Luận án nghiên cứu phối hợp esterase và hệ enzyme thủy phân từ nấm trong chuyển hóa phụ phẩm công nông nghiệp để thu nhận bioethanol

MỞ ĐẦU Hiện nay, nhu cầu lượng vấn đề nan giải quốc gia giới Trong số nguồn lượng thay dầu mỏ sử dụng (năng lượng gió, mặt trời, hạt nhân,…), lượng sinh học xu phát triển tất yếu, nước nông nghiệp nhập nhiên liệu Dựa vào nguyên liệu sản xuất, người ta chia NLSH thành hệ: Thế hệ I (từ tinh bột ngơ, sắn, mía đường), hệ II (từ sinh khối thực vật thân lúa, ngô, lúa mỳ, bã mía), hệ thứ III (từ lồi vi tảo) hệ IV - nhiên liệu tiên tiến (dựa chuyển hóa sinh - hóa, nhiệt – hóa) Chúng phân thành ba nhóm dầu sinh học (biodiesel), khí sinh học (biogas) bioethanol (ethanol sinh học) Trong đó, bioethanol quan tâm từ ngày 01/01/2018 phủ ban hành định sử dụng xăng sinh học E5 (5% bioethanol) thay xăng RON 92 toàn quốc Do vậy, nhu cầu sản xuất tiêu thụ bioethanol ngày tăng cao Việc sản xuất nhiên liệu sinh học nói chung bioethanol theo hệ I từ nguồn tinh bột (sắn, bắp) đường (mía) phổ biến Bên cạnh đó, bioethanol cịn sản xuất từ lignocellulose theo hệ thứ II Nguồn nguyên liệu chủ yếu bao gồm: gỗ, rơm lúa, bã mía, thân ngơ…là sinh khối có thành phần lignocellulose phổ biến số phụ phẩm công-nông nghiệp Tuy nhiên, nguồn nguyên liệu sử dụng chưa hiệu mà chủ yếu theo phương pháp truyền thống làm chất nuôi nấm, thức ăn gia súc, ủ làm phân bón, đốt Do vậy, việc tận dụng nguồn chất để sản xuất bioethanol giải pháp thích hợp, đặc biệt với quốc gia với nông nghiệp Việt Nam Mặc dù nguồn nguyên liệu giàu lignocellulose phổ biến khó khăn để tận dụng hiệu nguồn sinh khối cho sản xuất sản phẩm có giá trị cao chủ yếu lignocellulose có cấu trúc phức tạp, khó chuyển hóa sinh học Việc sản xuất bioethanol từ nguồn sinh khối phụ phẩm công - nông nghiệp mặt tận dụng nguồn nguyên liệu rào thay nguồn nguyên liệu truyền thống, mặt khác tạo thành nguồn lượng giúp giải vấn đề ô nhiễm môi trường đốt xử lý theo phương pháp truyền thống gây ra, đồng thời không ảnh hưởng tới an ninh lượng thực quốc gia Đây khâu then chốt công nghệ lên men sản xuất bioethanol hệ II Theo phương thức truyền thống sử dụng phương pháp hóa học (axít/bazơ) hóa lý (nghiền/nổ hơi) Tuy nhiên, hướng để giải nhiệm vụ sử dụng xúc tác sinh học (enzyme từ loài nấm), chúng biết có hệ enzyme xúc tác hiệu giúp chúng phân hủy tốt lignocellulose để giải phóng đơn vị đường cần thiết cho trình lên men bioethanol Nhìn chung enzyme thủy phân lignocellulose hoạt động yếu sử dụng trực tiếp chất thô việc xúc tác chuyển hóa hiệu chất cần kết hợp nhiều enzyme có tác dụng hiệp đồng Do vậy, mục đích đề tài luận án “Nghiên cứu phối hợp esterase hệ enzyme thủy phân từ nấm chuyển hóa phụ phẩm cơng-nơng nghiệp để thu nhận bioethanol” nhằm sử dụng hỗn hợp enzyme phù hợp (“enzyme cocktail”) bao gồm hệ enzyme esterase (acetyl esterase feruloyl esterase), enzyme thủy phân và/hoặc oxy hóa từ nấm để phân hủy cấu trúc polymer phức tạp để lên men thu nhận bioethanol Mục tiêu nghiên cứu: Hiên nay, khả chuyển hóa vật liệu thơ từ sinh khối giàu lignocellulose phương pháp truyền thống nhiều mặt hạn chế Do vậy, mục tiêu đề tài luận án nhằm khai thác nguồn đa dạng xúc tác sinh học (enzyme thủy phân) từ nấm để chuyển hóa hiệu sinh khối giàu lignocellulose từ phụ phẩm công-nông nghiệp thành đường (C5 C6) có khả lên men cho sản xuất bioethanol Đặc biệt, luận án sử dụng “enzyme cocktail” xúc tác hiệp đồng để tăng khả chuyển hóa sinh học Trong đó, nghiên cứu sử dụng carbohydrate esterase [feruloyl esterase (FAE), acetyl esterase (AE)] nhằm phối hợp với enzyme cơng mạch (cellulase/xylanase) mạch nhánh để thủy phân cấu trúc lignocellulose Mục tiêu đánh giá khả lên men nguồn dịch đường sau thủy phân “enzyme cocktail” thành bioethanol Nội dung nghiên cứu: Để đạt mục tiêu trên, nội dung nghiên cứu thực hiện: - Phân lập, sàng lọc tuyển chọn chủng nấm có khả sinh tổng hợp enzyme carbohydrate esterase [feruloyl esterase (FAE), acetyl esterase (AE)]; - Sinh tổng hợp tinh protein enzyme hoạt tính FAE AE từ mơi trường ni cấy nấm xác định đặc tính enzyme tinh - Chuyển hóa vật liệu lignocellulose thành đường đơn (hexose pentose) có khả lên men sử dụng đơn enzyme “enzyme cocktail” hoạt tính cellulase/xylanase esterase xúc tác hiệp đồng - Tối ưu quy trình chuyển hóa nghiên cứu sản xuất bioethanol từ dịch đường chuyển hóa quy mơ phịng thí nghiệm Những đóng góp luận án: - 44 chủng nấm thuộc 13 họ thuộc ngành nấm Túi (Ascomycota) nấm Đảm (Basidiomycota) phân lập sàng lọc khả sinh tổng hợp carbohydrate esterase (feruloyl esterase acetyl esterase) - Lần đầu tiên, enzyme feruloyl esterase từ nấm Alternaria tenuissima acetyl esterase từ nấm Xylaria polymorpha phân lập tinh từ môi trường nuôi cấy giàu lignocellulose Trong đó, feruloyl esterase từ Alt tenuissima (AltFAE) có trọng lượng phân tử Mw = 30,3 kDa với hoạt tính đặc hiệu 11,2 U/mg Acetyl esterase từ X polymorpha (XpoAE) có trọng lượng phân tử Mw = 44 kDa với hoạt tính đặc hiệu 13,1 U/mg Hai enzyme có độ bền cao khoảng nhiệt độ 40 đến 450C pH 5,0 - Enzyme carbohydrate esterases tinh kết hợp với enzyme thương mại (hỗn hợp “enzyme cocktail” hoạt tính cellulase/xylanse (cell/xyl)) tối ưu thành phần sử dụng để chuyển hóa sinh khối thực vật thơ (vd mía bã mía, rơm rạ, bột gỗ, rong túi…) thành đường đơn có khả lên men bioethanol Trong đó, bã mía chọn làm chất phù hợp để sản xuất đường C5/C6 (vd: glucose, xylose) - Bằng quy hoạch thực nghiệm xác định điều kiện tối ưu cho chuyển hóa bã mía “enzyme cocktail” 400C, pH 5.0, 48 hoạt độ enzyme cell/xyl: 100 U/g, AltFAE: 7,56 U/g, XpoAE: 10,8 U/g sinh khối khơ Khi đó, tổng đường lên men 251,86 mg/g Kết hợp xử lý bã mía “enzyme cocktail” axit H2SO4 lỗng (0,1%) đường lên men sinh 319,5 mg/g, đạt hiệu suất 49,8% - Các đường đơn thu chuyển hóa enzyme chứng minh có khả lên men bioethanol (cồn sinh học) chủng nấm men Saccharomyces cerevisiae với hàm bioethanol thu 178ml/kg bã mía, đạt hiệu suất 79,8% so với lý thuyết Ý nghĩa khoa học thực tiễn luận án: Bên cạnh sản xuất bioethanol từ nguồn tinh bột (sắn, bắp) đường (mía), bioethanol sản xuất từ lignocellulose Lignocellulose loại sinh khối (biomass) phổ biến sinh Sản xuất bioethanol từ nguồn sinh khối giải pháp thích hợp, đặc biệt với quốc gia với nông nghiệp Việt Nam Hàng năm sản xuất công-nông nghiệp nước sản sinh hàng trăm triệu phụ phẩm giàu lignocellulose nguồn cung cấp nguyên liệu vô dồi cho sản xuất lượng sạch, mặt khác giải vấn đề ô môi trường không xử lý hay loại bỏ theo phương pháp truyền thống Theo tài liệu công bố kinh nghiệm nghiên cứu cho thấy, nhìn chung enzyme thủy phân lignocellulose hoạt động yếu sử dụng trực tiếp (không qua tiền xử lý) chất thơ Điều khắc phục việc sử dụng hỗn hợp enzyme phù hợp (“enzyme cocktail”) bao gồm hệ enzyme thủy phân và/hoặc oxy hóa để phân hủy cấu trúc polymer phức tạp Ngồi ra, sàng lọc enzyme ni cấy vi sinh vật có vai trị quan trọng việc tìm enzyme với hoạt tính xúc tác thủy phân cao đặc tính hữu ích Đề tài luận án khơng nhằm giải tồn bước từ chuyển hóa vật liệu sinh khối thơ thành bioethanol mà mục tiêu nhằm khai thác sử dụng nguồn xúc tác sinh học từ nấm tối ưu hóa cho chuyển hóa sinh khối thành đường có khả lên men Đây khâu then chốt công nghệ lên men sản xuất bioethanol hệ II CHƯƠNG 1: TỔNG QUAN TÀI LIỆU 1.1 Phụ phẩm công - nông nghiệp giàu lignocellulose 1.1.1 Nguồn gốc thành phần Phụ phẩm công-nông nghiệp dạng sinh khối có thành phần lignocellulose phổ biến số phụ phẩm công-nông nghiệp Việt Nam Hiện nay, năm nguồn sinh khối sản sinh hàng trăm triệu từ trình sản xuất công-nông nghiệp như: rơm rạ, bã cà phê, mùn gỗ, thân ngô, vỏ trấu hàng chục triệu bã mía thường sử dụng để đun nấu (lãng phí nhiệt 80%), chất để trồng nấm, thức ăn gia súc phần lớn đốt bỏ thu tro làm phân bón [1] Việc đốt gây tượng sương mù quang hóa độc hại nguyên nhân gây nên số bệnh mắt, phổi Nguy hiểm hơn, chúng gây ô nhiễm môi trường nghiêm trọng vùng ven thành phố lớn dọc đường cao tốc làm giảm tầm nhìn dễ dẫn đến tai nạn giao thông Đặc biệt, gây lãng phí lượng lớn chất hữu có giá trị, khai thác sử dụng hợp lý nguồn sinh khối đem lại lợi ích vơ lớn [2,3] Lignocellulose ngày có vai trị quan trọng mặt kinh tế sử dụng vật liệu thô cho ứng dụng công nghệ sinh học cơng nghiệp, chúng sở để thúc đẩy việc nghiên cứu tận dụng sinh khối mơ hình sản xuất tinh chế chiến lược cho phát triển bền vững [4] Các polymer sinh học thấy tất hệ sinh thái đất liền nguồn hợp chất hữu tái tạo lớn sinh Xét nguồn gốc, thành phần mức độ polymer hóa, phân biệt loại lignocellulose như: từ gỗ cứng, gỗ mềm từ trồng hàng năm (đặc biệt lúa, ngũ cốc, loại cỏ, mía…) thân thảo [5,6] Lignocellulose phức hợp polyme thành tế bào thực vật, chiếm 60% tổng sinh khối thực vật trái đất, bao gồm thành phần polymer carbohydrate (cellulose, hemicellulose) polymer thơm (lignin), cellulose hemicellulose chiếm tỉ lệ cao Cellulose chiếm phần lớn, khoảng từ 40% - 50%, hai hợp chất hemicellulose lignin chiếm khoảng 20 - 40% 20 - 35% khối lượng khơ thể thực vật (Bảng 1.1) [1] Ngồi thành phần này, Lilholt cho pectin thành phần lignocellulose thành tế bào, đặc biệt cấu trúc sợi thực vật thành phần gỗ [7] Bảng 1.1 Thành phần số nguồn sinh khối giàu lignocellulose [1] Nguồn lignocellulose Cellulose (%) Hemicellulose (%) Lignin (%) Thành phần khác (%) Gỗ cứng 45-47 25-40 20-25 0,8 Gỗ mềm 40-45 25-29 30-36 0,5 Cỏ 25-40 35-50 - - Bã mía 40 24 25 - Lõi ngô 45 35 15 Rơm rạ 35 25 12 Bột giấy 50-70 12-20 6-10 Rơm lúa mì 30 50 20 Phế thải nông nghiệp khác 37-50 35-50 5-15 12-16 Hình 1.1 Cấu trúc lignocellulose [8] Lignocellulose vật liệu khó thủy phân chúng có liên kết polysaccharid (cellulose hemicellulose), liên kết ester ete (lignin) tạo nên cấu trúc bền vững có độ cứng độ bền học cao (Hình 1.1) Xét thành phần lignocellulose bao gồm: Cellulose: Cellulose polymer mạch thẳng, có cơng thức cấu tạo (C6H10O5)n Các đơn phân hoàn toàn cấu tạo từ đường D-glucose liên kết với liên kết β-1,4glucoside với số lượng lên tới 10.000 đơn vị Cấu trúc liên kết thẳng cho phép hình thành liên kết hydro phân tử tạo vi sợi từ 36 chuỗi cellulose xếp song song, hay cấu trúc tinh thể cellulose Mức độ trùng hợp cellulose tự nhiên đạt 10.000-14.000 đơn vị glucose phân tử, khối lượng tương ứng 1,5 triệu dalton với chiều dài phân tử lớn 5µm [9] Giữa chuỗi cellulose có nhiều gốc -OH tạo nên nhiều liên kết hydro giúp ổn định sợi cellulose, làm cho sợi cellulose bền vững, khó thủy phân Hình 1.2 Cấu trúc hóa học cellulose [10] Sợi cellulose kết hợp với cách chặt chẽ, có trật tự hình thành nên vùng có cấu trúc tinh thể (Hình 1.2) Bên cạnh có số sợi cellulose kết hợp cách ngẫu nhiên hình thành nên vùng có cấu trúc vơ định hình Từ cho thấy dung mơi chất hóa học khó xâm nhập vào vùng tinh thể, lại dễ dàng xâm nhập vào vùng vơ định hình [11] Hemicellulose: Hemicellulose loại polymer phức tạp phân nhánh, độ trùng hợp khoảng 70 - 200 DP Hemicellulose chứa đường gồm D-glucose, D-mannose, D-galactose đường gồm D-xylose L-arabinose Thành phần hemicellulose β-D xylopyranose, liên kết với liên kết β-(1,4) Cấu tạo hemicellulose phức tạp đa dạng tùy vào nguyên liệu, nhiên có vài điểm chung bao gồm [12]: Mạch hemicellulose cấu tạo từ liên kết β-(1,4), xylose thành phần quan trọng nhóm phổ biến nhóm acetyl-O- liên kết với vị trí Mạch nhánh cấu tạo từ nhóm đơn giản, thơng thường disaccharide trisaccharide Sự liên kết hemicellulose với polysaccharide khác với lignin nhờ mạch nhánh Cũng hemicellulose có mạch nhánh nên tồn dạng vơ định hình dễ bị thủy phân Tùy theo loại gỗ (gỗ cứng, gỗ mềm) mà chúng có đặc điểm hemicellulose khác nhau: Gỗ cứng chủ yếu có hai loại hemicellulose: Acetyl-4-O-methyglucuronoxylan, loại polymer có mạch gồm β-D xylopyranose liên kết với liên kết β-D(1,4) Trong 70% nhóm -OH vị trí C2 C3 bị acetyl hóa, 10% nhóm vị trí C2 liên kết với acid 4-O-methyl-Dglucuronic Gỗ cứng chứa glucomannan, polymer chứa tỉ lệ β-Dglucopyranose β-D-mannopyranose Loại thứ hai có mạch β-D-galactopyranose, phân nhánh Loại hemicellulose tạo liên kết -O nhóm OH vị trí C6 với α-L-arabinose, β-Dgalactose acid β-D-glucoronic [13] Gỗ mềm bao gồm hai loại hemicellulose chính: Loại quan trọng galactoglucomannan, polymer cấu thành từ phân tử D-mannopyranose liên kết với D-glucopyranose liên kết β-(1,4) với tỉ lệ hai monomer tương ứng 3:1 Tuy nhiên, tỉ lệ thay đổi tùy theo loại gỗ Arabino-4-O-methylglucuronoxylan, cấu tạo từ D-xylopyranose, monomer bị vị trí acid 4-O-methyl-glucuronic, vị trí α-Larabinofuranose Đối với cỏ, 20-40% hemicellulose arabinoxylan Polysaccharide cấu tạo từ D-xylopyranose, OH C2 bị acid 4-O-methylglucuronic OH vị trí C3 tạo mạch nhánh với α-L-arabinofuranose Cấu tạo phức tạp hemicellulose tạo nên nhiều tính chất hóa sinh lý sinh cho [13] Hình 1.3 Cấu trúc hóa học xylan [8] Lignin: Lignin polyphenol có cấu trúc mở Trong tự nhiên, lignin chủ yếu đóng vai trị chất liên kết thành tế bào thực vật, liên kết chặt chẽ với mạng cellulose hemicellulose Rất khó để tách lignin hoàn toàn Lignin polymer, cấu thành từ đơn vị phenylpropene, vài đơn vị cấu trúc điển hình đề nghị là: guaiacyl (G), chất gốc rượu trans-coniferyl; syringly (S), chất gốc rượu transsinapyl; p-hydroxylphenyl (H), chất gốc rượu trans-p courmary Lignin hợp chất cao phân tử có cấu trúc vơ định hình khác với cellulose, lignin có chứa nhóm hydroxyl (-OH), nhóm methoxyl (-OCH3) nhân benzen bao gồm đơn vị bản: coniferyl alcohol, sinapyl alcohol p-coumaryl alcohol, tỉ lệ ba loại rượu loại thực vật khác khác (Hình 1.4) Lignin đặc biệt khó phân hủy phân tử nối với liên kết este liên kết carbon, tạo thành mạng lưới liên kết ngang rộng rãi tế bào [13] Hình 1.4 Cấu trúc hóa học lignin [13] Những nghiên cứu gần rằng, lignin hoàn toàn không đồng cấu trúc Lignin dường bao gồm vùng vơ định hình vùng có cấu trúc hình thn hình cầu Lignin có liên kết hóa học với thành phần hemicellulose với cellulose (khơng nhiều) độ bền hóa học liên kết phụ thuộc vào chất liên kết cấu trúc hóa học lignin đơn vị đường tham gia liên kết Carbon alpha (Cα) cấu trúc phenyl propane nơi có khả tạo liên kết cao với khối hemicellulose Ngược lại, đường nằm mạch nhánh arabinose, galactose, acid 4-O-methylglucuronic nhóm thường liên kết với lignin Các liên kết ether, ester (liên kết với xylan qua axít 4-O-methyl-D-glucuronic) hay glycoxit (phản ứng nhóm khử hemicellulose nhóm OH phenolic lignin) Cấu trúc hóa học lignin dễ bị thay đổi nhiệt độ cao pH thấp, trình tiền xử lý nước mơi trường axít/kiềm Ở nhiệt độ phản ứng cao 2000C, lignin bị kết khối thành phần riêng biệt tách khỏi cellulose [15,16] 1.1.2 Nguồn nguyên liệu bã mía 1.1.2.1 Nguồn gốc trạng sử dụng bã mía Việt Nam Về mặt tài nguyên tự nhiên khí hậu, đất đai, Việt Nam đánh giá nước có tiềm để phát triển mía Việt Nam có đủ đất đồng bằng, lượng mưa nói chung tốt (1400 mm đến 2000 mm/năm), nhiệt độ phù hợp, độ nắng thích hợp Trên phạm vi nước, vùng tây nguyên vùng Đông Nam Bộ, đặc biệt vùng duyên hải Nam Trung Bộ có khả tốt cho trồng mía đường Theo Hiệp hội Mía đường Việt Nam (VSSA), năm nhà máy đường ép 15 triệu mía, phát sinh 4,5 triệu bã mía Tại nhà máy đường Bourbon (Tây Ninh) với cơng suất chế biến 8.000 mía/ngày, thải khoảng 2.800 bã mía/ngày Cơng ty đường Biên Hịa (Đồng Nai) có nhà máy, nhà máy sử dụng mía làm nguyên liệu với tổng cơng suất 5.000 mía/ngày Mỗi năm, sản lượng mía 600.000 - 750.000 tấn, tương đương 174.000 - 217.500 bã Một phần bã mía mang đốt tạo thành điện cho hoạt động nhà máy, phần cịn lại khơng sử dụng hết, tồn dư lớn Việc tận dụng tồn lượng bã mía thải bỏ góp phần giảm bớt áp lực cho nguồn nguyên liệu sinh học khác như: bắp, khoai mì, gỗ [17] 10 DANH SÁCH CƠNG BỐ KHOA HỌC LIÊN QUAN ĐẾN LUẬN ÁN A Tạp chí quốc tế (SCIE): Do Huu Nghi , René Ullrich, Franco Moritz , Le Mai Huong, Vu Dinh Giap, Do Huu Chi, Martin Hofrichter, Christiane Liers The Ascomycete Xylaria polymorpha Produces an Acetyl Esterase That Solubilises Beech Wood Material to Release Water-soluble Lignin Fragments Journal Korean Soci Appl Biol Chem, 2015, 58 (3), 415-521 D.H Chi, V.D Giap, L.P.H Anh, and D.H Nghi An feruloyl esterase from Alternaria tenuissima that hydrolyses lignocellulosic material to release hydroxycinnamic acids Applied Biochemistry and Microbiology, 2017, 53, (6), 654:660 B Tạp chí chuyên ngành nước: Đỗ Hữu Nghị, Vũ Đình Giáp Đỗ Hữu Chí .Nghiên cứu khả sinh tổng hợp enzyme axetyl (xylan) esterase nấm Aureobasidium pullulans Var melanigenum SH1 chất phụ phẩm công-nông nghiệp giàu-lignicellulose Tạp chí nơng nghiệp phát triển nơng thơn – kỳ tháng 3/2016, 56-62 Vũ Đình Giáp, Đỗ Hữu Chí, Lê Mai Hương, Đỗ Hữu Nghị Nghiên cứu sinh tổng hợp feruloyl esteraza nấm môi trường nuôi cấy lỏng với chất giàu lignoxelluloza TC Nông nghiệp & PTNT, 2016, 12, 103:110 Đỗ Hữu Nghị, Lê Mai Hương, Lê Thị Bích Thảo, Vũ Đình Giáp, Nguyễn Trung Hiếu, Đỗ Hữu Chí Feruloyl esterase từ chủng nấm Alternaria tenuissima khảo sát hoạt tính chống oxy hóa sản phẩm phản ứng enzyme Tạp chí Y học VN, 2016, 445, 143:148 Vu Dinh Giap, Do Huu Chi, Pham Hong Hai, Tang Thi Chinh, Do Huu Nghi Using experimental planning to optimize the hydrolysis of sugar cane bagasse into fermentable sugars for bioethanol production by fungal enzyme mixture Vietnam Journal of Science and Technology, 2017, 55 (4), 419:428 138 TÀI LIỆU THAM KHẢO P Kumar, M Diane, J.L Delwiche and P Stroeve Methods for Pretreatment of Lignocellulosic Biomass for Efficient Hydrolysis and Biofuel Production Industrial & Engineering Chemistry Research, 2009, 48 (8), 3713–3729 G Cao, X Zhang, S Gong, F Zheng Investigation on emission factors of particulate matter and gaseous pollutants from crop residue burning, Environ Sci., 2008, 20, 50 - 55 Nguyễn Văn Vinh, Bùi Minh Trí, Hyeun Jong Bae Đánh giá chất lượng số loại sinh khối thải từ mía, sắn ảnh hưởng kỹ thuật tiển xử lí nhằm chuyển hóa thành cồn sinh học Tạp chí sinh học, 2014, 36 (1se), 301-306 H Jorgensen, J Bach Kristensen, C Felby Enzymatic conversion of lignocellulose into fermentable sugars: challenges and opportunities, Biofuel Bioprod Bior., 2007, 1, 119-134 Y Fukushima, B Monties Occurence, function and biosynthesis of lignins, Wiley-VCH, Weinheim, Biopolymers, 2001,1, 1-64 S Kim, B.E Dale Global potential bioethanol production from wasted crops and crop residues, Biomass Bioener., 2004, 26, 361-375 H Lilholt, M.J Lawther Natural organic fibres Comprehensive composite materials, Elsevier Science, 2000, 1, 303-325 Hồ Sĩ Tráng Cơ sở hoá học gỗ cellulose, Nhà xuất Khoa học Kỹ thuật Hà Nội, 30-81 S Park, O.J Baker, M.E Himmel, D.K Parilla, P.A Johnson Cellulose crystallinity index: measurement techniques and their impact on interpreting cellulase performance Biotechnol., Biofuels, 2010, 3, 1–10 10 Nguyễn Thị Ngọc Bích Kỹ thuật cellulose giấy, Nhà xuất Đại học Quốc gia Thành phố Hồ Chí Minh, 2003 139 11 W.R De Souza Microbial degradation of lignocellulosic biomass, Chandel A, Da Silva, S Sustainable degradation of lignocellulosic biomass techniques, applications and commercialization Brazil: InTech, 2013 12 F.M Girio, C Fonseca, F Carvalheiro, L.C Duarte, S Marques, R BogelŁukasik Hemicelluloses for fuel ethanol: A review Bioresource Technology, 101, (13), 2010, 4775-4800 13 R Alen Structure and chemical composition of wood In: Stenius P., editor (Ed.), Forest Prod Chem Helsinki: 2000, 12–57 14 Hetti Palonen Role of lignin in the enzymatic hydrolysis of lignocellulose, VTT Biotechnology, 2004, 11-39 15 A Hatakka Biodegradation of lignin Biopolymers: Lignin, humic substances and coal, 2001, 1, 129-180 16 Y.L Lin, C.W Dence In: Methods in lignin chemistry 1st ed New York: Springer-Verlag Berlin, 1992 17 http://www.pvn.vn/?portal=news&page=detail&category_id=11&id=516, 11/6/2018 18 Lê Quang Diễn, Phạm Tuấn Anh, Tô Kim Anh, Nguyễn Thị Minh Nguyệt Thu nhận xenlulozơ từ bã mía cho sản xuất ethanol sinh học theo phương pháp xử lý với axit axetic Tạp chí hóa học, 2015, 53 (1), 50-55 19 https://www.mard.gov.vn/Pages/hoi-nghi-tong-ket-san-xuat-nien-vu-mia-duong- 2016-2017.aspx, 29/6/2018 20 A Pandey, C.R Soccol, P Nigam, V.T Soccol Biotechnological potential of agro-industrial residues I Sugarcane bagasse, Bioresour Technol., 2000, 74, 69-80 21 A.P Fernandes, C.A Alves, C Gonc¸alves, L Tarelho, C Pio, C Schimdlb H Bauerb Emission factors from residential combustion appliances burning Portuguese biomass fuels, Journal of Environmental Monitoring, 13, 2011, 31963206 140 22 J.S Van Dyk, B.I Pletschke Lignocellulose bioconversion using enzymatic hydrolysis and synergistic cooperation between enzymes factors affecting enzymes, conversion and synergy Biotechnol., 2012, 30, 1458-1480 23 M Latha Gandla, C Martín and J Jưnsson Analytical Enzymatic Saccharification of Lignocellulosic Biomass for Conversion to Biofuels and BioBased Chemicals Energies 2018, 11, 2936 24 C Martin, B Alrikkson, A Sjode, N Nilverbant, L.J Jonsson Dilute sulphuric acid pretreatment of agricultural and agro-industrial residues for ethanol production Appl Biochem Biotechnol., 2007, 136, 339–352 25 I Cybulska, H Lei, J Julson, Hydrothermal pretreatment and enzymatic hydrolysis of Prairie cord grass Energy Fuels, 2010, 24, 718–727 26 Y Sun, J Cheng Hidrolysis of lignocellulosic bagasses for ethanol production: a review Bioresour Technol., 2002, 83, 1–11 27 J.D McMillan, M.E Himmel, J.O Baker, R.P Overend, Pretreatment of lignocellulosic biomass In: Enzymatic ConVersion of Biomass for Fuels Production; American Chemical Society: Washington, DC, 1994, 292-324 28 M.J Taherzadeh, K Karimi Acid-based hydrolysis processes for ethanol from lignocellulosic materials: a review, Bio Resour., 2007, 2, 472-499 29 Zhanying Zhang, Ian M O’Hara, Sagadevan Mundree, Baoyu Gao, Andrew S Ball, Nanwen Zhu, Zhihui Bai and Bo Jin Biofuels from food processing wastes, Current Opinion in Biotechnology, 2016, 38, 97–105 30 K Kucharska, P Rybarczyk, I Hołowacz, R Łukajtis, M Glinka and M Kaminski Pretreatment of Lignocellulosic Materials as Substrates for Fermentation Processes Molecules, 23(11), 2018, 29-37 31 L Keikhosro Karimi Mohammad, Taherzadeh Pretreatment of Lignocellulosic Wastes to Improve Ethanol and Biogas Production, International Journal of Molecular Sciences, 2008, 9, 1621-1651 141 32 R.A Silverstein, Y Chen, R.R Sharma-Shivappa, M.D Boyette, J A Osborne Comparison of chemical pretreatment methods for improving saccharification of cotton stalks Bioresour Technol., 2007, 98, 3000-3011 33 B.C Saha, B.I Loren, M.A Cotta, Y.V Wu Dilute acid pretreatment, enzymatic saccharification and fermentation of wheat straw to ethanol Process Biochem., 2005, 40, 3693-3700 34 Trần Đình Toại, Nguyễn Thị Vân Hải Động học trình xúc tác sinh học, NXB Khoa học Kỹ thuật, Hà Nội, 2005 35 D.B Wilson Cellulases and biofuels Curr Opi Biotechnol., 2009, 20, 295-299 36 P Roberts, S Evans The Book of Fungi: A Life-Size Guide to Six Hundred Species from around the World University of Chicago Press, Chicago and London, UK, 2011 37 Trịnh Tam Kiệt Nấm lớn Việt Nam, Nhà xuất Khoa học tự nhiên Công nghệ, (Tái lần thứ 2), 2011 38 C Liers, R Ullrich, K.T Steffen, A Hatakka, M Hofrichter Mineralization of 14C-labelled synthetic lignin and extracellular enzyme activities of the woodcolonizing ascomycetes Xylaria hypoxylon and Xylaria polymorpha Appl Microbiol Biotechnol., 2006, 69 (5), 573-579 39 D.W Wong Feruloyl esterase: a key enzyme in biomass degradation Appl Biochem Biotechnol., 2006, 133, 87-112 40 H Mori, K Kawabata, N Yoshimi Chemopreventive effects of ferulic acid on oral and rice germ on large bowel carcinogenesis Anticancer Res., 1999, 19, 3775-3778 41 Yang Ling Liang, Zheng Zhang, Min Wu and Jia Xun Feng Isolation, screening and identification of cellulolytic bacteria from natural reserves in the subtropical region of china and optimization of cellulose production by Paenibacillus terrae ME27-1 BioMed Research International, 2014, 2014, 497-512 142 42 Dương Minh Lam, Đỗ Đức Quế, Trần Huyền Trang Thành phần loài Xylaria Vườn Quốc gia Cúc Phương, Ninh Bình Báo cáo số 135, 4th National conference on ecology and biological resources, 2011, Hanoi 43 Parveen Kumar, M Diane Barrett, J Michael Delwiche and Pieter Stroeve Methods for Pretreatment of Lignocellulosic Biomass for Efficient Hydrolysis and Biofuel Production Industrial & Engineering Chemistry Research, 2009, 48 (8), 3713–3729 44 P Elba, S Bon, Maria Antonieta Ferrara Bioethanol production via enzymatic hydrolysis of cellulosic biomass FAO seminar held in Rome, 2015, 58 (3), 415521 45 D Peters Raw materials Adv Biochem Eng Biotechnol, 2007, 105, 1-30 46 H Lee, R.J To, R.K Latta Some properties of extracellular acetylxylan esterase produced by the yeast Rhodotorula mucilaginosa Appl Environ Microbiol., 1987, 53, 2831-2834 47 T Juha´sz, Z Szengyel, K Re czey, M Siika-Aho, L Viikari Characterization of cellulases and hemicellulases profuced by Trichoderma reesei on various carbon sources Process Biochem., 2005, 40, 3519 – 3925 48 Martina Andlar, Tonci Rezi, Nenad Marđetko, Daniel Kracher, Roland Ludwig, Bozidar Santek Lignocellulose degradation: An overview of fungi and fungal enzymes involved in lignocellulose degradation Engineering in Life Sciences Eng Life Sci 2018, 0, 1–11 49 J.R.K Cairns and A.Esen β-Glucosidases, Cellular and Molecular Life Sciences, 2010, 67 (20), 3389-3405 50 F Haagensen, B.K Ahring Enzymatic hydrolysis and glucose fermentation of wet oxidized sugarcane bagasse and rice straw for bioethanol production, Environment Microbiology & Biotechnology Research Group, Technical University of Denmark 143 51 H Punnapayak, G.H Emert Use of pachysolen tannophilus in simultaneous Saccharification and Fermentation (Ssf) of lignocelluloslcs Biotechnol Lett,, 1986, 8, 63-66 52 M Dashtban, H Schraft, and W Qin Fungal bioconversion of lignocellulosic residues; opportunities & perspectives, International journal of biological sciences, 2009, 4, 5(6), 578-595 53 A Chana, and T Satyanarayana Xylanase production by thermophilic Bacillus licheniformis A99 in solid-state fermentation, Enzyme and Microbial Technology, 2009, 21 (1), 12-17 54 M Taniguchi, H Suzuki, D Watanabe, K Sakai, K Hoshino and T Tanaka Evaluation of pretreatment with Pleurotus ostreatus for enzymatic hydrolysis of rice straw, Journal of bioscience and bioengineering, 2005, 100 (6), 637-643 55 M Kurakake, N Ide and N Komaki Biological pretreatment with two bacterial strains for enzymatic hydrolysis of office paper, Current microbiology, 2007, 54 (6), 424-428 56 P Biely Microbial carbohydrate esterases deacetylating plant polysaccharides Biotechnol Adv 2012, 30, 1575-1588 57 M Sundberg, K Poutanen, P Markkanen & M Linko An extracellular esterase of Aspergillus awamori Biotechnol Appl Biochem 1990, 12, 670-680 58 J Linden, M Samara, S Decker Purification and characterization of an acetyl esterase from Aspergillus niger Biotechnol Appl Biochem, 1994, 45, 383-393 59 P Christakopoulos, D Mamma, D Kekos & B Macris Enhanced acetyl esterase production by Fusarium oxysporum World J Microbiol Biotechnol 1999, 15, 443-446 60 C.B Faulds, G Williamson Purification and characterization of a ferulic acid esterase (FAE-111) from Aspergillus niger: specificity for the phenolic moiety and binding to microcrystalline cellulose Microbiol., 1994, 140, 779-787 144 61 S Mathew, T.E Abraham Ferulic acid: an antioxidant found naturally in plant cell walls and feruloyl esterases involved in its release and their applications Crit Rev Biotechnol., 2004, 24, 59-83 62 V.F Crepin, C.B Faulds Connerton IF Functional classification of the microbial feruloyl esterases Appl Microbiol Biotechnol 2004, 63(6), 647-52 63 T Koseki, A Hori, S Seki, T Murayama & Y Shiono Characterization of two distinct feruloyl esterazas, AoFaeB and AoFaeC, from Aspergillus oryzae Appl Microbiol Biotechnol 2009, 83, 689-696 64 R.P Jolie, T Duvetter, A.M Van Loey & M.E Hendrickx Pectin methylesteraza and its proteinaceous inhibitor Carbohydr Res 345, 2583-2595 65 I Benoit, D Navarro, N Marnet Feruloyl esterases as a tool for the release of phenolic compounds from agro-industrial by-products Carbohydr Res., 2006, 341, 1820-1827 66 E.G Benoit, R.J Danchin, R.P Bleichrodt Biotechnological applications and potential of fungal feruloyl esterases based on prevalence, classification and biochemical diversity Biotechnol Lett 2008, 30, 387-396 67 J.B Sutherland and D L Crawford Lignin and glucan degradation by species of the Xylariaceae Trans Br Mycol Soc 1981, 76, 335-337 68 S Mani, G Lope, A Tabil, K Opoku Bioethanol from Agricultural Crop Residues - an overview ASAE/CSAE meeting presentation, Canada, 2002 69 POET-DSM Advanced Biofuels LLC First commercial-scale cellulosic ethanol plant in the U.S opens for business www.poetdsm.com, 2014 70 C Krishnan, L.C Sousa, M Jin, L Chang, B Dale, V Ebalan Alkali-based AFEX pretreatment for the conversion of sugarcane bagasse and cane leaf residues to ethanol Biotechnol Bioeng., 2005, 107, 441–450 71 C Manochio, B.R Andrade, R.P Rodriguez, B.S Moraes Ethanol from biomass: A comparative overview Renew Sust Energ Rev 2017, 80, 743–755 72 US Department of Energy/Energy Efficiency and Renewable Energy Alternative fuels data center (www.afdc.energy.gov) 145 73 C.R Soccol, L.P.S Vandenberghe, A.B.P Medeiros, S.G Karp, M Buckeridge, L.P Ramos, A.P Pitarelo, V Ferreira-Leitao, L.M.F Gottschalk, M.A Ferrara, E.P.S Bon, L.M.P Moraes, J.A Araújo, F.A.G Torres Bioethanol from lignocelluloses: status and perspectives in Brazil, Bioresour Technol., 2010, 101, 4820-4825 74 http://www.sinhhocvietnam.com/vn/modules.php?name=News&file=article&sid= 106, 27/7/2018 75 US Department of energy, energy information administration (EIA, 2016a), 2000-12 data; renewable Fuels Association (RFA, 2017), 2013-16 data 76 E.P Deurwaarder, J.H Reith Bioethanol in Europe - Overview and comparison of production, GAVE programme 77 http://www.agroviet.gov.vn, 11/6/2018 78 Đỗ Trung Sỹ, Luận án Tiến Sĩ Nghiên cứu chuyển hóa rong biển, phế thải nơng nghiệp chứa carbohydrate thành ethanol sử dụng xúc tác sinh học, 2016, Học Viện Khoa học Cơng nghệ 79 Phan Đình Tuấn Nghiên cứu sản xuất ethanol nhiên liệu từ rơm rạ, TCVN 4993 – 89, 2008 80 J Szczodrak, J Fiedurek Technology for conversion of lignocellulosic biomass to ethanol Biomass Bioenergy, 1996, 10 (5e6), 367- 375 81 A.B.M.S Hossain, S Saleh, A.A Aishah, A.N.Boyce, P.P Chowdhury, Naquiddin M., Bioethanol production from agricultural waste biomass as arenewable bioenergy resource in biomaterials, IFMBE proceedings, 2008, 21 82 R Banerjee and A Pandey Bio-industrial applications of sugarcane bagasse: A technological perspective International Sugar Journal, 2002, 104 (1238), 64, 66– 67 83 Nguyên Đức Minh Tương lai diesel sinh học, Báo cáo số 7, April 28th-2017, National conference on biological resources, 2017, Hanoi 84 P Binod, K.U Janu, R Sindhu, A Pandey Hydrolysis of lignocellulosic biomass for bioethanol production In: Pandey, A., Larroche, C., Ricke, S.C (Eds.), 146 Biofuels: Alternative Feedstocks and Conversion Processes Elsevier Inc., USA, 2011, 229–250 85 M Balat Production of bioethanol from lignocellulosic bagasses via the biochemical pathway: a review Energ Convers Manage 2011, 52, 858–875 86 Parameswaran Binod, Bioethanol production from rice straw:An overview, Bioresource Technology, 2010, 101, 4767–4774 87 M Roehr The Biotechnology of ethanol classical and future application, Weinheim, WILEY-VCH Verlag GmbH, 2001 88 Saha, C Badal Dilute acid pretreatment, enzymatic saccharification and fermentation of wheat straw to ethanol, Process Biochemistry, 2005, 40 (12), 3693-3700 89 Antonio Rodrı ıguez-Chong, Josee Alberto Ramı ırez, Gil Garrote Hydrolysis of sugar cane bagasse using nitric acid: a kinetic assessment, Journal of Food Engineering, 2004, 61, 143–152 90 Satriyo Krido Wahonoa, Cici Darsiha, Vita T Rosyida, Roni Maryana, Diah Pratiwi Optimization of Cellulose Enzyme in the Simultaneous Saccharification and Fermentation of Sugarcane Bagasse on the Second-Generation Bioethanol Production Technology Energy Procedia, 2014, 47, 268-272 91 S.C Rabelo, N.A Amezquita Fonseca, R.R Andrade, R Maciel Filho, A.C Costa Ethanol production from enzymatic hydrolysis of sugarcane bagasse pretreated with lime and alkaline hydrogen peroxide Biomass and bioenergy, 2011, 35, 2600-2607 92 Maria Carolina de Albuquerque Wanderley, Carlos Martín, George Jackson de Moraes Rocha, Ester Ribeiro Gouveia Increase in ethanol production from sugarcane bagasse based on combined pretreatments and fed-batch enzymatic hydrolysis Bioresource Technology 2013, 128, 448–453 93 N Carlo, Hamelinck, Greertje van Hooijdonk, André PC Faaij Ethanol from lignocellulosic biomass: techno-economic performance in short – middle - and long - term, Biomass and bioenergy, 2005, 28, 384-410 147 94 B.O Aderemi, E Abu, B.K Highina The kinetics of glucose production from rice straw by Aspergillus niger, African Journal of Biotechnology, 2008, (11), 1745-1752 95 S Abedinifar, K Karimi, M Khanahmadi, M.J Taherzadeh Ethanol production by Mucor indicus and Rhizopus oryzae from rice straw by separate hydrolysis and fermentation Biomass Bioenergy, 2009, 33, 828-833 96 A Abdulkareem, Saka Member, S Ayo Afolabi, Member and M.U Ogochukwu Production and Characterization of Bioethanol from Sugarcane Bagasse as Alternative Energy Sources, Proceedings of the World Congress on Engineering, 2015, Vol II WCE 2015 july 1-3, London, UK 97 http://www.vinachem.com.vn, 16/6/2018 98 Harshvadan Patel, Digantkumar Chapla, Amita Shah Bioconversion of pretreated sugarcane bagasse using enzymatic and acid followed by enzymatic hydrolysis approaches for bioethanol production, Renewable Energy, 2017, 109, 323-331 99 Yến L.T.H, Thủy N.T.P, Đức N.A Bước đầu nghiên cứu khả sinh enzyme phân hủy xác thực vật nhóm nấm sợi phân lập từ rụng Việt nam, Tạp chí Di truyền học ứng dụng, 2009, 5, 15-21 100 Nguyễn Văn Vinh, Bùi Minh Trí, Hyeun Jong Bae Đánh giá chất lượng số loại sinh khối thải từ mía, sắn ảnh hưởng kỹ thuật tiển xử lí nhằm chuyển hóa thành cồn sinh học Tạp chí sinh học, 2014, 36 (1se), 301-306 101 http://www.vpct.gov.vn/Trangch%E1%BB%A7/tabid/53/KHCNCommand/task Details/TaskID/229/Default.aspx, 23/7/2018 102 D.H Nghi, B Bittner, H Kellner The wood-rot ascomycete Xylaria polymorpha produces a novel GH78 glycoside hydrolase that exhibits α-Lrhamnosidase and feruloyl esterase activity and releases hydroxycinnamic acids from lignocelluloses, Appl Environ Microbiol., 2012, 78, 4893-4901 103.Do Huu Nghi , René Ullrich, Franco Moritz , Le Mai Huong, Do Huu Chi, Martin Hofrichter, Christiane Liers The Ascomycete Xylaria polymorpha Produces an 148 Acetyl Esterase That Solubilises Beech Wood Material to Release Water-soluble Lignin Fragments, Journal Korean Soci Appl Biol Chem, 2015, 58 (3), 415-521 104 E.N Bannerman and J Nicolet Isolation and characterization of an enzyme with esterase activity from Micropolyspora faeni Appl Environ Microbiol 1976, 32(1):138 105 Nguyễn Hoài Hương, Bùi Văn Thế Vinh Báo cáo thực hành hóa sinh, trường đại học kĩ thuật cơng nghệ thành phố Hồ Chí Minh, 2009 106 J.J Doyle, A rapid ADN isolation procedure for small quantities of fresh leaf tissue Phytochemical Bulletin, 1987, 19, 11-15 107 T.J White, T Bruns, S Lee, J Taylor Amplification and direct sequencing of fungal ribosomal RNA genes for phylogenetics In: PCR Protocols: a guide to methods and applications (Innis MA, Gelfand DH, Sninsky JJ, White TJ, eds) Academic Press, New York, USA, 1990, 315–322 108 T.A Hall, BioEdit: a user-friendly biological sequence alignment editor and analysis program for Windows 95/98/NT, Nucl Acids Symp Ser., 1999, 41, 9598 109 K.B Nicholas, H.B.J Nicholas GeneDoc 2.7: a tool for editing and annotating multiple sequence alignments, 1997 110 http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST 111 K Tamura, G Stecher, D Peterson, A Filipski, S Kumar, MEGA6.0.6: Molecular Evolutionary Genetics Analysis Version 6.0.6 Mol Biol Evol., 2013, 30, 2725-2729 112 H Lee, R.J To, R.K Latta, P Biely and H Schneider Some properties of extracellular acetylxylan esterase produced by the yeast Rhodotorula mucilaginosa Appl Environ Microbiol 1987, 53, 2831-2834 113 D.L Blum, I.S Kataeva, X.L Li and L.G Ljungdahl Feruloyl esterase activity of the Clostridium thermocellum cellulosome can be attributed to previously unknown domains of XynY and XynZ J Bacteriol 2000, 182, 13461351 149 114 T.K Kirk, R.L Farrell Enzymatic “combustion”: the microbial degradation of lignin Annu Rev Microbiol., 1987, 41, 465-505 115 C Dupont, N Daigneault, F.Shareck, R Morosoli and D Kluepfel Purification and characterization of an acetyl xylan esterase produced by Streptomyces lividans Biochem J 1976, 319, 881-886 116 M M Bradford Rapid and Sensitive Method for the Quantitation of Microgram Quantities of Protein Utilizing the Principle of Protein-Dye Binding, Analytical Biochemistry, 1976, 72, 248-254 117 U.K Laemmli Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4 Nature, 1970, 227, 680-685 118 R Chandraju, S Mythily, C Chidan Kumar Liquid Chromatography/Mass Spectroscopy and TLC Analysis for the Identification of Sugars Extracted from the Outer Skin of Almond Fruit (Prunus dulcis), Recent Research in Science and Technology, 2011, (7), 58-62 119 P Muzikar, et al Accelerator Mass Spectrometry in Geologic Research, Geological Society of America Bulletin v., 2003, 115, 643 - 654 120 G.L Miller Use of dinitrosalicylic acid reagent for determination of reducing sugar, Anal Chem., 1959, 3, 426-428 121 Hồng Minh Nam Nghiên cứu cơng nghệ sản xuất thiết bị liên tục xử lý rơm xạ nước để lên men ethanol, 2009 Báo cáo đề tài cấp Bộ Trường Đại học Bách Khoa Thành Phố Hồ Chí Minh 122 ĐLVN 291:2016 Ethanol standard solution - Testing procedure, Văn kỹ thuật đo lường Việt Nam, dung dịch chuẩn cồn quy trình thử nghiệm 123 College of Science, University of Canterbury Determination of Ethanol Concentration in Aqueous Solutions Christchurch new zbaland, New Zealand 124 Nguyễn Minh Tuyền Quy hoạch thực nghiệm, NXB Khoa học Kỹ thuật Hà Nội, 2007 125 Phạm Hồng Hải, Ngô Kim Chi Xử lý số liệu quy hoạch thực nghiệm nghiên cứu hóa học, NXB Khoa học tự nhiên Công nghệ, Hà Nội, 2007 150 126 K Poutanen, J Puls Characteristics of Trichoderma reesei β-xylosidase and its use in the hydrolysis of solubilized xylans Appl Microbiol Biotechnol, 1988, 28, 425–432 127 F.J.M Kormelink, B Lefebvre, F Strozyk, A.G.J Voragen Purification and characterization of an acetyl xylan esterase from Aspergillus niger J Biotechnol., 1993, 27, 267-282 128 S Tsujiyama and N Nakano Distribution of acetyl esterase in wood-rotting fungi Mycoscience, 1996, 37, 289–294 129 P Basaran, Y.D Hang Purification and characterization of acetyl esterase from Candida guilliermondii, Applied microbiology, 2000, 30(2),167-171 130 S Atta, S Ali, M.N Akhtar and I Haq Determination of some significant batch culture conditions affecting acetyl-xylan esterase production by Penicillium notatum NRRL-1249, BMC Biotechnol 2011, 11: 52 131 G Degrassi, B.C Okeke, C.V Bruschi and V Venturi Purification and characterization of an acetyl xylan esterase from Bacillus pumilis Appl Environ Microbiol 1998, 64(2), 789-792 132 T Koseki, S Furuse, K Iwano, H Sakai and Matsuzawa An Aspergillus awamori acetylesterase: purification of the enzyme, and cloning and sequencing of the gene Biochem J 1997, 326, 485-490 133 Shiyi Ou, Jing Zhang, Yong Wang, and Ning Zhang Production of Feruloyl Esterase from Aspergillus niger by Solid-State Fermentation on Different Carbon Sources Enzyme Research, 2011, Article ID 848939 134 Michele Asther, Mireille Haon, Sevastianos Roussos, Eric Record Feruloyl esterase from Aspergillus niger: a comparison of the production in solid state and submerged fermentation Article in Process Biochemistry, Process Biochemistry, 2002, 38, (5), 685-691 135 J.A Donaghy, A.M McKay Production of feruloyl/rho-coumaroyl esterase activity by Penicillium expansum, Penicillium brevicompactum and Aspergillus niger J Appl Bacteriol 1995 Dec, 79 (6), 657-62 151 136 R.E Purdy, P.E Kolattukudy Depolymerisation of a hydroxy fatty acid biopolymer, cutin, by an extracellular enzyme from F solani f pisi isolation and some properties of the enzyme Arch Biochem Biophys., 1973, 159, 61–69 137 W Zhoua, X Liub, L Yec The biotransformation of astragalosides by a novel acetyl esterase from Absidia corymbifera AS2, Process Biochem., 2014, 49, 14641471 138 Rossana Liguori, Elena Ionata, LoredanaMarcolongo, Luciana Porto de Souza Vandenberghe, Francesco La Cara and Vincenza Faraco1 Optimization of Arundo donax Saccharification by (Hemi)cellulolytic Enzymes from Pleurotus ostreatus BioMed Research International , 2015, Article ID 951871 139 A Ruangmee and C Sangwichien Response surface opti-mization of enzymatic hydrolysis of narrow-leaf cattail for bioethanol production, Energy Conversion and Management, 2013, 73, 381-388 140 Ilona Sárvári Horváth, Carl Johan Franzén, Mohammad J Taherzadeh, Claes Niklasson, Gunna Lidén Effect of Fufural on the Respiratory Metabolism of Saccharomyces Cerevisiae in Glucose-Limited Chemostats, American Scociety for Microbiology, 2004, 69, 4076-4086 141 A Shatalov and H Pereira Xylose production from giant reed (Arundo donax L.): modeling and optimization of dilute acid hydrolysis, Carbohydrate Polymers, 2012, 87 (1), 210-217 142 C.E Wyman, B.E Dale, R.T Elander, M Holtzapple, M.R Ladisch, Y.Y Lee Comparative sugar recovery data from laboratory scale application of leading pretreatment technologies to corn stover Bioresour Technol 2005, 96, 2026– 2032 143 Lương Đức Phẩm Nấm men công nghiệp, NXB Khoa học Kỹ thuật, 2006 144 Le Mini Guide Des Champignons by Jean Marie Polese, NXB Konemann, 2000 152 ... tác chuyển hóa hiệu chất cần kết hợp nhiều enzyme có tác dụng hiệp đồng Do vậy, mục đích đề tài luận án ? ?Nghiên cứu phối hợp esterase hệ enzyme thủy phân từ nấm chuyển hóa phụ phẩm cơng-nơng nghiệp. .. nghiệp để thu nhận bioethanol” nhằm sử dụng hỗn hợp enzyme phù hợp (? ?enzyme cocktail”) bao gồm hệ enzyme esterase (acetyl esterase feruloyl esterase) , enzyme thủy phân và/ hoặc oxy hóa từ nấm để phân. .. bioethanol Một hướng nghiên cứu nhiều tiềm để khắc phục tồn việc phối hợp thủy phân hóa học kết hợp xúc tác sinh học hỗn hợp enzyme thủy phân hay ? ?enzyme cocktail” để chuyển hóa bã mía thành đường