Sử dụng kính lúp soi nổi để xác định hình ảnh bề mặt vi nang.
Cho mẫu vi nang lên phiến kính, đặt vào vùng đặt mẫu trên phiến kính. Hiệu chỉnh độ phóng đại, vi trường để thu được hình ảnh rõ nét. Chụp lại hình ảnh soi được.
2.3.8. Phương pháp định tính tinh bột bằng thuốc thử lugol [7]
Dựa trên phản ứng màu đặc trưng của tinh bột khi phản ứng với lugol cho màu xanh tím, khi đun nóng dung dịch mất màu, để nguội màu xanh tím lại xuất hiện.
Nhỏ 2 – 3 giọt dung dịch lugol vào khoảng 5 ml dịch khi ủ vi nang với SGF, quan sát sự thay đổi màu sắc ở mẫu thử.
Nếu dung dịch xuất hiện màu xanh tím tức là đã có tinh bột giải phóng từ vi nang, ngược lại nếu dung dịch có màu vàng (màu của dung dịch lugol hoặc dịch lắc) chứng tỏ tinh bột không bị thất thoát trong quá trình vi nang lắc trong dung dịch pH 1.2.
2.3.9. Phương pháp đánh giá khả năng bảo vệ và giải phóng VSV của vi nang đa nhân [7].
Đánh giá khả năng bảo vệ VSV trong dung dịch pH 1,2
Pha 100 ml dung dịch pH 1.2 theo mục 2.1.6, hấp tiệt khuẩn trong nồi hấp ở nhiệt độ 121℃ trong 15 phút, để nguội về nghiệt độ từ 35℃ – 37℃.
23
Cân chính xác 1,00 g vi nang sau đông khô cho vào bình nón chứa 100 ml dung dịch pH 1.2, tiến hành ủ ở 37℃ trong máy lắc ổn nhiệt với tốc độ 75 vòng/phút. Sau 30 phút, tách vi nang và dịch lắc bằng lưới vớt hạt. Định tính tinh bột trong dịch lắc bằng phép thử lugol và cấy đếm VSV kiểm tra sự có mặt của VSV thất thoát trong dịch lắc.
Đánh giá khả năng giải phóng VSV của vi nang đa nhân
Pha 100 ml dung dịch pH 1,2 và 100 ml dung dịch đệm phosphat hỗn hợp pH 6,8 (phương pháp nêu ở mục 2.1.6). Hấp tiệt khuẩn trong nồi hấp ở nhiệt độ 121℃ trong 15 phút, để nguội về nhiệt độ khoảng 35℃ – 37℃.
Cân chính xác 1,00 g vi nang đông khô cho vào bình nón chứa 100 ml dung dịch pH 1.2. Ủ vi nang trong máy lắc ổn nhiệt với thông số nhiệt độ 37℃, tốc độ 75 vòng/phút. Tách riêng vi nang và dịch lắc bằng lưới vớt hạt đã được tiệt khuẩn.
Vi nang sau khi ủ trong dung dịch pH 1,2 được chuyển sang 100 ml dung dịch pH 6.8 lắc với tốc độ 75 vòng/phút trong máy lắc ổn nhiệt 37℃. Lấy mẫu tại 2 thời điểm : sau 2 giờ và 3 giờ ủ trong dung dịch pH 6.8. Mẫu được đem đi pha loãng xác định số lượng VSV có trong dịch lắc tại các thời điểm (phương pháp đã nêu ở mục 2.3.5).
2.3.10. Phương pháp tính hiệu suất tạo vi nang
Hiệu suất tạo vi nang được tính theo công thức sau:
H= Số lượng VSV trong mẫu vi nang sau đông khô
Số lượng VSV ban đầu × 100%
Số lượng VSV ban đầu được xác định là số lượng VSV có trong 10ml sinh khối hỗn dịch tạo vi nang nhân ban đầu tính theo phương pháp pha loãng xác định số lượng VSV được trình bày ở mục 2.3.5.
Số lượng VSV trong 1,00 g vi nang sau đông khô được xác định bằng phương pháp phá hạt trình bày ở mục 2.3.6. Sau đó nhân với khối lượng mẫu vi nang sau đông khô sẽ tính được số lượng VSV trong mẫu vi nang sau đông khô.
24
PHẦN 3: THỰC NGHIỆM, KẾT QUẢ, BÀN LUẬN
3.1. Tạo vi nang đa nhân chứa Saccharomyces boulardii theo phương pháp tách pha đông tụ tách pha đông tụ
Alginat là nguyên liệu phổ biến được sử dụng để bao gói vi sinh vật. Tuy nhiên nếu sử dụng đơn độc alginat có nhược điểm là cấu trúc xốp, khả năng bao gói không cao [24]. Vì thế rất nhiều nghiên cứu tiến hành kết hợp alginat với các vật liệu bao gói khác như tinh bột, chitosan nhằm hiệu quả bao gói và giải phóng hoạt chất.
Theo nhiều nghiên cứu trước đây khi phối hợp alginat, tinh bột, chitosan cho kết quả: nồng độ alginat 3%, tinh bột 10% và Chitosan 3% tạo vi nang 1 giai đoạn cho khả năng bao gói VSV tốt, khả năng bảo vệ và giải phóng VSV ổn định trong đường tiêu hóa [7]. Vì thế lựa chọn công thức này cho vi nang nhân. Nghiên cứu này tiến hành khảo sát các yếu tố ảnh hưởng đến công thức tạo vi nang đa nhân: ảnh hưởng của nồng độ alginat và tỷ lệ giữa vi nang nhân với chất mang bên ngoài.
3.1.1. Khảo sát nồng độ alginat của thành phần dịch bao ngoài ảnh hưởng đến quá trình tạo vi nang đa nhân
Nhằm khảo sát ảnh hưởng của nồng độ alginat đến khả năng bao gói các vi nang nhân trong quá trình nhỏ giọt và đông khô, tiến hành tạo vi nang đa nhân với dịch bao gói ngoài chứa alginat với nồng độ lần lượt là 0.5%; 1%; 2%; 3% và tinh bột 10% nhỏ giọt vào dung dịch CaCl2 2%. Vi nang nhân sẽ được tạo với nồng độ cố định của 3 thành phần alginat 3%, tinh bột 10% nhỏ giọt vào CaCl2 2%/ chitosan 3%.
Tiến hành
Tạo vi nang nhân không chứa VSV theo quy trình nêu ở mục 2.3.3.
Bao gói vi nang nhân: Vi nang nhân tạo thành được rửa với nước cất rồi chuyển vào hỗn dịch bao gói theo tỷ lệ 1:5 khuấy từ trong vòng 10 phút cho phân tán đều vi nang nhân trong hỗn dịch bao. Hỗn dịch bao gói chứa tinh bột 10% và
25
alginat với các nồng độ 0.5%; 1%; 2%; 3% ký hiệu lần lượt là A-0.5; A-1; A-2; A-3. Pha dung dịch CaCl2 2% làm dung dịch gel hóa vi nang (cách pha nêu ở mục 2.1.6). Tiến hành tạo vi nang đa nhân bằng xylanh 50 ml (kích thước đầu nhỏ giọt khoảng 4 mm). Vi nang đa nhân tạo thành được đông khô theo quy trình và các thông số đã nêu ở mục 2.3.4. Kết thúc quá trình đông khô tiến hành đánh giá về hình thái và khả năng bao gói vi nang nhân.
Kết quả:
Kết quả được trình bày trong bảng 3.1.
Bảng 3.1: Kết quả quá trình tạo vi nang đa nhân và đánh giá khả năng bao gói của các mẫu vi nang A-0.5; A-1; A-2 và A-3
Mẫu Đặc điểm
A-0.5 A-1 A-2 A-3
Khả năng hình thành giọt ở đầu xylanh
Vi nang nhân dễ bị lắng xuống khi nhỏ giọt. Khó hình thành giọt.
Vi nang nhân dễ bị lắng xuống khi nhỏ giọt. Khó hình thành giọt.
Vi nang nhân bị sa lắng ít.
Vi nang nhân ít bị lắng đọng ở đầu xylanh. Quá trình tạo giọt thuận lợi. Quá trình
tiếp xúc với dung dịch gel hóa
Không tạo thành màng bao bảo vệ. Không hình thành được vi nang.
Hình thành lớp màng mỏng bao xung quanh vi nang nhân. Hình thành hạt vi nang cầu tròn hơn. Vi nang ban đầu nổi trên bề mặt gel rồi chìm dần.
Hình thành vi nang cầu tròn đều chìm ngay khi tiếp xúc với dung dịch gel hóa.
Hình dạng vi nang tươi
Vi nang tươi không có hình dạng cầu. Lớp
Vi nang hơi cầu, không đều. Vi nang
Vi nang cầu đều, hạt ít bị kéo đuôi. Độ
26 màng co thể tích theo hình dạng của vi nang nhân bên trong. Kích thước to nhỏ không đều.
bị kéo đuôi, lộ vi nang nhân ra bề mặt. che phủ vi nang tốt. Hình dạng vi nang sau đông khô Vi nang co lại theo hình dạng của vi nang
nhân bên
trong.
Vi nang co kích thước, hạt không có hình dạng cầu đều.
Vi nang co kích thước, cứng, vẫn giữ được hình dạng cầu đều. Khả năng
bao gói vi nang
Không có khả năng bao gói.
Khả năng bao phủ không cao, chỉ hình thành lớp màng mỏng bao bọc vi nang nhân.
Vi nang nhân bị lộ hạt nhiều.
Vi nang nhân được bao phủ tốt. Ít bị lộ hạt ra bề mặt.
27
Hình 3.1: Hình ảnh vi nang tươi a) Mẫu A-0.5; b) Mẫu A-1; Mẫu A-2; d) Mẫu A-3
Hình 3.2: Hình ảnh vi nang sau đông khô a) Mẫu A-0.5; b) Mẫu A-1; c) Mẫu A-2: d) Mẫu A-3
c d
a b
28 Nhận xét
Khi nồng độ alginat loãng (0.5% và 1%) vi nang nhân có hiện tượng sa lắng nhiều trong quá trình nhỏ giọt. Điều này dẫn tới khó hình thành giọt đùn qua xylanh. Việc tăng nồng độ alginat lên 2% và 3% giúp vi nang nhân ít bị sa lắng hơn trong hỗn dịch bao gói. Vì thế, chất mang bên ngoài với nồng độ alginat 3% ổn định tốt hơn và quá trình nhỏ giọt diễn ra dễ dàng hơn.
Hỗn dịch bao gói ngoài với nồng độ alginat 0.5% không thể tạo được màng bao bảo vệ khi giọt đùn tiếp xúc với dung dịch gel hóa. Tăng nồng độ alginat lên 3% tạo ra màng bao chắc chắn, vi nang cầu đều và ổn định cấu trúc hơn khi đông khô.
Qua khảo sát nồng độ alginat 1%, 2% và 3% có khả năng tạo được vi nang đa nhân. Tuy nhiên, mật độ vi nang nhân trong mỗi vi nang tạo thành không đồng đều và phụ thuộc vào nồng độ alginat của dịch bao gói ngoài. Có thể thấy, việc tăng nồng độ alginat lên 3% giúp cho sự phân tán vi nang nhân trong hỗn dịch bao gói đồng nhất hơn (Hình 3.1.d – nồng độ alginat 3%). Vì thế sẽ giúp tăng hiệu quả bao gói và phân phối VSV trong vi nang đa nhân.
Bàn luận
Từ kết quả thí nghiệm có thể thấy nồng độ alginat rõ ràng có ảnh hưởng đến quá trình nhỏ giọt tạo vi nang đa nhân cũng như khả năng tạo ra các vi nang đồng nhất.
Việc tăng nồng độ alginat lên 3% cũng giúp vi nang đạt được sự đồng đều về mật độ nhân trong mỗi vi nang đa nhân. Do khi tăng nồng độ alginat dẫn tới tăng độ nhớt của hỗn dịch bao gói ngoài [15]. Điều này giúp cho vi nang nhân ít bị sa lắng hơn trong quá trình bao gói và tạo ra các vi nang đồng đều về số lượng vi nang nhân.
Tăng nồng độ alginat giúp tăng khả năng bao gói vi nang nhân nhờ hình thành màng bao chắc chắn. Điều này có thể được giải thích khi nồng độ alginat càng thấp thì mật độ tập trung alginat trong mỗi giọt được đùn ra khỏi xylanh thấp. Do đó khả năng liên kết chéo với ion Ca2+ để hình thành hạt giảm. Khi nồng độ alginat thấp, liên kết lỏng lẻo hình thành giữa alginat và ion Ca2+ không đủ để
29
bao phủ được vi nang nhân bên trong dẫn tới việc giọt chứa vi nang nhân bị phân tán trở lại khi tiếp xúc với dung dịch gel hóa hoặc chỉ hình thành màng mỏng không đồng nhất (Hình 3.1.a – Alginat 0.5%). Ở nồng độ alginat 2% và 3% có mật độ alginat cao hơn vì thế khi tiếp xúc với dung dịch gel hóa, giọt sẽ xảy ra ngay quá trình gel hóa bên ngoài để ổn định cấu trúc hạt. Sau đó Ca2+ sẽ tiếp tục thâm nhập vào bên trong và hình thành vi nang có cấu trúc chắc chắn [13]. Ngoài ra, việc tăng nồng độ alginat giúp vi nang nhân ít bị sa lắng cũng ảnh hưởng tới khả năng bao gói vi nang. Khi sử dụng alginat nồng độ 0.5% hay 1% thì hỗn dịch bao gói có độ nhớt thấp [15], vi nang nhân bị lắng đọng tại đầu xylanh dẫn tới việc mỗi giọt được đùn ra sẽ chứa từ 4 – 7 vi nang nhân, chiếm thể tích xấp xỉ kích thước đầu xylanh. Do đó không còn nhiều khoảng trống cho hỗn dịch bao gói để hình thành màng bao chắc chắn, dẫn tới khả năng bao phủ vi nang nhân giảm.
Như vậy với kỳ vọng tạo được vi nang đa nhân với khả năng bao gói vi nang nhân tốt thì công thức vi nang nhân alginat 3% - tinh bột 10% với dung dịch gel hóa CaCl2 2%/Chitosan 3% và hỗn dịch bao gói vi nang nhân được lựa chọn là: alginat 3% - tinh bột 10% nhỏ vào dung dịch gel hóa CaCl2 2%.
3.1.2. Khảo sát ảnh hưởng của tỷ lệ giữa vi nang nhân và hỗn dịch bao gói tới quá trình tạo vi nang đa nhân
Tiến hành:
Tạo vi nang nhân theo phương pháp nêu ở mục 2.3.3.
Bao gói vi nang nhân: Vi nang nhân tạo thành được rửa với nước cất rồi chuyển vào hỗn dịch bao gói chứa alginat 3% và tinh bột 10% theo tỷ lệ giữa nhân và hỗn dịch bao gói là 1: 2.5 ; 1: 5 ; 1: 10, khuấy từ trong vòng 10 phút cho phân tán đều vi nang nhân trong hỗn dịch bao. Pha dung dịch CaCl2 2% làm dung dịch gel hóa vi nang (cách pha nêu ở mục 2.1.6). Tiến hành tạo vi nang đa nhân bằng xylanh 50ml (kích thước đầu nhỏ giọt khoảng 4 mm). Các vi nang sau khi tạo thành được đông khô với các thông số đã được nêu trong mục 2.3.4 thu được các mẫu vi nang lần lượt là AT – 2.5; AT – 5; AT – 10. Vi nang sau khi tạo thành được đánh giá về mặt hình thái và mật độ vi nang nhân.
30
Bảng 3.2: Tỷ lệ vi nang nhân : hỗn dịch bao gói cần khảo sát
Các mẫu vi nang AT – 2.5 AT – 5 AT – 10
Tỷ lệ vi nang nhân
/hỗn dịch bao gói 1 : 2.5 1:5 1:10
Kết quả
Kết quả của thí nghiệm được trình bày trong bảng 3.3
Bảng 3.3: Kết quả ảnh hưởng của tỷ lệ phối hợp vi nang nhân và dịch bao ngoài tới quá trình tạo vi nang đa nhân
Mẫu
Đặc điểm AT – 2.5 AT – 5 AT – 10
Độ phân tán nhân trong hỗn dịch bao
Vi nang nhân phân tán đều trong hỗn dịch bao, không bị sa lắng. Mật độ nhân dày.
Vi nang nhân phân tán đều trong hỗn dịch bao. Mật độ nhân vừa phải.
Vi nang nhân bị lắng xuống đầu xylanh khi nhỏ giọt, không phân tán đồng đều. Khả năng hình
thành giọt
Khó hình thành giọt, dễ thành chuỗi.
Dễ hình thành giọt.
Khó hình thành giọt.
Hỗn dịch bao gói còn dư gần 10% sau khi đùn hết vi nang nhân.
Số lượng nhân trong vi nang đa nhân tạo thành
Phân bố không đồng đều trong vi nang đa nhân.
Phân bố nhân trong mỗi vi nang tương đối đồng đều.
Phân bố nhân không đồng đều.
31 Hình dạng vi nang
tươi
Vi nang tươi kích thước không đồng đều, không cầu đều, xuất hiện nhiều vi nang hình chuỗi dài.
Vi nang cầu, đều. Vi nang có kích thước không đồng đều.
Vi nang không đạt hình dạng cầu. Hình dạng vi nang
sau đông khô
Vi nang co theo hình dạng vi nang nhân sau đông khô. Vi nang nhân bị bộc lộ ra ngoài nhiều.
Vi nang co thể tích, cứng và cầu đều. Khả năng bao phủ tốt.
Vi nang co thể tích, kích thước không đồng đều.
Hình 3.3: Hình ảnh vi nang AT – 2.5 a) Trước đông khô; b) Sau đông khô
32
Hình 3.4: Hình ảnh vi nang AT – 5 a) Trước đông khô; b) Sau đông khô
Hình 3.5: Hình ảnh vi nang AT – 10 a) Trước đông khô; b) Sau đông khô
Bàn luận
Qua thí nghiệm trên có thể thấy tỷ lệ nhân trong hỗn dịch bao gói có ảnh hưởng đến mật độ vi nang nhân, quá trình đùn tạo vi nang đa nhân, hình thái của vi nang đa nhân tạo thành trước và sau đông khô.
Việc tăng tỷ lệ nhân trong hỗn dịch bao gói làm tăng mật độ nhân giúp vi nang nhân phân tán đồng đều hơn trong hỗn dịch bao. Khi mật độ nhân quá nhỏ độ nhớt của hỗn dịch không đủ để duy trì tính ổn định của hỗn dịch chứa nhân, dẫn tới hiện tượng sa lắng vi nang nhân ở tỷ lệ phối hợp nhân và dịch bao là 1/10.
Khi tăng mật độ nhân trong hỗn dịch bao gói lên tỷ lệ 1/2.5 việc tạo vi nang trở nên khó khăn hơn. Cần một lực đùn mạnh hơn để đẩy một lượng vi nang nhân dày đặc ra khỏi đầu xylanh. Kích thước của vi nang cũng lớn hơn và không đồng
a b
33
đều so với các tỷ lệ khác do chứa số lượng lớn hơn vi nang nhân. Đồng thời, mật độ vi nang nhân lớn cũng xảy ra hiện tượng hình thành chuỗi dài do vi nang nhân quá dày đặc không thể cắt giọt.
Tuy nhiên việc giảm tỷ lệ vi nang nhân trong hỗn dịch bao gói xuống tỷ lệ