Nghiên cứu xác định tỷ lệ nhiễm và chế tạo Kit chẩn đoán bệnh tiên mao trùng (Trypanosomiasis) ở đàn trâu tại tỉnh Tuyên Quang (LA tiến sĩ)

159 248 0
Nghiên cứu xác định tỷ lệ nhiễm và chế tạo Kit chẩn đoán bệnh tiên mao trùng (Trypanosomiasis) ở đàn trâu tại tỉnh Tuyên Quang (LA tiến sĩ)

Đang tải... (xem toàn văn)

Tài liệu hạn chế xem trước, để xem đầy đủ mời bạn chọn Tải xuống

Thông tin tài liệu

Nghiên cứu xác định tỷ lệ nhiễm và chế tạo Kit chẩn đoán bệnh tiên mao trùng (Trypanosomiasis) ở đàn trâu tại tỉnh Tuyên Quang (LA tiến sĩ)Nghiên cứu xác định tỷ lệ nhiễm và chế tạo Kit chẩn đoán bệnh tiên mao trùng (Trypanosomiasis) ở đàn trâu tại tỉnh Tuyên Quang (LA tiến sĩ)Nghiên cứu xác định tỷ lệ nhiễm và chế tạo Kit chẩn đoán bệnh tiên mao trùng (Trypanosomiasis) ở đàn trâu tại tỉnh Tuyên Quang (LA tiến sĩ)Nghiên cứu xác định tỷ lệ nhiễm và chế tạo Kit chẩn đoán bệnh tiên mao trùng (Trypanosomiasis) ở đàn trâu tại tỉnh Tuyên Quang (LA tiến sĩ)Nghiên cứu xác định tỷ lệ nhiễm và chế tạo Kit chẩn đoán bệnh tiên mao trùng (Trypanosomiasis) ở đàn trâu tại tỉnh Tuyên Quang (LA tiến sĩ)Nghiên cứu xác định tỷ lệ nhiễm và chế tạo Kit chẩn đoán bệnh tiên mao trùng (Trypanosomiasis) ở đàn trâu tại tỉnh Tuyên Quang (LA tiến sĩ)Nghiên cứu xác định tỷ lệ nhiễm và chế tạo Kit chẩn đoán bệnh tiên mao trùng (Trypanosomiasis) ở đàn trâu tại tỉnh Tuyên Quang (LA tiến sĩ)Nghiên cứu xác định tỷ lệ nhiễm và chế tạo Kit chẩn đoán bệnh tiên mao trùng (Trypanosomiasis) ở đàn trâu tại tỉnh Tuyên Quang (LA tiến sĩ)Nghiên cứu xác định tỷ lệ nhiễm và chế tạo Kit chẩn đoán bệnh tiên mao trùng (Trypanosomiasis) ở đàn trâu tại tỉnh Tuyên Quang (LA tiến sĩ)Nghiên cứu xác định tỷ lệ nhiễm và chế tạo Kit chẩn đoán bệnh tiên mao trùng (Trypanosomiasis) ở đàn trâu tại tỉnh Tuyên Quang (LA tiến sĩ)

ĐẠI HỌC THÁI NGUYÊN TRƢỜNG ĐẠI HỌC NÔNG LÂM NCS PHẠM THỊ TRANG NGHIÊN CỨU XÁC ĐỊNH TỶ LỆ NHIỄM VÀ CHẾ TẠO KIT CHẨN ĐOÁN BỆNH TIÊN MAO TRÙNG (TRYPANOSOMIASIS) Ở ĐÀN TRÂU TẠI TỈNH TUYÊN QUANG LUẬN ÁN TIẾN SĨ THÚ Y THÁI NGUYÊN - NĂM 2017 ĐẠI HỌC THÁI NGUYÊN TRƢỜNG ĐẠI HỌC NÔNG LÂM NCS PHẠM THỊ TRANG NGHIÊN CỨU XÁC ĐỊNH TỶ LỆ NHIỄM VÀ CHẾ TẠO KIT CHẨN ĐOÁN BỆNH TIÊN MAO TRÙNG (TRYPANOSOMIASIS) Ở ĐÀN TRÂU TẠI TỈNH TUYÊN QUANG Ngành: Ký sinh trùng vi sinh vật học thú y Mã số: 9640104 LUẬN ÁN TIẾN SĨ THÚ Y Ngƣời hƣớng dẫn khoa học: GS TS Nguyễn Thị Kim Lan PGS TS Phạm Công Hoạt THÁI NGUYÊN - NĂM 2017 i LỜI CAM ĐOAN Tôi xin cam đoan cơng trình nghiên cứu chúng tơi Các kết nghiên cứu luận án hoàn toàn trung thực chưa công bố luận án khác Mọi thơng tin trích dẫn luận án rõ nguồn gốc Tôi xin cam đoan giúp đỡ cho việc thực đề tài nghiên cứu hoàn thành Luận án cảm ơn TÁC GIẢ Phạm Thị Trang ii LỜI CẢM ƠN Để hoàn thành luận án này, tơi xin bày tỏ lòng kính trọng biết ơn sâu sắc tới GS TS Nguyễn Thị Kim Lan PGS TS Phạm Công Hoạt - Nhà khoa học hướng dẫn, bảo tận tình suốt q trình nghiên cứu hồn thành Luận án Tôi xin trân trọng cảm ơn giúp đỡ tạo điều kiện to lớn sở vật chất, nhân lực, vật lực Ban Giám đốc, Ban Đào tạo - Đại học Thái Nguyên; Đảng ủy, Ban Giám hiệu, Phòng Đào tạo, Ban chủ nhiệm Khoa Chăn nuôi thú y, Bộ môn Bệnh động vật, Bộ mơn Dược lý & Vệ sinh an tồn thực phẩm Trường Đại học Nông Lâm Thái Nguyên, tập thể cán giảng dạy, học viên cao học Trần Nhật Thắng, Nguyễn Thị Thu Hiền, Hoàng Thị Hồng Hạnh sinh viên khóa 39, 40, 41, 42 Khoa Chăn nuôi Thú y - Trường Đại học Nông Lâm - Đại học Thái Nguyên Đặc biệt, xin trân trọng cảm ơn PGS TS Phạm Thị Tâm cán giảng viên, học viên sinh viên Khoa Công nghệ sinh học, Viện Đại học Mở - Hà Nội tận tình giúp đỡ tơi suốt thời gian triển khai đề tài Tôi xin trân trọng cảm ơn Chi cục Thú y tỉnh Tuyên Quang, Trạm Thú y cán bộ, nhân dân địa phương huyện Yên Sơn, Sơn Dương, Hàm Yên Chiêm Hóa - tỉnh Tuyên Quang tạo điều kiện giúp đỡ tơi q trình thực đề tài Tơi vơ biết ơn thành viên gia đình bạn bè bên tôi, giúp đỡ động viên tơi suốt q trình học tập, nghiên cứu hoàn thành Luận án Thái nguyên, ngày tháng năm 2017 NGHIÊN CỨU SINH Phạm Thị Trang iii MỤC LỤC LỜI CAM ĐOAN i MỤC LỤC iii DANH MỤC CÁC KÝ HIỆU VIẾT TẮT v DANH MỤC CÁC BẢNG vi DANH MỤC CÁC HÌNH viii MỞ ĐẦU .1 Tính cấp thiết đề tài .1 Mục tiêu đề tài 3 Ý nghĩa khoa học ý nghĩa thực tiễn đề tài Những đóng góp đề tài Chƣơng 1: TỔNG QUAN TÀI LIỆU .4 1.1 Cơ sở khoa học đề tài 1.1.1 Bệnh tiên mao trùng động vật 1.1.2 Kỹ thuật sinh học phân tử sản xuất kháng nguyên tiên mao trùng T evansi 12 1.2 Tình hình nghiên cứu ngồi nước .20 1.2.1 Tình hình nghiên cứu nước 20 1.2.2 Tình hình nghiên cứu nước 24 1.3 Điều kiện tự nhiên, điều kiện kinh tế - xã hội tỉnh Tuyên Quang 35 1.3.1 Điều kiện tự nhiên 35 1.3.2 Điều kiện kinh tế - xã hội 36 Chƣơng 2: VẬT LIỆU, NỘI DUNG VÀ PHƢƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU 38 2.1 Đối tượng, thời gian, địa điểm nghiên cứu .38 2.1.1 Đối tượng nghiên cứu 38 2.1.2 Thời gian địa điểm nghiên cứu 38 2.1.3 Vật liệu nghiên cứu 38 2.2 Nội dung nghiên cứu 43 2.2.1 Nghiên cứu xác định tỷ lệ nhiễm tiên mao trùng đàn trâu tỉnh Tuyên Quang áp dụng phác đồ điều trị 43 iv 2.2.2 Nghiên cứu chế tạo thử nghiệm Kit CATT chẩn đoán bệnh tiên mao trùng cho đàn trâu tỉnh Tuyên Quang 44 2.3 Phương pháp nghiên cứu 45 2.3.1 Phương pháp xác định tỷ lệ nhiễm tiên mao trùng đàn trâu tỉnh Tuyên Quang áp dụng phác đồ điều trị 45 2.3.2 Phương pháp nghiên cứu chế tạo Kit chẩn đoán bệnh 51 2.4 Phương pháp xử lý số liệu 64 Chƣơng 3: KẾT QUẢ NGHIÊN CỨU VÀ THẢO LUẬN 65 3.1 Tình hình nhiễm tiên mao trùng đàn trâu huyện thuộc tỉnh Tuyên Quang áp dụng phác đồ điều trị hiệu 65 3.1.1 Tỷ lệ nhiễm tiên mao trùng trâu huyện thuộc tỉnh Tuyên Quang 65 3.1.2 Tỷ lệ nhiễm tiên mao trùng theo lứa tuổi trâu tỉnh Tuyên Quang 67 3.1.3 Tỷ lệ nhiễm tiên mao trùng trâu theo tính biệt 71 3.1.4 Tỷ lệ nhiễm tiên mao trùng trâu theo mùa vụ 72 3.1.5 Kết xác định loài tiên mao trùng gây bệnh đàn trâu tỉnh Tuyên Quang 75 3.1.6 Áp dụng phác đồ điều trị bệnh tiên mao trùng cho đàn trâu tỉnh Tuyên Quang 80 3.2 Nghiên cứu chế tạo thử nghiệm Kit CATT chẩn đoán bệnh tiên mao trùng cho đàn trâu tỉnh Tuyên Quang 83 3.2.1 Kết tách dòng xác định trình tự gen mã hóa kháng nguyên bề mặt RoTAT 1.2 T evansi 83 3.2.2 Kết biểu gen mã hóa kháng nguyên bề mặt T evansi 95 3.2.3 Kết nghiên cứu chế tạo thử nghiệm Kit CATT chẩn đoán bệnh tiên mao trùng 108 KẾT LUẬN VÀ ĐỀ NGHỊ 131 Kết luận 131 Đề nghị .132 TÀI LIỆU THAM KHẢO .133 DANH MỤC CÁC CƠNG TRÌNH CĨ LIÊN QUAN ĐẾN ĐỀ TÀI 148 v DANH MỤC CÁC KÝ HIỆU VIẾT TẮT ADN: Acide Deoxyribo Nucleic bp: base pair CATT: Card Agglutination Test for Trypanosomiasis CBB: Coomassie Brilliant Blue DMSO: Di Methyl Sulfoxide EDTA: Ethylene Diamine Tetra Acetic acid IPTG: Isopropyl β-D-1-thiogalactopyranoside ISG: Invanant Surface Glycoprotein kb: kilobase kDa: kiloDalton LB: Luria Bertani OD: Optical Density PBS: Phosphat Buffered Saline PCA: Plate Count Agar PCR: Polymerase Chain Reaction PMSF: Phenyl Methyl Sulfonyl Fluoride PVDF: Poly Vinylidene Di Fluoride RT - PCR: Reverse Transcription Polymerase Chain Reaction SDS: Sodium Dodecyl Sulfat SDS - PAGE: Sodium Dodecyl Sulfate Poly Acrylamide Gel Electrophoresis spp.: Species pluralis TEA: Tris - axit acetic - EDTA TMB: Tetra Methyl Benzidine VAT: Variable Antigen Type VSG: Variant Surface Glycoprotein vi DANH MỤC CÁC BẢNG Bảng 2.1 Thành phần gel Tricine - SDS 41 Bảng 2.2 Các cặp mồi sử dụng nghiên cứu .42 Bảng 2.3 Thành phần chu trình nhiệt phản ứng PCR 48 Bảng 2.4 Thành phần phản ứng PCR khuếch đại đoạn gen mã hóa kháng nguyên RoTAT 1.2 .54 Bảng 2.5 Thành phần phản ứng Klewnov cắt đầu sản phẩm PCR 54 Bảng 2.6 Thành phần phản ứng lai tạo vector tái tổ hợp 55 Bảng 2.7 Thành phần phản ứng kiểm tra mang gen vector tái tổ hợp phản ứng PCR với cặp mồi F1.2 R1.2 57 Bảng 2.8 Thành phần phản ứng ghép nối gen ngoại lai vào vector biểu 58 Bảng 3.1 Tỷ lệ nhiễm tiên mao trùng trâu huyện thuộc tỉnh Tuyên Quang 65 Bảng 3.2 Tỷ lệ nhiễm tiên mao trùng theo tuổi trâu 68 Bảng 3.3 Tỷ lệ nhiễm tiên mao trùng trâu theo tính biệt .71 Bảng 3.4 Tỷ lệ nhiễm tiên mao trùng trâu theo mùa năm 72 Bảng 3.5 Danh sách chuỗi gen 18S Trypanosoma evansi sử dụng so sánh phân tích nghiên cứu 78 Bảng 3.6 Kết áp dụng phác đồ điều trị bệnh tiên mao trùng diện hẹp 80 Bảng 3.7 Thử nghiệm phác đồ điều trị bệnh tiên mao trùng diện rộng .82 Bảng 3.8 Bảng tổng hợp kết so sánh trình tự xác định với trình tự NCBI .92 Bảng 3.9 Kết xác định mật độ hạt latex nồng độ kháng nguyên để tạo phức hợp kháng nguyên - hạt latex 111 Bảng 3.10 Kết xác định nhiệt độ thời gian để tạo phức hợp kháng nguyên - hạt latex 112 Bảng 3.11 Ảnh hưởng chất nhuộm màu đến khả ngưng kết kháng nguyên - kháng thể 113 Bảng 3.12 Ảnh hưởng nhiệt độ chất ức chế phân giải protein đến kháng nguyên tái tổ hợp RoTAT 1.2 115 Bảng 3.13 Ảnh hưởng nhiệt độ chất ổn định protein đến kháng nguyên tái tổ hợp RoTAT 1.2 117 vii Bảng 3.14 Ảnh hưởng nhiệt độ chất diệt khuẩn đến kháng nguyên tái tổ hợp RoTAT 1.2 118 Bảng 3.15 Xác định độ pha loãng kháng thể, thời gian nhiệt độ phản ứng .121 Bảng 3.16 Kết phản ứng sử dụng Kit CATT phát kháng thể kháng 125 Bảng 3.17 Ảnh hưởng thời gian nhiệt độ bảo quản đến độ nhạy phản ứng sử dụng Kit CATT 127 Bảng 3.18 Ảnh hưởng thời gian nhiệt độ bảo quản đến độ đặc hiệu Kit CATT chế tạo .127 Bảng 3.19 So sánh kết chẩn đoán bệnh tiên mao trùng Kit CATT với kỹ thuật ELISA phương pháp tiêm truyền chuột 128 Bảng 3.20 So sánh hiệu sử dụng Kit CATT với kỹ thuật ELISA phương pháp tiêm truyền chuột .129 viii DANH MỤC CÁC HÌNH Hình 1.1 Cấu trúc tiên mao trùng T evansi Hình 1.2 Phương thức truyền lây tiên mao trùng T evansi .5 Hình 1.3 Sơ đồ vector pCR 2.1 17 Hình 2.1 Sơ đồ nghiên cứu tách dòng biểu gen mã hóa kháng nguyên bề mặt T evansi 51 Hình 2.2 Sơ đồ nghiên cứu chế tạo thử nghiệm Kit CATT từ kháng nguyên tái tổ hợp T evansi 52 Hình 3.1 Biểu đồ tỷ lệ nhiễm tiên mao trùng trâu huyện thuộc tỉnh Tuyên Quang 66 Hình 3.2 Đồ thị biến động nhiễm tiên mao trùng trâu theo lứa tuổi .68 Hình 3.3 Biểu đồ tỷ lệ nhiễm tiên mao trùng trâu theo tính biệt 71 Hình 3.4 Biểu đồ tỷ lệ nhiễm tiên mao trùng trâu theo mùa năm .73 Hình 3.5 Hình ảnh điện di sản phẩm PCR gen 18S mẫu Trypanosoma spp thạch agarose 1% 75 Hình 3.6 Hình ảnh chuyển nạp sản phẩm PCR mẫu Tev-CH-VN; TevHY-VN; Tev-SD-VN Tev-YS-VN vào tế bào E coli chủng DH5α-T 76 Hình 3.7 Điện di kiểm tra sản phẩm cắt ADN plasmid tái tổ hợp mang gen 18S enzyme EcoRI 77 Hình 3.8 Cây phả hệ dựa trình tự nucleotide chuỗi gen 18S rRNA mẫu Tev-CH-VN; Tev-HY-VN; Tev-SD-VN Tev-YS-VN nghiên cứu với mẫu Trypanosoma evansi đăng ký Ngân hàng gen 79 Hình 3.9 Kết điện di ADN tổng số 83 Hình 3.10 Kết điện di sản phẩm PCR mẫu ADN tổng số 84 Hình 3.11 Kết tinh sản phẩm PCR 85 Hình 3.12 Sơ đồ thiết kế vector tái tổ hợp pJET1.2 - RoTAT 1.2 87 134 10 Bùi Quý Huy (2006), Phòng chống bệnh ký sinh trùng từ động vật lây sang người, Nxb Nông nghiệp, Hà Nội, tr 29 - 32 11 Nguyễn Thị Kim Lan, Nguyễn Thị Lê, Phạm Sỹ Lăng, Nguyễn Văn Quang (2008), Ký sinh trùng học thú y (Giáo trình dùng cho bậc cao học), Nxb Nơng nghiệp, Hà Nội, tr 82 - 86 12 Nguyễn Thị Kim Lan (2011), Những bệnh ký sinh trùng phổ biến gia cầm, lợn loài nhai lại Việt Nam, Nxb Nông nghiệp, Hà Nội, tr 315 - 328 13 Nguyễn Thị Kim Lan (2012), Ký sinh trùng bệnh ký sinh trùng thú y (Giáo trình dung cho bậc đại học), Nxb Nông nghiệp, Hà Nội, tr 246 - 251 14 Nguyễn Thị Kim Lan, Đỗ Thị Vân Giang, Nguyễn Văn Quang, Nguyễn Thị Ngân, Lê Minh, Phan Thị Hồng Phúc, Phạm Diệu Thùy (2013), “Thử hiệu lực số thuốc trị Trypanosoma evansi qua thử nghiệm in vitro in vivo”, Tạp chí Khoa học kỹ thuật thú y, tập XX, số 6, tr 69 - 77 15 Nguyễn Thị Kim Lan, Nguyễn Văn Quang, Đỗ Thị Vân Giang, Nguyễn Thị Ngân, Lê Minh, Phan Thị Hồng Phúc, Phạm Diệu Thùy, Trần Nhật Thắng (2014), “Tình hình nhiễm Trypanosoma evansi số loài gia súc Việt Nam”, Tạp chí Khoa học cơng nghệ (Đại học Thái Nguyên), tập 123, số 9, tr 95 - 100 16 Nguyễn Thị Kim Lan, Phạm Công Hoạt, Đỗ Thị Vân Giang, Nguyễn Thị Ngân, Nguyễn Thanh Sơn, Đỗ Thị Lan Phương (2014), “Nghiên cứu khả lây nhiễm chéo chủng Trypanosoma evansi phân lập từ trâu, bò sang ngựa”, Tạp chí Khoa học cơng nghệ (Đại học Thái Nguyên), tập 126, số 12, tr 21 - 26 17 Nguyễn Thị Kim Lan, Phạm Thị Tâm, Nguyễn Văn Quang, Nguyễn Thị Ngân, Lê Minh, Phan Thị Hồng Phúc, Phạm Thị Trang, Trần Nhật Thắng (2014), “Xác định loài tiên mao trùng vật môi giới truyền bệnh tiên mao trùng đàn trâu tỉnh Tuyên Quang”, Tạp chí Khoa học kỹ thuật Thú y, 13(6): 60 - 67 18 Nguyễn Thị Kim Lan, Nguyễn Thị Ngân, Nguyễn Văn Quang, Trần Nhật Thắng, Phạm Diệu Thùy, Phạm Thị Tâm (2015), “Thử nghiệm Kit TUAF ELISA TUAF - CATT chế tạo nước chẩn đoán bệnh tiên mao trùng 135 cho gia súc”, Tạp chí Nơng nghiệp phát triển nông thôn, số tháng 11/2015, tr 168 - 173 19 Nguyễn Thị Kim Lan, Nguyễn Văn Quang, Phạm Diệu Thùy, Nguyễn Thị Ngân (2016), Ký sinh trùng học thú y (Tài liệu đào tạo trình độ tiến sĩ), Nxb Nông nghiệp, Hà Nội, tr 69 20 Phạm Sỹ Lăng (1982), Một số đặc điểm dịch tễ học bệnh tiên mao trùng trâu, bò Trypanosoma evansi tỉnh phía Bắc Việt Nam, Luận án Phó tiến sỹ khoa học Thú y, tr 31 - 45 21 Phạm Sỹ Lăng, Tô Long Thành (2006), Bệnh đơn bào ký sinh vật nuôi, Nxb Nông nghiệp, Hà Nội 22 Phạm Sỹ Lăng, Hoàng Văn Năm, Nguyễn Hữu Nam, Nguyễn Bá Hiên, Nguyễn Văn Diên (2008), Một số bệnh quan trọng gây hại cho trâu bò, Nxb Nơng nghiệp, Hà Nội 23 Phan Địch Lân, Nguyễn Thị Kim Lan, Nguyễn Văn Quang (2002), Bệnh ký sinh trùng đàn dê Việt Nam, Nxb Nông nghiệp, Hà Nội, tr 105 - 110 24 Phan Địch Lân (2004), Bệnh ngã nước trâu bò, Nxb Nơng nghiệp, Hà Nội 25 Hà Viết Lượng (1998), Đơn bào ký sinh, đặc điểm dịch tễ biện pháp phòng trị bệnh Trypanosomiasis bò thuộc Nam Trung Bộ, Luận văn Thạc sỹ khoa học Nông nghiệp, Hà Nội 26 Lê Ngọc Mỹ (1994), “Kết bước đầu thiết lập phản ứng ELISA để chẩn đoán bệnh tiên mao trùng”, Tạp chí Khoa học Kỹ thuật Thú y, tập II, số 1, tr 111 - 115 27 Lê Ngọc Mỹ (2002), “Phát kháng thể tiên mao trùng phương pháp ELISA”, Tập huấn kỹ thuật chẩn đoán khống chế bệnh ký sinh trùng, Viện Thú y Quốc gia 28 Vương Thị Lan Phương (2004), Nghiên cứu kháng nguyên bề mặt Trypanosoma evansi phân lập từ trâu, bò phía Bắc Việt Nam tinh chế kháng nguyên dùng phản ứng miễn dịch huỳnh quang gián tiếp, Luận án Tiến sĩ Nông nghiệp 29 Phạm Thị Tâm, Bùi Thị Hải Hòa, Nguyễn Thị Kim Lan, Đỗ Thị Vân Giang (2013), “Nghiên cứu thiết lập phản ứng ELISA chẩn đoán bệnh tiên mao 136 trùng cho trâu, bò Việt Nam”, Tạp chí Nơng nghiệp phát triển nông thôn, kỳ 2, tháng 8, năm 2013, tr 41 - 45 30 Khuất Hữu Thanh (2003), Cơ sở di truyền phân tử kỹ thuật gen, Nxb khoa học kỹ thuật, Hà Nội 31 Khuất Hữu Thanh (2006), Kỹ thuật gen - Nguyên lý ứng dụng, Nxb khoa học kỹ thuật, Hà Nội 32 Nguyễn Văn Thiện (2008), Thống kê sinh vật học ứng dụng chăn nuôi, Nxb Nông nghiệp, Hà Nội II Tài liệu tiếng Anh 33 Abou El Naga T., Barghash S., Mohammed A., Ashour A., Salama M S (2012), “Evaluation of (Rotat - PCR) assays for identifying Egyptian Trypanosoma evansi ADN”, Act Parasitol Glo., (1): - 34 Alan Gunn, Sarah J P (2012), Parasitology: An intergrated approach, 1th Edition, Wiley - Blackwell Editorial, UK, 70 - 81 35 Alves F M., Olifiers N., Bianchi Rde C., Duarte A C., Cotias P M., D‟Andrea P S., Gompper M E., Mourao Gde M., Herrera H M., Jansen A M (2011), “Modulating variables of Trypanosoma cruzi and Trypanosoma evansi transmission in free-ranging Coati (Nasua nasua) from the Brazilian Pantanal region”, Vec Bor Zoo Dis., 11 (7): 835 - 841 36 Baldacchino F., Desquesnes M., Mihok S., Foil L D., Duvallet G., Jittapalapong S (2014), “Tabanids: Neglected subjects of research, but important vectors of disease agents”, Inf Gent Evol., 1348 (14): 122 - 131 37 Baldissera M D., Souza C F., Grando T H., Da Silva A S., Monteiro S G (2016), “Involvement of oxidative stress, cholinergic and adenosinergic systems on renal damage caused by Trypanosoma evansi infection: Relationship with lipid peroxidation”, Microb Pathog., 99: 191 - 195 38 Baldissera M D., Grando T H., De Souza C F., Cossetin L F., Da Silva A P., Giongo J L., Monteiro S G (2016), “A nanotechnology based new approach for Trypanosoma evansi chemotherapy: In vitro and trypanocidal effect of (-)-α-bisabolol”, Exp Parasitol., 170: 156 - 160 vivo 137 39 Baldissera M D., Souza C F., Grando T H., Moreira K L., Schafer A S., Cossetin L F., Da Silva A P., Da Veiga M L., Da Rocha M I., Stefani L M., Da Silva A S., Monteiro S G (2017), “Nerolidol-loaded nanospheres prevent behavioral impairment via ameliorating Na+, K+-ATPase and AChE activities as well as reducing oxidative stress in the brain of Trypanosoma evansi-infected mice”, Naunyn Schmiedebergs Arch Pharmacol., 390 (2): 139 - 148 40 Baldissera M D., Souza C F., Grando T H., Dolci G S., Cossetin L F., Moreira K L., Da Veiga M L., Da Rocha M I., Boligon A A., De Campos M M., Stefani L M., Da Silva A S., Monteiro S G (2017), “Nerolidol-loaded nanospheres prevent hepatic oxidative stress of mice infected by Trypanosoma evansi”, Parasitolog., 144 (2): 148 - 157 41 Barros A T M., Foil L D (2007), “The influence of distance on movement of tabanids (Diptera: Tabanidae) between horses”, Vet Parasitol., 144: 380 - 384 42 Berlin D., Nasereddin A., Azmi K., Ereqat S., Abdeen Z., Eyal O., Baneth G (2012), “Prevalence of Trypanosoma evansi in horses in Israel evaluated by serology and reverse dot blot”, Res Vet Sci., 93 (3): 25 - 30 43 Birhanu H., Roge S., Simon T., Baelmans R., Gebrehiwot T., Goddeeris B M., Buscher P (2015), “Surra Sero K-SeT, a new immunochromatographic test for serodiagnosis of Trypanosoma evansi infection in domestic animals”, Vet Parasitol., 211 (3 - 4): 153 - 157 44 Campigotto G., Volpato A., Galli G M., Glombowsky P., Baldissera M D., Miletti L C., Jaguezeski A M., Stefani L M., Da Silva A S (2017), “Vertical transmission of Trypanosoma evansi in experimentally infected rats”, Exp Parasitol., 174: 42 - 44 45 Da Silva A S., Garcia Perez H A., Costa M M (2011), “Horses naturally infected by Trypanosoma vivax in southern Brazil”, Parasitol Res., 108 (1): 23 - 30 46 Da Silva A S., Paim F C., Santos R C (2012), “Nitric oxide level, protein oxidation and antioxidant enzymes in rats infected by Trypanosoma evansi”, Exp Parasitol., 132 (2): 166 - 170 138 47 Defontis M., Richartz J., Engelmann N., Bauer C., Schwierk V M., Büscher P., Moritz A (2012), “Canine Trypanosoma evansi infection introduced into Germany”, Vet Clin Pathol., 41 (3): 369 - 374 48 Desquesnes M (2004), “Livestock trypanosomoses and their vectors in Latin America”, CIRAD - EMVT publication, OIE, Paris, France, 174 49 Desquesnes M., Biteau Coroller F., Bouyer J., Dia M.L., Foil L (2009), “Development of a mathematical model for mechanical transmission of trypanosomes and other pathogens of cattle transmitted by tabanids”, Inter Jour Parasitol., 39 (3): 333 - 346 50 Desquesnes M., Kamyingkird K.,Vergne T., Sarataphan N., Pranee R., Jittapalapong S (2011), “An evaluation of melarsomine hydrochloride efficacy for parasitological cure in experimental infection of dairy cattle with Trypanosoma evansi in Thailand”, Parasitol Jour., 38 (9): 1134 - 1142 51 Eberhardt A T., Monje L D., Zurvera D A., Beldomenico P M (2014), “Detection of Trypanosoma evansi infection in wild capybaras from Argentina using smear microscopy and real-time PCR assays”, Vet Parasitol., 202 (34): 226 - 233 52 Elhaig M M., Youssef A I., El-Gayar A K (2013), “Molecular and parasitological detection of Trypanosoma evansi in Camels in Ismailia, Egypt”, Vet Parasitol., 198 (1 - 2): 214 - 218 53 Elshafie E I., SaniR A., Hassan L., Sharma R., Bashir A., Abubakar I A (2012), “Seroprevalence and risk factors of Trypanosoma evansi infection in horses in Peninsular Malaysia”, Res.Vet.Sci., 94 (2): 285 - 289 54 Elshafie E I., Sani R A., Hassan L., Sharma R., Bashir A., Abubakar I A (2013), “Active infection and morphometric study of Trypanosoma evansi among horses in Peninsula Malaysia”, Trop Biomed., 30 (3): 444 - 450 55 Fereig R M., Mohamed S G., Mahmoud H Y., AbouLaila M R., Guswanto A., Nguyen T T., Ahmed Mohamed A E., Inoue N., Igarashi I., Nishikawa Y (2017), “Seroprevalence of Babesia bovis, B bigemina, Trypanosoma evansi, and Anaplasma marginale antibodies in cattle in southern Egypt”, Ticks Tick Borne Dis., (1): 125 - 131 56 Fernandez D., Gonzalez Baradat B., Eleizalde M., Gonzalez Marcano E., Perrone T., Mendoza M (2009), „„Trypanosoma evansi: a comparison of 139 PCR and parasitological diagnostic tests in experimentally infected mice”, Exp Parasitol., 121 (1): - 57 Gaur R S., Sudan V., Jaiswal A K., Singh A., Shanker D (2017), “Classicomolecular targeting of oligopeptidase B, cysteine protease and variable surface glycoprotein (VSG) gens of Trypanosoma evansi”, J Parasit Dis., 41 (1): 51 - 54 58 Goossens B., Mbwambo H., Msangi A., Geysen D., Verysen (2006), “Trypanosomiosis prevalence in cattle on Mafia Island (Tanzania)”, Veterinary Parasitology, Volume 139, Issues - 3, 30 June 2006, 74 - 83 59 Gressler L T., Oliveira C B., Coradini K., Dalla Rosa L., Grando T H., Baldissera M D., Zimmermann C E., Da Silva A S., Almeida T C., Hermes C L., Wolkmer P., Silva C B., Moreira K L., Beck R C., Moresco R N., Da Veiga M L., Stefani L M., Monteiro S.G (2015), “Trypanocidal activity of free and nanoencapsulated curcumin on Trypanosoma evansi”, Parasitology., 142 (3): 439 - 448 60 Gutierrez C., Corbera J A., Bayou K., Van Gool F (2008), “Use of cymelarsan in goats chronically infected with Trypanosoma evansi”, Ann N Y Acad Sci., 1149: 331 - 333 61 Hall M J., Wall R (2004), “Biting flies: their role in the mechanical transmission of trypanosomes to livestock and methods for their control”, CABI publishing, 583 - 594 62 Haridy F M., El Metwally M T., Khalil H H., Morsy T A (2011), “Trypanosoma evansi in dromedary camel: with a case report of zoonosis in greater Cairo, Egypt”, J Egypt Soc Parasitol., 211 - 217 63 Hasan M U., Muhammad G., Gutierrez C., Iqbal Z., Shakoor A., Jabbar A (2006), “Prevalence of Trypanosoma evansi infection in equines and camels in the Punjab region, Pakistan”, Ann N Y Acad Sci., 1081: 322 - 324 64 Hilali M., Abdel Gawad A., Nassar A., Abdel Wahab A., Magnus E., Buscher P (2004), “Evaluation of the card agglutination test (CATT/T evansi) for detection of Trypanosoma evansi infection in water buffaloes (Bubalus bubalis) in Egypt”, Vet Parasitol., 121 (1 - 2): 45 - 51 140 65 Holland W G., Thanh N G., Do T T., Sangmaneedet S., Goddeeris B M., Vercruysse J (2005), “Evaluation of diagnostic tests for Trypanosoma evansi in experimentally infected pigs and subsequent use in field surveys in North Vietnam and Thailand”, Trop Anim Health Prod., 37 (6): 457 - 467 66 Kocher A., Desquesnes M., Kamyingkird K., Yangtara S., Leboucher E., Rodtian P., Dargantes A., Jittapalapong S (2015), “Evaluation of an Indirect-ELISA Test for Trypanosoma evansi infection (Surra) in buffaloes and its application to a serological survey in Thailand”, Biomed Res Int., 36: 10 - 37 67 Krishnamoorthy P., Sengupta P P., Das S., Ligi M., Shome B R., Rahman H (2016), “Cytokine gen expression and pathology in mice experimentally infected with different isolates of Trypanosoma evansi”, Exp Parasitol., 170: 168 - 176 68 Kumar A., Dhuley J N., Naik S R (1991), “Evaluation of microbial metabolites for trypanocidal activity: significance of biochemical and biological parameters in the mouse model of trypanosomiasis”, Jpn J Med Sci Biol., - 16 69 Kundu K., Tewari A K., Kurup S P., Baidya S., Rao J R., Joshi P (2013), “Sero-surveillance for surra in cattle using native surface glycoprotein antigen from Trypanosoma evansi” Vet Parasitol.,196 (3 - 4): 258 - 264 70 Laha R., Sasmal N K (2008), “Characterization of immunogenic proteins of Trypanosoma evansi isolated from three different Indian hosts using hyperimmune sera and immune sera”, Res Vet Sci., 85 (3): 534 - 539 71 Ligi M., Sengupta P P., Rudramurthy G R., Rahman H (2016), “Flagellar antigen based CI-ELISA for sero-surveillance of surra”, Vet Parasitol., 219: 17 - 23 72 Manuja A., Kumar P., Kumar R., Kumar B., Singha H., Sharma R K., Yadav S.C (2014), “CpG-ODN class C-mediated immunostimulation and its potential against Trypanosoma evansi in equines”, Int Immunopharmacol, 22 (2): 366 - 370 73 Manuja A., Kumar B., Chopra M., Bajaj A., Kumar R., Dilbaghi N., Kumar S., Singh S., Riyesh T., Yadav S C (2016), “Cytotoxicity and genotoxicity 141 of a trypanocidal drug quinapyramine sulfate loaded-sodium alginate nanoparticles in mammalian cells”, Int J Biol Macromol., 88: 146 - 155 74 Mcinnes L M., Dargantes A P., Ryan U M., Reid S A (2012), “Microsatellite typing and population structuring of Trypanosoma evansi in Mindanao, Philippines”, Vet Parasitol., (1 - 2): 129 - 139 75 Milocco C., Kamyingkird K., Desquesnes M., Jittapalapong S., Herbreteau V., Chaval Y., Douangboupha B., Morand S (2012), “Molecular Demonstration of Trypanosoma evansi and Trypanosoma lewisi DNA in Wild Rodents from Cambodia, Lao PDR and Thailand", Transbound Emerg Dis., 60(1): 17 - 26 76 Misra K K., Roy S., Choudhury A (2016), “Biology of Trypanosoma (Trypanozoon) evansi in experimental heterologous mammalian hosts”, J Parasit Dis., 40 (3): 1047 - 1061 77 Ngaira J M., Bett B., Karanja S M., Njagi E N (2003), “Evaluation of antigen and antibody rapid detection tests for Trypanosoma evansi infection in camels in Kenya”, Vet Parasitol., 114 (2): 131 - 141 78 Ngaira J M., Njagi E N M., Ngeranwa J J N., Olembo N K (2004), “PCR amplification of RoTat 1.2 VSG gen in Trypanosoma evansi isolates in Kenya”, Vet Parasitol., 120 (1 - 2): 23 - 33 79 Nguyen Q D., Nguyen T T., Pham Q P., Le N M., Nguyen G T., Inoue N., (2013), „„Seroprevalence of Trypanosoma evansi infection in water buffaloes from the mountainous region of North Vietnam and effectiveness of trypanocidal drug treatment‟‟, J Vet Med Sci., 75 (9): 1267 - 1269 80 Nguyen T T., Zhou M., Ruttayaporn N., Nguyen Q D., Nguyen V K., Goto Y., Suzuki Y., Kawazu S., Inoue N (2014), “Diagnostic value of the recombinant tandem repeat antigen TeGM6-4r for surra in water buffaloes”, Vet Parasitol., 201 (1 - 2): 18 - 23 81 Nguyen T T , Ruttayaporn N., Goto Y., Kawazu S., Sakurai T., Inoue N (2015), “A TeGM6-4r antigen-based immunochromatographic test (ICT) for animal trypanosomosis”, Parasitol Res., 114 (11): 4319 - 4325 142 82 Njiru Z K., Constantine C C., Ndung‟u J M., Robertson I., Okaye S., Thompson R C., Reid S M (2004), “Detection of Trypanosoma evansi in camels using PCR and CATT/T evansi tests in Kenya”, Vet Parasitol., 124: 187 - 199 83 Ogundele F A., Okubanjo O O., Ajanusi O J., Fadason S T (2016), “Semen characteristics and reaction time of Yankasa rams experimentally infected with Trypanosoma evansi infection”, Theriogenology, 86 (3): 667 - 673 84 OIE (2012), “Trypansoma evansi infection (Sura)”, OIE, Chapper 2.1.17 85 Oliveira C B., Rigo L A., Rosa L D., Gressler L T., Zimmermann C E., Ourique A F., Da Silva A S., Miletti L C., Beck R C., Monteiro S G (2014), “Liposomes produced by reverse phase evaporation: in vitro and in vivo efficacy of diminazene aceturate against Trypanosoma evansi”, Parasitology, 141 (6): 761- 769 86 Paim F C., Duarte M M M F., Costa M M (2011), “Cytokines in rats experimentally infected with Trypanosoma evansi”, Exp Parasitol., 128 (4): 365 - 370 87 Pandey V., Nigam R., Jaiswal A K., Sudan V., Singh R K., Yadav P K (2015), “Haemato-biochemical and oxidative status of buffaloes naturally infected with Trypanosoma evansi”, Vet Parasitol., 212 (3 - 4): 118 - 122 88 Pascucci I., Di Provvido A., Camma C (2013), “Diagnosis of dourine in outbreaks in Italy”, Vet Parasitol., 193 (1 - 3): 30 - 38 89 Pays E., Vanhollebeke B., Vanhamme L., Paturiaux-Hanocq F., Nolan D P., Pérez-Morga D (2006), “The trypanolytic factor of human serum”, Nat Rev Micro., (6): 477 - 486 90 Penketh P G., Shyam K., Divo A A., Patton C L., Sartorelli A C (2012), “Methylating agents as trypanocides”, J Med Chem., 33 (2): 730 - 732 91 Rathore N S., Manuja A., Manuja B K., Choudhary S (2016), “Chemotherapeutic Approaches Against Trypanosoma evansi: Retrospective Analysis, Current Status and Future Outlook”, Curr Top Med Chem., 16 (20): 2316 - 2327 143 92 Reid S A., Copeman D B (2003), “The development and validation of an antibody - ELISA to detect Trypanosoma evansi infection in cattle in Australia and Papua New Guinea”, Prev Vet Med., 61: 195 - 208 93 Ritter C S., Baldissera M D., Grando T H., Souza C F., Sagrillo M R., Da Silva A P., Moresco R N., Guarda N S., Da Silva A S., Stefani L M., Monteiro S G (2017), “Achyrocline satureioides essential oil-loaded in nanocapsules reduces cytotoxic damage in liver of rats infected by Trypanosoma evansi”, Microb Pathog., 103: 149 - 154 94 Roge S., Baelmans R., Claes F., Lejon V., Guisez Y., Jacquet D., Buscher P (2014), “Development of a latex agglutination test with recombinant variant surface glycoprotein for serodiagnosis of surra”, Vet Parasitol., 205 (3 - 4): 460 - 465 95 Rudramurthy G R., Sengupta P P., Ligi M., Rahman H (2017), “An inhibition enzyme immuno assay exploring recombinant invariant surface glycoprotein and monoclonal antibodies for surveillance of surra in animals”, Biologicals, 1045 - 1056 96 Sazmand A., Eigner J., Duscher G B., Mirzaei G., Fuehrer H M., Hekmatimoghaddam P., Joachim A (2016), S H., Harl “Molecular Identification of Hemoprotozoan Parasites in Camels (Camelus dromedarius) of Iran”, Iran J Parasitol., 11 (4): 568 - 573 97 Shaapan R M (2016), “The common zoonotic protozoal diseases causing abortion”, J Parasit Dis., 40 (4): 1116 - 1129 98 Sharma A., Das Singla L., Tuli A., Kaur P., Bal M S (2015), “Detection and assessment of risk factors associated with natural concurrent infection of Trypanosoma evansi and Anaplasma marginale in dairy animals by duplex PCR in eastern Punjab”, Trop Anim Health Prod., 47 (1): 251 - 257 99 Sharma P., Juyal P D., Singla L D., Chachra D., Pawar H (2012), “Comparative evaluation of real time PCR assay with conventional parasitological techniques for diagnosis of Trypanosoma evansi in cattle and buffaloes”, Vet Parasitol., 190 (3 - 4): 375 - 382 144 100 Sengupta P P., Rudramurthy G R., Ligi M., Roy M., Balamurugan V., Krishnamoorthy P., Nagalingam M., Singh L., Rahman H (2014), “Serodiagnosis of surra exploiting recombinant VSG antigen based ELISA for surveillance”, Vet Parasitol., 205 (3 - 4): 490 - 498 101 Simukoko H., Marcotty T., Phiri I., Geysen D., Vercruysse J., Van den Bossche P (2007), “The comparative role of cattle, goat and pigs in the epidemiology of livestock Trypanosomiasis on the plateau of eastern Zambia”, Veterinary Parasitology, Volume 147, Issues - 4, 20 June 2007, 231 - 238 102 Singh N K., Pathak K M., Kumar R (2004), “A comparative evaluation of parasitological, serological and ADN amplification methods for diagnosis of natural Trypanosoma evansi infection in camels”, Vet Parasitol., 126 (4): 365 - 373 103 Singh N K., Singh H., Jyoti Haque M., Rath S S (2012), “Prevalence of parasitic infections in cattle of Ludhiana district, Punjab”, J Parasit Dis., 36(2): 256 - 259 104 Singh S K., Singh V K., Yadav B K., Nakade U P., Kumari P., Srivastava M K., Sharma A., Choudhary S., Swain D., Garg S K (2016), “Potential association of reduced cholinesterase activity with Trypanosoma evansi pathogensis in buffaloes”, Vet Parasitol., 225: 29 - 32 105 Sinshaw A., Abebe G., Desquennes M., Yoni W (2006), “Biting flies and Trypanosoma vivax infection in three highland districts bordering lake Tana, Ethiopia”, Veterinary Parasitology, Volume 142, Issues - 2, 30 November 2006, 35 - 46 106 Sivajothi S., Rayulu V C., Bhaskar Reddy B V., Malakondaiah P., Sreenivasulu D., Sudhakara Reddy B (2016), “Polypeptide profiles of South Indian isolate of Trypanosoma evansi”, J Parasit Dis., 40 (3): 652 - 655 107 Sivajothi S., Rayulu V C., Malakondaiah P., Sreenivasulu D (2016), “Diagnosis of Trypanosoma evansi in bovines by indirect ELISA”, J Parasit Dis., 40 (1): 141 - 144 108 Souza C F., Baldissera M D., Cossetin L F., Dalla Lana D F., Monteiro S G (2017), “Achyrocline satureioides essential oil loaded in nanocapsules 145 ameliorate the antioxidant/oxidant status in heart of rats infected with Trypanosoma evansi”, Microb Pathog., 105: 30 - 36 109 Sudan V., Jaiswal A K., Parashar R., Shanker D (2015), “A duplex PCRbased assay for simultaneous detection of Trypanosoma evansi and Theileria annulata infections in water buffaloes”, Trop Anim Health Prod., 47 (5): 915 - 919 110 Sumbria D., Singla L D., Sharma A., Moudgil A D., Bal M S (2014), “Equine trypanosomosis in central and western Punjab: Prevalence, haemato-biochemical response and associated risk factors”, Acta Trop., 706 (14): 200 - 209 111 Sutcliffe O B., Skellern G G., Araya F., Cannavan A., Sasanya J J., Dungu B., Van Gool F., Munstermann S., Mattioli R C (2014), “Animal trypanosomosis: making quality control of trypanocidal drugs possible”, Rev Sci Tech., 33 (3): 813 - 830 112 Takeet M I., Fagbemi B O., Donato M D., Yakubu A., Rodulfo H E., Peters S O., Wheto M., Imumorin I G (2012), “Molecular survey of pathogenic trypanosomes in naturally infected Nigerian cattle”, Res Vet Sci., 32 (9): 139 - 142 113 Tamarit A., Gutierrez C., Arroyo R., Jimenez V., Zagala G., Bosch I., Sirvent J., Alberola J., Alonso I., Caballero C (2010), “Trypanosoma evansi infection in mainland Spain”, Vet Parasitol., 167 (1): 74 - 76 114 Tchamdja E., Kulo A E., Akoda K., Teko Agbo A., Assoumy A M., Niang E M., Batawui K., Adomefa K., Bankole A A., Kombiagou K., Hoppenheit A., Clausen P H., Mattioli R C., Peter R., Napier G B., De Deken R., Marcotty T., Van Den Abbeele J., Delespaux V (2016), “Drug quality analysis through high performance liquid chromatography of isometamidium chloride hydrochloride and diminazene diaceturate purchased from official and unofficial sources in Northern Togo”, Prev Vet Med., 126: 151 - 158 115 Tchamdja E., Kulo A E., Vitouley H S., Batawui K., Bankole A A., Adomefa K., Cecchi G., Hoppenheit A., Clausen P H., De Deken R., Van Den Abbeele J., Marcotty T., Delespaux V (2017), “Cattle breeding, trypanosomosis prevalence and drug resistance in Northern Togo”, Vet Parasitol., 236: 86 - 92 146 116 Tehseen S., Jahan N., Qamar M F., Desquesnes M., Shahzad M I., Deborggraeve S., Buscher P (2015), “Parasitological, serological and molecular survey of Trypanosoma evansi infection in dromedary camels from Cholistan Desert, Pakistan”, Vet Parasitol., 168: 415 - 416 117 Thekisoe O M., Inoue N., Kuboki N., Tuntasuvan D., Bunnoy W., Borisutsuwan S., Igarashi I., Sugimoto C (2005), “Evaluation of loopmediated isothermal amplification (LAMP), PCR and parasitological tests for detection of Trypanosoma evansi in experimentally infected pigs”, Vet Parasitol., 130 (3 - 4): 327 - 330 118 Thuy N T., Goto Y., Lun Z R., Kawazu S., Inoue N (2012), “Tandem repeat protein as potential diagnostic antigen for Trypanosoma evansi infection”, Parasitol Res., 110 (2): 733 - 739 119 Tonin A A., Da Silva A S., Costa M M., Otto M A., Thome G R., Tavares K S., Miletti L C., Leal M R., Lopes S T., Mazzanti C M., Monteiro S G., De La Rue M L (2011), “Diminazene aceturate associated with sodium selenite and vitamin E in the treatment of Trypanosoma evansi infection in rats”, Exp Parasitol., 128 (3): 243 - 249 120 Tuntasuvan D., Jarabrum W., Viseshakul N., Mohkaew K., Borisutsuwan S., Theeraphan A., Kongkanjana N (2003), “Chemotherapy of surra in horses and mules with diminazene aceturate”, Vet Parasitol., 110 (3 - 4): 227 - 233 121 Urakawa T., Phelix A O Majiwa, Bruno Goddeeris, Philip Magda Radwanska (2001), “Variable Surface Glycoprotein RoTat 1.2 PCR as a specific diagnostic tool for the detection of Trypanosoma evansi infections”, Southeast Asian J Trop Med Pub Health, 25: 266 - 271 122 Van Vinh Chau N., Buu Chau L., Desquesnes M., Herder S., Phu Huong Lan N., Campbell J I., Van Cuong N., Yimming B., Chalermwong P., Jittapalapong S., Ramon Franco J., Tri Tue N., Rabaa M A., Carrique Mas J., Pham Thi Thanh T., Tran Vu Thieu N., Berto A., Thi Hoa N., Van Minh Hoang N., Canh Tu N., Khac Chuyen N., Wills B., Tinh Hien T., Thwaites G E., Yacoub S., Baker S (2016), “A Clinical and Epidemiological Investigation of the First Reported Human Infection With 147 the Zoonotic Parasite Trypanosoma evansi in Southeast Asia”, Clin Infect Dis., 62 (8): 1002 - 1008 123 Ventura R M., Takeda G F., Silva R A., Nunes V L., Buck G A., Teixeira M M (2002), “Gentic relatedness among Trypanosoma evansi stocks by random amplification of polymorphic ADN and evaluation of a synapomorphic ADN fragment for species-specific diagnosis”, Int J Parasitol., 32: 53 - 63 124 Verdillo J C., Lazaro J V., Abes N S., Mingala C N (2012), “Comparative virulence of three Trypanosoma evansi isolates from water buffaloes in the Philippines”, Exp Parasitol., 130 (2): 130 - 134 125 Villareal M V., Mingala C N., Rivera W L (2013), “Molecular characterization of Trypanosoma evansi isolates from water buffaloes (Bubalus bubalis) in the Philippines”, Acta Parasitol., 58 (1): - 12 126 Wada Y A., Oniye S J., Rekwot P I., Okubanjo O O (2016), “Testicular pathology, gonadal and epididymal sperm reserves of Yankasa rams infected with experimental Trypanosoma brucei brucei and Trypanosoma evansi”, Vet World., (7): 759 - 765 127 Yadav S C., Kumar R., Manuja A., Goyal L., Gupta A K (2014), “Early detection of Trypanosoma evansi infection and monitoring of antibody levels by ELISA following treatment”, J Parasit Dis., 38 (1): 124 - 127 128 Youssif F., Mohammed O., Hassan T (2008), “Efficacy and toxicity of cymelarsan in Nubian goats infected with Trypanosoma evansi”, J Cell Anim Bio., (7): 140 - 149 148 DANH MỤC CÁC CƠNG TRÌNH CĨ LIÊN QUAN ĐẾN ĐỀ TÀI Nguyễn Thị Kim Lan, Nguyễn Văn Quang, Nguyễn Thị Ngân, Lê Minh, Phan Thị Hồng Phúc, Phạm Diệu Thùy, Phạm Thị Trang, Trần Nhật Thắng (2014), “Tình hình nhiễm Tiên mao trùng đàn trâu tỉnh Tuyên Quang xác định phác đồ điều trị hiệu quả”, Tạp chí Nơng nghiệp Phát triển Nơng thơn, số tháng 6, tr 91 - 95 Nguyễn Thị Thu Hiền, Phạm Thị Tâm, Trương Quốc Phong, Nguyễn Thị Kim Lan, Phạm Thị Trang (2014), “Nghiên cứu biểu gien mã hóa kháng nguyên bề mặt tiên mao trùng gây bệnh trâu, bò Việt Nam”, Tạp chí Nông nghiệp Phát triển nông thôn, chuyên đề Khoa học công nghệ Nông lâm nghiệp miền núi, số 24, tr 90 - 95 Nguyễn Mạnh Hùng, Phạm Thị Tâm, Phạm Thị Trang, Nguyễn Thị Kim Lan (2015), “Nghiên cứu chế tạo sinh phẩm chẩn đoán nhanh bệnh tiên mao trùng Trypanosoma evansi gây cho trâu, bò Việt Nam”, Tạp chí Khoa học kỹ thuật Thú y, Tập XXII, số 7, tr 48 - 59 Phạm Thị Trang, Nguyễn Thị Kim Lan, Phạm Công Hoạt (2017), “Thử nghiệm Kit CATT để chẩn đoán bệnh tiên mao trùng cho trâu tỉnh Tuyên Quang”, Tạp chí Khoa học Công nghệ (Đại học Thái Nguyên), tập 168, số 08, tr 125 - 130 ... trị bệnh tiên mao trùng hiệu cho đàn trâu tỉnh Tuyên Quang, thực đề tài: "Nghiên cứu xác định tỷ lệ nhiễm chế tạo Kit chẩn đoán bệnh tiên mao trùng (Trypanosomiasis) đàn trâu tỉnh Tuyên Quang" ... thuộc tỉnh Tuyên Quang 65 3.1.2 Tỷ lệ nhiễm tiên mao trùng theo lứa tuổi trâu tỉnh Tuyên Quang 67 3.1.3 Tỷ lệ nhiễm tiên mao trùng trâu theo tính biệt 71 3.1.4 Tỷ lệ nhiễm tiên mao trùng. .. NÔNG LÂM NCS PHẠM THỊ TRANG NGHIÊN CỨU XÁC ĐỊNH TỶ LỆ NHIỄM VÀ CHẾ TẠO KIT CHẨN ĐOÁN BỆNH TIÊN MAO TRÙNG (TRYPANOSOMIASIS) Ở ĐÀN TRÂU TẠI TỈNH TUYÊN QUANG Ngành: Ký sinh trùng vi sinh vật học thú

Ngày đăng: 06/12/2017, 18:42

Từ khóa liên quan

Tài liệu cùng người dùng

Tài liệu liên quan