marchand (2015), Humans frequently exposed to a range of non-human primate malaria parasite species through the bites of Anopheles dirus mosquitoes in South-central Vietnam, Parasites & Vectors, 8:376, DOI 10.1186/s13071-015-0995-y PHỤ LỤC HÌNH ẢNH CÁC SINH CẢNH TRONG RỪNG VÀ VEN RỪNG Ở CÁC ĐIỂM NGHIÊN CỨU VÀ HOẠT ĐỘNG NGHIÊN CỨU Sinh cảnh nhà rẫy điểm nghiên cứu Gia Lai Sinh cảnh nhà rẫy điểm nghiên cứu Khánh Hòa Sinh cảnh nhà ven rừng điểm nghiên cứu Bình Định Một số hình ảnh nghiên cứu thực địa ... bệnh véc tơ sốt rét điểm nghiên cứu miền Trung- Tây Nguyên 103 4.2 Sự nhạy cảm véc tơ sốt rét với hóa chất sử dụng phòng chống sốt rét miền Trung - Tây Nguyên 114 4.2.1 Độ nhạy cảm. .. có sốt rét lưu hành nặng khu vực miền Trung - Tây Nguyên 76 3.2 Đánh giá nhạy cảm véc tơ sốt rét với hóa chất sử dụng phòng chống sốt rét miền Trung -Tây Nguyên 80 3.2.1 Nhạy cảm véc tơ. .. đặc điểm sinh thái nhạy cảm véc tơ sốt rét với hóa chất sử dụng phòng chống sốt rét khu vực miền Trung - Tây Nguyên 2014 - 2017 cần thiết, nhằm làm sở liệu xây dựng kế hoạch phịng chống véc tơ