Chuyển gen vào cây bông

18 753 3
Chuyển gen vào cây bông

Đang tải... (xem toàn văn)

Tài liệu hạn chế xem trước, để xem đầy đủ mời bạn chọn Tải xuống

Thông tin tài liệu

Page 1 ĐẠI HỌC HUẾ ĐẠI HỌC KHOA HỌC HUẾ KHOA SINH HỌC  BÀI TIỂU LUẬN TÌM HIỂU KHẢNĂNG CHUYỂN NẠP GEN CỦA HAI GIỐNG BÔNG VẢI COKER312 VÀ VN36P BẰNG PHƯƠNG PHÁP VI KHUẨN AGROBACTERIUM TUMEFACIENS Giảng viên hướng dẫn : PGS. TS. Nguyễn Hoàng Lộc Sinh viên thực hiện : Giáp Thanh Thản Lớp : Công Nghệ Sinh Học K33 Huế,1-2013 Page 2 I.MỞ ĐẦU……………………………………………………………… …4 II.TỔNG QUAN TÀI LIỆU……………………………………………… 5 2.1. Sơ lược về cây bông vải………………………………………………….5 2.1.1. Vị trí phân loại…………………………………………………………5 2.1.2. Tính đa dạng………………………………………………………… 5 2.2. Chuyển gen bằng vi khuẩn Agrobacterium tumefaciens……………… 6 2.2.1. Đặc điểm vi khuẩn Agrobacterium tumefaciens………………… ….6 2.2.2. Ti-plamid…………………………………………………………… 7 III PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU………….………………………….14 3.1.Chuẩn bị vật liệu nuôi cấy………………………………………………14 3.2. Quy trình chuyển nạp gen…………………………………………… 14 3.2.1. Nguồn plasmid……………………………………………………….14 3.2.2. Chuẩn bị vi khuẩn…………………………………………………….15 3.2.3. Lây nhiễm…………………………………………………………….15 3.2.4. Thanh lọc…………………………………………………………… 16 3.3. Các chỉ tiêu theo dõi……………………………………………………17 IV.KẾT LUẬN…………………………………………………………… 17 V.TÀI LIỆU THAM KHẢO…………………………………………… 18 Page 3 BẢNG CHÚ THÍCH CHỮ VIẾT TẮT AMP: Adenosine 5’- monophosphate ATP: Adenosine 5’- triphosphate AS: Acetosyringone Bp: base pair ctv: cộng tác viên cs: cộng sự DNA: Deoxyribonucleotic acid GUS: enzyme β-glucuronidase kb: kilobase lacZ: gen β-galactosidase LB: Left border Mb: megabase MSCo: MS co-culture medium Ori: origin of replication PMI: Enzyme Phosphomannose isomerase Pmi: gen pmi plasmid Ti: tumour inducing plasmid RB: Right border T-DNA: transferred DNA Vir: gen vir Vir: virulence 2,4-D: 2,4-dichlorophenoxy acetic acid v/v: volume/volume w/v: weight/volume Page 4 I.MỞ ĐẦU Cho đến nay hơn 150 loài thực vật khác nhau, trong đó có rất nhiều loài cây trồng, đã được chuyển gen thành công. Để tạo ra cây biến đổi gen trong những năm qua một loạt các phương pháp khác nhau đã được thực hiện. Trong đó, ba phương pháp sau đây được sử dụng phổ biến:  Chuyển gen nhờ vi khuẩn Agrobacterium tumefaciens  Chuyển gen bằng phương pháp phi sinh học  Chuyển gen bằng tế bào trần Từ lâu người ta đã quan tâm nhiều đến việc cải thiện đặc tính di truyền của các loài cây bông vải. Mặc dù có nhiều giống bông vải tốt được tạo ra theo các phương pháp lai tạo và chọn lọc truyền thống, nhưng dường như các giống bông đó khó có thể khai thác được các nguồn gen có lợi một cách hiệu quả. Việc ứng dụng công nghệ di truyền thực vật có thể thúc đẩy việc tạo ra các giống cây bông có nhiều đặc tính ưu việt về đặc tính nông học như tính kháng sâu bệnh hại, thuốc diệt cỏ và tính chống chịu với các đều kiện bất lợi của môi trường (rét, khô hạn, phèn, mặn…) và các tính trạng số lượng cũng như chất lượng của bông và sợi. Bài tiểu luận này nhằm tìm hiểu khả năng chuyển nạp gen của hai giống bông vải Coker 312 và VN36P bằng phương pháp vi khuẩn Agrobacterium tumefaciens. Page 5 II.TỔNG QUAN TÀI LIỆU: 2.1. Sơ lược về cây bông vải: 2.1.1. Vị trí phân loại: Cây bông vải thuộc Ngành hiển hoa bí tử (Angiospermatophyta), Lớp song tử diệp (Dicotyledoneae), Họ Malvaceae, Chi Gossypium. 2.1.2. Tính đa dạng; Chi Gossypium rất đa dạng, có 39 loài, trong đó có 5 loài được trồng phổ biến trên thế giới,và có 3 loài được trồng ở Việt Nam: G. arboreum, G. hirsutum, G.barbadense 2.1.2.1. Gossypium arboretum: Loài G. arboretum (loài bông Cỏ) có dạng hình thoáng, thân mảnh, lá nhỏ, lông ít, rễ cộc nhỏ với bộ rễ ăn nông, chịu được mưa, cuống quả dài rủ xuống, đầu quả quay xuống đất, vỏ quả mỏng, chín sớm, hạn chế được hiện tượng thối quả khi gặp mưa lúc bông nở. Về phẩm chất xơ bông Cỏ : thô, tỉ lệ xơ thấp, độ mịn kém Cỏ hiện có ở Việt Nam thuộc 2 loài phụ: G. arboreum ssp neglectum và G.arboreum ssp nanking. 2.1.2.2. Gossypium hirsutum: Loài Gossypium hirsutum (loài bông Luồi) thường là cây hàng năm, cây cao, lá to, mặt lá phẳng. Cành lá khỏe, số lượng lá nhiều, quả tròn, mặt quả nhẵn, trọng lượng hạt bông trung bình trong một quả đạt 5 - 6g. Bông Luồi có nhiều loài phụ như : G.hirsutum ssp. Mexicanum, G.hirsutum ssp. punctatum, G.hirsutum ssp. panicultum… 2.1.2.3. Gossypium barbadense: Loài Gossypium barbadense còn gọi là bông Hải Đảo, cây tương đối to, chín muộn, lá to, khía sâu, màu xanh đậm. Thân cành lá gần như không có lông, đài không có răng cưa rõ rệt và thường chỉ gợn hình làn sóng. Hạt thường nhẵn, không có xơ ngắn, xơ dài màu trắng hoặc cà phê sữa. Bông Hải Đảo có nhiều loài phụ như: G. barbadense ssp. darwinii, G. barbadense ssp. ruderale, G. barbadense ssp. ventiforlum. 2.1.2.4. Gossypium herbaceum: Loài này phân bố chủ yếu ở các sa mạc, khí hậu khô nóng như vùng Trung Á, TâyBắc Trung Quốc, Châu Phi, chưa thấy trồng ở Việt Nam. Page 6 2.1.2.5. Gossypium tricuspidatum: Loài này khá giống loài G. hirsutum, cây và lá to, chín hơi muộn, xơ dài và mịn. Loài này đòi hỏi đất tốt, nhiều nước, nhiệt độ cao, chống chịu sâu bệnh khá và được trồng nhiều ở Nam Mỹ. Loài bông này không có ở Việt Nam 2.2. Chuyển gen bằng vi khuẩn Agrobacterium tumefaciens: Chuyển nạp gen là kỹ thuật đưa một hay nhiều gen lạ đã được thiết kế ở dạng DNAtái tổ hợp vào bộ gen của sinh vật đang nghiên cứu. Những thành tựu của kỹ thuật nuôi cấy mô và kỹ thuật tái tổ hợp DNA đã mở ra triển vọng đối với chuyển nạp gen ở thực vật bậc cao, tạo ra những tính trạng di truyền mới như kháng sâu bệnh hại, thuốc diệt cỏ… Sự chuyển nạp gen thành công trên cây trồng đã được ghi nhận bằng cách sử dụng plasmid Ti, thông qua vi khuẩn Agrobacterium tumefaciens để đưa gen mong muốn vào trong bộ gen cây trồng. Phương pháp sử dụng vi khuẩn Agrobacterium tumefaciens để chuyển nạp gen còn được gọi là phương pháp chuyển nạp gen gián tiếp. 2.2.1. Đặc điểm vi khuẩn Agrobacterium tumefaciens: Giống Agrobacterium được chia làm một số loài dựa trên triệu chứng gây bệnh và kí chủ. Một số loài thuộc chi Agrobacterium như: A. radiobacter ( loài nay không gây bệnh cho cây), A. tumefaciens và A. rhizogens gây bệnh khối u và bệnh cổ rễ… Hình 2.1. Khối u do Agrobacterium tumefaciens gây ra trên thực vật. A: một khối u lớn trên thân cây hoa Hồng; B: các khối u trên cành Nho (Deacon và ctv, 2005). Agrobacterium tumefaciens là vi khuẩn hình que, gram âm, có khả năng di động, không sinh bào tử và có quan hệ gần gũi với vi khuẩn cố định đạm Rhizobium. Vi khuẩn Agrobacterium tumefaciens là vi khuẩn hiếu khí, có 5- 11 lông roi, vi khuẩn này phát triển tối ưu ở nhiệt 29 0 C trong môi trường có bổ sung mangan và succinate như là nguồn cacbon duy nhất. Agrobacterium tumefaciens là Page 7 vi khuẩn gây bệnh khối u trên cây (chủ yếu là cây hai lá mầm) khi xâm nhiễm vào cây. Bộ nhiễm sắc thể vi khuẩn Agrobacterium tumefaciens dạng vòng có kích thước là 2,6Mb. Ngoài ra vi khuẩn còn mang plasmid lớn có kích thước 200 - 800 kb, chính plamid này là nguyên nhân gây ra khối u trên cây khi vi khuẩn này xâm nhập. Plasmid này có tên gọi là Plasmid Ti, hầu hết các gen gây khối u đều nằm trên plasmid này. Khi rễ cây xuất hiện vết thương thì tế bào vi khuẩn sẽ di chuyển về phía vết thương và xâm nhập vào cây qua vết thương đó. Vi khuẩn độc mang một hoặc nhiều plasmid, một trong số đó là Plasmid Ti. Plasmid Ti mang các gen để xác định kí chủ và triệu chứng khi nhiễm vào cây. Những vi khuẩn không mang Plasmid Ti thì được xem như là vi khuẩn không độc và không có khả năng gây bệnh khối u cho cây. Khối u đầu tiên xuất hiện nhỏ màu trắng, ban đầu được tìm thấy ở gốc cây. Các khối u lớn dần và xuất hiện các vết lốm đốm nâu đen do các tế bào ngoại biên chết đi. Các khối u có thể mền và xốp và có thể bị vỡ vụn khi chạm vào, nhưng cũng có thể cứng và xuất hiện các u nhỏ. Các khối u có đường kính đến 30 cmnhưng phổ biến là 5 – 10 cm. Cây bị nhiễm vi khuẩn sẽ trở nên còi cọc, lá úa vàng và rất nhạy cảm với các điều kiện môi trường. Khi xâm nhiễm vào cây một phần gen trên Plasmid Ti sẽ gắn vào bộ gen của cây làm cho các tế bào phát triển mạnh và sản xuất ra một chất đặc biệt gọi là Opine. Vi khuẩn sẽ sử dụng chất này như một nguồn cacbon 2.2.2. Ti-plamid Plasmid Ti là một DNA vòng tách rời với nhiễm sắc thể của vi khuẩn và có khả năng nhân lên một cách độc lập trong tế bào vi khuẩn. Việc xác định Plasmid Ti như một nguyên lý tạo bướu TIP (tumor inducing principle) đã đánh dấu bước khởi động của một giai đoạn mới trong nghiên cứu về Agrobacterium tumefaciens. Điều này đã mở ra khả năng nghiên cứu cấu trúc và chức năng của plasmid bằng kỹ thuật di truyền phân tử. Plasmid Ti có cấu trúc bao gồm: đoạn T- DNA mang các gen tổng hợp các hormone thực vật và vùng gen vir, ngoài ra còn có một số gen mã hoá cho việc tái sinh plasmid, cho việc tiêu hoá opine. Trong cấu trúc của Plasmid Ti , hai yếu tố quan trọng cần cho sự chuyển gen vào cây là đoạn T- DNA bao gồm cả trình tự 25 bp ở hai cánh của đoạn T- DNA và gen vir. Page 8 Hình 2.2.Ti-plasmid của Agrobacterium dạng nopalin. T-DNA: Transfer- DNA, LB: Bờ trái. RB: Bờ phải, ori: khởi đầu sao chép của A.tumefaciens. noc: Phân giải nopalin, nos: Tổng hợp nopalin. tmr: Tổng hợp cytokinin, tms: Tổng hợp auxin, tra: Vận chuyển tiếp hợp, vir: Vùng virulence (vùng độc tính) (Trần Thị Lê và cs, 2006) . 2.2.2.1 Chức năng của T-DNA: T-DNA là một đoạn DNA có kích thước 10-30 kb, trong đó có chứa gen mã hoá cho việc tổng hợp auxin, cytokinin, opine và các gen gây khối u. Trong Plasmid Ti, vị trí của T-DNA được giới hạn bởi bờ phải và bờ trái. Trình tự nucleotide của bờ phải và bờ trái tương tự nhau và đều có kích thước 25bp. Tuy nhiên, bờ trái của T-DNA có thể được bỏ qua trong chuyển nạp T-DNA, trong khi đó bờ phải lại cần thiết và tiến trình chuyển nạp diễn ra với bờ phải trước và tiến dần về phía trái. Việc đảo ngược bờ phải sẽ làm yếu đi khả năng tạo khối u ( Zhu và ctv, 2000). T-DNA mã hóa một vài protein và các protein này biểu hiện trong tế bào cây được chuyển gen làm kiểu hình cây thay đổi lớn. Các gen trên T-DNA có thể biểu hiện trong tế bào cây bằng cách mô phỏng các gen của cơ thể đa bào. T-DNA mã hóa cho 13 protein và những vùng không sao mã của các gen được chuyển mang nhiều đặc điểm của các gen trong cây, yếu tố tăng cường sao mã, các vị trí gắn đuôi poly A của cơ thể đa bào. Một nhóm các gen của T-DNA điều khiển tổng hợp các hormone sinh trưởng của cây, những hormon này làm các tế bào tăng sinh và làm thay đổi hình dạng bên ngoài. Sản phẩm của gen iaaM và gen iaaH điều khiển sự chuyển hoá tryptophan thông qua indolacetamin thành indolacetic axit (auxin). Sản phẩm của gen ipt giúp gắn kết isopentenyl pyrophosphat với AMP và Page 9 các enzyme trong cây được cho là chuyển hoá isopentenyl-AMP thành cytokinin zeatin bằng cách loại bỏ nhóm phosphoribosyl và loại bỏ phân tử hydro của một nhóm methyl của isopentenyl. Hai gentrên T-DNA khác được cho là có chức năng trong tạo khối u là 5 và tml (cũng còn gọi là 6b). Sản phẩm của gen 5 điều khiển sinh tổng hợp indole-3-lactate, đó là một chất đồng đẳng với auxin. Trong khi đó gen tml làm tăng mức độ nhạy cảm của các tế bào cây với phytohormon bằng một cơ chế chưa được giải thích. Gen tml có thể kích thích tạo các khối u ngay cả khi vắng mặt các gen gây khối u khác. Một nhóm gen được chuyển thứ hai đều khiển sản xuất nguồn dinh dưỡng cho vi khuẩn, đó là các opine. Đây là một dạng kết hợp giữa một aminoacid với một keto acid hoặc một đường . Các tế bào chuyển gen tổng hợp và tiết ra một số lượng lớn các opine. Các opine này hấp dẫn vi khuẩn mang kiểu gen tiêu biểu (bên ngoài vùng T-DNA và thường trên plasmid độc) cần cho việc phân giải các opine được tổng hợp từ khối u. Dựa trên các kiểu opine đựơc tạo ra từ các khối u mà phân chia nhóm vi khuẩn Agrobacterium thành các chủng như là: octopine, nopaline, succinamopine và leucinopine. Hiện có ít nhất là 20 loại opine khác nhau, mỗi chủng tạo ra và phân giải một nhóm opine chuyên biệt. Gen ocs mã hóa cho octopine synthase, enzyme này gắn pyruvate với arginine, lysine, histidine hoặc ornithine để tạo ra octopine, lysopine, histopine hoặc octopinic acid và tất cả những opine này đều được phát hiện trong các khối u. Sản phẩm của gen mas2’ được cho là làm kết nối glutamine hoặc glutamic acid với glucose (mặc dù đều này chưa đựơc chứng minh bằng thực nghiệm), trong khi đó sản phẩm của mas1’ lại làm giảm bớt các dạng trung gian mannopine và mannopinic acid. Sản phẩm của gen ags sẽ làm lacto hóa mannopine thành agropine. Mannopine và agropine cũng có thể lactate hóa thành agropinic acid . Bởi vậy, các khối u được tạo ra bởi Plasmid Ti kiểu octopine có thể tạo 4 loại octopine và 4 kiểu thuộc nhóm mannityl opine. Page 10 Hình 2.3. Sơ đồ biểu diễn quá trình di chuyển T-DNA của Ti-plasmid. 1: T- DNA với bờ phải và bờ trái được chèn vào Ti-plasmid. 2: Sợi đơn được cắt ra nhờ protein được mã hóa bởi gen virD2. 3: Sợi đơn của T-DNA được giải phóng và kết hợp với protein do virD2 và virE2 mã hóa, chỗ đứt ở sợi đơn thứ hai được tổng hợp bổ sung. 4: Lấp đầy chỗ trống trong Ti-plasmid (đường gạch nối đậm). Sợi T-DNA tự do được vận chuyển vào tế bào thực vật ở dạng phức hệ DNA- protein.( Trần Thị Lệ và cs, 2006). 2.2.2.2 Chức năng của các gen vir: Vùng vir trên Plasmid Ti có khoảng 25 gen được nhận biết trong 7 đơn vị phiên mã là: virA, virB, virC, virD, virE, virG, virF và vùng này có kích thước . muốn vào trong bộ gen cây trồng. Phương pháp sử dụng vi khuẩn Agrobacterium tumefaciens để chuyển nạp gen còn được gọi là phương pháp chuyển nạp gen gián. trong tế bào cây được chuyển gen làm kiểu hình cây thay đổi lớn. Các gen trên T-DNA có thể biểu hiện trong tế bào cây bằng cách mô phỏng các gen của cơ thể

Ngày đăng: 14/02/2014, 22:23

Hình ảnh liên quan

Hình 2.1. Khố iu do Agrobacterium tumefaciens gây ra trên thực vật. A: một khối u lớn trên thân cây hoa Hồng; B: các khối u trên cành Nho (Deacon và ctv, 2005). - Chuyển gen vào cây bông

Hình 2.1..

Khố iu do Agrobacterium tumefaciens gây ra trên thực vật. A: một khối u lớn trên thân cây hoa Hồng; B: các khối u trên cành Nho (Deacon và ctv, 2005) Xem tại trang 6 của tài liệu.
Hình 2.2.Ti-plasmid của - Chuyển gen vào cây bông

Hình 2.2..

Ti-plasmid của Xem tại trang 8 của tài liệu.
Hình 2.3. Sơ đồ biểu diễn quá trình di chuyển T-DNA của Ti-plasmid. 1: T- T-DNA với bờ phải và bờ trái được chèn vào Ti-plasmid - Chuyển gen vào cây bông

Hình 2.3..

Sơ đồ biểu diễn quá trình di chuyển T-DNA của Ti-plasmid. 1: T- T-DNA với bờ phải và bờ trái được chèn vào Ti-plasmid Xem tại trang 10 của tài liệu.
Hình 2.4. Mơ hình chuyển nạp T-DNA từ tế bào vi khuẩn vào tế bào cây (nguồn Zhu và ctv, 2000) - Chuyển gen vào cây bông

Hình 2.4..

Mơ hình chuyển nạp T-DNA từ tế bào vi khuẩn vào tế bào cây (nguồn Zhu và ctv, 2000) Xem tại trang 12 của tài liệu.
Hình 2.5. Quá trình tạo phức hợp sợi đơn T-DNA (Valentine, 2003) - Chuyển gen vào cây bông

Hình 2.5..

Quá trình tạo phức hợp sợi đơn T-DNA (Valentine, 2003) Xem tại trang 13 của tài liệu.
Hình 2.6. Quá trình kết nạp T-DNAvào bộ gen của tế bào cây (Valentine, 2003) - Chuyển gen vào cây bông

Hình 2.6..

Quá trình kết nạp T-DNAvào bộ gen của tế bào cây (Valentine, 2003) Xem tại trang 14 của tài liệu.
Hình 3.1. Sơ đồ vector pManCa mang gen pmi và gen gus - Chuyển gen vào cây bông

Hình 3.1..

Sơ đồ vector pManCa mang gen pmi và gen gus Xem tại trang 15 của tài liệu.
Bảng 3.1. Nồng độ đường mannose và glucose ở các lần thanh lọc - Chuyển gen vào cây bông

Bảng 3.1..

Nồng độ đường mannose và glucose ở các lần thanh lọc Xem tại trang 16 của tài liệu.

Từ khóa liên quan

Tài liệu cùng người dùng

Tài liệu liên quan