Lamx.
Ảnh hưởng của ba phân đoạn lipid trong việc ức chế sản sinh NO của tế bào RAW 264.7 được thể hiện trên bảng 3.7 dưới đây. Giá trị IC50 của lipid tổng được đánh giá từ 32,57 µg/ml đến 41,66 µg/ml. Phần lipid phân cực (Pol) có hoạt tính mạnh hơn lipid không phân cực (Upol) với giá trị IC50
tương ứng là 32,57 ± 5,75 µg/ml và 33,59 ± 3,86 µg/ml. Lipid tổng thể hiện hoạt tính kháng viêm thấp nhất trong 3 phân đoạn lipid với giá trị IC50 là
nồng độ từ 0,8 µg/ml đến 100 µg/ml bằng thí nghiệm so màu MTT. Trong khi mẫu đối chứng cho thấy tỷ lệ sống sót của tế bào là 89,90% ở nồng độ 100 µg/mL, các mẫu lipid cho thấy khả năng sống của tế bào cao hơn 94,96% ở cùng nồng độ. Do đó, nó đã chỉ ra rằng khả năng sống của tế bào không bị ảnh hưởng bởi các mẫu lipid.
Bảng 3.7. Hoạt tính kháng viêm của một số phân đoạn lipid của loài rong lục
H. incrassata Concentration (µg/mL) L-NMMA Pol UPol TL 100 99,74 79,22 76,30 74,68 20 72,44 37,99 39,61 35,06 4 28,18 23,05 24,03 12,66 0,8 7,94 5,04 10,75 1,61 IC50 8,90 ± 0,82 32,57 ± 5,75 33,59 ± 3,86 41,66 ± 1,95
Ghi chú: TL: lipid toàn phần; Pol: lipid phân cực; UPol: lipid không phân cực Trong nghiên cứu của Alvin Berger cho thấy nhóm MGDG, ức chế phản ứng viêm, được kết hợp với omega3 để điều trị sụn và phục hồi sụn khớp ở người bị viêm xương khớp [75]. Khi xem xét các acid béo của MGDG, chúng tôi đã tìm thấy nhiều acid béo có hoạt tính sinh học cao, chẳng hạn như C18:2, C18:3, C20:4 [76-78], xuất hiện ở các lớp MDGD với tỷ lệ cao bao gồm MGDG 34 : 5 (18,83%), MGDG 34:6 (9,86%), MGDG 32:2 (9,12%) hoặc MGDG 36:4 (7,69%). Acid béo C18:2, 18:3 là acid béo khởi đầu của quá trình sinh tổng hợp chuỗi omega6 và omega3 [79,80], acid béo C20:4 là tiền thân của quá trình sinh tổng hợp các hợp chất prostaglandin thuộc nhóm 2 trong cơ thể để tham gia vào điều chỉnh sự cân bằng tỷ lệ omega3/omega6 và điều chỉnh tình trạng viêm trong cơ thể [66,81]. Ngoài ra, các nghiên cứu khác cũng chỉ ra rằng nhóm MGDG, DGDG có nhiều hoạt tính sinh học quý như chống ung thư, chống oxi hóa, chống virut , kháng viêm… [82-84]. Trong nghiên cứu của Annalisa Bruno cho thấy ba nhóm MGDG, DGDG và SQDG có hoạt tính ức chế phản ứng viêm [85]. Điều này mở ra các nghiên
cứu sâu hơn để đánh giá hoạt tính sinh học của thành phần acid béo trong các nhóm glycolipid của rong biển trong thời gian tới.
KẾT LUẬN VÀ KIẾN NGHỊ Kết luận
1. Đã tiến hành nghiên cứu thành phần hóa học của 9 loài rong lục thu ở vùng biển Khánh Hòa và Bà Rịa-Vũng Tàu chứa hàm lượng protein cao tương đương với các loài thực vật trên cạn từ 11,46-20,27% khối lượng khô, hàm lượng lipid trong các mẫu nghiên cứu đạt từ 0,32-0,78% khối lượng rong tươi, hàm ẩm từ 82,36-87,34%, hàm lượng tro từ 10,35- 29,33%.
2. Bằng phương pháp sắc ký khí, chúng tôi đã xác định được 28 acid béo trong thành phần lipid tổng. Một số acid béo có hàm lượng cao thuộc nhóm PUFA và omega 3 như 18:3n-3, 20:4n-6 (AA), 20:5n-3 (EPA), 22:6n-3 (DHA).
3. Đã xác định được thành phần và hàm lượng 7 lớp chất lipid trong lipid tổng của 9 mẫu rong biển gồm Pol, ST, DG, FFA, TG, MADG và HW, trong đó, lipid phân cực (Pol) 14,4-33,7%, Sterol (ST) từ 3,4-18,35%. FFA từ 5,3-38,2%, TG từ 5,0-36,6%, DG từ 13,6-20,4%, HW từ 2,8- 21,2%, MADG từ 9,6-12,9%.
4. Đã xác định được 40 dạng phân tử glycolipid, trong đó MGDG 12 dạng, DGDG 11 dạng và SQDG 17 dạng. Nhóm MGDG có nhiều acid béo PUFA trong thành phần như C18:2, 18:3, 20:4; nhóm DGDG chủ yếu chứa các acid béo bão hòa trong khi nhóm SQDG lại chứa cả acid béo bão hòa và các acid béo PUFA có trên 20C, đặc biệt là các acid béo có từ 4 liên kết đôi trở lên như C20:4, 20:5 và 22:6.
5. Ba phân đoạn lipid của mẫu rong biển Halimeda incrassata Lamx (TSL)
có hoạt tính kháng viêm với giá trị IC50 từ 32,57 ± 5,75 µg/ml đến 41,66 ± 1,95 μg/ml, trong đó cao nhất là phần lipid phân cực. Điều này cho thấy đây là một nguồn tiềm năng để tiếp tục sàng lọc đối với các chế phẩm có hoạt tính sinh học để ứng dụng trong lĩnh vực y dược.
Kiến nghị
1. Tiếp tục nghiên cứu sâu hơn về thành phần và hàm lượng lipid, cũng như các dạng phân tử trong các lớp chất lipid khác trong đối tượng rong lục nhằm cung cấp các dữ liệu nghiên cứu cơ bản về thành phần lipid của các loài rong biển Việt Nam.
2. Tăng cường và mở rộng nghiên các cứu về dinh dưỡng rong biển và các hợp chất có hoạt tính sinh học cao để định hướng ứng dụng đối tượng rong biển trong các ngành kinh tế của Việt Nam.
3. Mở rộng các nghiên cứu chuyên sâu về hoạt tính của các phân tử lipid để tìm ra vai trò cụ thể của chúng.
TÀI LIỆU THAM KHẢO
1. Titlyano E. A., and T. V. Titlyanova, 2012, Marine Plants of the asian Pacific region countries, their use and cultivation. P. H. Vladivostok.
Dalnauka. 376 p.
2. Đỗ Anh Duy, Đỗ Văn Khương, 2013, Hiện trạng về đa dạng thành phần loài rong biển ở các đảo đã khảo sát thuộc vùng biển Việt Nam, Tạp chí
Khoa học và Công nghệ Biển; Tập 13, Số 2; 2013: trang 105-115.
3. Nguyễn Văn Tú và Lê Như Hậu, 2013, Góp phần nghiên cứu thành phần
loài ngành rong nâu (ochrophyta-phaeophyceae) ở Việt Nam, Kỷ yếu Hội
nghị Quốc tế “Biển Đông 2012”, Nha Trang, trang 119-129.
4. Thanh Le Tat, Anh Nguyen Van Tuyen, Hoa Nguyen Thanh, Nguyet Nguyen Thi, Tien Duc Dam, Phuong Lan Doan, Long Quoc Pham, 2013,
Khảo sát hàm lượng lipid và thành phần các acid béo của rong biển chi Hypnea, Hội nghị Hóa học hữu cơ, trang 132-137.
5. Bhakti Tanna, Avinash Mishra , 2018, Metabolites Unravel Nutraceutical
Potential of Edible Seaweeds: An Emerging Source of Functional Food, C (adsbygoogle = window.adsbygoogle || []).push({});
omprehensive Reviews in Food Science and Food Safety, volume 17, issue 6, p. 1613-1624.
6. Prashamsa Koirala, Su Hui Seong, Hyun Ah Jung, Jae Sue Choi, 2017,
Comparative molecular docking studies of lupeol and lupenone isolated from Pueraria lobata that inhibits BACE1: Probable remedies for Alzheimer's disease, Asian Pacific Journal of Tropical Medicine, volume
10, issue 12, p. 1117-1122.
7. Wijesinghe & Jeon, 2012, Biological activities and potential industrial applications of fucose rich sulfated polysaccharides and fucoidans isolated from brown seaweeds: A review, Carbohydrate Polymers, volume
88, issue 1, p. 13-20.
8. Pires, Dias, Barros, & Ferreira, 2017, Nutritional and chemical characterization of edible petals and corresponding infusions: Valorization as new food ingredients, Food chemistry, volume 220, p.
9. Annamaria Di Fabio, 2017, Positive Healthy Organizations: Promoting Well-Being, Meaningfulness, and Sustainability in Organizations,
frontiers in psychology organizational psychology, oline.
10. MyoungLae Cho, Hyi-Seung Lee, Il-Jun Kang, Moo-Ho Won, SangGuan You, 2011, Antioxidant properties of extract and fractions from Enteromorpha prolifera, a type of green seaweed, Foof Chemistry,
volume 127, issue 3, p. 999-1006.
11. Lê Tất Thành, 2016, Nghiên cứu sàng lọc, phân lập và nhận dạng các hoạt chất acid béo, acid arachidonic và prostaglandin từ rong đỏ biển,
Luận án tiến sĩ, 130tr.
12. Phan Tống Sơn, Phan Minh Giang, 2016, Hóa học các hợp chất thiên nhiên, NXB Khoa học và Kỹ thuật, 415tr.
13. М. М. Голлербах, 1977, Algae and lichens, Plant life, Moscow, volume 3, p. 487.
14. Philip size, 1997. A biology of the Algae. Boston , New Yorkm San
Francisco, California
15. Guiry, M.D., 2012, How many species of algae are there? J. Phycol 48, p. 1057–1063.
16. H Stegenga, Contr, Bolus Herbarium 1997, Seaweeds of the South African
west coast, cinii Articles, oline.
17. Donia and Hamann, 2003, Marine natural products and their potential applications as anti-infective agents, The lancet infectious Diseases,
volume 3, issue 6, p. 338-348.
18. Paul Macartain, PhD, Christopher I.R Gill. PhD, Mariel Brooks, Ros Campbell, lan R.Rowland, 2007, Nutritional value of edible seaweeds,
nutrition reviews, volume 65, issue 12, p. 535-543.
19. Serge Mabeau and Joel Fleurence, 1993, Seaweed in food products: biochemical and nutritional aspects, volume 4, issue 4, p. 103-107.
20. Bourguiba, A.Zahlila, N.Bounaicha, M.Amri, S.Mezghani, 2017,
Antioxidant effect of the marine green alga Ulva rigida ethanolic precipitate in yeast cells and zebrafish embryos, South African Journal of
21. Yong Li, Siqi Sun, Xiaowei Pu, Yuzhe Yang, Fei Zhu, Shouyu Zhang, Nianjun Xu, 2018, Evaluation of Antimicrobial Activities of Seaweed Resources from Zhejiang Coast, China, Sustainability, oline.
22. H.H.Chaminda Lakmal, Kalpa W.Samarakoon, WonWon Lee, Ji-Hyeok Lee, D.T.U. Abyetunga, Hyi-Seung Lee and You-Jin Jeon, 2014,
Anticancer and antioxidant effects of selected Sri Lankan marine algae, (adsbygoogle = window.adsbygoogle || []).push({});
J.Natn.Sci.Foundation Sri Lanka, p. 315-323.
23. Huili Hao, Yu Han, Lihong Yang, Lianmei Hu, Xuewu Duan, Xian Yang, Riming Huang, 2019, Structural characterization and immunostimulatory
activity of a novel polysaccharide from green alga Caulerpa racemosa var peltata, International Journal of Biological Macromolecules, volume 134, p. 891-900.
24. Obchinnikov Y.A, 1987, Bio-oganic chemistry, Moskva Publishing House 25. T. P. L. Nguyen, Nguyen van tuyen anh, Do thi thanh trung, Le tat thanh, Pham quoc long, 2020, Fatty acid composition, phospholipids molecules and bioactivities of lipids of the mud crab Scylla paramamosain, Journal
of Chemistry, vol. 2020.
26. Thu Hue Pham, Nguyen Van Tuyen Anh, Do Thi Thanh Trung, Do Duy Anh, Le Tat Thanh, Pham Quoc Long, 2020, Lipidomics and anti- inflammation activity of the brown algae Lobophora sp. in Vietnam,
Journal of Chemistry, 10 pages, ISSN: 2090-9063
27. Melha Kendel, Gaetane Wielgosz-Collin, Samuel Bertrand, Christos Roussakis, Nathalie Bourgougnon, 2015, Lipid Composition, Fatty Acids and Sterols in the Seaweeds Ulva armoricana, and Solieria chordalis from Brittany (France): An Analysis from Nutritional, Chemotaxonomic, and Antiproliferative Activity Perspectives, Mar. Drugs, 13, 5606-5628.
28. Masaki Honda,TakashiIshimaru and YutakaItabashi, 2016, Lipid classes, Fatty Acid Composition, and glycerolipid Molecular Species of the Red Algae Gracilaria vermiculophylla, a Prostaglandin-Producing Seaweed,
Journal of Oleo Science, 65, (9)723-732.
29. Elisabete Da Costa, Ana S.P.Moreira, Carina Bernardo, Luisa Helguero, Isabel Ferreira, Maria Teresa Cruz, Andreia M. Rego, 2017, Valorization
of Lipids from Gracilaria sp. through Lipidomics and Decoding of Antiproliferative and Anti-Inflammatory Activity, marine drugs, oline.
30. Diana Lopes, Tânia Melo, Felisa Rey, Elisabete Costa, Ana S.P.Moreira, Maria H.Abreu, 2021, Insights of species-specific polar lipidome signatures of seaweeds fostering their valorization in the blue bioeconomy, elsevier, oline
31. T.H. Pham, V.T..A Nguyen, T.C.B. Nguyen, D.T. Dam, T.T. Le, Q.L. Pham, 2017, Research on the content of lipid classes and fatty acids from
Sargassum seaweed, ASAM conferences in Vietnam, VAST, pp. 577-582.
32. Nguyễn Văn Tuyến Anh, 2018, Nghiên cứu thành phần và hàm lượng lipid, acid béo của một số loài rong nâu tại vùng biển Việt Nam, luận văn
thạc sĩ
33. T.H. Pham, V.T..A Nguyen, Q.L. Pham, T.T. Le, 2020, Lipid classes, fatty acid composition and molecular species of betaine lipid of the green algae Halimeda incrassata Lamx. collected at truong sa island, Vietnam J. Chem., Vol. 59, p. 369-375.
34. L.S.Costa, G.P.Fidelis, S.L.Cordeiro, R.M.Oliveira, D.A.Sabry, R.B.G.Camara, 2010, Biological activities of sulfated polysaccharides from tropical seaweeds, Biomedicine & pharmacotherapy, volume 64, p. 21-28.
35. A. Pushparaj, R.S.Raubbin and T.Balasankar, 2014, An Antibacterial activity of the Green Seaweed Caulerpha Sertularioides using Five Different Solvents, International Journal of ChemTech Research CODEN
(USA): IJPRIF ISSN : 0974-4304 Vol.6, No.1, p. 01-05.
36. TTT Thanh, TMT Quach, TN Nguyen, DV Luong, 2016, Structure and cytotoxic activity of ulvan extracted from green seaweed ulvan lactuca,
International journal of biological macromolecules, volume 93, part A, p. 695-702.
37. Hadeel JawadAl Houri, Nadine M.S.Moubayed, Manal M.Al Khulaifi, Dunia A.Al Farraj, 2017, Antimicrobial, antioxidant properties and chemical composition of seaweeds collected from Saudi Arabia (Red Sea
and Arabian Gulf), Saudi Journal of Biological Sciences, volume 24, p.
162-169.
38. Nguyễn Thế Hân, Nguyễn Thị Kim Hằng, Vũ Lệ Quyên, Ngô Thị Hoài Dương, 2020, Hoạt tính ức chế α-glucosidase của ba loài rong lục thu tại
vùng biển Khánh Hòa, Tạp chí khoa học và công nghệ Thái Nguyên,
T.225.
39. Uỷ ban Khoa học & Kỹ thuật Nhà Nước, 1980, “Quy phạm tạm thời điều (adsbygoogle = window.adsbygoogle || []).push({});
tra tổng hợp biển.
40. English S. C. Wilkinson and V. Baker, 1997, “Survey manual for tropical
marine resources”, 2nd Edition. Australian institute of marine science, Townsville, 453p.
41. Taylor W. R., 1960, Marine algae of the Eastern tropical and subtropical
coasts of the Americas, The University of Michigan press. 870p.
42. Segawa S.,1962, Coloured illustrations of the seaweed of Japan,
Hoikusha, Osaka, Japan. 175 p.
43. Phạm Hoàng Hộ, 1969, Rong biển Việt Nam (phần phía Nam). Trung tâm học liệu, Sài Gòn. 558 tr.
44. Tseng C. K., 1983, Common Seaweeds of China. Scien. press, Beijing,
China. 316p.
45. Nguyễn Hữu Dinh, Huỳnh Quang Năng, Trần Ngọc Bút, Nguyễn Văn Tiến, 1993, Rong biển Việt Nam (phần phía Bắc), Nxb. KH KT, Hà Nội. 364 tr.
46. Tseng C. K. and Lu Baoren, 2000, Flora Algarum Marinarum Sinicarum, Tom. III, No. II. Science Press, Beijing. 237 p.
47. Dược liệu IV, phụ lục 9.6 và 9.8
48. J. Kjeldahl, 1883, New Method for the Determination of Nitrogen, Chem.
News, 48 (1240), p. 101–102.
49. Ammar A.Albalasmeh, Asmeret Asefaw Berhe, Teamrat A.Ghezzehei, 2013, A new method for rapid determination of carbohydrate and total carbon concentrations using UV spectrophotometry, Carbohydrate
50. E. G. Bligh and W.J.Dyer, Arapid method of total lipid extraction and purification, Canadian Journal of Biochemistry and Physiology, Vol. 37,
No. 8 (1959), p. 911-917.
51. S. Uthai, P. Panadda, 2011, A Comparison of Image Analysis Software for Quantitative TLC of Ceftriaxone Sodium, Silpakorn U. Science &
Tech. J., Vol. 5, No. 1, p. 7-13.
52. T. Mosmann, 1983, Rapid colorimetric assay for cellular growth and survival: application to proliferation and cytotoxicity assays, Journal of
Immunological Methods, vol. 65, no. 1-2, p. 55–63.
53. A. Bocanegra, S. Bastida, J. Bened, S. Rodenas, F.J.Sanchez-Muniz, 2009, Characteristics and nutritional and cardiovascular-health properties of seaweeds, J. Med. Food, p. 236–258.
54. T.T. Vo, N.H. Le, T.H. Nguyen, 2003, Studing on green seaweeds biomass resources in brackish pond in Khanh Hoa province for ethanol production, Proceedings of the International Conference on “Bien Dong
2012”, p. 334-340.
55. Clara Gaillande, Claude Payri, Georges Remoisenet and Mayalen Zubia, 2017, Caulerpa consumption, nutritional value and farming in the Indo- Pacific region, J. Appl. Phycol, p. 2249–2266.
56. L. Paiva, E.Lima, J.Baptista, 2017, Nutritional and Functional Bioactivity Value of Selected Azorean Macroalgae: Ulva compressa, Ulva rigida, Gelidium microdon, and Pterocladiella capillacea, Journal of
Food Science, Vol.00, p. 1-8.
57. A. Bocanegra, Sara Bastida, Juana Benedi, Sofia Rodenas, 2009,
Characteristics and Nutritional and Cardiovascular-Health Properties of Seaweeds, J. Med. Food, Vol. 12, p.236–258. (adsbygoogle = window.adsbygoogle || []).push({});
58. J. T. Kidgell, Marie Magnusson, Rocky de Nys, Christopher R.K.Glasson, 2019, Ulvan: A systematic review of extraction, composition
and function, Algal Research, 101422.
59. K. Nisizawa, H. Noda, R. Kikuchi, T. Watanabe, 1987, The main seaweed foods in Japan, Hydrobiology, p. 5–29,.
60. P. Rupérez, F. Saura-Calixto, 2001, Dietary fibre and physicochemical properties of edible Spanish seaweeds, Eur. Food Res. Technol., p. 349–
354,.
61. J. Fleurence, 1999, Seaweeds proteins: biochemical, nutritional aspects and potential uses, Trends Food Sci Technol, p. 25–28.
62. H. Hao, Manqin Fu, Ru Yan, Baolin He, Meiying Li, Qiabiao Liu, 2019,
Chemical composition and immunostimulatory properties of green alga Caulerpa racemosa Var Peltata, Food and Agricultural Immunology, Vol.
30, p. 937-954.
63. Joint WHO, 2007, Protein and amino acid requirements in human nutrition, World Organ Tech Rep Ser 935.
64. J. Milledge, Birthe V.Nielsen, Supattra Maneein, Patricia J.Harvey, 2019,
A Brief Review of Anaerobic Digestion of Algae for Bioenergy, Energies,
1166
65. Y.V.Yuan, 2008, Marine algal constituents. In: Barrow C, Shahidi F, editors. Marine nutraceuticals and functional foods, Boca Raton, FL:
CRC Press., p. 259–92.
66. T.T. Le, 2015, Filter research, isolation, and identification active fatty acid, arachidonic acid and prostaglandin from red seaweed, PhD thesis,
GUST, 140p.
67. G. Young, 1998, Journal of the American Dietetic Association,
Supplement, Vol. 98, Iss. 9, p. A44.
68. Luis Felipe Gutiérrez, 2011, Chemical composition of Sacha Inchi (Plukenetia volubilis L.) seeds and characteristics of their lipid fraction,
Grasasy Aceites 62(1), p.76-83.
69. M.M. Nelson, C.F.Phleger and P.D.Nichols, 2002, Seasonal lipid composition in macroalgae of the northeastern Pacific Ocean, Bot., p. 58-
65.
70. H.N. Ginsberg, S L Barr, A Gilbert, W Karmally, R Deckelbaum, K Kaplan, R Ranmakrishnan, S Holleran, R B Dell, 1990, Reduction of plasma cholesterol levels in normal men on an American Heart
Association step 1 diet or a step 1 diet with added monounsaturated fat, N. Engl. J. Med., 322, p. 574–579.
71. J. Ortiz, N.Romero, P.Robert, J.Araya, J.Lopez-Hernandez, C.Bozzo, E.Navarrete, A.Osorio, A.Rios, 2006, Dietary fiber, amino acid, fatty acid
and tocopherol contents of the edible seaweeds Ulva lactuca and Durvillaea antarctica, Food Chem, p. 98–104.
72. E. Plouguerne, Bernardo A P da Gama, Renato C Pereira, Eliana Barreto- Bergter, 2014, Glycolipids from seaweeds and their potential biotechnological applications, Front. Cell Infect. Microbiol,p. 1-5.
73. J. W. Blunt, 2016, Marine natural products, Natural Product Reports,
(adsbygoogle = window.adsbygoogle || []).push({});