CHƢƠNG 3 KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN
3.3. Nghiên cứu hiệu quả phòng trừ bệnh phấn trắng của chế phẩm xạ khuẩn
3.4.5. Ảnh hưởng của số lần xử lý chế phẩm đến khả năng diệt trừ bệnh phấn trắng
phấn trắng cho thí nghiệm diện rộng
Để đánh giá hiệu quả của số lần phun chế phẩm trên cây đậu tương, chúng tơi đã tiến hành thí nghiệm ở xã Tráng Việt – Mê Linh – Hà Nội. Kết quả ở bảng 3.17.
Bảng 3.17. Hiệu quả của số lần phun chế phẩm SM19 đối với bệnh phấn trắng trên cây đậu tương ở diện rộng
(Địa điểm phun: Tráng Việt, Mê Linh, Hà Nội, 2015)
Công thức
Trước phun Sau phun 7N HQ (%) Sau phun 14N HQ (%) Sau phun 21N HQ (%) Sau phun 28N HQ (%) TLB (%) CSB (%) TL B (%) CS B (%) TLB (%) CS B (%) TLB (%) CSB (%) TLB (%) CSB (%) CT 1 10,0 2,0 13,3 3,3 44,4 20,0 7,3 56,9 23,3 12,0 50,0 26,7 19,3 46,3 CT 2 6,7 1,3 10,0 2,7 33,3 13,3 4,7 58,8 16,7 6,0 62,5 20,0 10,7 55,6 CT 3 6,7 1,3 10,0 2,7 33,3 16,7 5,3 52,9 16,7 6,7 58,3 20,0 8,0 66,7 CT 4 6,7 1,3 13,3 4,0 23,3 11,3 26,7 16,0 33,3 24,0 Ghi chú: CT 1: Phun 1 lần
CT 2: Phun kép 2 lần cách nhau 7 ngày CT 3: Phun kép 2 lần cách nhau 14 ngày CT 4: Đối chứng không phun
Nồng độ phun 7%
Đối với thử nghiệm chế phẩm SM19 trên đậu tương (bảng 3.17): Ở công thức phun chế phẩm 1 khi bệnh mới xuất hiện có hiệu quả phịng trừ bệnh thấp 56,9% sau phun 14 ngày, sau đó hiệu quả giảm dần sau các lần theo dõi. Trong khi đó, ở cơng thức phun kép 2 lần cách nhau 7 ngày cho hiệu quả phòng trừ bệnh cao hơn: 62,5% sau phun 21 ngày. Ở công thức phun kép 2 lần cách nhau 14 ngày cho hiệu quả cao nhất sau khi phun 28 ngày đạt 66,7%.
KẾT LUẬN VÀ KIẾN NGHỊ I. Kết luận
1. Xạ khuẩn SM19 có khả năng ức chế sự phát triển của bào tử nấm phấn trắng trên cây đậu tương và cấy dưa chuột. Với bào tử nấm phấn trằng trên cây đậu tương: Theo công thức với liều lượng 104 – 106 cfu/ml cho tỷ lệ nảy mầm thấp hơn (18 – 38%), 107 – 108 cfu/ml bào tử không nảy mầm. Với bào tử nấm phấn trắng trên cây dưa chuột: Theo công thức với liều lượng 104
– 106 cfu/ml cho tỷ lệ nảy mầm thấp hơn (12 – 48%), 107 – 108 cfu/ml bào tử không nảy mầm.
2. Kết quả nghiên cứu sản xuất chế phẩm sinh học xạ khuẩn Streptomyces SM19
- Nghiên cứu chế phẩm dạng lỏng: Trên môi trường bột đậu tương 90mg/l thì sự phát triển của chủng xạ khuẩn đạt hiệu quả cao nhất đạt 23,6 x 108
cfu/ml. Chủng xạ khuẩn phát triển mạnh nhất trong nhân sinh khối để sản xuất chế phẩm sinh học ở nhiệt độ 28 – 30oC, pH = 7 và thời gian tối ưu là 5 ngày.
- Nghiên cứu chế phẩm dạng bán xốp: Mơi trường thích hợp để nhân ni chủng xạ khuẩn đối kháng là môi trường bán xốp với thành phần là 250g gạo + 150ml nước (mật độ xạ khuẩn trong môi trường này đạt tới 4,6 x 109cfu/ml).
3. Khi đánh giá khả năng phòng trừ của xạ khuẩn SM19 đối với nấm gây bệnh phấn trắng trên cây đậu tương và dưa chuột cho thấy: Trong quy mơ phịng thí nghiệm: tỷ lệ nảy mầm của các bào tử nấm đã thấp hơn so mỗi đối chứng (cấy các bào tử nấm lên vỏ củ hành trong môi trường nước cất).Trong nhà lưới: Hiệu quả phòng trừ của dòng SM19 đối với bệnh phấn trắng đậu tương đạt hiệu quả phòng trừ cao nhất ở nồng độ 5% sau 7 ngày là 62,6% và sau 14 ngày là 74,4% và ở nồng độ 5% thì hiệu quả phịng trừ của dịng SM19 đối với cây dưa chuột đạt hiệu quả phòng trừ cao nhất, sau 7 ngày là 68,5% và sau 14 ngày là 79,3%. Trên đồng ruộng: Hiệu quả phòng trừ của dòng SM19 đối với bệnh phấn trắng trên cây dưa chuột ở nồng độ 7% cho hiệu quả phòng trừ cao nhất đạt 59,3% sau khi phun 14 ngày và sau khi phun 21 ngày hiệu quả phòng trừ bệnh phấn trắng ở các nồng độ chế phẩm giảm dần chỉ đạt 57,5& so với mẫu đối chứng. Trên cây đậu tương hiệu quả phòng trừ đạt cao nhất sau phun chế phẩm 14 ngày: hiệu quả của chế phẩm SM19 ở nồng
độ 7% cho 61,3% và sau khi phun chế phẩm 21 ngày ở nồng độ 7% hiệu quả đạt 57,8% so với đối chứng. Ảnh hưởng của thời điểm xử lý chế phẩm đến bệnh phấn trắng: đối với bệnh phấn trắng trên cây đậu tương thì thời điểm phun chế phẩm SM19 để phòng trừ bệnh tốt nhất là phun phòng trước khi bệnh xuất hiện cho hiệu quả phòng trừ bệnh cao nhất. Ảnh hưởng của số lần xử lý chế phẩm đến bệnh phấn trắng: Ở công thức phun kép 2 lần cách nhau 14 ngày cho hiệu quả cao nhất sau khi phun 28 ngày đạt 66,7%.
II. Kiến nghị
Do thời gian nghiên cứu còn ngắn nên chưa thể đánh giá hết hiệu quả phòng trừ bệnh nấm phấn trắng của SM19 trên quy mô rộng lớn hơn và các điều kiện thời tiết khác nhau. Nên chúng tôi mong muốn được tạo điều kiện để triển khai mơ hình ở quy mơ rộng lớn hơn trong thời gian dài hơn để nhắm có đủ các cơ sở để đánh giá cụ thể hơn các hiệu quả về phịng trừ bệnh nấm phấn trắng làm tăng lợi ích về kinh tế, môi trường và sức khỏe cộng đồng.
TÀI LIỆU THAM KHẢO
A . Tài liệu tiếng Việt
1. Ngơ Đình Quang Bính (2005), Vi sinh vật học công nghiệp, Viện sinh thái và tài nguyên sinh vật, Trung tâm khoa học Tự nhiên và công nghệ Quốc gia, Hà Nội, tr.53 - 71.
2. Phan Thành Dũng (2004), Kỹ thuật Bảo vệ thực vật cây cao su, Nhà xuất bản Nơng nghiệp, Tp. Hồ Chí Minh, trang 8-11.
3. Bùi Thị Việt Hà (2006), Nghiên cứu xạ khuẩn sinh chất kháng sinh chống nấm
gây bệnh thực vật ở Việt Nam, Luận án tiến sĩ sinh học, Hà Nội.
4. Trần Văn Hâu, Trần Sĩ Hiếu, Lê Thị Thanh Thủy (2008), Sản xuất xoài rải vụ
theo hướng GAP tại huyện Cao Lãnh, Tỉnh Đồng Tháp, Báo cáo hội thảo
GAP, Bình Thuận.
5. Vũ Triệu Mân, Lê Lương Tề cùng nhiều tác giả khác (2007), Giáo trình Bệnh
cây nơng nghiệp, Nhà xuất bản Nơng nghiệp, Hà Nội.
6. Dương Minh, Võ Thanh Hoàng, Lê Thanh Phong (1996), Chuyên mục cây xoài, Nhà xuất bản Nông nghiệp, Hà Nội.
7. Lê Văn Quân, Đỗ Văn Chuông, Trần Thanh Phong, Trương Quốc Luận (2008),
Kỹ thuật trồng xồi, Trung tâm khuyến nơng Tiền Giang, Tiền Giang.
8. Đoàn Thị Thanh, Phạm Ngọc Dung, Nguyễn Hồng Tuyên, Vũ Đình Phú, Nguyễn Thúy Hạnh (2010), “Nghiên cứu bệnh phấn trắng trên cây cao su ở tỉnh Bình Phước, Đăk Lăk và Quảng Trị”, Tạp chí Bảo vệ thực vật, số 3 (231), trang 27-31.
9. Phạm Văn Toản (2003), Khả năng sử dụng hỗn hợp vi sinh vật làm phân bón
chức năng cho một số cây trồng nông nghiệp, công nghiệp và lâm nghiệp, Báo
cáo Hội nghị cơng nghệ sinh học tồn quốc, Hà Nội 12/2003, 127 – 131. 10. Ngô Thị Xuyên (2005), “Bệnh hại rau trồng trong nhà lưới và biện pháp phịng
trừ bằng thuốc hóa học”, Tạp chí Khoa học kỹ thuật nông nghiệp, Tập 3 số 2, trang 119-124.
11. Ngô Thị Xuyên và Nguyễn Văn Đĩnh (2006), “Nghiên cứu tình hình bệnh hại cà chua trong nhà lưới và ngoài đồng ruộng năm 2003-2005 tại Hà Nội”, Tạp chí khoa học kỹ thuật, số 4+5/2006, Trang 88-9, Hà Nội.
B. Tài liệu tiếng Anh
12. Akhtar, K.P., and Alam, S.S (2000), “Powdery mildew of mango”, Nuclear Institute for Agriculture & Biology, Pakistan, Pakistan Journal of Biological Science 3(7): 1119 – 1122.
13. Aravind, R., Kumar, A., Eapen, S.J., Ramana, K.V. (2009), Endophytic bacterial flora in root and stem tissues of black pepper (Piper nigrum L.) genotype: isolation, identification and evaluation against Phytophthora capsici, Indian Institute of Spices Research, Calicut, Kerala, India, p.1.
14. Bakker, P.A.H.M., Pieterse, C.M.J., and van Loon, L.C. (2007), “Induced systemic resistance by fluorescent Pseudomonas spp”, The American Phytopathologycal Society, Utrecht University of The Netherland, 97: p. 239 –
243.
15. Boesewinkel HJ (1982b), “The identity of Oidium caricae and the first recording on papaya, mountain papaya and babaco in New Zealand”, Fruits
37: 473-477.
16. Chung, W., Wu, R., Hsu, C., Huang, H., and Huang, J. (2011), Application of
antagonistic rhizobacteria for control of Fusarium seedling blight and basal rot of lily Australasian Plant Pathology, Vol 40, 3: 269-276.
17. Diby, P. and Sarma, Y.R. (2006), “Antagonistic effects of metabolites of
Pseudomonas fluorescens strains on the different growth phases of Phytophthora capsici, foot rot pathogen of black pepper (Piper nigrum L.)”, Arch. Phytopathol. Plant. Protect., 39, p. 113–118.
18. Hasama W, Kato T, Yoshida S (2000), “Resistance reaction of soybean cultivars in Oita Prefecture against powdery mildew caused by Oidium sp. (Erysiphe polygoni type) (in Japanese)”, Kyushu Pl Prot Res, 46:22-26.
19. Galindo, J.J. (1992), “Prospects for biological control of cacao”, In: Cocoa pest and disease management in Southeast Asia and Australasia, Rome, FAO
Plant Production and Protection, p. 112.
Bacillus vallismortis EXTN-1 suppressed bacterial wilt in tomato caused by Ralstonia solanacearum, The Korean Society of Plant Pathology, Plant Pathology, J.23. (1).
21. Limkaisang S, Cunnington JH, Liew KW, Salleh B, Sato Y, Divarangkoon R, Fangfuk W, To-anun C, Takamatsu S, 2006. Molecular phylogenetic analyses reveal a close relationship between powdery mildew fungi on some tropical trees and Erysiphe alphitoides, an oak powdery mildew. Mycoscience 47: 327- 335.
22. Limkaisang S, Kom-un S, Furtado EL, Liew KW, Salleh B, Sato Y, Takamatsu S, (2005), Molecular phylogenetic and morphological analyses of
Oidium heveae, a powdery mildew of rubber tree, Mycoscience 46: 220-226
23. McCain (1994), Powdery mildew, HortScrip, Univ., Calif. Coop. Ext. Marin
County.
24. Moshe Reuveni (2001), “Activity of trifloxystrobin against powdery and downy mildew diseases of grapevines”, Canadian Jounal of Plant Pathology, Volum 13, issue 1, p. 52 – 59.
25. Motokura Yoichi, Takoda Sakuya, Fujiwara Yuji, Kobashigawa Yoshikaza, Kimura Shigeru (2004), Occurrence of powdery mildew of orange jasmine (Murraya paniculata) in Japan, Japan Science and Technology Agency, 2004,
Vol.; No.40; Page.113-118
26. Nofal, M.A., and Haggag, W.M. (2005), Integrated management of powdery
mildew of mango in Egypt, Department of Plant Pathology, Division of Agricultural Research and Biology, National Research Center, Egypt
27. Nomura Y (1997), Taxonomical study of Erysiphaceae of Japan, Yokendo, Tokyo.
28. Shaw DE (1967), “Powdery mildew of rubber in Papua”, Papua and New Guinea Agric J 19:140–146.
29. Shin HD (2000), Erysiphaceae of Korea, Nat Inst Agric Sci Tech, Suwon,
Korea.
“Comparative analysis of powdery mildew development on leaves, seedlings and flower panicles of different genotypes of cashew”, Plant Pathology, 50,
234-243.
31. Taechowisan, T., P. Tuntiwachwuttikul, C. Lu, Y. Shen, S. Lumyong, and W.C. Taylor. (2007), Anti-inflammatory activity of 4-arylcoumarins from endophytic Streptomyces aureofaciens CMUAc130 in murine macrophage RAW 264.7 cells, Immunol Invest 36:203-11.
32. Waksman, S. A. (1961), The Actinomycetes. Classification, identification and
descriptions of genera and species, vol 2, The Williams & Wilkins Co., Baltimore, USA.
33. Weller, D.M. (2007), “Pseudomonas biocontrol agents of soilborne pathogens: looking back over 30 years”, The American Phytopathologycal Society, 97:p.250-256.
34. Woo-Nang Chang and Jan Bay-Petersen (2003). Citrus production. Amanual for Asian Farmers, Food & Fertilizer Techlonogy Center, p. 70 – 71.
PHỤ LỤC
Hình. Một số hình ảnh thực hiện đề tài tại xã Tráng Việt, Mê Linh, Hà Nội