1. Trang chủ
  2. » Giáo Dục - Đào Tạo

Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginate chitosan lovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì

186 5 0

Đang tải... (xem toàn văn)

Tài liệu hạn chế xem trước, để xem đầy đủ mời bạn chọn Tải xuống

THÔNG TIN TÀI LIỆU

Thông tin cơ bản

Định dạng
Số trang 186
Dung lượng 4,19 MB

Nội dung

, BỘ GIÁO DỤC VÀ ĐÀO TẠO HỌC VIỆN QUÂN Y NGUYỄN THỊ HOA NGHIÊN CỨU TÁC DỤNG LÊN HÀNH VI VÀ CHUYỂN HÓA LIPID MÁU CỦA NANO ALGINATE/CHITOSAN/LOVASTATIN TRÊN CHUỘT CỐNG GÂY MƠ HÌNH BÉO PHÌ LUẬN ÁN TIẾN SĨ Y HỌC HÀ NỘI – 2022 ii BỘ GIÁO DỤC VÀ ĐÀO TẠO HỌC VIỆN QUÂN Y NGUYỄN THỊ HOA NGHIÊN CỨU TÁC DỤNG LÊN HÀNH VI VÀ CHUYỂN HÓA LIPID MÁU CỦA NANO ALGINATE/CHITOSAN/LOVASTATIN TRÊN CHUỘT CỐNG GÂY MƠ HÌNH BÉO PHÌ Chun ngành: Khoa học Y sinh Mã số: 9720101 LUẬN ÁN TIẾN SĨ Y HỌC NGƯỜI HƯỚNG DẪN KHOA HỌC: TS PHẠM MINH ĐÀM PGS TS CẤN VĂN MÃO HÀ NỘI – 2022 iv LỜI CAM ĐOAN Tôi xin cam đoan công trình nghiên cứu tơi với hướng dẫn khoa học tập thể cán hướng dẫn Các kết nêu luận án trung thực công bố phần báo khoa học Luận án chưa công bố Tác giả Nguyễn Thị Hoa v LỜI CẢM ƠN Trước tiên, xin trân trọng cảm ơn người thầy, người hướng dẫn khoa học, tận tình giúp đỡ, trực tiếp hướng dẫn thực nghiên cứu khoa học trình học tập thực luận án Tơi xin chân thành cảm ơn Bộ môn-Khoa-Trung tâm tạo điều kiện, hỗ trợ, giúp đỡ q trình học tập thực luận án Tơi xin gửi lời cảm ơn chân thành tới lãnh đạo sở đào tạo sở hợp tác nghiên cứu tạo điều kiện giúp đỡ trình thực nghiên cứu Cuối cùng, tơi xin bày tỏ lịng biết ơn sâu sắc tới Bố, Mẹ, Chồng, Con gia đình ln bên cạnh động viên, giúp đỡ sống, học tập công tác Nghiên cứu sinh Nguyễn Thị Hoa vi MỤC LỤC TRANG PHỤ BÌA LỜI CAM ĐOAN LỜI CẢM ƠN MỤC LỤC DANH MỤC CÁC CHỮ, KÝ HIỆU VIẾT TẮT DANH MỤC CÁC BẢNGviii DANH MỤC CÁC HÌNH I ĐẶT VẤN ĐỀ CHƯƠNG 1: TỔNG QUAN TÀI LIỆU 1.1 Tổng quan béo phì 1.1.1 Khái niệm béo phì 1.1.2 Tình hình béo phì Thế giới Việt Nam 1.1.3 Nguyên nhân hậu béo phì 1.1.4 Ảnh hưởng béo phì lên hệ thần kinh trung ương 12 1.1.5 Các thuốc điều trị béo phì 15 1.2 Gây mơ hình béo phì động vật thực nghiệm 20 1.2.1 Các mơ hình gây béo phì phẫu thuật hóa chất 20 1.2.2 Các mơ hình biến đổi gen 22 1.2.3 Các mơ hình động vật béo phì khác 27 1.2.4 Mơ hình chuột béo phì thức ăn cao 28 1.2.5 Các số đánh giá mơ hình béo phì động vật thực nghiệm 31 1.2.6 Các phương pháp đánh giá hành vi động vật thực nghiệm .33 1.3 Tổng quan nano Alginate/Chitosan/Lovastatin 34 1.3.1 Chitosan 34 1.3.2 Alginate 36 1.3.3 Alginate/Chitosan 37 1.3.4 Lovastatin tổ hợp polymer mang thuốc 38 CHƯƠNG 2: ĐỐI TƯỢNG VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU 2.1 Đối tượng nghiên cứu 2.2 Phương pháp nghiên cứu 2.2.1 Thiết kế nghiên cứu 45 vii 2.2.2 Phương tiện, dụng cụ hóa chất 2.2.3 Quy trình nghiên cứu 2.3.Xử lý số liệu 2.4.Đạo đức nghiên cứu CHƯƠNG 3: KẾT QUẢ NGHIÊN CỨU 3.1.Kết gây mơ hình béo phì chuột 3.1.1 Các số sinh trắc học tiêu thụ thức ăn, nước uống 3.1.2 Kết nồng độ số thành phần lipid máu glucose máu 3.1.3 Kết hành vi động vật gây mơ hình 3.1.4 Kết mơ bệnh học động vật gây mơ hình 3.2 Kết tác dụng lên hành vi rối loạn chuyển hóa lipid máu nano Alginate/Chitosan/Lovastatin chuột cống gây mơ hình béo phì 3.2.1 Các số sinh trắc học tiêu thụ thức ăn, nước uống giai đoạn can thiệp dùng dược chất 3.2.2 Tác dụng lên rối loạn lipid máu glucose máu giai đoạn can thiệp 3.2.3 Tác dụng lên hành vi động vật sau can thiệp dùng dược chất CHƯƠNG 4: BÀN LUẬN 4.1 101 4.1.1 4.1.2 Thay đổi chuyển hóa lipid máu glucose máu 4.1.3 4.2 Đánh giá tác dụng lên hành vi chuyển hóa lipid máu nano Alginate/Chitosan/Lovastatin chuột cống gây mô hình béo phì 4.2.1 4.2.2 Tác dụng lên số số lipid máu glucose máu 4.2.3 Tác dụng lên hành vi KẾT LUẬN KIẾN NGHỊ DANH MỤC CÁC CƠNG TRÌNH CƠNG BỐ KẾT QUẢ NGHIÊN CỨU CỦA ĐỀ TÀI LUẬN ÁN viii TÀI LIỆU THAM KHẢO DANH MỤC CÁC CHỮ, KÝ HIỆU VIẾT TẮT TT Phần viết tắt ANOVA ARC AgRP BAT cAMP CART CCK CRH DMN 10 ERK 11 GABA 12 GLP-1 13 HA 14 HDL-cholesterol 15 LDL-cholesterol 16 LH 17 MCH 18 MC3R 19 MC4R 20 α-MSH 21 NA 22 NPY 23 NPYR 24 NTS 25 PKA 26 PVN 27 VMN 28 VTA ix 29 WAT Bảng 1.1 Phân độ béo phì theo số BMI cho người C 1.2 Chiến lược cho thuốc dẫn tới giảm 2.1 Thành phần chất thức ăn cho chuột 3.1 Tỷ lệ thể trọng/chiều dài hai nhóm chuột 3.2 Thức ăn tiêu thụ (gram) lượng (kcal chuột nghiên cứu qua tuần nuôi 3.3 Nước uống tiêu thụ (mililit) hai nhóm chuột 3.4 Nồng độ glucose máu (mmol/L) hai nhóm chu 3.5 Nồng độ triglycerid máu (mmol/L) hai nhóm chu 3.6 Nồng độ cholesterol máu (mmol/L) hai nhóm ch 3.7 Nồng độ HDL-cholesterol (mmol/L) hai qua tuần nuôi 3.8 Nồng độ LDL-cholesterol (mmol/L) hai qua tuần nuôi 3.9 Quãng đường thời gian chuột bơi góc p bỏ platform hai nhóm chuột 3.10 3.11 Tỷ lệ thể trọng/chiều dài nhóm chuộ can thiệp 3.12 Thức ăn tiêu thụ (gram) nhóm chuột can thiệp 3.13 Nước uống tiêu thụ (mililit) nhóm ch tuần can thiệp 3.14 Nồng độ glucose máu (mmol/L) nhó tuần can thiệp 3.15 Nồng độ triglycerid máu (mmoll/L) qua 12 tuần can thiệp x Bảng Tên bảng Trang 3.16 Nồng độ cholesterol máu (mmol/L) nhóm chuột nghiên cứu qua 12 tuần điều trị 3.17 Nồng độ HDL-cholesterol máu (mmol/L) nhóm chuột nghiên cứu qua 12 tuần can thiệp 3.18 Nồng độ LDL–cholesterol máu (mmol/L) nhóm chuột nghiên cứu qua 12 tuần can thiệp 3.19 Trọng lượng tạng chuột nhóm nghiên cứu sau can thiệp 3.20 Thời gian (giây) quãng đường (m) bơi nhóm chuột góc phần tư rút bến đỗ vào ngày tập cuối mê lộ nước sau 12 tuần can thiệp 138 59 Kao Y.C., Wei W.Y., Tsai K.J., et al (2019) High fat diet suppresses peroxisome proliferator-activated receptors and reduces dopaminergic neurons in the substantia nigra International Journal of Molecular Sciences, 21(1):207 60 Moreira E.L., de Oliveira J., Engel D.F., et al (2014) Hypercholesterolemia induces short-term spatial memory impairments in mice: up-regulation of acetylcholinesterase activity as an early and causal event? Journal of Neural Transmission, 121(4): 415–426 61 Arnold S.E., Lucki I., Brookshire B.R., et al (2014) High fat diet produces brain insulin resistance, synaptodendritic abnormalities and altered behavior in mice Neurobiology of Disease, 67: 79–87 62 Denver P., Gault V.A., McClean P.L (2018) Sustained high-fat diet modulates inflammation, insulin signalling and cognition in mice and a modified xenin peptide ameliorates neuropathology in a chronic highfat model Diabetes, obesity & metabolism, 20(5): 1166–1175 63 Bray G.A., Tartaglia L.A (2000) Medicinal strategies in the treatment of obesity Nature, 404(6778): 672–677 64 Rolls B.J., Shide D.J., Thorwart M.L., et al (1998) Sibutramine reduces food intake in non-dieting women with obesity Obesity Research, 6(1):1–11 65 Hansen D.L., Toubro S., Stock M.J., et al (1998) Thermogenic effects of sibutramine in humans The American Journal of Clinical Nutrition, 68(6):1180–1186 66 Seagle H.M., Gessesen D.H., Hill J.O (1998) Effects of sibutramine on resting metabolic rate and weight loss in overweight women Obesity Research, 6(2):115–121 67 Bray G.A., Blackburn G.L., Ferguson J.M., et al (1999) Sibutramine produces dose-related weight loss Obesity Research, 7(2):189–198 139 68 Apfelbaum M., Vague P., Ziegler O., et al (1999) Long-term maintenance of weight loss after a very low calorie diet: efficacy and tolerability of sibutramine The American Journal of Medicine, 106(2):179–184 69 Guercolini R (1997) Mode of action of orlistat International Journal of Obesity and Related Metabolic Disorders, 21(Suppl 3): S12–S23 70 Hauptman J.B., Jeunet F.S., Hartmann D (1992) Initial studies in humans with the novel gastrointestinal lipase inhibitor Ro 18–0647 (tetrahydrolipstatin) The American Journal of Clinical Nutrition, 55(1):309S–313S 71 Sjöström L., Rissanen A., Andersen T., et al (1998) Randomized placebo-controlled trial of orlistat for weight loss and prevention of weight regain in obese patients Lancet, 352:167–172 72 Davidson M.H., Hauptman J., DiGirolamo M (1999) Weight control and risk factor reduction in obese subjects treated for years with orlistat A randomized controlled trial Journal of the American Medical Association, 281(3):235–242 73 Astrup A., Breum L., Toubro S., et al (1992) The effect and safety of an ephedrine/caffeine compound compared to ephedrine, caffeine and placebo in obese subjects on an energy restricted diet A double blind trial International Journal of Obesity and Related Metabolic Disorders, 16(4):269–277 74 Toubro S., Astrup L., Breum L., et al (1993) The acute and chronic effects of ephedrine/caffeine mixtures on energy expenditure and glucose metabolism in humans International Journal of Obesity and Related Metabolic Disorders, 17(Suppl 3):S73–S77; discussion S82 140 75 Astrup A., Buemann B., Christensen N.J., et al (1992) The effect of ephedrine/caffeine mixture on energy expenditure and body composition in obese women Metabolism, 41(7):686–688 76 Tartaglia L.A., Dembski M., Weng X., et al (1995) Identification and expression cloning of a leptin receptor, OB-R Cell, 83:1263–1271 77 Cone R.D (1999) The central melanocortin system and energy homeostasis Trends in Endocrinology & Metabolism, 10(6):211–216 78 Wilson B.D., Ollmann M.M., Barsh G.S (1999) The role of agoutirelated protein in regulating body-weight Molecular Medicine Today, 5(6):250–256 79 Kristensen P., Judge M.E., Thim L., et al (1998) Hypothalamic CART is a new anorectic peptide regulated by leptin Nature, 393(6680):72– 76 80 Heymsfield S.B., Greenberg A.S., Fujioka K., et al (1999) Recombinant leptin for weight loss in obese and lean adults: a randomized, controlled, dose-escalation study Journal of the American Medical Association, 282(16):1568–1575 81 Huszar D., Lynch C.A., Fairchild-Huntress V., et al (1997) Targeted disruption of the melanocortin-4 receptor results in obesity in mice Cell, 88(1):131–141 82 Lembo P.M., Grazzini E., Cao J., et al (1999) The receptor for the orexigenic peptide melanin-concentrating hormone is a G-proteincoupled receptor Nature Cell Biology, 1(5):267–271 83 Vickers S.P., Clifton P.G., Dourish C.T., et al (1999) Reduced satiating effect of d-fenfluramine in serotonin 5-HT (2C) receptor mutant mice Psychopharmacology, 143:309–314 84 Smith B.K., York D.A., Bray G.A (1999) Activation of hypothalamic serotonin receptors reduced intake of dietary fat and protein but not 141 carbohydrate The American Journal of Physiology, 277(3):R802– R811 85 Heinonen P., Koulu M., Pesonen U., et al (1999) Identification of a three-amino acid deletion in the alpha2B-adrenergic receptor that is associated with reduced basal metabolic rate in obese subjects The Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism, 84(7):2429–2433 86 Terry P., Gilbert D.B., Cooper S.J (1995) Dopamine receptor subtype agonists and feeding behavior Obesity Research, 3:515S 87 Sakata S., Yoshimatsu H., Kurokawa M (1997) Hypothalamic neuronal histamine: implications of its homeostatic control of energy metabolism Nutrition,13:403–411 88 Kurose Y., Terashima Y (1999) Histamine regulates food intake through modulating noradrenaline release in the para-ventricular nucleus Brain Research, 15:115–118 89 Smith G.P (1998) Satiation: From Gut to Brain (Oxford Univ Press, NewYork). Accessed on August 5, 2020 90 Gutzwiller J.P., Drewe J., Hildebrand P., et al (1994) Effect of intravenous human gastrin-releasing peptide on food intake in humans Gastroenterology, 106(5):1168–1173 91 Flint A., Raben A., Astrup A., et al (1998) Glucagon-like peptide I promotes satiety and suppresses energy intake in humans The Journal of Clinical Investigation, 101(3):515–520 92 Holst J.J (1999) Glucagon-like peptide-1 (GLP-1) — an intestinal hormone, signaling nutritional abundance, with an unusual therapeutic potential Trends in Endocrinology & Metabolism, 10:229–235 142 93 Gutzwiller J.P., Drewe J., Göke B., et al (1999) Glucagon-like peptide1 promotes satiety and reduces food intake in patients with diabetes mellitus type The American Journal of Physiology, 276(5Pt2):R1541–R1544 94 Erlanson-Albertsson C., York D (1997) Enterostatin – a peptide regulating fat intake Obesity Research, 5(4):360–372 95 Kovacs E.M.R., Lejeune M.P.G.M., Westerterp-Plantenga M.S (2003) The effects of enterostatin intake on food intake and energy expenditure British Journal of Nutrition, 90(1):207–214 96 Morley J.E., Flood J.F., Horowitz M., et al (1994) Modulation of food intake by peripherally administered amylin The American Journal of Physiology, 276(1 Pt 2):R178–R184 97 Nagase H., Bray G.A., York D.A (1996) Effects of pyruvate and lactate on food intake in rat strains sensitive and resistant to dietary obesity Physiology and Behavior, 59(3):555–560 98 Malhotra A., Shafiq N., Arora A., et al (2014) Dietary interventions (plant sterols, stanols, omega-3 fatty acids, soy protein and dietary fibers) for familial hypercholesterolaemia The Cochrane Database of Systematic Reviews, 2014(6):CD001918 99 Lutz T.A., Woods S.C (2012) Overview of animal models of obesity Current Protocols in Pharmacology, 58:5.61.1–5.61.18 100 Chambers A.P., Sandoval D.A., Seeley R.J (2013) Integration of satiety signals by the central review nervous system Current Biology, 23:R379–R388 101 Carvalheira J.B.C., Ribeiro E.B., Araújo E.P., et al (2003) Selective impairment of insulin signalling in the hypothalamus of obese Zucker rats Diabetologia, 46:1629–1640 143 102 Anand B.K., Brobeck J.R (1951) Localization of a “feeding center” in the hypothalamus of the rat Proceedings of the Society for Experimental Biology and Medicine, 77(2):323–325 103 King B.M., Frohman L.A (1986) Hypothalamic obesity: comparison of radio-frequency and electrolytic lesions in male and female rats Brain Research Bulletin, 17(3):409–413 104 Lorden J.F., Caudle A (1986) Behavioral and endocrinological effects of single injections of monosodium glutamate in the mouse Neurobehavioral Toxicology and Teratology, 8(5):509–519 105 Guimaraes R.B., Telles M.M., Coelho V.B., et al (2002) Adrenalectomy abolishes the food-induced hypothalamic serotonin release in both normal and monosodium glutamate-obese rats Brain Research Bulletin, 58(4):363–369 106 Miskowiak B., Partyka M (1993) Effects of neonatal treatment with MSG (monosodium glutamate) on hypothalamo-pituitary-thyroid axis in adult male rats Histology and Histopathology, 8(4):731–734 107 Perello M., Gaillard R.C., Chisari A., et al (2003) Adrenal enucleation in MSG-damaged hyperleptinemic male rats transiently restores adrenal sensitivity to leptin Neuroendocrinology, 78(3):176–184 108 Bunyan J., Murrell E.A., Shah P.P (1976) The induction of obesity in rodents by means of monosodium glutamate The British Journal of Nutrition, 35(1): 25–39 109 Diniz Y.S., Faine L.A., Galhardi C.M., et al (2005) Monosodium glutamate in standard and high-fiber diets: metabolic syndrome and oxidative stress in rats Nutrition, 21(6):749–755 110 Scallet A.C., Olney J.W (1986) Components of hypothalamic obesity: bipiperidyl-mustard lesions add hyperphagia to monosodium glutamate-induced hyperinsulinemia Brain Research, 374(2):380–384 144 111 Shimomura K., Shimizu H., Tsuchiya T., et al (2002) Is leptin a key factor which develops obesity by ovariectomy? Endocrine Journal, 49(4):417–423 112 Shimizu H., Ohtani K., Kato Y., et al (1996) Withdrawal of [corrected] estrogen increases hypothalamic neuropeptide Y (NPY) mRNA expression in ovariectomized obese rat Neuroscience Letters, 204(12):81–84 113 Dube M.G., Xu B., Kalra P.S., et al (1999) Disruption in neuropeptide Y and leptin signaling in obese ventromedial hypothalamic-lesioned rats Brain Research, 816(1): 38–46 114 Martins A.C., Souza K.L., Shio M.T., et al (2004) Adrenal medullary function and expression of catecholamine-synthesizing enzymes in mice with hypothalamic obesity Life Sciences, 74(26):3211–3222 115 Lim S.M., Goh Y.M., Mohtarrudin N., et al (2016) Germinated brown rice ameliorates obesity in high-fat diet induced obese rats BMC Complementary and Alternative Medicine, 16:140 116 Furnes M.W., Zhao C.M., Chen D (2009) Development of obesity is associated with increased calories per meal rather than per day A study of high-fat diet-induced obesity in young rats Obesity Surgery, 19(10):1430–1438 117 Naderali E.K., Fatani S., Williams G (2004) Chronic withdrawal of a high-palatable obesity-inducing diet completelyreverses metabolic and vascular abnormalities associated with dietary-obesity in the rat Atherosclerosis, 172(1):63–69 118 Deuel H.J.Jr., Movitt E., Hallman Lois F, et al (1944) Studies of the comparative nutritive value of fats: I Growth rate and efficiency of conversion of various diets to tissue Journal of Nutrition, 27(1): 107– 121 145 119 Deuel H.J.Jr., Meserve E.R., Straub E., et al (1947) The effect of fat level of the diet on general nutrition: I Growth, reproduction and physical capacity of rats receiving diets containing various levels of cottonseed oil or margarine fat ad libitum Journal of Nutrition 33(5): 569–582 120 Okere I.C., Chandler M.P., McElfresh T.A., et al (2006) Differential effects of saturated and unsaturated fatty acid diets on cardiomyocyte apoptosis, adipose distribution, and serum leptin American Journal of Physiology Heart and circulatory physiology, 291(1): H38 –H44 121 Seo E.Y., Ha A.W., Kim W.K (2012) α-Lipoic acid reduced weight gain and improved the lipid profile in rats fed with high fat diet Nutrition Research and Practice, 6(3):195–200 122 de Moura E Dias M, Dos Reis SA, da Conceiỗóo LL, et al (2021) Diet-induced obesity in animal models: points to consider and influence on metabolic markers Diabetology & metabolic syndrome, 13(1):32 123 Hariri N, Thibault L (2010) High-fat diet-induced obesity in animal models Nutrition Research Reviews, 23(2): 270–299 124 Novelli E.L.B., Diniz Y.S., Galhardi C.M., et al (2007) Anthropometrical parameters and markers of obesity in rats Laboratory Animals, 41:111119 125 Rocha-Rodrigues R., Gonỗalves I.O., Beleza J., et al (2018) Physical exercise mitigates high-fat diet-induced adiposopathy and related endocrine alterations in an animal model of obesity Journal of Physiology and Biochemistry, 74(2):235–246 126 Ibrahim M.M (2010) Subcutaneous and visceral adipose tissue: structural and functional differences Obesity Reviews, 11(1):11–18 146 127 Gopalan V., Lee S.S., Velan S.S (2014) Quantification of abdominal fat depots in rats and mice during obesity and weight loss interventions PLoS ONE, 9(10):e108979 128 Li J, Zhao W.G., Shen Z.F., et al (2015) Comparative proteome analysis of brown adipose tissue in obese C57BL/6J mice using iTRAQ-coupled 2D LC-MS/MS PLoS ONE, 10(3):e0119350 129 Mughal R.S., Bridge K., Buza I., et al (2019) Effects of obesity on insulin: insulin-like growth factor hybrid receptor expression and Akt phosphorylation in conduit and resistance arteries Diabetes & Vascular Disease Research, 16(2): 160 –170 130 Iñiguez M., Pérez-Matute P., Villanueva-Millán M.J., et al (2018) Agaricus bisporus supplementation reduces high-fat diet-induced body weight gain and fatty liver development Journal of Physiology and Biochemistry, 74(4):635–646 131 Cordner Z.A., Tamashiro K.L (2015) Effects of high - fat diet exposure on learning and memory Physiology & Behavior, 152(Pt B):363–371 132 Morris R.G.M., Garrud P., Rawlins J.N.P., et al (1982) Place navigation impaired in rats with hippocampal lesions Nature, 297(5868):681–683 133 Morris R (1984) Developments of a water-maze procedure for studying spatial learning in the rat Journal of Neuroscience Methods, 11(1):47–60 134 Vorhees C.V., Williams M.T (2006) Morris water maze: procedures for assessing spatial and related forms of learning and memory Nature Protocols, 1(2):848–858 147 135 Zanini P., Arbo B.D., Niches G., et al (2017) Diet – induced obesity alters memory consolidation in female rats Physiology and Behavior, 180:91–97 136 Pathan A.R., Gaikwad A.B., Viswanad B., et al (2008) Rosiglitazone attenuates the cognitive deficits induced by high fat diet feeding in rats European Journal of Pharmacology, 589(1-3):176–179 137 Liu Y., Fu X., Lan N., et al (2014) Luteolin protects against high fat diet-induced cognitive deficits in obesity mice Behavioural Brain Research, 267:178–188 138 Arika W.M., Kibiti C.M., Njagi J.M., et al (2019) Effects of DCM leaf extract of Gnidia glauca (Fresen) on locomotor activity, anxiety, and exploration-like behaviors in high-fat diet-induced obese rats Behavioural Neurology, 2019:7359235 139 Vogel H., Kraemer M., Rabasa C., et al (2017) Genetic predisposition to obesity affects behavioural traits including food reward and anxiety – like behavior in rats Behavioural Brain Research, 328:95–104 140 Davies K.G., Ekpennyong C., Green O., et al (2013) Locomotor and exploratory behaviour in mice treated with oral artesunate British Journal of Science, 8(1):47–57 141 Kumari, S., & Kishor, R (2020) Chitin and chitosan: origin, properties, and applications Handbook of Chitin and Chitosan, 1–33 doi:10.1016/b978-0-12-817970-3 142 Hirano S (1996) Chitin biotechnology applications, Biotechnology Annual Review, 2: 237–258 143 Tønnesen H.H., Karlsen J (2002) Alginate in drug delivery systems Drug Development and Industrial Pharmacy, 28(6): 21–30 148 144 Rinaudo M (2014) Biomaterials based on a natural polysaccharide: alginate Revista Especializada en Ciencias Qmico-Biológicas, 17(1): 92–96 145 Lee Y.M., Park Y.J., Lee S.J., et al.(2000) The bone regenerative effect of platelet-derived chitosan/tricalcium growth phosphate factor-BB sponge delivered carrier with Journal a of Periodontology, 71 (3): 418–424 146 Hambleton A., Debeaufort F., Bonnote A., et al (2009) Influence of alginate emulsion-based films structure on its barrier properties and on the protection of microencapsulated aroma compound Food Hydrocolloids, 23: 2116–2124 147 Knill C.J., Kennedy J.F., Mistry J., et al (2010) Alginate fibres modified with unhydrolysed and hydrolysed chitosans for wound dressings Carbohydrate Polymer, 55(1): 65–76 148 Bhunchu S., Rojsitthisak P (2014) Biopolymeric alginate-chitosan nanoparticles as drug delivery carriers for cancer therapy Pharmazie, 69: 563–570 149 Azevedo M.A., Bourbon A.I., Vicente A.A., et al (2014) Alginate/chitosan nanoparticles for encapsulation and controlled release of vitamin B2 International Journal of Biological Macromolecules, 71: 141–146 150 Schachter M (2005) Chemical, pharmacokinetic and pharmacodynamic properties of statins: an update Fundamental & Clinical Pharmacology 19(1):117–125 151 Liu J., Zhang J., Shi Y., et al (2006) Chinese red yeast rice (Monascus purpureus) for primary hyperlipidemia: a meta-analysis of randomized controlled trials Chinese Medicine, 1(1): 4–16 149 152 Crundy S.M (1988) HMG-CoA reductase inhibitors for treatment of hypercholesteremia The New England Journal of Medicine, 319: 24–33 153 Bradford R.H., Shear C.L., Chremos A.N., et al (1991) Expanded Clinical Evaluation of Lovastatin (EXCEL) study results I Efficacy in modifying plasma lipoproteins and adverse event profile in 8245 patients with moderate hypercholesterolemia Archives of Internal Medicine, 151:43–49 154 Eskandary A., Moazedi A.A., Najaph Zade Varzi H., et al (2017) The effect of lovastatin on cognition impairment induced by bilateral electrical lesion of nucleus basalis magnocellularis in the Alzheimer’s disease model in adult male rats Feyz, Journal of Kashan University of Medical Sciences, 21(5):422–432 155 Meena A., Ratnam D.V., Chandraiah G., et al (2008) Oral nanoparticulate atorvastatin calcium is more efficient and safe in comparison to Lipicure in treating hyperlipidemia Lipids, 43:231–241 156 Aggarwal P., Hall J.B., McLeland C.B., et al (2009) Nanoparticle interaction with plasma proteins as it relates to particle biodistribution, biocompatibility and therapeutic efficacy Advanced Drug Delivery Reviews, 61:428–437 157 Garrett I.R., Gutierrez G.E., Rossini G., et al (2007) Locally delivered lovastatin nanoparticles enhance fracture healing in rats Journal of Orthopaedic Research, 25: 1351–1357 158 Tandon V., Bano G., Khajuria V., et al (2005) Pleiotropic effects of statins Indian Journal of Pharmacology, 37: 77–85 159 Xia Z., Tan M., Wei-Lynn Wong W., et al (2001) Blocking protein geranylgeranylazation is essential for lovastatin induced apoptosis of human acute myeloid leukemia cells Leukemia, 15: 1398–1407 150 160 Nguyễn Cao Hiền, Tán Văn Hậu, Lê Thị Thanh Vân cs (2017) Tổng hợp hệ nano hydroxypropyl-betacyclodextrin/alginate làm vật liệu mang thuốc, Tạp chí Khoa học cơng nghệ Thực phẩm, 13(1): 89–94 161 Nguyễn Thị Thu Trang (2016) Chế tạo, nghiên cứu số tính chất vật liệu tổ hợp Polylactic axit/chitosan (PLA/CS) thăm dò khả mang thuốc Quinin vật liệu, Luận án Tiến sĩ Hóa học, Hà Nội 162 Chinh N.T., Trang N.T.T., Giang N.V., et al (2016) In vitronifedipine release from poly(lactic acid)/chitosan nanoparticles loaded with nifedipine, Journal of Applied Polymer Science, 133(16), n/a–n/a doi:10.1002/app.43330 163 Thạch Thị Lộc, Thái Hoàng, Lê Đức Giang cs (2018) Nghiên cứu đặc trưng tính chất màng tổ hợp polymer Alginate/Chitosan/Lovastatin, Tạp chí khoa học, 47(2A): 23 – 30 164 Wu L., Parhofer K.G (2014) Diabetic dyslipidemia Metabolism, 63:1469–1479 165 Olsen M.K., Choi M.H., Kulseng B., et al (2017) Time-restricted feeding on weekdays restricts weight gain: A study using rat models of high-fat diet-induced obesity Physiology & Behavior, 173:298–304 166 Wong S.K., Chin K.Y., Suhaimi F., et al (2016) Animal models of metabolic syndrome: a review Nutrition & Metabolism, 13:65 167 Deal A.W., Seshie O., Lenzo A., et al (2020) High-fat diet negatively impacts both metabolic and behavioral health in outbred heterogeneous stock rats Physiological Genomics, 52(9):379–390 168 Han J., Nepal P., Odelade A., et al (2021) High-fat diet-induced weight gain, behavioral deficits, and dopamine changes in young C57BL/6J mice Frontiers in Nutrition, 7:591161 151 169 Barker G.R., Warburton E.C (2011) When is the hypocampus involved in recongnition memory? The Journal of Neuroscience, 31(29):10721– 10731 170 Swerdlow D.I., Preiss D., Kuchenbaecker K.B., et al (2015) HMGcoenzyme A reductase inhibition, type diabetes, and bodyweight: evidence from genetic analysis and randomised trials Lancet, 385(9965):351–361 171 Hernáez Á., Soria-Florido M.T., Schröder H., et al (2019) Role of HDL function and LDL atherogenicity on cardiovascular risk: A comprehensive examination PLoS One, 14(6):e0218533 172 Helve E., Tikkanen M.J (1988) Comparison of lovastatin and probucol in treatment of familial and non-familial hypercholesterolemia: different effects on lipoprotein profiles Atherosclerosis, 72(2):189– 197 173 Tolman K.G (2002) The liver and lovastatin The American Journal of Cardiology, 89(12):1374–1380 174 Sanguankeo A., Upala S., Cheungpasitporn W., et al (2015) Effects of statins on renal outcome in chronic kidney disease patients: a systematic review and meta-analysis PLoS One, 10(7):e0132970 175 Esmeijer K., Dekkers O.M., de Fijter J.W., et al (2019) Effect of different types of statins on kidney function decline and proteinuria: a network meta-analysis Scientific reports, 9(1):16632 176 Bobulescu I.A (2010) Renal lipid metabolism and lipotoxicity Current opinion in nephrology and hypertension, 19(4): 393–402 177 Velázquez K.T., Enos R.T., Bader J.E., et al (2019) Prolonged highfat-diet feeding promotes non-alcoholic fatty liver disease and alters gut microbiota in mice World Journal of Hepatology, 11(8):619–637 152 178 Eskandary A., Ali A., Hossein, et al (2017) The effects of donepezil and lovastatin on the reference and working memory by using radial arm-maze task in male rats model of Alzheimer’s disease Basic and Clinical Neuroscience Congress 2017, Abstract ID: 53 179 Ghayour M.B., Abdolmaleki A., Rassouli M.B (2017) Neuroprotective effect of Lovastatin on motor deficit induced by sciatic nerve crush in the rat European Journal of Pharmacology, 812:121– 127 180 Metwally F.M., Rashad H., Mahmoud A.A (2019) Morus alba L Diminishes visceral adiposity, insulin resistance, behavioral alterations via regulation of gene expression of leptin, resistin and adiponectin in rats fed a high-cholesterol diet Physiology & Behavior, 201:1–11 181 Dutheil S., Ota K.T., Wohleb E.S., et al (2016) High-fat diet induced anxiety and anhedonia: impact on brain homeostasis and inflammation Neuropsychopharmacology, 41(7):1874–1887 182 Homberg J.R., van den Akker M., Raasø H.S., et al (2002) Enhanced motivation to self-administer cocaine is predicted by selfgrooming behaviour and relates to dopamine release in the rat medial prefrontal cortex and amygdala The European Journal of Neuroscience, 15(9):1542–1550 183 Kreutzberg G.W (1996) Microglia: a sensor for pathological events in the CNS Trends in Neuroscience, 19(8):312-318 184 Adedayo L.D., Akintola G.S., Ojo A.O., et al (2018) Anxiolytic and explorative potentials of the methanol leaf extract of vernonia amygdalina in male Wistar rats Annals of Depression and Anxiety, 5(1):1094 ... ? ?Nghiên cứu tác dụng lên hành vi chuyển hóa lipid máu nano Alginate/ Chitosan/ Lovastatin chuột cống gây mơ hình béo phì? ?? với mục tiêu sau: Đánh giá biến đổi hành vi rối loạn chuyển hóa lipid chuột. .. tác dụng lên hành vi chuyển hóa lipid máu nano Alginate/ Chitosan/ Lovastatin chuột cống gây mơ hình béo phì 4.2.1 4.2.2 Tác dụng lên số số lipid máu glucose máu 4.2.3 Tác. .. BỘ GIÁO DỤC VÀ ĐÀO TẠO HỌC VI? ??N QUÂN Y NGUYỄN THỊ HOA NGHIÊN CỨU TÁC DỤNG LÊN HÀNH VI VÀ CHUYỂN HÓA LIPID MÁU CỦA NANO ALGINATE/ CHITOSAN/ LOVASTATIN TRÊN CHUỘT CỐNG GÂY MƠ HÌNH BÉO PHÌ Chun ngành:

Ngày đăng: 14/01/2022, 07:14

HÌNH ẢNH LIÊN QUAN

TRÊN CHUỘT CỐNG GÂY MÔ HÌNH BÉO PHÌ - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginate chitosan lovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
TRÊN CHUỘT CỐNG GÂY MÔ HÌNH BÉO PHÌ (Trang 1)
Hình 1.1. Cân bằng năng lượng và bệnh nguyên của béo phì. - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginate chitosan lovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
Hình 1.1. Cân bằng năng lượng và bệnh nguyên của béo phì (Trang 21)
Hình 1.3. Hình cắt ngang não chuột cống qua vị trí vùng dưới đồi với vùng bôi đậm tương ứng vị trí gây tổn thương vùng dưới đồi bên. - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginate chitosan lovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
Hình 1.3. Hình cắt ngang não chuột cống qua vị trí vùng dưới đồi với vùng bôi đậm tương ứng vị trí gây tổn thương vùng dưới đồi bên (Trang 34)
Môi trường mở: là một dụng cụ hình trụ tròn (đường kính 80 cm, cao 25 - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginate chitosan lovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
i trường mở: là một dụng cụ hình trụ tròn (đường kính 80 cm, cao 25 (Trang 60)
một vật thể giống hình người tuyết gồm hai phần hình khối cầu gắn chồng lên nhau, có cùng chiều cao (cao 15,5 cm, đường kính chân đế 7,5 cm). - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginate chitosan lovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
m ột vật thể giống hình người tuyết gồm hai phần hình khối cầu gắn chồng lên nhau, có cùng chiều cao (cao 15,5 cm, đường kính chân đế 7,5 cm) (Trang 61)
hình động vật béo - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginate chitosan lovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
h ình động vật béo (Trang 69)
Hình 3.1. Trọnglượng( A) và chiều dài (B) của hai nhóm chuột nghiên - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginate chitosan lovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
Hình 3.1. Trọnglượng( A) và chiều dài (B) của hai nhóm chuột nghiên (Trang 72)
Bảng 3.1. Tỷlệ thể trọng/chiều dài của hai nhóm chuột nghiên cứu qua 7 tuần nuôi. - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginate chitosan lovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
Bảng 3.1. Tỷlệ thể trọng/chiều dài của hai nhóm chuột nghiên cứu qua 7 tuần nuôi (Trang 75)
Kết quả trên Hình 3.3 cho thấy tổng quãng đường vận động trong môi trường mở ở nhóm gây béo phì (1317,29 ± 566,1 cm) thấp hơn so với ở nhóm ăn thường (1800,24 ± 438,92 cm) (kiểm định T, p < 0,001) - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginate chitosan lovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
t quả trên Hình 3.3 cho thấy tổng quãng đường vận động trong môi trường mở ở nhóm gây béo phì (1317,29 ± 566,1 cm) thấp hơn so với ở nhóm ăn thường (1800,24 ± 438,92 cm) (kiểm định T, p < 0,001) (Trang 84)
Hình 3.3. Quãngđường vận động (A) và tốc độ vận động (B) trong môi trường mở của hai nhóm chuột - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginate chitosan lovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
Hình 3.3. Quãngđường vận động (A) và tốc độ vận động (B) trong môi trường mở của hai nhóm chuột (Trang 84)
Hình 3.4. Thời gian vận động (A) và thời gian đứng im (B) trong môi trường mở của hai nhóm chuột - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginate chitosan lovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
Hình 3.4. Thời gian vận động (A) và thời gian đứng im (B) trong môi trường mở của hai nhóm chuột (Trang 85)
Trên Hình 3.5 cho thấy quãng đường vận động ở vùng trung tâm (A) ở nhóm - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginate chitosan lovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
r ên Hình 3.5 cho thấy quãng đường vận động ở vùng trung tâm (A) ở nhóm (Trang 86)
Hình 3.8. Số lần khámphá mỗi vật ở pha luyện tập (A) và pha kiểm tra (B)  của hai nhóm chuột ở cuối giai đoạn gây mô hình. - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginate chitosan lovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
Hình 3.8. Số lần khámphá mỗi vật ở pha luyện tập (A) và pha kiểm tra (B) của hai nhóm chuột ở cuối giai đoạn gây mô hình (Trang 90)
Hình ảnh mô học của gan, thận và lách của hai nhóm chuột ăn thường và ăn giàu béo được minh họa trên Hình 3.10. - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginate chitosan lovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
nh ảnh mô học của gan, thận và lách của hai nhóm chuột ăn thường và ăn giàu béo được minh họa trên Hình 3.10 (Trang 95)
Hình 3.11. Trọnglượng(gram) của các nhóm chuột nghiên cứu ở chế độ ăn thường (A), ăn giàu béo (B ) và chiều dài (cm) của chúng ở chế độ ăn thường - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginate chitosan lovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
Hình 3.11. Trọnglượng(gram) của các nhóm chuột nghiên cứu ở chế độ ăn thường (A), ăn giàu béo (B ) và chiều dài (cm) của chúng ở chế độ ăn thường (Trang 97)
33) = 0,396, p= 0,676; F–ăn giàu béo (2, 32) = 0,174, p= 0,841) (Hình 3.11C và - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginate chitosan lovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
33 = 0,396, p= 0,676; F–ăn giàu béo (2, 32) = 0,174, p= 0,841) (Hình 3.11C và (Trang 98)
Bảng 3.14. Nồng độ glucose máu (mmol/L) của các nhóm chuột nghiên cứu qua 12 tuần can thiệp. - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginate chitosan lovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
Bảng 3.14. Nồng độ glucose máu (mmol/L) của các nhóm chuột nghiên cứu qua 12 tuần can thiệp (Trang 104)
nhóm nghiên cứu qua 12 tuần can thiệp được trình bày trên các Bảng 3.16–3.18. - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginate chitosan lovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
nh óm nghiên cứu qua 12 tuần can thiệp được trình bày trên các Bảng 3.16–3.18 (Trang 108)
Hình 3.13. Quãngđường vận động (m) trong môi trường mở của các nhóm chuột ăn thường (A) và ăn giàu béo (B) sau can thiệp bằng dược chất - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginate chitosan lovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
Hình 3.13. Quãngđường vận động (m) trong môi trường mở của các nhóm chuột ăn thường (A) và ăn giàu béo (B) sau can thiệp bằng dược chất (Trang 117)
Hình 3.14. Tốc độ vận động trung bình trong môi trường mở của các nhóm - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginate chitosan lovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
Hình 3.14. Tốc độ vận động trung bình trong môi trường mở của các nhóm (Trang 118)
Hình 3.15. Thời gian vận động trong môi trường mở của các nhóm chuột ăn thường (A ) và ăn giàu béo (B) sau can thiệp bằng dược chất. - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginate chitosan lovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
Hình 3.15. Thời gian vận động trong môi trường mở của các nhóm chuột ăn thường (A ) và ăn giàu béo (B) sau can thiệp bằng dược chất (Trang 119)
Hình 3.16. Thời gian đứng im của chuột trong môi trường mở của các nhóm chuột ăn thường (A) và ăn giàu béo (B) sau can thiệp bằng dược chất. - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginate chitosan lovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
Hình 3.16. Thời gian đứng im của chuột trong môi trường mở của các nhóm chuột ăn thường (A) và ăn giàu béo (B) sau can thiệp bằng dược chất (Trang 121)
Hình 3.18. Quãngđường vận động ở vùngngoại vi của các nhóm chuột ăn thường - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginate chitosan lovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
Hình 3.18. Quãngđường vận động ở vùngngoại vi của các nhóm chuột ăn thường (Trang 124)
Hình 3.19. Số lần vào vùng trung tâm của các nhóm chuột ăn thường (A), ăn giàu béo (B) và thời gian ở vùng trung tâm của chuột ở nhóm ăn thường (C), - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginate chitosan lovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
Hình 3.19. Số lần vào vùng trung tâm của các nhóm chuột ăn thường (A), ăn giàu béo (B) và thời gian ở vùng trung tâm của chuột ở nhóm ăn thường (C), (Trang 125)
Hình 3.20. Số lần ra vùngngoại vi của chuột ở nhóm chuột ăn thường (A), ăn giàu béo (B) và thời gian ở vùng ngoại vi của chuột ở nhóm ăn thường (C ), ăn - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginate chitosan lovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
Hình 3.20. Số lần ra vùngngoại vi của chuột ở nhóm chuột ăn thường (A), ăn giàu béo (B) và thời gian ở vùng ngoại vi của chuột ở nhóm ăn thường (C ), ăn (Trang 127)
Hình 3.21. Số lần khámphá đồ vật ở pha luyện tập trong môi trường mở của - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginate chitosan lovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
Hình 3.21. Số lần khámphá đồ vật ở pha luyện tập trong môi trường mở của (Trang 128)
Hình 3.22. Tỷlệthời gian khámphá đồ vật ở pha luyện tập trong môi trường mở - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginate chitosan lovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
Hình 3.22. Tỷlệthời gian khámphá đồ vật ở pha luyện tập trong môi trường mở (Trang 129)
Hình 3.23. Số lần khámphá đồ vật ở pha kiểm tra trong môi trường mở của các nhóm chuột ăn thường (A) và ăn giàu béo (B) sau can thiệp bằng dược chất. - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginate chitosan lovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
Hình 3.23. Số lần khámphá đồ vật ở pha kiểm tra trong môi trường mở của các nhóm chuột ăn thường (A) và ăn giàu béo (B) sau can thiệp bằng dược chất (Trang 130)
Hình 3.24. Tỷlệthời gian khámphá đồ vật ở pha kiểm tra trong môi trường mở của các nhóm chuột ăn thường (A) và ăn giàu béo (B ) sau can thiệp bằng - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginate chitosan lovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
Hình 3.24. Tỷlệthời gian khámphá đồ vật ở pha kiểm tra trong môi trường mở của các nhóm chuột ăn thường (A) và ăn giàu béo (B ) sau can thiệp bằng (Trang 131)
Hình 3.25. Quãngđường bơi tìm bến đỗ của các nhóm chuột qua các ngày tập trong mê lộ nước sau 12 tuần can thiệp dược chất. - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginate chitosan lovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
Hình 3.25. Quãngđường bơi tìm bến đỗ của các nhóm chuột qua các ngày tập trong mê lộ nước sau 12 tuần can thiệp dược chất (Trang 132)
w