PHƯƠNG PHÁP DPPH
II.1 Kết quả đo hoạt tính kháng oxy hoá của rutin
Bảng 8 Kết quả đo độ hấp thu của rutin
Nồng độ rutin Độ hấp thu mẫu 1 Độ hấp thu mẫu 2 Độ hấp thu trung bình ức chế DPPH 0,25 gmL 1,7496 1,7496 1,7495 20,33 1 gmL 1,6461 1,6457 1,6459 25,05 2,5 gmL 1,4330 1,4270 1,4300 34,88 5 gmL 1,1820 1,2610 1,1990 45,40 10 gmL 0,8310 0,8290 0,8300 62,20
TRẦN THỊ HƯỞNG 091021 Trang 56
Đồ thị 1 Khả năng ức chế DPPH theo nồng độ của rutin
Nhận xét Khả năng bắt gốc tự do của rutin tăng khi nồng độ tăng, tuy nhiên tăng không nhiều, là do ở vị trí số 3 ở vòng C trên cấu trúc của rutin bị khoá bởi gốc đường, điều này đã hạn chế khả năng bắt gốc tự do của rutin. Từ đồ thị nội suy khả năng bắt 50 gốc tự do của rutin là 6 gmL, với nồng độ này cho thấy khả năng kháng oxy hoá của rutin khá tốt.
II.2 Kết quả đo hoạt tính kháng oxy hoá của quercetin
Bảng 9 Kết quả đo độ hấp thu của quercetin
Nồng độ quercetin Độ hấp thu mẫu 1 Độ hấp thu mẫu 2 Độ hấp thu trung bình ức chế DPPH 0,25 gmL 1,7350 1,6740 1,7045 22,38 1 gmL 1,5230 1,5240 1,5235 30,62 0,25 gmL 1,1300 1,2100 1,1700 46,72 5 gmL 0,5710 0,5410 0,5560 74,68 10 gmL 0,1080 0,1140 0,1110 94,95
TRẦN THỊ HƯỞNG 091021 Trang 57
Đồ thị 2 Khả năng ức chế DPPH theo nồng độ của quercetin
Nhận xét Khả năng bắt gốc tự do của quercetin tăng khi nồng độ tăng, nhưng khi càng tăng nồng độ mẫu thì khả năng bắt gốc tự do tăng không nhiều khi đó là do gần đạt trạng thái cân bằng của phản ứng chuyển H thuận nghịch. Từ đồ thị nội suy được
SC50quercetin 2,8 gmL. Điều này cho thấy khi không có gốc đường ở vòng C như ở
rutin thì khả năng bắt gốc tự do của chất tăng lên.
II.3 Kết quả đo hoạt tính kháng oxy hoá của luteolin
Bảng 10 Kết quả đo độ hấp thu của luteolin
Nồng độ luteolin Độ hấp thu mẫu 1 Độ hấp thu mẫu 2 Độ hấp thu trung bình ức chế DPPH 0,25 gmL 1,6600 1,7220 1,6910 22,99 1 gmL 1,4770 1,5910 1,5340 30,15 2,5 gmL 1,2150 1,2060 1,2105 44,88 5 gmL 0,7630 0,7380 0,7505 65,82 10 gmL 0,1360 0,1310 0,1335 93,92
TRẦN THỊ HƯỞNG 091021 Trang 58
Đồ thị 3 Khả năng ức chế DPPH theo nồng độ của luteolin
Nhận xét: Khả năng bắt gốc tự do của luteolin tăng khi nồng độ tăng, từ đồ thị cho thấy rằng nhóm OH ở vị trí số 3 ở vòng C cũng có đóng góp đáng kể vào khả năng bắt gốc tự do của mẫu. Giá trị SC50luteolin nội suy từ đồ thị là 3 gmL. Như vậy luteolin và quercetin có khả năng bắt gốc tự do tốt tương đương nhau.
II.4 Kết quả đo hoạt tính kháng oxy hoá của LAT
Bảng 11 Kết quả đo độ hấp thu của LAT
Nồng độ LAT Độ hấp thu mẫu 1 Độ hấp thu mẫu 2 Độ hấp thu trung bình ức chế DPPH 2,5 gmL 1,7140 1,7090 1,7115 22,06 5 gmL 1,7045 1,7056 1,7050 22,36 10 gmL 1,7280 1,7040 1,7034 22,43 25 gmL 1,6999 1,7013 1,7006 20,56
TRẦN THỊ HƯỞNG 091021 Trang 59
Đồ thị 4 Khả năng ức chế DPPH theo nồng độ của LAT II.5 Kết quả đo hoạt tính kháng oxy hoá của LMT
Bảng 12 Kết quả đo độ hấp thu của LMT
Nồng độ LMT Độ hấp thu mẫu 1 Độ hấp thu mẫu 2 Độ hấp thu trung bình ức chế DPPH 0,25 gmL 1,7220 1,6930 1,7075 22,25 5 gmL 1,7050 1,6930 1,6990 22,63 10 gmL 1,6981 1,6983 1,6972 22,71 25 gmL 1,6953 1,6930 1,6942 22,85
TRẦN THỊ HƯỞNG 091021 Trang 60
Đồ thị 5 Khả năng ức chế DPPH theo nồng độ của LMT II.6 Kết quả đo hoạt tính kháng oxy hoá của LAB
Bảng 13 Kết quả đo độ hấp thu của LAB
Nồng độ LAB Độ hấp thu mẫu 1 Độ hấp thu mẫu 2 Độ hấp thu trung bình ức chế DPPH 2.5 gmL 1,7110 1,7090 1,7100 22,13 5 gmL 1,7130 1,7030 1,7080 22,22 10 gmL 1,7110 1,7130 1,7120 22,04 25 gmL 1,7090 1,7120 1,7105 22,11
TRẦN THỊ HƯỞNG 091021 Trang 61
Đồ thị 6 Khả năng ức chế DPPH theo nồng độ của LAB II.7 Kết quả đo hoạt tính kháng oxy hoá của LTB
Bảng 14 Kết quả đo độ hấp thu của LTB
Nồng độ LTB Độ hấp thu mẫu 1 Độ hấp thu mẫu 2 Độ hấp thu trung bình ức chế DPPH 50 gmL 1,3300 1,3310 1,3305 39,41 100 gmL 0,9970 1,0600 1,0285 53,16 200 gmL 0,7030 0,7070 0,7050 67,89 400 gmL 0,2760 0,2660 0,2710 87,66
TRẦN THỊ HƯỞNG 091021 Trang 62
Đồ thị 7 Khả năng ức chế DPPH theo nồng độ của LTB
Nhận xét Đối với hợp chất LTB khi thay thế hydrogen ở vị trí 6, 8 bằng
halogenua, các nhóm OH vẫn giữ nguyên nhưng khả năng bắt gốc tự do giảm xuống. Giá trị SC50LTB nội suy từ đồ thị là 4,2 gmL. Như vậy khả năng bắt gốc tự do của LTB giảm xuống so với quercetin và luteolin.
Kết luận chung Từ kết quả cho thấy khả năng kháng oxy hoá của quercetin và luteolin tương đương nhau, khi so sánh về mặt cấu trúc quercetin và luteolin chỉ khác nhau ở nhóm OH ở vị trí số 3 của vòng C, điều này cho thấy khả năng đóng góp của nhóm OH này tương tự như các nhóm OH còn lại, tuy nhiên có sự kết hợp của nhóm 5OH ở vòng A với nhóm 3OH và 4oxo ở vòng C sẽ làm tăng thêm khả năng bắt gốc tự do cho quercetin, điều này được chứng tỏ khi so sánh với khả năng bắt gốc tự do của luteolin luteolin không còn nhóm 3OH ở vòng C, và hoạt tính này giảm đi khi nhóm 3OH bị khoá bởi gốc đường, nó được thể hiện ở sự giảm hoạt tính của rutin cấu trúc của rutin bị khoá bởi gốc đường ở vị trí nhóm 3OH. Một điều nữa là khi thay thế hết các nhóm hydroxy của luteolin bởi các nhóm COCH3, OMe, OCH2CHCH2 đã làm mất đi khả năng bắt gốc tự do của các chất.
TRẦN THỊ HƯỞNG 091021 Trang 63
III XÁC ĐỊNH NỒNG ĐỘ BẮT 50 GỐC TỰ DO DPPH SC50 CỦA MẪU Vẽ đồ thị biểu diễn kết quả kháng oxy hoá của các mậu có hoạt tính cao
Từ các đồ thị biểu diễn khả năng ức chế DPPH theo nồng độ của các mẫu, bằng phương pháp nội suy như đã đưa ra ở phần thực nghiệm. Kết quả cho thấy giá trị SC50 của luteolin có khả năng bắt gốc tự do gần bằng với quercetin. Trong bốn dẫn xuất của luteolin, thì LTB có giá trị SC50 khá tốt, tức là có khả năng bắt gốc tự do chỉ kém hơn chút ít so với luteolin cũng như so với quercetin. Điều này cho thấy khả năng đóng góp quan trọng của các nhóm OH trên khung flavone vào khả năng bắt gốc tự do của chất. Giá trị SC50 của các mẫu có hoạt tính được tính và trình bày trong bảng, và đồ thị
Bảng 16 Giá trị SC50 DPPH của các mẫu có hoạt tính
STT Mẫu SC50 gmL
1 Rutin 6
2 Quercetin 2,8
3 Luteolin 3
4 LTB 4,2
TRẦN THỊ HƯỞNG 091021 Trang 64
TRẦN THỊ HƯỞNG 091021 Trang 65
CÁC KẾT QUẢ NGHIÊN CỨU ĐẠT ĐƯỢC
Với bước đầu nghiên cứu bán tổng hợp từ nguồn nguyên liệu rutin, chúng tôi đã đạt được một số kết quả sau
1. Tổng hợp luteolin từ nguồn nguyên liệu rutin, thu được sản phẩm tương đối tinh khiết 97, và phương pháp có sử dụng lò vi sóng đạt hiệu quả cao hơn.
2. Từ luteolin thu được, đã tổng hợp được bốn dẫn xuất 3,4,5,7tetraacetoxyflavon, 3,4,5,7tetrametoxyflavon, 3,4,5,7tetraallyloxyflavon,
6,8dibromo3,4,5,7tetrahydroxyflavon thu được sản phẩm tương đối tinh khiết lần lượt ứng với 99, 94, 91.
3. Bằng các phương pháp phân tích hoá lý hiện đại như đo nhiệt độ nóng chảy, UV, IR, HPLC, LCMS, 1HNMR, 13CNMR đã xác định được cấu trúc sản phẩm tổng hợp.
4. Các chất tinh khiết trên được thử hoạt tính kháng oxy hoá bằng phương pháp DPPH. Kết quả cho thấy luteolin và LTB có hoạt tính kháng oxy hoá mạnh, cụ thể
SC50luteolin 3 gmL, SC50LTB 4,2 gmL, ba dẫn xuất còn lại LAT, LMT, LAB
có khả năng kháng oxy hoá rất yếu.
KIẾN NGHỊ
1. Tiếp tục tổng hợp thêm các dẫn xuất mới: dẫn xuất amide, dẫn xuất chứa
halogenua của luteolin bằng cách phản ứng với các tác nhân KCl cùng với xúc tác oxon, … và khảo sát hoạt tính kháng oxy hoá của chúng.
2. Khảo sát thêm các hoạt tính kháng ung thư, kháng viêm và khả năng gây độc tế bào của luteolin và dẫn xuất.
3. Hoàn thiện việc tổng hợp và tinh chế các chất có hoạt tính để khi cần có thể sản xuất được chế phẩm. Thử nghiệm trên thực tế in vivo và hướng tới việc ứng dụng vào thực tiễn.
TRẦN THỊ HƯỞNG 091021 Trang 66
TÀI LIỆU THAM KHẢO Tài liệu tiếng Việt
1 Bùi Trọng Đạt, Phùng Văn Trung, Phan Nhật Minh, Hoàng Thị Ngọc Dung, Phạm Cao Thanh Tùng 2003, Xây dựng quy trình thử hoạt tính kháng oxy hoá và sàng lọc một số cao chiết từ câ cỏ Việt Nam, Tuyển tập công trình
nghiên cứu khoa họccông nghệ năm 2003, trang 150154.
2 Chu Phạm Ngọc Sơn 2005, Bài giảng các phương pháp phân tích hiện
đạiPhổ nghiệm chuyên sâu.
3 Dược điển Việt Nam III, NXB Y học, 2002.
4 Đỗ Tất Lợi, Những cây thuốc và vị thuốc Việt Nam, Nhà xuất bản Y học, 2001. 5 Hoàng Thị Kim Dung 2010, Tổng hợp dẫn xuất của flavonoid rutin,
quercetin, hesperidin, hesperretin và xác định hoạt tính sinh học của chúng, Luận án Tiến sĩ Hoá học, Viện Công nghệ Hoá học, Thành phố Hồ Chí Minh. 6 Ioan Simiti, Ioan Schwartz 1979, Cấu trúc hoá học tác dụng sinh vật, Nhà
xuất bản Y học.
7 Nguyễn Hữu Đỉnh, Trần Thị Đà, Ứng dụng một số phương pháp phổ nghiên cứu cấu trúc phân tử, Nhà xuất bản Giáo dục, 1999.
8 Nguyễn Huỳnh Tâm, 2011, Nghiên cứu bán tổng, khảo sát hoạt tính kháng oxy hoá của flavonoid và dẫn xuất từ vỏ quýt, Luận văn tốt nghiệp, Đại học Bách Khoa.
9Nguyễn ngọc Hạnh, Tách chiết và cô lập hợp chất tự nhiên, Giáo trình cao học, 2002.
10 Nguyễn Viết Đàn, Nguyễn Viết Tựu, Phương pháp nghiên cứu hóa học cây thuốc, Nhà xuất bản Y học, 1985.
TRẦN THỊ HƯỞNG 091021 Trang 67 11Nguyễn Kim Phi Phụng, Các phương pháp nhận danh,trích ly, cô lập các hợp
chất hữu cơ, Nhà xuất bản Đại học Quốc gia Thành phố Hồ Chí Minh.
12 Nguyễn Kim Phi Phụng 2005, Phổ NMR sử dụng trong phân tích hữu cơ,
Nhà xuất bản Đại học Quốc gia Thành phố Hồ Chí Minh.
13 Phạm Hoàng Hộ 2000, Cây cỏ Việt Nam, Nhà xuất bản Trẻ, tập 3, trang 245. 14 Trần Thị Hà Thái, 2006, Khảo sát hoạt tính kháng oxy hoá của một số chất tự
nhiên bằng phương pháp tính toán, Luận văn Thạc sĩ.
15 Trần Thị Việt Hoa, Phan Thanh Sơn Nam, Giáo trình Hoá Hữu Cơ, Nhà xuất bản Đại học Quốc gia Thành phố Hồ Chí Minh, 2007.
16 Tăng Hiến Quốc ,2007, “Góp phần nghiên cứu thành phần hóa học của lá atiso Đà lạt (Cynara Scolymus L.), họ cúc (Asteraceae), Luận văn thạc sĩ, Cần Thơ.
Tài liệu tiếng Anh
17 A. Ulubelen, M. miski, P. Neuman, T. J. Mabry, J. Nat. prod, Flavonoids of
Salvia tomentosa Labiatae., 1979, 42 3, pp 261263.
18 Bagli, E. Stefaniotou, M. Morbidelli, L. Ziche, M. Psillas, K. Murphy, C. Fotsis, T. Cancer Res, Luteolin inhibits vascular endothelial growth
factorinduced angiogenesis; inhibition of endothelial cell survival and
proliferation by targeting phosphatidylinositol 3 kinase activity, 2004.
[19] Catherine A. RiceEvans, Lester Packer (1998), Flavonoids in Health and Disease, Copyright by Marcel Dekker, Inc.
20 Chowdhury, A.R. Sharma, S. Mandal, S. Goswami, A. Mukhopadhyay, S. Majumder, H.K. Luteolin, an emerging anticancer flavonoid, poisons
TRẦN THỊ HƯỞNG 091021 Trang 68 [21] ChunWhan Choi, Hyun Ah Jung, Sam Sik Kang, Jae Sue Choi (2007),
Antioxidant constituents and a new triterpenoid glycoside from Flos Lonicerae, Archives of Pharmacal Research vol. 30, no. 1, 17. 22 Cushnie TPT, Lamb AJ 2005, Antimicrobial activity of flavonoids,
International Journal of Antimicrobial Agents 26 5 343356
23 Esterbauer, H., Zollner, H. and Schaur, R. J. (1990) Aldehydes formed by lipid
peroxidation: mechanisms of formation, occurrence, and determination" in
Membrane Lipid Oxidation, CRC Press, Boca Raton,
[24] Gulgun AyhanKilcigil, Tulay Coban, Meral Tuncbilek, Benay CanEke, Oya BozdagDundar, Rahmiye Ertan, Mumtaz Iscan (2004), Antioxidant properties of flavone 6(4) carboxaldehyde oxime ether derivatives, Archives of Pharmacal Research 27, no. 6, 610614.
[25] HaeSuk Park, Ju Hee Lim, Hyun Jung Kim, Hyun Jin Choi, Ik-Soo Lee (2007), Antioxidant flavone glycosides from the leaves of Sasa borealis, Archives of Pharmacal Research 30, no. 2, 161166.
26 Haeil Park, Tran Thanh Dao, Hyun Pyo Kim (2005), Synthesis and inhibition of PEG2 production of 6,8disubstituted chrysin derivatives, European Journal of Medicinal Chemistry 40, 943948.
27 Herwig Buchholz, Frankfurt DE, Raft Rosskpf, Munster DE, Alice Lichtenberg, Darmstadt DE, Christine Kraus, Schwarzheide DE, Method
for producing luteolin and luteolin derivatives, United States Patent, 2003.
28 J. B. Harborne, T. J. Mabry. The flavonoids Advances in Research, London New York Chapman and Hall, 1984.
[29] Jeffrey B. Harborne, Christine A. Williams (2000), Advances in flavonoid research since 1992, Phytochemistry 55, 481504.
TRẦN THỊ HƯỞNG 091021 Trang 69 30 Kim, J.H. Jin, Y.R. Park, B.S. Kim, T.J. Kim, S.Y. Lim, Y. Hong, J.T. Yoo,
H.S. Yun, Y.P. Biochem. Pharmacol, Luteolin prevents PDGFBBinduced proliferation of vascular smooth muscle cells by inhibition of PDGF
betareceptor phosphorylation, 2005.
[31] Mark Cushman, Helen Zhu, Robert L. Geahlen, Alan J. Kraker (1994), Synthesis and Biochemical Evaluation of a Series of Aminoflavones as Potential Inhibitors of ProteinTyrosine Kinases p56, EGFr, p60, Journal of Medicinal Chemistry 37, 33533362.
32 Mittra, B. Saha, A. Chowdhury, A.R. Pal, C. Mandal, S. Mukhopadhyay, S. Bandyopadhyay, S. Majumder, H.K. Mol. Med, Luteolin, an abundant dietary
component is a potent antileishmanial agent that acts by inducing
topoisomerase IImediated kinetoplast DNA cleavage leading to apoptosis,
2000.
[33] Miyuki Furusawa, Toshiyuki Tanaka, Tetsuro Ito, Asami Nishikawa, Naomi Yamazaki, Kenichi Nakaya, Nobuyasu Matsuura, Hironori Tsuchiya, Motohiko Nagayama, Munekazu Iinuma (2005), Antioxidant activity of hydroxyflavonoids, Journal of Health Science 51(3), 376378.
34 Oyvind M. Andersen, Kenneth R. Markham (2006), Flavonoids: Chemistry, biochemistry and applications, Published by CRC Press, Taylor & Francis Group, New York.
35 Phan, Thang T.Hughes, Margret A. Cherry, George W. 1998, Enhenced proliferation of fibroblasts and endotheliol cells treated with an extract of the
leaves of Chromolaena odorata Eupolin, an herbal remedy for treatings
TRẦN THỊ HƯỞNG 091021 Trang 70 36 PeiDawn Lee Chao, SuLan Hsiu, YuChi Hou (2002), Flavonoids in herbs:
biological fates and potential interactions with xenobiotics, Journal of Food and Drug Analysis 10, no. 4, 219228.
[37] Scambia G., Ranelletti FO., Benedetti Panici P. (1990), Synergistic
antiproliferative of Quercetin and cisplatin on ovarian cancer cell growth, Anticancer Drugs 1, 4548.
[38] Scambia G., Ranelletti F. O., Benedetti Panici P., Piantelli M., Bonanno G., De Vincenzo R., Ferrandina G., Maggiano N., Capelli A., Mancuso S. (1992), Inhibitory effect of quercetin on primary ovarian and endometrial cancers and synergistic activity with cisdiamminedichloroplatinum (II), Gynecologic Oncology 45,1319.
39 Selvendiran, K. Koga, H. Ueno, T. Yoshida, T. Maeyama, M. Torimura, T. Yano, H., Kojiro, M. Sata, M. Cancer Res Luteolin promotes degradation in signal transducer and activator of transcription 3 in human hepatoma cells:
an implication for the antitumor potential of flavonoids, 2006.
40 Tang, D., H. J. Li, et al 2008, Rapid and simple method for screening of natural antioxidants from Chinese herb Flos Lonicerae Japonicae by DPPHHPLCDADTOFMS, Jsep 31 20 35193526.
41 T.A. Geissman Department of Chemistry University of California Los Angele. The chemistry4 of flavonoid compounds, Pergamon press Oxford, London, New York, Paris, 1962.
42 Teruaki Fujito 1981, Magnetic Interaction in Solventfree DPPH and
DPPHSolvent Complexes, Bulletin of the Chemical Society of Japan 54
TRẦN THỊ HƯỞNG 091021 Trang 71 43 Ververidis Filippos, F Trantas Emmanouil, Douglas Carl, Vollmer Guenter,
Kretzschmar Georg, Panopoulos Nickolas October 2007. Biotechnology of
flavonoids and other phenylpropanoidderived natural products.
44 V.K. Sasidharan, T.Krishnakumar and C.B. Manjula 1998, Antimicrobial
activity of nine common plants in Kerala, India, PJS, Vol. 127, No. 1.
45 Yimin Zhao, Ming Yang, Yunfeng Li, Xinhui Luan, Zhipu Luo (2006), Quercetin derivatives and their medical usages, US patent 7,049,301B2. 46 http://en.wikipedia.org/wiki/Luteolin
47 http://www.sciencedaily.com/releases/2012/01/120122201213.htm [48]
ttp://www.ykhoanet.com/cactacgia/nguyenyduc/anhuongtuoivang/08_4_Antioxida nt.htm
TRẦN THỊ HƯỞNG 091021
TRẦN THỊ HƯỞNG 091021
TRẦN THỊ HƯỞNG 091021 Phụ lục 3 Phổ IR của luteolin D :\ K E T Q U A 1 1 \P 4 9 \1 2 2 0 1 1 \H U O N G .0