TẠP CHÍ KHOA HỌC, Đại học Huế, Tập 75A, Số 6, (2012), 67-73
67
ẢNH HƯỞNGCỦAMÔITRƯỜNGDINHDƯỠNG,ĐỘMẶNLÊNSỰSINH
TRƯỞNG CỦAISOCHRYSISGALBANAPARKERVÀTHÀNHPHẦN,HÀM
LƯỢNG AXITBÉOCỦANÓ
Lê Thị Hương, Võ Hành
Đại học Vinh
Tóm tắt. Nghiên cứu ảnhhưởngcủamôitrườngdinhdưỡng,độmặnlênsựsinhtrưởng
của IsochrysisgalbanaParker 1949 và phân tích, xác địnhthànhphần,hàmlượng các axít
béo của tảo cho thấy, trong ba môitrường nhân nuôi: môitrường F2, môitrường Walner và
môi trường TT3 thì môitrường F2 tảo I. galbana phát triển tốt nhất. Ở 3 độmặn nghiên
cứu (25‰, 30‰ và 35‰) thì tảo phát triển tốt nhất ở độmặn 30‰, tuy nhiên nếu nuôi tảo
ở quy mô sản xuất đại trà thì theo chúng tôi, nên tiến hành nuôi ở độmặn 25‰. Về thành
phần vàhàmlượngaxit béo, hàmlượng lipit tổng số chiếm 6.71% trọng lượng tươi và có
10 axitbéo đã được xác định – chiếm 75,06% tổng hàmlượngaxit béo, trong đóaxítbéo
bão hòa chiếm 30,75% còn axítbéo chưa bão hòa – 44,31%.
1. Mở đầu
Isochrysis galbanaParker là loài tảo đơn bào, có kích thước từ 4 – 5m thuộc
ngành Haptophyta. Hiện nay, I. galbana đang được sử dụng rộng rãi để làm thức ăn cho
ấu trùng nuôi thủy sản donó không độc, sinhtrưởng nhanh, tế bào có kích thước nhỏ
phù hợp cho sự tiêu hóa. Mặt khác, tế bào tảo có hàmlượng các axitbéo không bão hòa
đa nối đôi (PUFAs) cao [1]. Tuy nhiên, sựsinh trưởng, hàmlượngvàthành phần các
axit béocủa tảo ở các giai đoạn phát triển có sự khác nhau đáng kể [2], và có thể thay
đổi tuỳ thuộc vào điều kiện nuôi trồng như: chế độdinhdưỡng, nhiệt độ, độ mặn, độ
pH, photoperiod, cường độánh sáng và chất lượngánh sáng [3], [4]. Ở Việt Nam, hiện
chỉ có một số ít công trình nghiên cứu về Isochyris [5], [7].
Trong số các nhân tố ảnhhưởng đến sựsinhtrưởngvà phát triển, đến thành
phần vàhàmlượng các axitbéocủa tảo thì môitrườngdinhdưỡng,độmặn là hai nhân
tố quan trọng nhất. Vì vậy, việc nghiên cứu để lựa chọn môitrường nuôi vàđộmặn phù
hợp cho I. galbana là điều rất cần thiết. Bài báo nhằm giới thiệu kết quả nghiên cứu
bước đầu của chúng tôi về vấn đề này.
2. Phương pháp nghiên cứu
2.1. Đối tượng và địa điểm nghiên cứu
Tảo Isochrysisgalbana được Phòng công nghệ tảo của Viện Công nghệ sinh học
68 Ảnhhưởngcủamôitrườngdinhdưỡng,độmặnlênsựsinh trưởng…
thuộc Viện Khoa học và Công nghệ Việt Nam cung cấp.
Các thí nghiệm được tiến hành tại phòng thí nghiệm Thực vật, phòng Nuôi cấy
mô tế bào, phòng Sinh lí thực vật – Khoa Sinh học, Trường Đại học Vinh.
2.2. Chuẩn bị các dụng cụ thí nghiệm
Nguồn nước được lấy ở biển (tại Cửa Hội). Nước biển sau khi mang về được lọc
qua bông. Sau đó được khử trùng trong nồi hấp ở nhiệt độ 115
o
C trong thời gian 20
phút .
Các dụng cụ như cốc đốt, pipet, xiranh, bông gòn, dây sục khí, môitrường nuôi
(trừ vitamin) đều được khử trùng bằng nồi hấp trùng trong thời gian 20 phút, nhiệt độ
115
o
C.
2.3. Nghiên cứu ảnhhưởngcủamôitrườngdinh dưỡng vàđộmặnlênsự
sinh trưởngcủa tảo I.galbana
- Ảnh hưởngcủamôitrường dinh dưỡng: Đánh giá sựsinhtrưởngcủa tảo I.
galbana trong 3 môitrường khác nhau: môitrường F2, môitrường Walner vàmôi
trường TT3, mỗi công thức lặp lại 3 lần. Điều kiện nuôi: mật độ tế bào nuôi: 3.5 x10
6
(tb/ml), độmặn 30‰, nhiệt độ phòng, chế độ sáng/ tối: 10/12 h, cường độánh sáng:
3000lux, chế độ sục khí: 24/24h.
- Ảnhhưởngcủađộmặnlênsựsinhtrưởngcủa tảo: Thí nghiệm được tiến hành
ở 3 độ mặn: 25‰, 30‰ và 35‰, mỗi công thức lặp lại 3 lần. Điều kiện thí nghiệm: môi
trường dinh dưỡng: môitrường F2, mật độ nuôi 3.5 x 10
6
(tb/ml), nhiệt độ: theo nhiệt độ
phòng, chế độ sáng/ tối: 10/12h, cường độánh sáng: 3000lux; chế độ sục khí: 24/24 h.
2.4. Phương pháp nghiên cứu
- Phương pháp xác định mật độ tế bào của tảo
Thu và đếm tế bào: Ở mỗi bình tảo nhân nuôi lấy 3 mẫu phụ (tổng cộng có 9
mẫu phụ cho mỗi công thức). Cứ sau một ngày tiến hành lấy mẫu và đếm mật độ tế bào.
Lượng mẫu tảo được lấy là 10ml/ lần. Mật độ tế bào tảo được xác định bằng buồng đếm
hồng cầu Goriarev và bằng phương pháp so màu quang phổ.
- Phương pháp xác địnhhàmlượng lipit tổng số: Theo phương pháp của Bligh
và Dyer (1959).
- Thành phần axítbéo được xác định bằng phương pháp Sắc kí khí (GC), thực
hiện tại Viện Hóa học các Hợp chất Thiên nhiên – Viện Khoa học và Công nghệ Việt
Nam theo tiêu chuẩn ISO/FDIS 5590:1998 của Cộng hòa Liên Bang Đức với sự giúp đỡ
của TS. Đoàn Lan Phương.
LÊ THỊ HƯƠNG, VÕ HÀNH 69
3. Kết quả nghiên cứu và thảo luận
3.1. Ảnh hưởngcủamôitrường dinh dưỡng lênsựsinhtrưởngcủa I.
galbana
Hiện nay trên thế giới có nhiều môitrườngdinh dưỡng được sử dụng để nuôi
trồng tảo. Tuy nhiên, việc lựa chọn môitrường nuôi tối ưu nhằm đạt được sinh khối cao,
chất lượng tốt và giá thành rẻ nhất là vấn đề mà mọi người đều hướng tới. Sựsinh
trưởng của I.galbana trong 3 môitrường được thể hiện ở bảng 1.
Bảng 1. Ảnhhưởngcủa các môitrườngdinh dưỡng lênsựsinhtrưởngcủa tảo I. galbana
Môi trường
Ngày
Môi trường F2 Môitrường Walner Môitrường TT3
Mật độ (x 10
6
tb/ml)
0 3,50
3,50 3,50
1 6,05 5,45 4,05
2 10,25 8,75 6,15
3 15,45 14,45 9,25
4 19,75 17,65 12,25
5 25,00 23,75 17,5
6 20,35 20,00 11,85
7 14,00 13,75 7,25
8 6,75 4,85 3,45
9 2,50 1,95 1,00
Trung bình 12,36 11,41 7,63
Từ bảng 1 cho thấy, trong 3 môitrường đã được sử dụng thì môitrường F2 và
môi trường Walner là tốt nhất đối với tảo I. galbana. Tối ưu là môitrường F2, mật độ
tảo đạt cực đại sau 5 ngày nuôi trồng là 25 triệu tb/ml. Môitrường TT3 tảo phát triển
kém nhất. Điều đáng lưu ý là ở cả 3 môitrường trên, tảo đều đạt giá trị cực đại sau 5
ngày nuôi trồng, từ ngày thứ 6 trở đi, tảo tàn lụi dần. Do vậy, để thu được sinh khối
nhiều nhất thì nên tiến hành nhân nuôi tảo ở môitrường F2 và thu hoạch chúng sau 5
ngày nuôi trồng.
3.2. Ảnhhưởngcủađộmặnlênsựsinhtrưởngvà phát triển của I. galbana
Mật độ tế bào của I. galbana nuôi cấy ở các nồng độ muối khác nhau sau 9 ngày
nuôi cấy được thể hiện ở bảng 2.
70 Ảnh hưởngcủamôitrường dinh dưỡng,độmặnlênsựsinh trưởng…
Bảng 2. Sựsinhtrưởngcủa I. galbana ở các độmặn khác nhau
Độ mặn
Ngày
25‰ 30‰ 35‰
Mật độ (x 10
6
tb/ml)
0 3,50 3,50 3,50
1 5,15 5,75 4,75
2 8,78 9,56 7,25
3 14,98 15,28 11,76
4 18,25 18,88 15,98
5 22,00 23,85 19,55
6 18,75 19,35 15,45
7 10,55 12,00 10,15
8 5,75 6,15 4,75
9 2,00 1,95 1,45
Trung bình 10,97 11,63 9,46
Kết quả ở bảng 2 cho thấy, tảo I. galbana có khả năng sinhtrưởng ở cả 3 độmặn
là 25‰, 30‰ và 35‰. Sựsinhtrưởngcủa chúng ít biến động ở khoảng độmặn trên.
Tuy nhiên, tảo phát triển tối ưu ở độmặn 30‰, ở độmặn này tảo cho mật độ nuôi lớn
nhất sau 5 ngày nuôi cấy, đạt 23,85 triệu tb/ml (trung bình đạt 11,63 triệu tb/ml). Ở độ
mặn 25‰, sựsinhtrưởngcủa tảo cũng đạt mật độ cực đại sau 5 ngày nuôi cấy (22,00
triệu tb/ml, trung bình là 10,97 triệu tb/ml). Đây là một đặc điểm rất thuận lợi khi nuôi
cấy đại trà, vì ở độmặn này tương đương độmặncủa nước biển vào mùa hè, dođó tiết
kiệm được lượng muối cần bổ sung vào môi trường, không những thế nó còn giảm được
sự ăn mòn hệ thống nuôi so với ở các nồng độ muối cao hơn. Với độmặn 35‰ mức độ
sinh trưởngcủa tảo chậm nhất, mật độ cực đại đạt 19,55 triệu tb/ml, trung bình là 9,46
triệu tế bào/ml.
Như vậy, mặc dù độmặn 30‰ là điều kiện tối ưu cho sựsinhtrưởngcủa I.
galbana nhưng theo chúng tôi, nếu nuôi trồng đại trà ở quy mô lớn thì nên nuôi ở độ
mặn 25‰ vì như vậy sẽ tiết kiệm được chi phí sản xuất mà mức độsinhtrưởngcủa tảo
vẫn cao.
3.3. Thànhphần,hàmlượng lipit vàaxitbéocủa I. galbana
Sau khi lựa chọn được các điều kiện nuôi cấy tối ưu (môi trường F2, độmặn
30‰), chúng tôi đã tiến hành nuôi trồng tảo ở điều kiện tối ưu và phân tích thành phần và
hàm lượng các axitbéocủa tảo trong điều kiện đó. Kết quả phân tích được trình bày ở bảng
3.
LÊ THỊ HƯƠNG, VÕ HÀNH 71
Bảng 3. Kết quả phân tích thành phần vàhàmlượngaxitbéocủa I. galbana
STT Axitbéo Tên khoa học Tên thường
Hàm
lượng %
1 14:0 Tetradecanoic acid Myristic acid 16,73
2 16:0 Hexandecanoic acid Palmitic acid 8,71
3 16:1n-7 9-Hexadecenoic acid Palmitoleic acid 10,04
4 18:1n-9 Cis 9 – Octadecenoic acid Oleic acid 6,19
5 18:2n-6-t 9,12 - Octadecadienoic acid Linoleic acid 11,98
6 18:2n-6-c 9,12 - Octadecadienoic acid Linoleic acid 2,41
7 18:3n-6 6,9,12 - Octadecatrienoic acid Linolelic acid 11,43
8 19:0 Nonadecanoic acid 5,30
9 22:4n-6 7,10,13,16 - Docosatetraenoic acid 1,07
10 20:1n-9 11 - Eicosenoic acid 1,19
Các loại khác chưa xác dịnh được 24,95
Tổng axitbéo bão hòa 30,74
Tổng axitbéo không bão hòa 44,31
Kết quả phân tích cho thấy, hàmlượng lipit tổng số của chủng I. galbana chiếm
6,71% trọng lượng tươi. Thành phần axitbéocủa I. galbana tương đối đơn giản, chỉ
chứa 10 loại axitbéo khác nhau. Các axitbéo có mạch cabon từ 14C đến 22C, trong số
đó thì các axit có số C là 14C, 16C, 18C là những axitbéo nhiều nhất với hàmlượng
tương ứng lần lượt là 16,73%; 18,75% và 32,01%. Nếu so sánh với kết quả phân tích
của Ching Piao và Liang – Ping Lin [8] thì kết quả này khác nhiều cả về thành phần và
hàm lượngcủa các axit béo. Theo chúng tôi nguyên nhân là do các thí nghiệm được tiến
hành ở chế độdinh dưỡng khác nhau và điều kiện môitrường nuôi trồng cũng khác
nhau. Điều này hoàn toàn phù hợp với các thông báo trước về ảnhhưởngcủa chế độ
dinh dưỡng, nhiệt độ, độ mặn, độ pH, photoperiod, ánh sáng cường độvà chất lượng
ánh sáng lênsự tích lũy, hàm lượng, thành phần các axitbéocủa tế bào tảo [7].
Trong thành phần axitbéo thì hàmlượngaxitbéo không bão hòa chiếm hàm
lượng tương đối lớn, chiếm trên 40% tổng axit béo. Kết quả này cũng phù hợp với một
số nghiên cứu trước đây về giá trị dinh dưỡng của I. galbana [7], [8]. Với hàmlượng
axit béo không bão hòa cao như vậy cho thấy tảo I. galbana có giá trị dinh dưỡng cao
và là nguồn thức ăn tốt cho ấu trùng hai mảnh vỏ.
72 Ảnh hưởngcủamôitrường dinh dưỡng,độmặnlênsựsinh trưởng…
4. Kết luận
Từ các kết quả thu được ở trên bước đầu chúng tôi rút ra một số kết luận như
sau:
+ Trong ba môitrường nhân nuôi là môitrường F2, môitrường Walner vàmôi
trường TT3 thì tảo I.galbana phát triển mạnh nhẩt trên môitrường F2.
+ Ở 3 độmặn tiến hành nghiên cứu thì tảo phát triển mạnh nhất ở độmặn 30‰,
tuy nhiên nếu nuôi tảo ở quy mô sản xuất đại trà thì nên tiến hành nuôi tảo ở độmặn
25‰.
+ Kết quả phân tích thànhphần,hàmlượngaxitbéo cho thấy đã xác định được
10 axitbéo chiếm 75,06%. Trong đóaxítbéo bão hòa chiếm 30,75% vàaxítbéo không
bão hòa chiếm 44,31%.
TÀI LIỆU THAM THẢO
[1]. Jeffrey S.W., M. R. Brown and J. K. Volkman, Haptophyte as feedstocks in mariculture,
In J.C. Green and B.S.C. Leadbeater (eds.), The Haptophyte Algae, Clarendon Press,
Oxford, (1994), 287-302.
[2]. Emdadi, D. and B. Berland, Variation in lipid class composition during batch growth of
Nannochloropsis salina and Pavlova lutheri, Mar. Chem, 26: (1989), 215-225.
[3]. Yongmanitchai W. and O. P. Ward, Omega-3 fatty acids: alternative sources of
production, Process Biochem, 24: (1989), 117-125.
[4]. Roessler P. G., Environmental control of glycerolipid metabolism in microalgae:
commercial implications and future research directions, J. Phycol, 26: (1990), 393-399.
[5]. Ngô Thị Hoài thu, Đặng Diễm Hồng, Đặng Đình Kim, Hội Nghị Khoa học Toàn quốc
về Sinh thái và Tài nguyên Sinh vật, Lần thứ 3, Nxb. Nông Nghiệp, (2009), 365 – 369.
[6]. Le Thi Phương Hoa, Nguyen Thi Hoai Ha, Pham Thi Bich Dao, Luu Thi Thuy Giang,
Lương Thanh Hao, Biological properties and the nutrition value of an Isochrysis strain
as a live food for geo-duck larvae, J. Sc. Tech., 48(2A): (2010), 683 – 688.
[7]. Đặng Đình Kim, Giáo trình kỉ thuật nhân giống và nuôi sinh khối sinh vật phù du, Nxb.
Nông nghiệp, Hà Nội, 2002.
[8]. Ching-Piao Liu and Liang-Ping Lin, Ultrastructural study and lipid formation of
Isochrysis sp. CCMP1324, Bot. Bull. Acad. Sin., 42: (2001), 207-214.
LÊ THỊ HƯƠNG, VÕ HÀNH 73
EFFECT OF NUTRITION MEDIUM AND SALINITY ON THE GROWTH OF
Isochrysis galbanaParker AND COMPOSITION, CONTENT OF FATTY ACID
Le Thi Huong, Vo Hanh
Vinh University
Abstract. The effect of nutrition medium and salinity on the growth of Isochrysisgalbana
Parker 1949 was studied and the composition and content of fatty acid of algae were
analysed and determined. The results show that: in the three different media: F2 medium,
Walner medium and TT3 medium, I. galbana grew best in the F2 medium. Among the three
different concentrations of salinity that were studied (25 ‰, 30 ‰ and 35 ‰), I. galbana
grew best in 30‰ concentration. However, in our opinion, if the algae are mass-produced,
the 25‰ concentration of should be adopted. With regards to the composition and content
of fatty acids, the total fatty acids of I. galbana account for 6,71% of fresh weight and 10
fatty acids have been identified, accounting for 75,06% of total fatty acids, in which
30,75% is saturated fatty acids and 44,31% is polyunsaturated fatty acids.
Phụ lục. Axitbéo trong sinh học chung
Số
Các
bon
Tên thường Tên khoa học
Ký
hiệu
Cấu trúc
Axit béo bão hòa
12 Lauris acid Dodecanoic acid 12:0 CH
3
(CH
2
)
10
COOH
14 Myristic acid Tetradecanoic acid 14:0 CH
3
(CH
2
)
12
COOH
16 Palmitic acid Hexadecanoic acid 16:0 CH
3
(CH
2
)
14
COOH
18 Steratic acid Octadecanoic acid 18:0 CH
3
(CH
2
)
16
COOH
20 Arachilic acid Eicosanoic acid 20:0 CH
3
(CH
2
)
18
COOH
22 Behenic acid Docosanoic acid 22:0 CH
3
(CH
2
)
20
COOH
24 Lignoceric acid Tetracosanoic acid 24:0 CH
3
(CH
2
)
22
COOH
Axit béo chưa bão hòa
16 Palmitoleic acid 9-Hexadecanoic acid 16:1 CH
3
(CH
2
)
5
CH=CH(CH
2
)
7
COOH
18 Oleic acid 9-Octadecanoic acid 18:1 CH
3
(CH
2
)
7
CH=CH(CH
2
)
7
COOH
18 Linoleic acid 9,12-Octadecanoic
acid
18:2 CH
3
(CH
2
)
4
(CH=CHCH
2
)
2
(CH
2
)
6
COOH
18 ap-linoleic acid 9,12,15-
Octadecatrienoic acid
18:3 CH
3
(CH
2
)
3
(CH=CHCH
2
)
3
(CH
2
)
6
COOH
18 Gm-linnoleic
acid
6,9,12-
Octadecatrienoic acid
18:3 CH
3
(CH
2
)
4
(CH=CHCH
2
)
3
(CH
2
)
5
COOH
20 Arachidonic
acid
8,5,11,14-
Eicosatetraenoic acid
20:4 CH
3
(CH
2
)
4
(CH=CHCH
2
)
4
(CH
2
)
2
COOH
24 Nervonic acid 15-Tetracosenoic acid 24:1 CH
3
(CH
2
)
7
CH=CH(CH
2
)
15
COOH
74 Ảnh hưởngcủamôitrường dinh dưỡng,độmặnlênsựsinh trưởng…
.
ẢNH HƯỞNG CỦA MÔI TRƯỜNG DINH DƯỠNG, ĐỘ MẶN LÊN SỰ SINH
TRƯỞNG CỦA ISOCHRYSIS GALBANA PARKER VÀ THÀNH PHẦN, HÀM
LƯỢNG AXIT BÉO CỦA NÓ
Lê Thị. Nghiên cứu ảnh hưởng của môi trường dinh dưỡng, độ mặn lên sự sinh trưởng
của Isochrysis galbana Parker 1949 và phân tích, xác định thành phần, hàm lượng các