(Khóa luận tốt nghiệp) Khảo sát tính chất của Enzyme Lipase cố định trên vật liệu Cellulose vi khuẩn

(Khóa luận tốt nghiệp) Khảo sát tính chất của Enzyme Lipase cố định trên vật liệu Cellulose vi khuẩn(Khóa luận tốt nghiệp) Khảo sát tính chất của Enzyme Lipase cố định trên vật liệu Cellulose vi khuẩn(Khóa luận tốt nghiệp) Khảo sát tính chất của Enzyme Lipase cố định trên vật liệu Cellulose vi khuẩn(Khóa luận tốt nghiệp) Khảo sát tính chất của Enzyme Lipase cố định trên vật liệu Cellulose vi khuẩn(Khóa luận tốt nghiệp) Khảo sát tính chất của Enzyme Lipase cố định trên vật liệu Cellulose vi khuẩn(Khóa luận tốt nghiệp) Khảo sát tính chất của Enzyme Lipase cố định trên vật liệu Cellulose vi khuẩn(Khóa luận tốt nghiệp) Khảo sát tính chất của Enzyme Lipase cố định trên vật liệu Cellulose vi khuẩn(Khóa luận tốt nghiệp) Khảo sát tính chất của Enzyme Lipase cố định trên vật liệu Cellulose vi khuẩn(Khóa luận tốt nghiệp) Khảo sát tính chất của Enzyme Lipase cố định trên vật liệu Cellulose vi khuẩn(Khóa luận tốt nghiệp) Khảo sát tính chất của Enzyme Lipase cố định trên vật liệu Cellulose vi khuẩn(Khóa luận tốt nghiệp) Khảo sát tính chất của Enzyme Lipase cố định trên vật liệu Cellulose vi khuẩn(Khóa luận tốt nghiệp) Khảo sát tính chất của Enzyme Lipase cố định trên vật liệu Cellulose vi khuẩn(Khóa luận tốt nghiệp) Khảo sát tính chất của Enzyme Lipase cố định trên vật liệu Cellulose vi khuẩn(Khóa luận tốt nghiệp) Khảo sát tính chất của Enzyme Lipase cố định trên vật liệu Cellulose vi khuẩn(Khóa luận tốt nghiệp) Khảo sát tính chất của Enzyme Lipase cố định trên vật liệu Cellulose vi khuẩn(Khóa luận tốt nghiệp) Khảo sát tính chất của Enzyme Lipase cố định trên vật liệu Cellulose vi khuẩn(Khóa luận tốt nghiệp) Khảo sát tính chất của Enzyme Lipase cố định trên vật liệu Cellulose vi khuẩn

TRƯỜNG ĐẠI HỌC SƯ PHẠM KỸ THUẬT THÀNH PHỐ HỒ CHÍ MINH KHOA CƠNG NGHỆ HĨA HỌC VÀ THỰC PHẨM BỘ MƠN CƠNG NGHỆ THỰC PHẨM KHĨA LUẬN TỐT NGHIỆP MÃ SỐ: 2020-16116126 KHẢO SÁT TÍNH CHẤT CỦA ENZYME LIPASE CỐ ĐỊNH TRÊN VẬT LIỆU CELLULOSE VI KHUẨN GVHD: TS VŨ TRẦN KHÁNH LINH SVTH: Trần Thị Như Hảo – 16116126 Trương Thị Thu – 16116176 THÀNH PHỐ HỒ CHÍ MINH – 01/2021 LỜI CẢM ƠN Đầu tiên, chúng xin gửi lời cám ơn chân thành đến cô Vũ Trần Khánh Linh - giảng viên Khoa Cơng nghệ Hóa học Thực phẩm tận tình bảo, hướng dẫn, truyền đạt kinh nghiệm, kiến thức chuyên môn kỹ cần thiết để chúng tơi thực thí nghiệm cách hiệu khoa học Để hồn thành q trình nghiên cứu hoàn thiện luận văn, lời đầu tiên xin chân thành cảm ơn sâu sắc đến quý thầy cô môn Công Nghệ Thực Phẩm, khoa Cơng Nghệ Hóa Thực Phẩm, trường Đại học Sư Phạm Kỹ Thuật Thành phố Hồ Chí Minh tạo điều kiện sở, vật chất cho học tập nghiên cứu trường Cảm ơn thầy cô nhiệt tình giảng dạy, truyền đạt kiến thức tảng cho suốt năm học Sau chúng tơi xin cảm ơn gia đình, bạn bè và đặc biệt chị Nguyễn Thụy Kim Anh- động viên, giúp đỡ suốt thời gian qua Vì kiến thức kinh nghiệm cịn hạn hẹp nên luận văn không tránh khỏi thiếu sót Kính mong nhận góp ý từ q thầy để đề tài chúng tơi hoàn thiện Một lần nữa, xin trân trọng cảm ơn! SV: Trần Thị Như Hảo, Trương Thị Thu i ii iii iv v vi vii viii ix 36 Inoue, B S., Streit, S., dos Santos Schneider, A L., & Meier, M M (2020) Bioactive bacterial cellulose membrane with prolonged release of chlorhexidine for dental medical application International journal of biological macromolecules, 148, 1098-1108 37 Iik, C., Arabaci, G., Doaỗ, Y I., Deveci, İ., & Teke, M (2019) Synthesis and characterization of electrospun PVA/Zn2+ metal composite nanofibers for lipase immobilization with effective thermal, pH stabilities and reusability Materials Science and Engineering: C, 99, 1226-1235 38 Ismail, A R., & Baek, K H (2020) Lipase immobilization with support materials, preparation techniques, and applications: Present and future aspects International Journal of Biological Macromolecules 39 spirli Doaỗ, Y., Deveci, ., Mercimek, B., & Teke, M (2017) A comparative study for lipase immobilization onto alginate based composite electrospun nanofibers with effective and enhanced stability International Journal of Biological Macromolecules, 96, 302–311 40 Jaeger , K E., Dijkstra, B W., & Reetz, M T (1999) Bacterial biocatalysts: molecular biology, three-dimensional structures, and biotechnological applications of lipases Annual Reviews in Microbiology, 53(1), 315-351 41 Jaeger, K E., Ransac, S., Dijkstra, B W., Colson, C., van Heuvel, M., & Misset, O (1994) Bacterial lipases FEMS microbiology reviews, 15(1), 29-63 42 Jesionowski, T., Zdarta, J., & Krajewska, B (2014) Enzyme immobilization by adsorption: A review Adsorption, 20(5-6), 801-821 43 Jiang, Y., Liu, H., Wang, L., Zhou, L., Huang, Z., Ma, L., & Gao, J (2019) Viruslike organosilica nanoparticles for lipase immobilization: characterization and biocatalytic applications Biochemical Engineering Journal, 144, 125-134 44 Jonas, R., & Farah, L F (1998) Production and application of microbial cellulose Polymer Degradation and Stability, 59(1-3), 101–106 45 Kharrat, N., Ali, Y B., Marzouk, S., Gargouri, Y T., & Karra-Châabouni, M (2011) Immobilization of Rhizopus oryzae lipase on silica aerogels by adsorption: Comparison with the free enzyme Process Biochemistry, 46(5), 1083-1089 82 46 Kim, D.-Y., Nishiyama, Y., & Kuga, S (2002) Surface acetylation of bacterial cellulose Cellulose, 9(3-4), 361-367 47 Kim, H J., Jin, J N., Kan, E., Kim, K J., & Lee, S H (2017b) Bacterial cellulosechitosan composite hydrogel beads for lipase immobilization Biotechnology and Bioprocess Engineering, 22(1), 89-94 48 Kim, H J., Park, S., Kim, S H., Kim, J H., Yu, H., Kim, H J., & Lee, S H (2015) Biocompatible cellulose nanocrystals as supports to immobilize lipase Journal of Molecular Catalysis B: Enzymatic, 122, 170-178 49 Kim, J H., Park, S., Kim, H., Kim, H J., Yang, Y H., Kim, Y H., & Lee, S H (2017a) Alginate/bacterial cellulose nanocomposite beads prepared using Gluconacetobacter xylinus and their application in lipase immobilization Carbohydrate polymers, 157, 137-145 50 Kongruang, S (2007) Bacterial cellulose production by Acetobacter xylinum strains from agricultural waste products In Biotechnology for Fuels and Chemicals (pp 763774): Springer 51 Konwar, B K., & Sagar, K (2018) Lipase: an industrial enzyme through metagenomics CRC Press 52 Krohn, R I (2005) The Colorimetric Detection and Quantitation of Total Protein Current Protocols in Toxicology 53 Krystynowicz, A., Czaja, W., Wiktorowska-Jezierska, A., Gonỗalves-Mikiewicz, M., Turkiewicz, M., & Bielecki, S (2002) Factors affecting the yield and properties of bacterial cellulose Journal of Industrial Microbiology and Biotechnology, 29(4), 189195 54 Kujur, M., & Kumar Patel, A (2014) Kinetics of soil enzyme activities under different ecosystems: An index of soil quality Chilean journal of agricultural research, 74(1), 96-104 55 Li, J., Zhang, L.-P., Peng, F., Bian, J., Yuan, T.-Q., Xu, F., & Sun, R.-C (2009) Microwave-assisted solvent-free acetylation of cellulose with acetic anhydride in the presence of iodine as a catalyst Molecules, 14(9), 3551-3566 83 56 Li, Y., Gao, F., Wei, W., Qu, J B., Ma, G H., & Zhou, W Q (2010) Pore size of macroporous polystyrene microspheres affects lipase immobilization Journal of Molecular Catalysis B: Enzymatic, 66(1-2), 182-189 57 Liu, C H., Lin, Y H., Chen, C Y., & Chang, J S (2009) Characterization of Burkholderia lipase immobilized on celite carriers Journal of the Taiwan Institute of Chemical Engineers, 40(4), 359-363 58 Luo, M T., Li, H L., Huang, C., Zhang, H R., Xiong, L., Chen, X F., & Chen, X D (2018) Cellulose-based absorbent production from bacterial cellulose and acrylic acid: Synthesis and performance Polymers, 10(7), 702 59 Malcata, F X., Reyes, H R., Garcia, H S., Hill, C G., & Amundson, C H (1990) Immobilized lipase reactors for modification of fats and oils—a review Journal of the American Oil Chemists’ Society, 67(12), 890-910 60 Marsden, W L., Gray, P P., Nippard, G J., & Quinlan, M R (1982) Evaluation of the DNS method for analysing lignocellulosic hydrolysates Journal of Chemical Technology and Biotechnology, 32(7‐12), 1016-1022 61 Mateo, C., Palomo, J M., Fernandez-Lorente, G., Guisan, J M., & Fernandez-Lafuente, R (2007) Improvement of lipase activity, stability and selectivity via immobilization techniques Lipase and microbial technology, 40(6), 1451-1463 62 Misset, O., & van Dijk, A (1998) Diagnosing the inactivating process of lipases In Progress in biotechnology (Vol 15, pp 3-18) Elsevier 63 Mohite, B V., & Patil, S V (2014) A novel biomaterial: bacterial cellulose and its new era applications Biotechnology and Applied Biochemistry, 61(2), 101-110 64 Moniri, M., Boroumand Moghaddam, A., Azizi, S., Abdul Rahim, R., Bin Ariff, A., Zuhainis Saad, W., Mohamad, R (2017) Production and status of bacterial cellulose in biomedical engineering Nanomaterials, 7(9), 257 65 Monteiro, R R., Lima, P J., Pinheiro, B B., Freire, T M., Dutra, L M., Fechine, P., & Fernandez-Lafuente, R (2019) Immobilization of lipase A from Candida antarctica onto chitosan-coated magnetic nanoparticles International journal of molecular sciences, 20(16), 4018 84 66 Nascimento, D M., Nunes, Y L., Figueirêdo, M C., de Azeredo, H M., Aouada, F A., Feitosa, J P., Dufresne, A (2018) Nanocellulose nanocomposite hydrogels: technological and environmental issues Green Chemistry, 20(11), 2428-2448 67 Nestorson, A., Neoh, K G., Kang, E T., Järnström, L., & Leufvén, A (2008) Enzyme immobilization in latex dispersion coatings for active food packaging Packaging Technology and Science: An International Journal, 21(4), 193-205 68 Nguyen, V T., Flanagan, B., Gidley, M J., & Dykes, G A (2008) Characterization of cellulose production by a Gluconacetobacter xylinus strain from Kombucha Current Microbiology, 57(5), 449 69 Nguyen, V., Gidley, M., & Dykes, G (2008) Potential of a nisin-containing bacterial cellulose film to inhibit Listeria monocytogenes on processed meats Food microbiology, 25(3), 471-478 70 Nikolic, T., Kostic, M., Praskalo, J., Pejic, B., Petronijevic, Z., & Skundric, P (2010) Sodium periodate oxidized cotton yarn as carrier for immobilization of trypsin Carbohydrate Polymers, 82(3), 976-981 71 Nisha, S., Karthick, S A., & Gobi, N (2012) A review on methods, application and properties of immobilized lipase Chemical Science Review and Letters, 1(3), 148-155 72 Okiyama, A., Motoki, M., & Yamanaka, S (1993) Bacterial cellulose IV Application to processed foods Food Hydrocolloids, 6(6), 503-511 73 Pandey, A., Benjamin, S., Soccol, C R., Nigam, P., Krieger, N., & Soccol, V T (1999) The realm of microbial lipases in biotechnology Biotechnology and applied biochemistry, 29(2), 119-131 74 Park, J K., Jung, J Y., & Khan, T (2009) Bacterial cellulose Handbook of Hydrocolloids, 724–739 75 Radotić, K., & Mićić, M (2016) Methods for extraction and purification of lignin and cellulose from plant tissues In Sample preparation techniques for soil, plant, and animal samples (pp 365-376) Humana Press, New York, NY 76 Rajwade, J., Paknikar, K., & Kumbhar, J (2015) Applications of bacterial cellulose and its composites in biomedicine Applied microbiology and biotechnology, 99(6), 24912511 85 77 Rapley, R., & Whitehouse, D (Eds.) (2015) Molecular biology and biotechnology Royal Society of Chemistry, 495-496 78 Ray, A (2012) Application of lipase in industry Asian Journal of Pharmacy and technology, 2(2), 33-37 79 Rodrigues, R C., Virgen-Ortíz, J J., Dos Santos, J C., Berenguer-Murcia, Á., Alcantara, A R., Barbosa, O., & Fernandez-Lafuente, R (2019) Immobilization of lipases on hydrophobic supports: immobilization mechanism, advantages, problems, and solutions Biotechnology advances, 37(5), 746-770 80 Rosenau, F., Tommassen, J., & Jaeger, K E (2004) Lipase‐specific foldases Chembiochem, 5(2), 152-161 81 Sandoval, G (2018) Lipases and phospholipases Springer New York.1.2 82 Santos, S M., Carbajo, J M., Quintana, E., Ibarra, D., Gomez, N., Ladero, M., & Villar, J C (2015) Characterization of purified bacterial cellulose focused on its use on paper restoration Carbohydrate polymers, 116, 173-181 83 Seth, S., Chakravorty, D., Dubey, V K., & Patra, S (2014) An insight into plant lipase research–challenges encountered Protein Expression and Purification, 95, 13-21 84 Shah, N., Ul-Islam, M., Khattak, W A., & Park, J K (2013) Overview of bacterial cellulose composites: a multipurpose advanced material Carbohydrate polymers, 98(2), 1585-1598 85 Shao, W., Liu, H., Liu, X., Wang, S., Wu, J., Zhang, R., et al (2015) Development of silver sulfadiazine loaded bacterial cellulose/sodium alginate composite films with enhanced antibacterial property Carbohydrate Polymers, 132, 351–358 86 Shi, Z., Zhang, Y., Phillips, G O., & Yang, G (2014) Utilization of bacterial cellulose in food Food Hydrocolloids, 35, 539-545 87 Shoda, M., & Sugano, Y (2005) Recent advances in bacterial cellulose production Biotechnology and Bioprocess Engineering, 10(1), 88 Silva, V C F da, Contesini, F J., & Carvalho, P de O (2008) Characterization and catalytic activity of free and immobilized lipase from Aspergillus niger: a comparative study Journal of the Brazilian Chemical Society, 19(8), 1468–1474 86 89 Singh, A K., & Mukhopadhyay, M (2012) Overview of fungal lipase: a review Applied biochemistry and biotechnology, 166(2), 486-520 90 Suratago, T., Taokaew, S., Kanjanamosit, N., Kanjanaprapakul, K., Burapatana, V., & Phisalaphong, M (2015) Development of bacterial cellulose/alginate nanocomposite membrane for separation of ethanol–water mixtures Journal of Industrial and Engineering Chemistry, 32, 305-312 91 Szymańska-Chargot, M., Cybulska, J., & Zdunek, A (2011) Sensing the structural differences in cellulose from apple and bacterial cell wall materials by Raman and FTIR spectroscopy Sensors, 11(6), 5543-5560 92 Tang, Z.-X., Qian, J.-Q., & Shi, L.-E (2007) Characterizations of immobilized neutral lipase on chitosan nano-particles Materials Letters, 61(1), 37–40 93 Thomson, C A., Delaquis, P J., & Mazza, G (1999) Detection and measurement of microbial lipase activity: a review Critical Reviews in Food Science and Nutrition, 39(2), 165-187 94 Thongprajukaew, K., Choodum, A., Sa-E, B., & Hayee, U (2014) Smart phone: a popular device supports amylase activity assay in fisheries research Food chemistry, 163, 87-91 95 Tijskens, L M M., Greiner, R., Biekman, E S A., & Konietzny, U (2001) Modeling the effect of temperature and pH on activity of lipases: the case of phytases Biotechnology and bioengineering, 72(3), 323-330 96 Treichel, H., de Oliveira, D., Mazutti, M A., Di Luccio, M., & Oliveira, J V (2010) A review on microbial lipases production Food and bioprocess technology, 3(2), 182-196 97 Ul-Islam, M., Shah, N., Ha, J H., & Park, J K (2011) Effect of chitosan penetration on physico-chemical and mechanical properties of bacterial cellulose Korean Journal of Chemical Engineering, 28(8), 1736–1743 98 Ullah, H., Santos, H A., & Khan, T (2016a) Applications of bacterial cellulose in food, cosmetics and drug delivery Cellulose, 23(4), 2291–2314 99 Ullah, H., Wahid, F., Santos, H A., & Khan, T (2016b) Advances in biomedical and pharmaceutical applications of functional bacterial cellulose-based nanocomposites Carbohydrate polymers, 150, 330-352 87 100 van Beilen, J B., & Li, Z (2002) Enzyme technology: an overview Current Opinion in biotechnology, 13(4), 338-344 101 Vasconcelos, N F., Andrade, F K., Vieira, L d A P., Vieira, R S., Vaz, J M., Chevallier, P., de Freitas Rosa, M (2020) Oxidized bacterial cellulose membrane as support for lipase immobilization: properties and morphological features Cellulose, 1-29 102 Verma, N., Thakur, S., & Bhatt, A K (2012) Microbial lipases: industrial applications and properties (a review) Int Res J Biol Sci, 1(8), 88-92 103 Wang, J., Tavakoli, J., & Tang, Y (2019) Bacterial cellulose production, properties and applications with different culture methods–A review Carbohydrate polymers, 219, 6376 104 Wang, L., Marciello, M., Estévez‐Gay, M., Soto Rodriguez, P E., Luengo Morato, Y., Iglesias‐Fernández, J., & Sanchez, S (2020) Lipase Conformation Influences the Performance of Lipase‐powered Nanomotors Angewandte Chemie, 132(47), 2126621273 105 Watanabe, K., Tabuchi, M., Morinaga, Y., & Yoshinaga, F (1998) Structural features and properties of bacterial cellulose produced in agitated culture Cellulose, 5(3), 187 106 Whitehurst, R J., & Van Oort, M (Eds.) (2009) Enzymes in food technology John Wiley & Sons 107 Wu, S C., Wu, S M., & Su, F M (2017) Novel process for immobilizing an enzyme on a bacterial cellulose membrane through repeated absorption Journal of Chemical Technology & Biotechnology, 92(1), 109-114 108 Wu, S.-C., & Lia, Y.-K (2008) Application of bacterial cellulose pellets in lipase immobilization Journal of Molecular Catalysis B: Enzymatic, 54(3-4), 103-108 109 Xie, T., Wang, A., Huang, L., Li, H., Chen, Z., Wang, Q., & Yin, X (2009) Recent advance in the support and technology used in lipase immobilization African Journal of Biotechnology, 8(19) 110 Yang, L., Wang, C., Chen, L., Wang, X., Cui, P., & Zhang, T (2017) Effect of aldehydes crosslinkers on properties of bacterial cellulose-poly (vinyl alcohol)(BC/PVA) nanocomposite hydrogels Fibers and Polymers, 18(1), 33-40 88 111 Ye, P., Jiang, J., & Xu, Z K (2007) Adsorption and activity of lipase from Candida rugosa on the chitosan-modified poly (acrylonitrile-co-maleic acid) membrane surface Colloids and surfaces B: Biointerfaces, 60(1), 62-67 112 Yordshahi, A S., Moradi, M., Tajik, H., & Molaei, R (2020) Design and preparation of antimicrobial meat wrapping nanopaper with bacterial cellulose and postbiotics of lactic acid bacteria International Journal of Food Microbiology, 321, 108561 113 Yu, B., Cheng, H., Zhuang, W., Zhu, C., Wu, J., Niu, H., & Ying, H (2019) Stability and repeatability improvement of horseradish peroxidase by immobilization on aminofunctionalized bacterial cellulose Process biochemistry, 79, 40-48 114 Zdarta, J., Meyer, A S., Jesionowski, T., & Pinelo, M (2018) A general overview of support materials for enzyme immobilization: characteristics, properties, practical utility Catalysts, 8(2), 92 115 Zeng, H., Liao, K., Deng, X., Jiang, H., & Zhang, F (2009) Characterization of the lipase immobilized on Mg–Al hydrotalcite for biodiesel Process Biochemistry, 44(8), 791–798 116 Zhao, X., Qi, F., Yuan, C., Du, W., & Liu, D (2015) Lipase-catalyzed process for biodiesel production: Lipase immobilization, process simulation and optimization Renewable and Sustainable Energy Reviews, 44, 182-197 117 Zhong, Q., & Glatz, C E (2006) Enzymatic assay method for evaluating the lipase activity in complex extracts from transgenic corn seed Journal of agricultural and food chemistry, 54(9), 3181-3185 118 Zhu, H., Jia, S., Yang, H., Tang, W., Jia, Y., & Tan, Z (2010) Characterization of bacteriostatic sausage casing: A composite of bacterial cellulose embedded with ɛpolylysine Food Science and Biotechnology, 19(6), 1479-1484 89 PHỤ LỤC Bảng 1: Sớ liệu vẽ đồ thị hình 4.4 Enzyme tự (5 mg) Hoạt tính pH Enzyme cố định (5 mg) Hoạt tính tương Sai số tương đối (%) Sai số đối (%) 9.1 3.3 10.5 1.3 46.4 9.0 30.9 1.3 76.2 3.1 65.5 2.3 95.5 4.0 88.1 2.3 74.1 7.7 62.5 1.3 48.3 5.4 43.7 1.3 10 35.0 3.4 18.1 2.3 11 7.2 3.1 9.8 1.3 Bảng 2: Số liệu vẽ đồ thị hình 4.5 Điều kiện nhiệt độ Enzyme tự (5 Enzyme cố định (5 mg) mg) Hoạt tính tương Hoạt Sai số đối (%) tính tương Sai số đối (%) 20 8.8 3.0 3.8 1.3 30 36.8 5.3 13.5 2.3 37 96.5 3.0 88.0 2.3 50 87.7 3.0 65.4 2.3 60 77.0 4.1 55.7 1.3 70 73.4 2.2 47.4 2.3 80 48.3 5.2 36.1 2.3 Bảng 3: Số liệu vẽ đồ thị hình 4.6 Enzyme tự (5 mg) Hoạt tính pH Enzyme cố định (5 mg) Hoạt tính tương Sai số tương đối (%) Sai số đối (%) 9.3 6.5 51.1 3.4 18.1 6.2 61.7 1.3 74.8 5.4 76.0 1.3 96.6 3.7 87.2 1.3 94.1 3.3 85.7 2.3 76.8 2.7 76.7 2.3 10 62.2 3.8 72.2 2.3 11 24.9 3.2 45.9 4.7 Bảng 4: Sớ liệu vẽ đồ thị hình 4.7 Điều kiện nhiệt độ Enzyme tự (5 Enzyme cố định (5 mg) mg) Hoạt tính tương Hoạt Sai số đối (%) tính tương Sai số đối (%) 20 91.1 4.3 82.1 1.3 30 92.2 1.5 81.3 1.3 37 96.2 3.9 82.8 2.2 50 85.2 3.1 74.8 3.3 60 22.5 3.3 75.5 1.3 70 8.6 3.0 48.7 3.3 80 10.5 5.1 47.9 2.2 Bảng 5: Sớ liệu vẽ đồ thị hình 4.8 Hình 4.8.a) Enzyme tự 5mg Mean SD (U/mg) (U/mg) 0.00 0.00 1.34 0.07 1.52 0.03 1.65 0.05 1.77 0.06 1.86 0.08 1.89 0.03 1.89 0.08 Hình 4.8.b) Enzyme cố định 5mg Nồng độ Mean SD (U/mg) (U/mg) 0.00 0.00 0.3 1.21 0.02 0.4 1.40 0.02 0.5 1.59 0.04 0.6 1.69 0.02 0.7 1.78 0.02 0.8 1.85 0.02 0.9 1.93 0.02 chất (g/mL) Hình 4.8.c) 1/S 1/V SD 3.33 0.75 0.04 2.50 0.66 0.01 2.00 0.61 0.02 1.67 0.57 0.02 1.43 0.54 0.02 1.25 0.53 0.01 1.11 0.53 0.02 Hình 4.8.d) 1/S 1/V SD 3.33 0.83 0.02 2.50 0.71 0.01 2.00 0.63 0.02 1.67 0.59 0.01 1.43 0.56 0.01 1.25 0.54 0.01 1.11 0.52 0.01 Bảng 5: Số liệu vẽ đồ thị 4.9 Thời Enzyme tự (5 mg) Enzyme cố định (5 mg) gian bảo quản Hoạt tính (ngày) tương đối (%) Sai số Hoạt tính tương Sai số đối (%) 96.5 3.0 95.4 1.4 96.5 2.3 91.4 1.4 50.4 6.8 95.0 2.8 10 25.4 4.4 91.0 2.4 15 9.7 4.2 90.6 1.4 Bảng 6: số liệu vẽ đồ thị bảng 4.10 Enzyme cố định (5mg) Hoạt tính Lần tương đối (%) (%) SD (%) 95.37 1.37 92.22 2.36 87.49 2.36 88.28 1.37 87.49 2.36 88.28 2.73 96.95 2.36 89.85 2.36 88.28 2.73 10 84.34 1.37 11 88.28 2.73 12 83.55 2.73 13 97.73 2.73 14 100.10 1.37 15 89.06 4.92 16 84.34 1.37 17 95.37 1.37 18 93.79 3.61 19 88.28 5.95 20 86.70 1.37 21 89.06 1.37 22 96.16 1.37 23 96.95 2.36 24 87.49 6.26 25 93.01 2.73 26 92.22 2.36 27 93.79 1.37 28 93.01 1.37 29 96.16 3.61 30 93.79 2.73 ... Đề tài:” Khảo sát tính chất enzyme lipase cố định vật liệu cellulose thu nhận từ vi khuẩn? ?? gồm nội dung cụ thể sau: - Khảo sát ảnh hưởng nồng độ iodine đến khả cố định lipase - Khảo sát ảnh hưởng... nào gắn tất vật liệu cố định Để trình cố định diễn hiệu lực enzyme vật liệu cố định phải đủ lớn, nhóm chức để tạo tương tác vật liệu cố định enzyme cần thiết Để chọn vật liệu cố định thích... nồng độ iodine khác hoạt tính thủy phân lipid enzyme lipase tự cố định Đề tài thực giới hạn phạm vi khảo sát hoạt tính enzyme lipase tự enzyme cố định vật liệu cellulose vi khuẩn phương pháp acetyl