Nhận dạng gossypol tách được

Một phần của tài liệu Nghiên cứu qui trình chiết tách (±) gossypol từ hạt cây bông gossypium hirsutum (Trang 26)

Tiến hành nhận dạng gossypol tách được, so sánh với gossypol đối chiếu của Viện Dược liệu bằng các phương pháp như: So sánh với gossypol chuẩn bằng SKLM, sử dụng phương pháp đo phổ hấp thụ tử ngoại, phổ hấp thụ hồng ngoại, và phổ khối để xác định cấu trúc của chất tách được. Sau đó đem so sánh với các dữ liệu đã được công bố về cấu trúc hóa học của gossypol để khẳng định chất tách được là gossypol.

2.3.2.4. Định lượng gossypol trong sản phẩm thu được

Sản phẩm G-AA chứa một phân tử gossypol liên kết với một phân tử acid acetic bàng liên kết hydro. Định lượng gossypol trong sản phẩm thu được

bằng quang phổ tử ngoại dựa theo phương pháp được xây dựng bởi Guangfeng Jia và cộng sự [16].

* Xây dựng đường chuẩn: 50 mg G-AA đối chiếu được đưa vào bình

định mức 1 0 0 ml và định mức vừa đủ bằng chloroform để thu được dung dịch

gốc có nồng độ 0,5 mg/ml (m/v). Lấy 50, 100, 150, 200, 250 ịxl dung dịch gốc ở trên bằng micropipette đưa vào bình định mức 5 ml và định mức lần lượt thành các dung dịch có nồng độ 5, 10, 15, 20, 25 {Xg/ml bằng chloroform. Đo độ hấp thụ của các dung dịch chuẩn này ở bước sóng 365 nm trên máy quang phổ UV- Visible Spectrophotometer Carry IE (Varían). Đo lặp lại 3 lần. Lấy kết quả trung bình để xây dựng đường chuẩn.

* Định lượng mẫu thử: nồng độ G-AA thực trong sản phẩm thu được được xác định bằng phương pháp đo độ hấp thụ tử ngoại dựa trên đường chuẩn đã xây dựng ở trên. Chuẩn bị dung dịch mẫu thử có nồng độ khoảng 15 ịig/ml G-AA trong chloroform. Đo độ hấp thụ ở bước sóng 365 nm. Hàm lượng G-AA trong sản phẩm được tính là tỉ lệ giữa nồng độ của G-AA tinh khiết thu được từ đường chuẩn và nồng độ thực của mẫu thử.

CHƯƠNG 3: KẾT QUẢ THựC NGHIỆM VÀ BÀN LUẬN

3.1. Kết quả thực nghiệm

3.1 A. Chuẩn bị nguyên liệu

Hạt bông Gossypỉum hỉrsutum giống D I6-2 được nghiền bằng máy xay

rồi rây ở các rây có kích cỡ lần lượt là 1 mm, và 0 ,2 mm để tách phần nhân hạt ra khỏi phần vỏ và xơ bông. Thu được bột nhân hạt bông màu xám với các tuyến chất màu có thể quan sát được bằng mắt thường. Khối lượng nhân thu được bằng 61,26% tổng khối lượng hạt. Độ ẩm của bột nhân hạt bông được xác định trên máy Prescisa HA60 là 7,68%.

3.1.2. Chiết gossypol racemic

Cho 50 g bột nhân hạt bông được đưa vào bình cầu dung tích 500 ml,

thêm 100 ml dung dịch acid phosphoric IM, thủy phân ở nhiệt độ 60®c, trên

nồi đun cách thủy có lắp sinh hàn để hồi lưu dung môi bay hơi. Sau 60 phút, thêm vào bình 200 ml aceton, đun hồi lưu trong 30 phút. Lọc hút chân không, thu dịch lọc, phần bã tiếp tục cho vào bình rồi thêm 150 ml hồn họp dung môi aceton : nước = 7:3. Tiếp tục đun hồi lưu cách thủy trong 30 phút rồi lọc như trên, bã nguyên liệu tiếp tục đưa trở lại bình và thêm 1 0 0 ml hỗn hợp dung môi aceton : nước = 7:3. Đun hồi lưu cách thủy trong 30 phút, hết thời gian đem lọc như trên. Phẫn bã được rửa bằng 20 ml aceton. Gộp tất cả các phần dịch lọc thu được dịch chiết. Quá trình chiết trên đều được tiến hành trong

điều kiện tránh ánh sáng, đun cách thủy hồi lưu ở nhiệt độ 60^c, thỉnh thoảng

có khuấy trộn.

Dịch chiết được cất thu hồi aceton dưới áp suất giảm trên máy cất quay, ở nhiệt độ 40^C, thu được aceton (aceton này có thể cất lại để sử dụng cho các lần chiết tiếp theo) và pha nước chứa gossypol và dầu hạt bông không tan.

Chuyển pha nước vào bình chiết quả lê, chiết với DCM 3 lần (80 ml, 60 ml, 60 ml). Gộp các pha DCM chiết được rồi rửa pha này 1 lần với nước để loại acid nếu có. Cuối cùng, pha DCM được cất loại dung môi dưới áp suất giảm trên máy cất quay, ở nhiệt độ 40^c thu được 1,74 g cao chiết màu nâu.

Sơ đồ 3.1: Chiết xuất và tinh chế G-AA

Cao chiết được định tính sự có mặt của gossypol bằng phương pháp đo phổ hấp thụ tử ngoại và SKLM. Kết quả cho thấy, phổ hấp thụ tử ngoại của cao chiết có đỉnh hấp thụ cực đại tại 364 nm (Phụ lục 1), và có hình dạng phù họp với hình dạng và đỉnh hấp thụ cực đại của gossypol đã được công bố trước đó (365 nm) [16]. Tiến hành SKLM với hệ dung môi khai triển là n-

hexan/ethyl acetat/acid acetic = 9/1/0,4 với thuốc thử hiện màu là H2SO4 20%

trong EtOH. Trên sắc kí đồ thấy cao chiết có một vết đậm tương ứng với vết của gossypol đối chiếu. (Hình 3.1). Kết luận, trong cao chiết có gossypol.

3.1.3. Kết tinh gossypol acid acetic

Cao chiết thu được ở trên được chuyển vào bình cầu dung tích 100 ml, sau đó được hòa tan trong 2 ml aceton, rồi thêm từ từ 1 ml acid acetic (tỉ lệ

acid acetic : aceton = 1:2). Bọc kin bình, rồi tiến hành kết tũủi ở điều kiện trên trong ứiời gian 24 giờ. Sau đó, đem lọc hút chân không, rửa tinh thể G-AA bằng ether dầu (30”C- 60^C) cho đến khi dung dịch rửa hết màu. Tinh thể G- AA được sấy trong tủ sấy chân không ở nhiệt độ phòng, rồi được cân bàng cân phân tích, tíiu được 0,2514 g. Sản phẩm G-AA thô này còn lẫn nhiều dầu và các chất màu khác nên vẫn có màu vàng nâu và dễ bị oxy hóa trong quá

trình bảo quản, vi vậy kết tinh lại 1 lần nữa ừong hệ dung môi aceton : acid

acetic để thu được sản phẩm G-AA sạch hon có màu vàng tươi, khối lượng là 0,2301 g. Hiệu suất của quá trình kết tinh lại là 91,5%.

Hình 3.1: SKLM của cao chiết so sảnh với gossypoỉ đổi

chiếu

(l):Gossypol đổi chiếu; (2): Cao chiết.

Sản phẩm được bảo quản trong lọ kín, tránh ánh sáng, ở nhiệt độ -10°c. Trong quá ừình kết tinh tôi nhận thấy rằng sản phẩm kết tinh lần 1 ở tất cả các mẫu đều có màu vàng nâu do còn lẫn nhiều tạp là dầu béo mà kết tinh một lần chưa thể loại hết được. Do đó sản phẩm thô này không dùng để xác định hàm lượng G-AA cũng như túih hiệu suất của quá trình. Vì vậy tất cả các

1 để loại bớt tạp chất. Sản phẩm G-AA thu được sau khi kết tinh lại lần 2 được coi là sản phẩm cuối cùng của quá trình chiết tách. Tất cả các số liệu liên

quan đều được đo và phân tích trên sản phẩm kết tinh lần 2 này.

3A.4. Kiểm tra cẩu trúc gossypol acid acetìct tách được

Sản phẩm G-AA thu được đem tiến hành SKLM với chất chuẩn đối chiếu, hệ dung môi khai ữiển: n-hexan/etìiyl acetate/acid acetic = 9/l/0,4 ;

thuốc thử hiện màu: H2SO4 20% trong EtOH. Cho thấy có một vết duy nhất

(Rf = 0,21) tương ứng với vết của gossypol đối chiếu (Rf = 0,22). (Hình 3.2)

Sản phẩm G-AA thu được đem đo độ quay cực, đo điểm chảy, đo phổ hấp thụ tử ngoại, phổ hồng ngoại và phổ k h ố i, thu được kết quả như sau;

Hình 3,2: SKLM của sản phẩm chiết tách được so sánh

với gossypoỉ đổi chiếu

(1). Gossypol đối chiếu; (3): G-AA thu được

[a ]o - 0°

Điểm chảy (Mp): 189- 191®c. (G-AA kết tinh trong MEK có điểm chảy Mp=187*^C[16]).

u v (Ằ„,ax , CHCI3) : 2 4 2 , 2 8 8 , 3 6 4 nm. (Hình 3.3)

IR (KBr, cm'’): V = 3426 (-OH), 2930 (-COOH), 1711 (C=0). 1614,

1579 (C=C). 1444. 1341 (CatiQ), 1176, 1052, 846. (Phụ lục 2)

Trên phổ MS, chỉ ra pic [M-H]^ M = 517. Khối lượng phân tử của

gossypol (CsoHsoOs) là 518. (Phụ lục 3)

Kết quả này phù hợp với các dữ liệu đã công bố của G-AA [16 Từ đó, kết luận rằng chất tách được chính là gossypol.

2.0-1 <ỉ> < 1.5 1.0 0.5 0.0 200 300 400 500 600 700 800 W a v e le n g th (n m )

Hình 3.3: Phổ u v của sản phẩm G-AA thu được

3.1.5, Định lượng hàm lượng gossypol trong sản phẩm thu được

* Xây dựng đường chuẩn: Cân chính xác 0,0523 g G-AA chuẩn đối

chiếu, định mức bằng CHCI3 vừa đủ trong bình định mức 100 ml, lắc kĩ, thu

được dung dịch gốc có nồng độ 0,0523 mg/ml (m/v) . Dùng micropipette hút chính xác lần lượt 100, 200, 300, 400, 500 |il dung dịch gốc, cho vào các bình

dịch chuẩn có nồng độ tương ứng lần lượt là 5, 10, 15, 20, 25 I^g/ml. Sau đó đo độ hấp thụ của từng dung dịch chuẩn ở bước sóng 365 mn. Mỗi dung dịch chuẩn đo lặp lại 3 lần, tính giá trị trung bình.

Thu được đường chuẩn có phương trình là; y = 27,127x + 0,4138

(R^ = 0,9957) (Hình 3.4)

trong đó: X là độ hấp thụ trung bình tại bước sóng 365 nm

y là nồng độ G-AA (|xg/ml)

* Định lượng sản phẩm chiết tách được:

Cân chính xác 0,0038 g sản phẩm tách được vào bình định mức 10 ml

và định mức bằng CHCI3. Lắc kĩ. Lấy chính xác 0,5 ml dung dịch vừa thu

được cho vào bình định mức 10 ml khác rồi tiếp tục định mức bằng CHCI3,

thu được dung dịch mẫu thử có nồng độ 19 ng/ml. Đo độ hấp thụ của dung dịch này ở bước sóng 365 nm, đo lặp lại 3 lần. Kết quả, độ hấp thụ trung bình là 0,417. Thay vào đường chuẩn ở trên, thu được nồng độ thực của dung dịch

mẫu thử là c = y= 11,726 |xg/ml.

Vậy hàm lượng G-AA trong sản phẩm = (Cthực / Cií thuyết) X 100% =

3.1.6. Khảo sát một số yếu tố ảnh hưởng trong qui trình chiết xuất

Nghiên cứu của của Michael Dowd và cộng sự cho thấy các yếu tố trong quá trình chiết tách như nồng độ acid dùng thủy phân nguyên liệu, lượng dung môi... đều ảnh hưởng đến hàm lượng G-AA trong sản phẩm và hiệu suất của quá trình. Vì vậy, chúng tôi sẽ tiến hành khảo sát một số yểu tố ảnh hưởng đến qui trình đã được chọn, từ đó từng bước hoàn thiện để qui trình đạt hiệu suất cao hơn. Các yểu tố chúng tôi khảo sát bao gồm: tỉ lệ hỗn hợp dung môi aceton : nước, lượng dung môi chiết, loại acid dùng để thủy phân, nồng độ acid dùng để thủy phân.

3.1.6.1. Khảo sát ảnh hưỏng của tỉ lệ hỗn họp dung môi aceton : nước

Tiến hành khảo sát các tỉ lệ hỗn hợp dung môi aceton : nước lần lượt là 7:3, 8:2, 9:1 và 10:0. Nguyên liệu sau khi thủy phân với 100 ml dung dịch acid phosphoric IM sẽ được chiết 3 lần nữa với hỗn hợp dung môi có tỉ lệ tương ứng như trên. Do trong dung dịch acid đã có xấp xỉ 100 ml nước, nên lần chiết thứ nhất chỉ thêm aceton sao cho đạt được hỗn hợp dung môi có tỉ lệ cần khảo sát. Đối với tỉ lệ 7:3 chỉ cần 233,33 ml aceton, nhưng khi khảo sát tỉ lệ 8:2 thì cần 400 ml aceton, và tỉ lệ 9:1 thì cần đến 900 ml aceton. Nếu lần chiết thứ nhất này dùng hỗn hợp aceton : nước tỉ lệ 8:2 hoặc 9:1 thì lượng dung môi cần dùng khá lớn. Điều này gây khó khăn khi áp dụng qui trình vào qui mô lớn hơn, vì sẽ tốn rất nhiều dung môi và thiết bị chiết có thể không đáp ứng được dung tích. Hơn nữa, aceton là dung môi rất dễ bay hơi, như vậy lượng dung môi hao phí sẽ rất lớn, và dẫn đến tăng giá thành sản phẩm. Do đó, khi tiến hành khảo sát để tìm ra tỉ lệ hồn họp aceton : nước họp lí (vừa chiết được tối đa có thể gossypol ra khỏi nguyên liệu, vừa tiết kiệm dung môi) tôi quyết định chọn lượng dung môi cho lần chiết đầu cố định là 230 ml aceton (tương đương với 330 ml hỗn hợp aceton/nước = 7/3).

Các bước chiết với DCM, cô thành cao, kết tinh và tinh chế tiến hành như mô tả ở mục 3.1.2 và 3.1.3. Sản phẩm G-AA sạch sau khi kết tinh lần 2 được đem đo độ hấp thụ tại bước sóng 365 nm để xác định độ tinh khiết.

Khối lượng sản phẩm thu được, hàm lượng G-AA trong sản phẩm, và khối lượng G-AA thực có trong sản phẩm trong quá trình khảo sát được tóm tắt ở bảng 3.1. STT Tỉ lệ aceton : nước Khối lượng sản phẩm (g) Hàm lượng G- AA (%) Khối lượng G- AA thực (g) 1 7:3 0 ,2 2 1 1 ± 0 ,0 1 61,71 0,1364 2 8 :2 0,2716 ±0,01 69,49 0,1887 3 9:1 0,2828 ± 0,0 1 76,75 0,2170 4 1 0 :0 0,2574 d= 0,02 77,83 0,2003

Bảng 3.1 : Khảo sát ảnh hưởng của tỉ ỉệ aceton : nước

Từ kết quả bảng 3.1 cho thấy khi tăng tỉ lệ aceton trong hỗn hợp dung môi thì khối lượng sản phẩm thu được tăng, hàm lượng G-AA thực trong sản phẩm cũng có xu hướng tăng. Chiết bằng hỗn hợp dung môi có tỉ lệ aceton : nước (9:1) cho khối lượng G-AA thực cao nhất. Mặt khác, khi tăng tỉ lệ aceton trong hỗn hợp dung môi thì sản phẩm G-AA thô có màu vàng sáng hơn. Lí do là gossypol sau khi đã bị thủy phân trở về dạng tự do thì tan tốt trong aceton, tỉ lệ aceton càng cao càng chiết được nhiều gossypol ra khỏi nguyên liệu.

Tuy nhiên, khi chiết bằng dung môi aceton không chứa nước (tỉ lệ aceton : nước = 10:0) thì khó lọc tinh thể G-AA thô sau khi kết tinh. Nguyên nhân do khi không có nước, độ phân cực của dung môi chiết giảm vì vậy tăng

khả năng hòa tan dầu béo. Lượng dầu trong cao chiết nhiều, nên khi kết tinh làm cản trở sự va chạm của các tiểu phân G-AA, do đó tinh thể thu được rất mịn. Vì vậy quá trình lọc thu tinh thể G-AA thô rất khó khăn, và tinh thể lẫn rất nhiều dầu nên có màu vàng nâu đậm. Đồng thời tỉ lệ dung môi 10:0 cũng hòa tan nhiều tạp hơn. Những nguyên nhân trên dẫn tới khối lưọng G-AA thực thu được thấp hơn so với khi chiết bằng hỗn hợp 9:1.

Từ két quả trên, kết luận rằng tỉ lệ aceton : nước tối ưu là 9:1. ở tỉ lệ này hỗn hợp dung môi có độ phân cực phù hợp để chiết tối đa lượng gossypol có trong nguyên liệu, mặt khác, do có nước làm tăng độ phân cực của dung môi nên hạn chế việc hòa tan các tạp ít phân cực và dầu béo. Sản phẩm thu được do đó không những nhiều mà còn có hàm lượng G-AA cao. Vì vậy, ở các thí nghệm khảo sát về sau đều dùng hỗn họp dung môi là aceton ; nước có tỉ lệ 9:1 để chiết gossypol toàn phần ra khỏi nguyên liệu.

3 .1.6.2 Khảo sát ảnh hưởng của lượng dung môi chiết

Lượng dung môi đang dùng là: lần chiết đầu dùng 230 ml aceton (tương đương với 330 ml hỗn họp aceton : nước = 7/3, sau đó chiết 2 lần bằng hỗn hợp aceton : nước = 9:1 là 150 ml và 100 ml. Trong quá trình chiết chúng tôi

nhận thấy sau 2 lần chiết, đặc biệt là sau khi thủy phân bằng acid thì nguyên

liệu bị trương nở nhiều. Lần chiết thứ 3 dùng 100 ml hỗn hợp dung môi không đủ làm ngập hết bã nguyên liệu, lượng dung môi này có thể không đủ để chiết hết gossypol còn trong nguyên liệu. Vì vậy, chúng tôi tiến hành khảo sát ảnh hưởng của lượng dung môi chiết, nhằm tìm ra được lượng dung môi hợp lí; vừa chiết được tối đa có thể gossypol ra khỏi nguyên liệu, vừa tiết kiệm dung môi.

- Điều kiện 1: lần chiết đầu 230 ml aceton, sau đó chiết 2 lần với 150 ml, 100 ml hỗn hợp dung môi tỉ lệ 9:1.

- Điều kiện 2: 230 ml aceton, sau đó chiết 2 lần với 200 ml, 150 ml hỗn hợp dung môi tỉ lệ 9:1.

- Điều kiện 3: 230 ml aceton, sau đó chiết 3 lần với 300 ml, 300 ml, và 250 ml hỗn hợp dung môi tỉ lệ 9:1.

Kết quả thu được trình bày ở bảng 3.2

STT Điều kiện dung

môi Khối lượng sản phẩm (g) Hàm lượng G- AA (%) Khối lượng G-AA thực 1 Điều kiện 1 0,2828 ± 0 ,0 1 76,75 0,2170 2 Điều kiện 2 0,2910 ±0,02 85,82 0,2497 3 Điều kiện 3 0,2819 ±0,02 90,41 0,2548

Một phần của tài liệu Nghiên cứu qui trình chiết tách (±) gossypol từ hạt cây bông gossypium hirsutum (Trang 26)

Tải bản đầy đủ (PDF)

(56 trang)