Kết quả trên Hình 3.50, cho thấy mẫu có điểm thấp nhất là mẫu ở tỷ lệ siro 15% với 18,35 điểm. Mẫu có điểm cao nhất là mẫu có tỷ lệ 25% với 19,31 điểm. Sự khác biệt về tổng điểm cho thấy siro bổ sung vào với các tỷ lệ khác nhau có ảnh hưởng nhiều đến trạng thái và màu sắc và mùi vị của sản phẩm Xét về tổng điểm và xếp loại, chọn kết quả tỷ lệ siro bổ sung là 25% so với dịch chanh dây.
d. Xác định tỷ lệ collagen thủy phân bổ sung
Kết quả điểm cảm quan sản phẩm theo tỷ lệ collagen thủy phân bổ sung được thể hiện ở Hình 3.51.
Điểm chung 21.00 20.00 19.00 18.00 17.00 16.00 15.00 a a a b a a 0.000 0.050 0.075 0.100 0.125 0.150
Tỷ lệ collagen thủy phân (SP1) bổ sung (%)
Hình 3. 51. Biểu diễn điểm chung của sản phẩm với các tỷ lệ collagen thủy phân phối trộn
Kết quả trên Hình 3.51, cho thấy mẫu có điểm thấp nhất là mẫu ở nồng độ collagen 0.15% với 19,12 điểm. Mẫu có điểm cao nhất là mẫu có nồng độ collagen 0.1% với 19,78 điểm. Sự khác biệt về tổng điểm cho thấy collagen thủy phân bổ sung vào với các tỷ lệ khác nhau có ảnh hưởng nhiều đến trạng thái và màu sắc của sản phẩm, còn mùi vị không làm ảnh hưởng.
Xét về tổng điểm và xếp loại, chọn kết quả tỷ lệ collagen bổ sung là 0.1% so với dịch chanh dây.
Vậy tỷ lệ thích hợp để sản xuất nước uống chanh dây collagen: 50% nước, 0,15% axit citric, 25% siro (60 Bx), 0.1% collagen thủy phân và 29,75% nước ép chanh dây nguyên chất sẽ cho điểm cảm quan chung là cao nhất.
3.4.9.2. Ứng dụng phân đoạn (SP2) vào sản xuất sữa chua collagen a. Xác định thời gian lên men
Các mẫu sữa được lên men với thời gian lần lượt là 240 phút; 260 phút; 280 phút; 300 phút; 320 phút; 340 phút và 360 phút ở nhiệt độ lên men là 45 C. Tỷ lệ collagen thủy phân được bổ sung là 0,1%. Với các chỉ tiêu theo dõi là độ nhớt, pH và điểm cảm quan của sản phẩm. Kết quả được thể hiện ở Hình 3.52. Khi tăng thời gian lên men từ 240 phút lên 300 phút độ nhớt của sản phẩm sữa chua tăng nhanh từ 3240 centipoise(cp) lên 3538,33 cp, đồng thời pH của sản phẩm giảm từ 5,7 xuống 4,48. Hình 3.52 cho thấy khi tăng thời gian lên men từ 300 phút đến 360 phút thì độ nhớt của sản phẩm chậm và pH giảm từ 4,48 xuống 4,1. Điều này là phù hợp trong quá trình lên men lượng axit lactic sinh ra tăng theo thời gian lên men làm cho pH giảm.
Khi pH giảm làm cho protein trong sữa đông tụ và làm tăng độ nhớt. Nhưng khi lượng axit lactic sinh ra đủ lớn làm ức chế quá trình lên men của vi khuẩn là cho pH giảm chậm và độ nhớt tăng chậm. Độ nhớt pH Điểm cảm quan Độ nhớt (cp) 3650 18.35 3600 16.21 17.36 15.40 3550 3500 3538.33 3450 3400 3443.33 5.70 3350 5. 12 4.73 17.23 3558.33 16.28 16.27 3572.33 3585.00 20 18 16 qu an 14 12 cả m 10 đi ểm 8 ho ặc 6 4.48 3300 3346.67 3250 3200 3240.00 220 240 260 280 300 4.20 4.13 4.10 320 340 360 380 4 pH 2 0
Thời gian lên men (phút)
Hình 3. 52. Ảnh hưởng của thời gian lên men đến độ nhớt, pH và điểm cảm quan của sản phẩm sữa chua
Hình 3.52 cũng cho thấy chất lượng cảm quan của các mẫu sản phẩm sữa chua tăng khi thời gian lên men tăng từ 240 phút lên 300 phút với điểm cảm quan chung tăng từ 15,40 lên 18,35 nhưng nếu tiếp tục tăng thời gian lên men thì điểm cảm quan của sản phẩm giảm. Điều này có thể được giải thích khi thời gian lên men quá dài là cho lượng axit lactic sinh ra nhiều độ chua của sữa chua cao làm giảm giá trị cảm quan.
Vậy thời gian lên men sữa chua trong phạm vi nghiên cứu này được chọn tốt nhất là 300 phút với điểm cảm quan của sản phẩm là 18,35, độ nhớt 3538,33 cp và pH 4,48.
b. Xác định tỷ lệ collagen thủy phân bổ sung
Các mẫu sữa được bổ sung tỷ lệ collagen thủy phân lần lượt là 0,000%; 0,050%; 0,075%; 0,100%; 0,125% và 0,150%, với thời gian lên men 300 phút, ở nhiệt
độ 45 C. Với các chỉ tiêu theo dõi là độ nhớt, pH và điểm cảm quan của sản phẩm. Kết quả được thể hiện ở Hình 3.53. Khi tăng tỷ lệ bổ sung collagen thủy phân 0,000% lên 0,150% độ nhớt của sản phẩm sữa chua tăng từ 3153,33 cp lên 3865,00 cp, pH của sản phẩm không có sự khác biệt (p < 0,05). Độ nhớt tăng chủ yếu là do lượng collagen thủy phân bổ sung. Điểm cảm quan của sản phẩm đạt cao nhất là 18,87 khi tỷ lệ collagen thủy phân bổ sung là 0,075%.
Độ nhớt pH Điểm cảm quan 4100 18.32 18.87 18.35 18.14 20 17.30 17.38 3900 18 3700 3865.00 16 qu an 3757.67 14 3500 (c p) 3548.33 cảm 12 3300 3439.00 nh ớt 10 đi ểm 3275.00 Đ ộ 3100 3158.33 8 hoặc 2900 6 pH 2700 4.50 4.60 4.57 4.47 4.60 4.57 4 2500 2 0.000 0.025 0.050 0.075 0.100 0.125 0.150 0.175
Tỷ lệ bổ sung collagen thủy phân (%)
Hình 3.53. Ảnh hưởng tỷ lệ bổ sung collagen thủy phân đến độ nhớt, pH và điểm cảm quan của sản phẩm sữa chua
Vậy tỷ lệ collagen thủy phân (SP2) thích hợp để bổ sung vào sữa chua là 0,075%, thời gian lên men 300 phút và nhiệt độ lên men 45 C thì cho điểm cảm quan chung của sản phẩm là cao nhất.
KẾT LUẬN
Nghiên cứu đã xác định được điều kiện tối ưu để loại bỏ phi collagen trên da cá ngừ vây vàng bằng phương pháp xử lý kiềm với nồng độ NaOH là 0,93 N, thời gian xử lý là 28 giờ và tỷ lệ dung dịch NaOH trên da cá là 5 : 1 (v/w). Khi đó da cá ngừ vây vàng sau khi xử lý có tỷ lệ hydroxyproline so với protein và lipid còn lại so với chất khô lần lượt là 9,94% và 5,5%. Đây là một trong những bước xử lý quan trọng nhất để sản xuất collagen chất lượng cao và các dẫn xuất của nó từ da cá ngừ vây vàng.
Nghiên cứu đã xác định được điều kiện tối ưu để thủy phân collagen từ da cá ngừ vây vàng sau khi đã loại bỏ phi collagen bằng enzyme alcalase với các thông số như: nồng độ enzyme là 0,034AU/g, nhiệt độ thủy phân 54,7 C, pH 7,9 và thời gian thủy phân 5,2 giờ với độ thủy phân 24,54% và hiệu suất thu hồi nitrogen là 96,42%. Dịch thủy phân thu được có khối lượng phân tử các peptide 5 kDa.
Sử dụng phương pháp sắc ký lọc gel để tách các phân đoạn peptide trong dịch collagen thủy phân, nghiên cứu đã tách được 3 phân đoạn collagen thủy phân F1, F2 và F3 từ dịch thủy phân của collagen da cá ngừ vây vàng. Ba phân đoạn này đều có những tính năng công nghệ rất tốt như khả năng hòa tan, khả năng tạo nhũ tương, khả năng tạo bọt, khả năng chống oxy hóa và khả năng chống đông
Nghiên cứu đã sử phương pháp lọc màng để tinh sạch và tách các phân đoạn peptide collagen trong dịch thủy phân bằng màng lọc UFP-1-C-6 của GE (Mỹ) với chất liệu là polysulfone với khối lượng mặt cắt qua màng 1kDa. Nghiên cứu cũng đã xác định được kiều kiện nhiệt độ, áp suất, pH và lưu lượng dòng nhập liệu đến quá trình lọc màng. Kết quả đã tách được hai sản phẩm SP1 và SP2 với tỷ lệ lần lượt là 90% và 10%. Cả hai phân đoạn collagen thủy phân đều có tính tan rất tốt; ở pH dưới 8,0 thì phân đoạn SP1 tan tốt hơn SP2 nhưng đều lớn hơn 96%; còn pH 8,0 thì cả hai phân đoạn đều tan gần như hoàn toàn. Khả năng tạo nhũ, tạo bọt và chống đông của phân đoạn SP2 tốt hơn phân đoạn SP1, trong khi hoạt tính chống oxy hóa của phân đoạn SP1 cao hơn SP2.
Collagen thủy phân đã được phân tích thành phần hóa học và chỉ tiêu vi sinh; kết quả cho thấy chúng có khả năng áp dụng vào trong sản phẩm thực phẩm. Từ đó, nghiên cứu đã thử nghiệm thành công việc bổ sung collagen thủy phân vào hai sản phẩm là nước chanh dây và sữa chua với kết quả điểm cảm quan khá cao, chứng tỏ nguồn collagen thủy phân từ da cá ngừ vây vàng rất có triển vọng để bổ sung vào thực phẩm.
Đề xuất
Sử dụng các loại màng khác nhau để tinh sạch và phân đoạn collagen thủy phân nhằm thu được những phân đoạn collagen thủy phân có tính chất mong muốn.
Tiến hành sấy phun và sấy thăng hoa sản phẩm collagen để thuận tiện trong việc bảo quản sản phẩm, đồng thời nghiên cứu tính chất của collagen trong quá trình bảo quản cũng như hạn sử dụng của nó.
Nghiên cứu sản xuất collagen thủy phân ở quy mô công nghiệp, từ đó mở rộng việc ứng dụng collagen thủy phân trong các sản phẩm thực phẩm khác nhau.
DANH MỤC CÔNG TRÌNH CÔNG BỐ CỦA TÁC GIẢ
[1] Nguyễn Công Bỉnh và Nguyễn Minh Xuân Hồng (2018) “ Tách chiết, tinh sạch và ứng dụng collagen thủy phân từ da cá”, Tạp chí Nông nghiệp và Phát triển Trường Đại học Nông Lâm TP. Hồ Chí Minh, Số 17 (5) trang 114-122.
[2] Binh, N. C., Hong, N. M. X., Kha, N. H. N., & Tuyen, K. C. (2020). Optimization of Treatment Conditions for Non-collagen Removal from Yellowfin Tuna Skin (Thunnus albacares). Chiang Mai University Journal of Natural Sciences, 19 (3), 548–562.
[3] Binh, N. C., Kha, N. H. N., Tuyen, K. C., & Hong, N. M. X. (2021). Optimization of enzymatic hydrolysis of collagen from yellowfin tuna skin (Thunnus albacares). Journal of Food Processing and Preservation 45 (4)
[4] Binh, N. C., Hong, N. M. X., Kha, N. H. N., & Tuyen, K. C. (2021). Functional properties of yellowfin tuna (Thunnus albacares) skin collagen hydrolysate fraction obtained by ultrafiltration purification. Current Research in Nutrition and Food Science Journal 9 (3)
TÀI LIỆU THAM KHẢO
1. Abedin, M. Z., Karim, A. A., Latiff, A. A., Gan, C. Y., Ghazali, F. C., Barzideh, Z., Sarker, M. Z. I. (2014). Biochemical and radical-scavenging properties of sea cucumber (Stichopus vastus) collagen hydrolysates. Natural Product Research, 28(16), 1302–1305.
2. Adibzadeh, N., Aminzadeh, S., Jamili, S., Karkhane, A. A., & Farrokhi, N.
(2014). Purification and characterization of pepsin-solubilized collagen from skin of sea cucumber Holothuria parva. Applied Biochemistry and
Biotechnology, 173(1), 143–154.
3. Alolod, G. A. L., Nuñal, S. N., Nillos, M. G. G., & Peralta, J. P. (2019). Bioactivity and Functionality of Gelatin Hydrolysates from the Skin of Oneknife Unicornfish (Naso thynnoides). Journal of Aquatic Food Product Technology, 28(10), 1013–1026.
4. Amin, N. A. S., & Anggoro, D. D. (2004). Optimization of direct conversion of methane to liquid fuels over Cu loaded W/ZSM-5 catalyst. Fuel, 83(4–5), 487– 494.
5. Avila Rodríguez, M. I., Rodríguez Barroso, L. G., & Sánchez, M. L. (2018). Collagen: A review on its sources and potential cosmetic applications.
Journal of Cosmetic Dermatology, 17(1), 20–26.
6.Bang, J. K., Jun Hyuck, L., Ravichandran N., M., Sung Gu, L., Hackwon, D., Hye Yeon, K., Hak Jun, K. (2013). Antifreeze peptides and glycopeptides, and their derivatives: Potential uses in biotechnology. Marine Drugs, 11(6),2013–2041. 7. Baziwane, D., & He, Q. (2003). Gelatin: The Paramount Food Additive. Food
Reviews International, 19(4), 423–435.
8. Bello, A. E., & Oesser, S. (2006). Collagen hydrolysate for the treatment of osteoarthritis and other joint disorders: a review of the literature. Current Medical Research and Opinion, 22(11), 2221–2232.
9. Benjakul, S., Seymour, T. A., Morrissey, M. T., & An, H. (1997).
Physicochemical changes in Pacific whiting muscle proteins during iced storage. Journal of Food Science, 62(4), 729–733.
10.Benjakul, S., & Sutthipan, N. (2009). Muscle changes in hard and soft shell crabs during frozen storage. LWT - Food Science and Technology, 42(3), 723–729. 11. Benjakul, S., Thiansilakul, Y., Visessanguan, W., Roytrakul, S., Kishimura, H.,
& Meesane, J. (2010). Extraction and characterisation of pepsin-solubilised collagens from the skin of bigeye snapper (Priacanthus tayenus and Priacanthus macracanthus) Journal of the Science of Food and Agriculture,
90(1), 132–138.
of Substitutions. In Bioinformatics for Geneticists: A Bioinformatics Primer for the Analysis of Genetic Data: Second Edition (pp. 311–342).
13. Bhaskar, N., Benila, T., Radha, C., & Lalitha, R. G. (2008). Optimization of enzymatic hydrolysis of visceral waste proteins of Catla (Catla catla) for preparing protein hydrolysate using a commercial protease. Bioresource Technology, 99(2), 335–343.
14. Bilek, S. E., & Bayram, S. K. (2015). Fruit juice drink production containing hydrolyzed collagen. Journal of Functional Foods, 14, 562–569.
15. Bligh, E. G., & Dyer, W. J. (1959). A Rapid method of total lipid extraction and purification. Canadian Journal of Biochemical Physiology, 37(8), 911–917. 16. Bộ, Đoàn. Mimh, N. H. (2013). Ước tính trữ lượng và dự báo sản lượng khai
thác nguồn lợi cá ngừ đại dương năm 2013-2014 ở vùng biển xa bờ miền Trung. Tạp Chí Khoa Học ĐHQGHN, Các Khoa Học và Trái Đất và Môi Trường, 29(2), 70–72.
17. Boonmaleerat K, Wanachewin O, Phitak T, Pothacharoen P, K. P. (2018). Fish Collagen Hydrolysates Modulate Cartilage Metabolism. Cell Biochemistry and Biophysics, 76(1), 279–292.
18. Boran, G., & Regenstein, J. M. (2009). Optimization of gelatin extraction from silver carp skin. Journal of Food Science, 74(8), 432–441.
19. Bougatef, A., Nedjar-Arroume, N., Manni, L., Ravallec, R., Barkia, A.,
Guillochon, D., & Nasri, M. (2010). Purification and identification of novel antioxidant peptides from enzymatic hydrolysates of sardinelle (Sardinella aurita) by-products proteins. Food Chemistry, 118(3), 559–565.
20. Buehler, M. J. (2006). Nature designs tough collagen: Explaining the
nanostructure of collagen fibrils. Proceedings of the National Academy of Sciences, 103(33), 12285–12290.
21. Burns, D. B., & Zydney, A. L. (1999). Effect of solution pH on protein transport through ultrafiltration membranes. Biotechnology and Bioengineering, 64(1), 27–37.
22. Chalamaiah, M., Rao, G. N., Rao, D. G., & Jyothirmayi, T. (2010). Protein hydrolysates from meriga (Cirrhinus mrigala) egg and evaluation of their functional properties. Food Chemistry, 120(3), 652–657.
23. Chen, S., Chen, H., Xie, Q., Hong, B., Chen, J., Hua, F., Wu, H. (2016). Rapid isolation of high purity pepsin-soluble type I collagen from scales of red drum fish (Sciaenops ocellatus). Food Hydrocolloids, 52, 468–477.
24. Chen, X. L., Peng, M., Li, J., Tang, B. L., Shao, X., Zhao, F., Song, X. Y. (2017). Preparation and functional evaluation of collagen oligopeptide-rich
hydrolysate from fish skin with the serine collagenolytic protease from Pseudoalteromonas sp. SM9913. Scientific Reports.
25. Cheng, Y., Xiong, Y. L., & Chen, J. (2010). Antioxidant and emulsifying properties of potato protein hydrolysate in soybean oil-in-water emulsions.
Food Chemistry, 120(1), 101–108.
26. Chi, C. F., Cao, Z. H., Wang, B., Hu, F. Y., Li, Z. R., & Zhang, B. (2014). Antioxidant and functional properties of collagen hydrolysates from Spanish mackerel skin as influenced by average molecular weight. Molecules, 19(8), 11211–11230.
27. Chi, C., Hu, F., Li, Z., Wang, B., & Luo, H. (2016). Influence of Different Hydrolysis Processes by Trypsin on the Physicochemical, Antioxidant, and Functional Properties of Collagen Hydrolysates from Sphyrna lewini, Dasyatis akjei, and Raja porosa. Journal of Aquatic Food Product Technology, 25(5), 616–632.
28. Cho, J. K., Jin, Y. G., Rha, S. J., Kim, S. J., & Hwang, J. H. (2014). Biochemical characteristics of four marine fish skins in Korea. Food Chemistry, 159, 200– 207.
29. Cho, S. M., Gu, Y. S., & Kim, S. B. (2005). Extracting optimization and physical properties of yellowfin tuna (Thunnus albacares) skin gelatin compared to mammalian gelatins. Food Hydrocolloids, 19(2), 221–229. 30. Damodaran, S. (1997). Damodaran. In Protein-stabilized foams and emulsions
(pp. 57–110). New York: Marcel Dekker.
31. Damodaran, S. (2007). Inhibition of ice crystal growth in ice cream mix by gelatin hydrolysate. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 55(26), 10918– 10923.
32. Daneault. A. (2014). Hydrolyzed collagen contributes to osteoblast
differentiation in vitro and subsequent bone health in vivo. Osteoarthritis and Cartilage, 22, S131. DOI: 10.1016/j.joca.2014.02.240
33. Di Lullo, G. A., Sweeney, S. M., Körkkö, J., Ala-Kokko, L., & San Antonio, J. D. (2002). Mapping the ligand-binding sites and disease-associated
mutations on the most abundant protein in the human, type I collagen.
Journal of Biological Chemistry, 277(6), 4223–4231.
34. Diniz, F. M., & Martin, A. M. (1997). Effects of the extent of enzymatic
hydrolysis on functional properties of shark protein hydrolysate. LWT - Food Science and Technology, 30(3), 266–272.
35. Djagny, K. B., Wang, Z., & Xu, S. (2001). Gelatin: A valuable protein for food and pharmaceutical industries: Review. Critical Reviews in Food Science and Nutrition, 41(6), 481–492.
36. Dos Santos, S. D. A., Martins, V. G., Salas-Mellado, M., & Prentice, C. (2011). Evaluation of Functional Properties in Protein Hydrolysates from Bluewing Searobin (Prionotus punctatus) Obtained with Different Microbial Enzymes.
Food and Bioprocess Technology, 4(8), 1399–1460.
37. Duan, R., Zhang, J., Du, X., Yao, X., & Konno, K. (2009). Properties of collagen from skin, scale and bone of carp (Cyprinus carpio). Food Chemistry, 112(3), 702–706.
38. Dương, T. T. (2001). Một số loài cá thường gặp ở biển Việt Nam. Trung tâm thông tin KHKT & Kinh tế thủy sản.
39. Elam, M. L., Johnson, S. A., Hooshmand, S., Feresin, R. G., Payton, M. E., Gu, J., & Arjmandi, B. H. (2015). A Calcium-Collagen Chelate Dietary
Supplement Attenuates Bone Loss in Postmenopausal Women with Osteopenia: A Randomized Controlled Trial. Journal of Medicinal Food,
18(3), 324–331.