5.1. KẾT LUẬN
Bệnh đốm lá nhỏ ngô là bệnh xuất hiện phổ biến trên đồng ruộng. Qua kết quả điều tra trên các vùng trồng ngô khác nhau, các giống ngô khác nhau, chế độ luân canh ngô khác nhau, chế độ phân bón khác nhau, thời vụ gieo trồng, chế độ trồng xen và mật độ trồng khác nhau cho thấy TLB (%), CSB (%) của bệnh đốm lá nhỏ ở mức khác nhau và bệnh kéo dài đến cuối vụ. Bệnh gây hại nặng ở những ruộng ngơ bón phân khơng cân đối, không luân canh cây trồng, vệ sinh đồng ruộng và không sử dụng giống kháng bệnh.
Nấm Bipolaris maydis phát sinh, phát triển tốt nhất ở môi trường nuôi cấy giàu dinh dưỡng như PSA, PGA, PCA và phát sinh, phát triển chậm nhất ở môi trường nghèo dinh dưỡng như WA.
Nấm phát sinh, phát triển tốt ở môi trường pH từ 5 - 8 và phát triển tốt nhất ở môi trường pH từ 6 - 7 và ở nhiệt độ 30°C. Nấm có bào tử đa bào kích thước 100,0 - 125,0 x 14,5 - 21,0µm và khả năng nảy mầm của bào tử đạt 100% sau 2h30.
Khảo sát hiệu lực ức chế của thuốc trừ nấm đến nấm trong phịng thí nghiệm cho thấy cả 3 loại thuốc sử dụng đều có tác dụng ức chế nấm, trong đó thuốc Daconil 75WP có hiệu lực ức chế nấm B. maydis là cao nhất (67,09%),
thuốc Valivithaco 5SL, Score 250EC hiệu lực ức chế nấm là thấp hơn (35,59%, 55,38%).
Lây nhiễm không sát thương bằng sợi nấm và bằng nguồn bệnh từ lá cây nhiễm bệnh cho biểu hiện bệnh sớm và đạt tỷ lệ nhiễm bệnh cao 85,56%, 88,89% sau 20 ngày lây nhiễm.
Giống LVN5885 và LVN255 ít nhiễm bệnh nhất trong số các giống khảo sát bằng lây nhiễm nhân tạo.
Khảo sát một số thuốc trừ nấm phòng trừ bệnh đốm lá nhỏ ngoài đồng ruộng cho thấy thuốc Daconil 75WP phòng trừ bệnh đốm lá nhỏ đạt hiệu lực phòng trừ cao (62,67%).
5.2. KIẾN NGHỊ
Tiếp tục khảo sát, nghiên cứu đặc điểm phát sinh, phát triển, đặc tính sinh học của nấm Bipolaris maydis để tìm ra những biện pháp phịng chống bệnh đốm lá nhỏ nhằm hạn chế thấp nhất mức độ do nấm gây ra.
Tiếp tục nghiên cứu hiệu lực của một số thuốc trừ nấm có nguồn gốc sinh học có tác dụng ức chế sự phát triển của nấm B. maydis và đối với bệnh đốm lá nhỏ ngơ đồng thời đảm bảo an tồn thực phẩm.
TÀI LIỆU THAM KHẢO
Tiếng Việt:
1. Bộ nông nghiệp và phát triển nông thôn (2011). Quy chuẩn kỹ thuật quốc gia về khảo nghiệm giá trị canh tác và sử dụng của giống ngô (QCVN 01 - 56 : 2011/BNNPTNT). tr. 5.
2. Bộ nông nghiệp và phát triển nông thôn (2014). Quy chuẩn kỹ thuật Quốc gia về Phương pháp điều tra phát hiện dịch hại cây ngô (QCVN 01 - 167 : 2014/BNNPTNT). tr. 9-10. 3. Cục trồng trọt (2011). Báo cáo định hướng và giải pháp phát triển cây ngơ vụ đơng và
vụ xn các tỉnh phía Bắc. Sơn La, 24 tháng 8 năm 2011.
4. Lê Lương Tề (1997). Các chủng (Races) của nấm Bipolaris maydis gây bệnh đốm lá ngơ. Tạp chí Bảo vệ thực vật số 3. tr. 45-46.
5. Nguyễn Cơng Thuật (1997). Phịng trừ tổng hợp sâu bệnh hại cây trồng. NXB Nông nghiệp, Hà Nội. tr. 10-11.
6. Võ Thanh Hồng (2000). Giáo trình Bệnh cây chuyên khoa. Nhà xuất bản Đại học Cần Thơ. tr. 23-24.
7. Viện Di truyền nông nghiệp (2012). Báo cáo tổng hợp kết quả khảo nghiệm đánh giá rủi ro ngô biến đổi gen (Event TC 1507) đối với đa dạng sinh học và môi trường sinh thái Việt Nam. Hà Nội, tháng 5 năm 2012.
8. Vũ Triệu Mân (2007). Giáo trình Bệnh cây chuyên khoa. Nhà xuất bản nông nghiệp Hà Nội. tr. 23-24.
T iếng Anh:
9. Abdul Aziz, Muhammad Saleem, Hidayat-ur-Rahman, Fida Muhammad (1992). Genetic variability for yield & amp;disease resistance in full & short season varieties of maize. Sarhad Journal of Agriculture. pp. 195-198.
10. Bekele E and D.R. Sumner (1983). Epidemiology of southern corn leaf blight in continuous corn culture. Plant Disease, 67(7). pp. 738-742; [5 tab.].
11. Byrnes K.J., J.K. Pataky and D.G. White (1989). Relationships between yield of three maize hybrids and severity of southern leaf blight caused by race O of
Bipolaris maydis. Plant Disease, 73(10). pp. 834-840.
12. CABI/EPPO (2003). Cochliobolus heterostrophus. Distribution Maps of Plant
Diseases, No. 346. Wallingford, UK: CAB International.
13. Chang R.Y. and P.A. Peterson (1995). Genetic control of resistance to Bipolaris maydis: one gene or two genes?. Journal of Heredity, 86(2). pp. 94-97.
14. Dodd J. L. and A. L. Hooker (1990). Previously undescripbed pathotype of
Bipolaris zeicola on com. Plant Dis. 74:530, 1990. Accepted of publication 13
March. http://www.apsnet.org/pd/PDFS/1990/PlantDisease74n07_530.PD.
15. Garraway M.O., Akhtar M. and E.C.W. Wokoma (1989). Effect of high temperature stress on peroxidase activity and electrolyte leakage in maize in relation to sporulation of Bipolaris maydis race T. Phytopathology, 79(7). pp. 800-805.
16. Holden M.J. and H. Sze (1989). Effects of Helminthosporium maydis race T toxin
on electron transport in susceptible corn mitochondria and prevention of toxin actions by dicyclohexylcarbodiimide. Plant Physiology, 91(4). pp. 1296-1302. 17. Kingsland G.C. (1972). Survival of Helminthosporium maydis under field
conditions in South Carolina. Plant Disease Reporter, 56. pp. 1087-1091.
18. Klittich C.J.R. and C.R. Bronson (1986). Reduced fitness associated with TOX1 of
Cochliobolus heterostrophus. Phytopathology, 76(12). pp. 1294-1298.
19. Lakshmi P. and R.C. Sharma (1987). Evaluation of maize germplasm to
Helminthosporium maydis using detached leaf technique. Annals of Agricultural
Research, 8(1). pp. 34-40.
20. Larsen P.O., J.P. Sleesman and D.G. White (1973). Effect of duration of high humidity on lesion production by Helminthosporium maydis (races T and O) on corn (Zea mays) seedlings. Plant Disease Reporter, 57(1). pp. 76-78; [1 graph, 1 tab.].
21. Leach C.M. (1980). Vibrational releases of conidia by Drechslera maydis and D. turcica related to humidity and red-infrared radiation. Phytopathology, 70(3). pp. 196-200; [5 fig.].
22. Leonard K. J.. Thakur 'R._P.,_Leath (1988.) Incidence. Of Bipolaris. And Exserohilum Species in Com Leaves in North Carolina. Plant Disease 72:1034- 1038. http://www.apsnet.org/pd/PDFS/1988/PlantDisease72nl2.
23. Levings CSIII and J.N. Siedow (1992). Molecular basis of disease susceptibility in the Texas cytoplasm of maize. Plant Molecular Biology, 19(1). pp. 135-147.
24. Liu K.M., H. Su , Y. Cui , C.H. Ma, W.C. Chen and D.L. Li (1991). Reaction of different male-sterile cytoplasm subgroups of the C group maize to the infection of
Bipolaris maydis race C. Scientia Agricultura Sinica, 24(4). pp. 58-60.
25. Matsuyama N. (1991). Purification and characterization of antifungal substance Ac- 1 produced by a Streptomyces sp. AB-88M. Annals of the Phytopathological Society of Japan, 57(4). pp. 591-594.
26. Nicholson P., H.N. Rezanoor and H. Su (1993). Use of random amplified polymorphic DNA (RAPD) analysis and genetic fingerprinting to differentiate
isolates of race O, C and T of Bipolaris maydis. Journal of Phytopathology, 139(3). pp. 261-267.
27. Noriel L.M. and R.P. Robles (1990). Fungicidal activity of Portulaca oleracea L. extract against Helminthosporium maydis Nisik and Miyake in corn (Zea mays L.). Philippine Journal of Weed Science, 17. pp. 26-32.
28. Rajesh Singh1 and Srivastava R.P. (2012). Southern Corn Leaf Blight- An Important Disease of Maize. pp. An Extension Fact Sheet, Indian Research Journal of Extension Education Special Issue (Volume I). January.
29. Rizvi S.J.H., V. Jaiswal , D. Mukerji and S.N. Mathur (1980). Antifungal properties of 1,3,7-trimethylxanthine, isolated from Coffea arabica. Naturwissenschaften, 67(9). pp. 459-460; [1 fig., 3 tab.].
30. Saxena A., R.C. Gupta and I.D. Singh (1985). Fungicidal control of the leaf spot disease of maize. Madras Agricultural Journal, 72(6). pp. 357-360.
31. Shieh G.J. and Lu H.S. (1993). Diallel analysis of mature plant resistance to
Helminthosporium maydis in maize. Journal of Agricultural Research of China,
42(1). pp. 12-18.
32. Shurtleff M.C. (1980). Compendium of corn diseases. American Phytopathological Society. St. Paul Minnesota, 105 pp.
33. Smith D.R. (1975). Expression og monogenic chlorotic lesion resisitance to
Helminthosporium maydis in corn, phytopathlogy 65. pp. 1160.
34. Smith D.R. and R. Toth (1982). Histopathological changes in resistant (rhm) corn inoculated with Helminthosporium maydis race 0. Mycopathologia, 77(2). pp. 83-
88; [15 fig.].
35. Sumner D.R. and R.H. Littrell (1974). Influence of tillage, planting date, inoculum survival and mixed populations on epidemiology of southern corn leaf blight. Phytopathology, 64. pp. 168-173.
36. Upadhyay R.S. and R.K. Jayaswal (1992). Pseudomonas cepacia causes mycelial deformities and inhibition of conidiation in phytopathogenic fungi. Current Microbiology, 24(4). pp. 181-187.
37. Wallin J.R. and D.V. Loonan (1977). Temperature and humidity associated with sporulation of Helminthosporium maydis race T. Phytopathology, 67(11). pp. 1370- 1372; [1 fig.].
38. Wang B.C. and W.S. Wu (1987). Survivability and biological control of Bipolaris
39. Wei J.K., K.M Liu, J.P. Chen, P.C. Luo and O.Y.L. Stadelmann (1988). Pathological and physiological identification of race C of Bipolaris maydis in China. Phytopathology, 78(5). pp. 550-554.
40. Zaitlin D., S. DeMars and Y. Ma (1993). Linkage of rhm, a recessive gene for resistance to southern corn leaf blight, to RFLP marker loci in maize (Zea mays) seedlings. Genome, 36(3). pp. 555-564.
PHỤ LỤC PHỤ LỤC 1
Bảng 1: Thực trạng sử dụng thuốc BVTV trừ bệnh đốm lá nhỏ ngô của nông dân
STT Chỉ tiêu điều tra Tổng số hộ
điều tra Kết quả (%) 1 Chọn thuốc BVTV 20 - Thuốc trừ bệnh 70 - Thuốc trừ sâu 30 2 Phối trộn thuốc BVTV 20 - Có 65 - Khơng 35
3 Tác hại của thuốc BVTV tới sức khoẻ và môi trường
20
- Hiểu rõ 50
- Hiểu khái quát 25
Không hiểu 25
4 Thời điểm sử dụng thuốc BVTV 20
- Trước bệnh xuất hiện 60
- Sau bệnh xuất hiện 40
5 Số lần sử dụng thuốc BVTV/vụ 20
- 2-4 lần 75
- >4 lần 25
6 Thời gian cách ly 20
- Theo nhãn 40
- Không theo nhãn (3,5,7 ngày) 60
7 Xử lý vỏ bao bì nhiễm thuốc BVTV 20
- Vứt trên đồng ruộng 55
- Thu gom đúng nơi quy định 45
Ghi chú: Số hộ điều tra: 20 hộ, Tổng diện tích trồng ngơ: 11,520 m2 Thu nhập bình quân:65 % số hộ đạt <3 triệu/sào/vụ 25 % số hộ đạt từ 3-5 triệu/sào/vụ
PHỤ LỤC 2
*Nuôi cấy nấm B.maydis ở các môi trường khác nhau:
BALANCED ANOVA FOR VARIATE 2 NGAY FILE BOOK2 21/ 3/** 20:53
---------------------------------------------------------------- PAGE 1
VARIATE V003 2 NGAY
LN SOURCE OF VARIATION DF SUMS OF MEAN F RATIO PROB ER SQUARES SQUARES LN ============================================================================= 1 CT 3 189,630 63,2100 ****** 0,000 3 2 NL 2 ,650002E-01 ,325001E-01 1,70 0,261 3 * RESIDUAL 6 ,115009 ,191682E-01 ----------------------------------------------------------------------------- * TOTAL (CORRECTED) 11 189,810 17,2555 -----------------------------------------------------------------------------
TUKEY'S TEST FOR TRANSFORMABLE NON-ADDITIVITY SS= 0,630867E-02, F(1, 5)= 0,29, P= 0,616 REGRESSION SLOPE=-0,39184E-01 SUGGESTED POWER TRANSFORMATION= 2,7672
MEAN ORTHOGONAL RESIDUAL = -0,8952E-01, P-VALUE= 0,162 PLOT OF LS RESIDUALS AGAINST FITTED VALUES ,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,, : * : : : : : : * : 0,1 -: * : : : : : : : : * * : 0,0 -: * * : : * * : : : : : : : -0,1 -: * : : * : : : : : : * : -0,2 -: : :,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,: : : : : : : 18, 20, 22, 24, 26, 28,
BOX PLOT OF STUDENTIZED RESIDUALS FROM LPLT= -1,788 TO ULPT= 1,788
NO,<LPLT NO,>UPLT 0 -------------I + I------------- 0
MEDIAN= -0,1450E-06 ANDERSON-DARLING STATISTIC= 0,241
BALANCED ANOVA FOR VARIATE 3NGAY FILE BOOK2 21/ 3/** 20:53 ---------------------------------------------------------------- PAGE 2
VARIATE V004 3NGAY
LN SOURCE OF VARIATION DF SUMS OF MEAN F RATIO PROB ER SQUARES SQUARES LN
============================================================================= 1 CT 3 584,940 194,980 ****** 0,000 3
2 NL 2 ,149999E-01 ,749996E-02 0,22 0,810 3 * RESIDUAL 6 ,205037 ,341728E-01
-----------------------------------------------------------------------------
* TOTAL (CORRECTED) 11 585,160 53,1964
-----------------------------------------------------------------------------
TUKEY'S TEST FOR TRANSFORMABLE NON-ADDITIVITY SS= 0,286414E-01, F(1, 5)= 0,81, P= 0,412 REGRESSION SLOPE= 0,98933E-01 SUGGESTED POWER TRANSFORMATION= -5,0547
MEAN ORTHOGONAL RESIDUAL = 0,9383E-01, P-VALUE= 0,260 PLOT OF LS RESIDUALS AGAINST FITTED VALUES ,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,, : : : * : : : : : 0,18 -:* * : : : : : : : : *: 0,06 -: : : : : : : : : * *: -0,06 -:* * : : : : : :* 2 : : * : -0,18 -: : :,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,: : : : : : : 22,5 25,5 28,5 31,5 34,5 37,5 BOX PLOT OF STUDENTIZED RESIDUALS FROM LPLT= -1,148 TO ULPT= 1,913
NO,<LPLT NO,>UPLT 0 ----I + I----------- 0
MEDIAN= -0,2869E+00 ANDERSON-DARLING STATISTIC= 0,684
BALANCED ANOVA FOR VARIATE 4NGAY FILE BOOK2 21/ 3/** 20:53 ---------------------------------------------------------------- PAGE 3
VARIATE V005 4NGAY
LN SOURCE OF VARIATION DF SUMS OF MEAN F RATIO PROB ER SQUARES SQUARES LN ============================================================================= 1 CT 3 1095,03 365,010 ****** 0,000 3 2 NL 2 ,349997E-01 ,174999E-01 1,00 0,424 3 * RESIDUAL 6 ,105117 ,175195E-01 ----------------------------------------------------------------------------- * TOTAL (CORRECTED) 11 1095,17 99,5609 -----------------------------------------------------------------------------
TUKEY'S TEST FOR TRANSFORMABLE NON-ADDITIVITY SS= 0,509793E-01, F(1, 5)= 4,71, P= 0,081 REGRESSION SLOPE=-0,63171E-01 SUGGESTED POWER TRANSFORMATION= 5,9842 MEAN ORTHOGONAL RESIDUAL = -0,4438E-01, P-VALUE= 0,447
PLOT OF LS RESIDUALS AGAINST FITTED VALUES ,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,, : : :* * : : : : :