tính toán, thiết kế quá trình lọc màng để cô đặc protease kiềm từ bacillus licheniformis từ dịch nổi sau ly tâm loại sinh khối với năng suất 200 tấn năm

BỘ CÔNG THƢƠNG TRƢỜNG ĐẠI HỌC CÔNG NGHIỆP THỰC PHẨM THÀNH PHỐ HỒ CHÍ MINH KHOA CÔNG NGHỆ SINH HỌC VÀ KỸ THUẬT MÔI TRƢỜNG  MÔN HỌC KỸ THUẬT CÁC QUÁ TRÌNH SINH HỌC TÍNH TOÁN, THIẾT KẾ QUÁ TRÌNH LỌC MÀNG ĐỂ CÔ ĐẶC PROTEASE KIỀM TỪ BACILLUS LICHENIFORMIS TỪ DỊCH NỔI SAU LY TÂM LOẠI SINH KHỐI VỚI NĂNG SUẤT 200 TẤN/NĂM GVHD: NGUYỄN THỊ QUỲNH MAI Sinh viên thực hiện: Nguyễn Thị Kim Tiền Nguyễn Thị Thu Trang Võ Nữ Quỳnh Thƣơng T’Sằn Hồng Vỹ Nguyễn Minh Thái 2008140318 2008139005 2008139006 2008140396 2008140262 TP.HCM, tháng năm 2017 Kỹ Thuật Quá Trình Sinh Học MỤC LỤC GIỚI THIỆU I VẬT LIỆU VÀ PHƢƠNG PHÁP II 1.1 Chủng vi khuẩn 1.2 Nguồn phân lập chủng Bacillus licheniformis 1.3 Tiêm chủng nuôi cấy gián đoạn 1.4 Kỹ thuật phục hồi protease kiềm từ nƣớc lên men 1.5 Thiết kế tr nh ọ m ng để đ prot s iềm ủ i us i h ni ormis từ ị h sau ly tâm: III KẾT QUẢ TÌNH TOÁN 12 IV KẾT LUẬN 15 V TÀI LIỆU THAM KHẢO 16 Kỹ Thuật Quá Trình Sinh Học I GIỚI THIỆU Các trình tách màng phổ biến lĩnh vực công nghệ sinh học, chúng dễ dàng vận hành nhân rộng so với trình phân tách khác sắc ký điện di Trong số trình tách màng khác nhau, siêu lọc trình chức theo gradient áp suất mà chủ yếu sử dụng để tách tinh chế sản phẩm bao gồm enzym protein khác để phục hồi sản phẩm vi sinh vật (tế bào bào tử) diện Một môi trường nuôi cấy Do lượng enzyme thấp dịch lọc tế bào nên việc loại bỏ nước mục tiêu Lọc siêu lọc kỹ thuật hiệu sử dụng chủ yếu để phục hồi enzym và, nói chung, giải pháp thay ưa thích cho bốc Quá trình tách ly áp lực không tốn cho kết đáng khích lệ với việc giảm hoạt động enzym Quá trình cung cấp tập trung lọc Tuy nhiên, việc áp dụng quy trình màng nói chung có số vấn đề cụ thể tắc nghẽn màng kết tủa tạo thành sản phẩm cuối / lắng đọng hạt rắn màng Nếu dòng chất lỏng chảy phía màng lớn chất tan qua màng, dung môi tích tụ bề mặt màng, tích tụ tạo thành lớp nồng độ gọi phân cực nồng độ Lọc luồng dòng chảy lựa chọn mạnh mẽ thuận lợi so với lọc dòng bình thường lọc dòng tiếp tuyến làm giảm đáng kể bẩn màng Sự tắc nghẽn bẩn thường giảm bớt khắc phục cách xử lý chất tẩy rửa, proteases, axit kiềm Trong thực tế, trình siêu lọc hiệu sử dụng cho việc thu hồi hợp chất hữu từ số phương tiện truyền thông tổng hợp Trong số enzyme công nghiệp, protease chiếm phần lớn doanh số bán hàng toàn giới, chiếm 1,3 tỷ US $ vào năm 1998 (Godfrey T 2001 ET Consulting, thay mặt cho Biocatalysts Ltd http://www.biocatalysts.com), với nhu cầu ngày tăng ứng dụng ngành da, mỹ phẩm, tẩy rửa, pha chế thực phẩm Chỉ có nhóm nhỏ enzyme proteolytic có khả thủy phân keratin-scleroprotein (Scleroproteins protein dạng sợi ) không hòa tan động vật có xương sống, tìm thấy lông vũ, tóc móng Vi khuẩn, actinomycetes (xạ khuẩn có khả tiết Kỹ Thuật Quá Trình Sinh Học protease), nấm men có khả sản xuất enzyme proteolytic chuyên biệt có tên keratinase Keratinase sử dụng thành công để xử lý tinh chế sợi len (Cegarra cộng sự., 1992) để cải biến lông vật liệu khác nguồn thức ăn chăn nuôi (Onifade et al., 1998 ; Pal et al., 1996; Raju et al., 1996) thành phần hoạt chất loại kem (Greff D 1996 Các chế phẩm thẩm mỹ có chứa chất chống oxy hoá Ceramide protease Frande Demande FR 2729079 A1 trang 12) dầu gội đầu (Tanaka M, Tomizawa N 1986 Dầu gội đầu có chứa enzyme keratindrapering JP 62164611 A2 21 Jul 1987 Showa trang) II VẬT LIỆU VÀ PHƢƠNG PHÁP 2.1 Chủng vi khuẩn Bacillus licheniformis strain ATCC 21424 sử dụng nghiên cứu Một môi trường nuôi cấy hoạt tính trì cách cấy môi trường thạch dinh dưỡng (thành phần: 0,3% chiết xuất từ thịt bò, 0,5% peptone, 2% agar) ủ 35°C 48 Các miếng bảo quản ° C để sử dụng sau 2.2 Nguồn phân lập chủng Bacillus licheniformis Nước thải chế biến thịt công ty cổ phần kỹ nghệ Vissan, đường Nơ Trang Long, quận Bình Thạnh, Tp HCM Kỹ Thuật Quá Trình Sinh Học Nước thải lấy bể tiếp nhận nước thải sản xuất nhà máy Nước thải lưu giữ khoảng ngày trước đưa vào trạm xử lý thải môi trường Nguyên liệu nghiên cứu - Môi trường phân lập vi khuẩn (môi trường NA): peptone 1g/100ml, cao thịt 0,3g/100ml, NaCl 0,5g/100ml agar 20g/1000ml - Mẫu nước thải sở chế biến thủy sản gia nhiệt 80oC khoảng 20 phút, pha loãng cấy trang môi trường NA, ủ 37 ± oC 24 giờ, cấy ria khuẩn lạc thu đến  Xác định hoạt tính protease phương pháp đục lỗ thạch môi trường NA Các chủng có khả phân giải protein mạnh cho đường kính vòng phân giải lớn xung quanh giếng thạch  Khảo sát ảnh hưởng thời gian nuôi cấy đến hoạt tính protease: lấy 1ml dịch chiết enzyme thô (sau ly tâm) từ dịch nuôi cấy sau khoảng thời gian khác (24 giờ, 48 giờ, 72 giờ, 96 giờ) 37 ± 1°C để xác định hoạt tính phương pháp Anson cải tiến  Khảo sát ảnh hưởng pH ban đầu đến hoạt tính protease: lấy 1ml dịch chiết enzyme thô sau khoảng thời gian nuôi cấy phù hợp xác định 37 ± 1°C môi trường NB trước điều chỉnh pH giá trị 3, 5, 7, NaOH 1M HCl 1M để xác định hoạt tính phương pháp Anson cải tiến  Khảo sát ảnh hưởng nhiệt độ đến hoạt tính protease: tiến hành nuôi cấy chủng vi sinh vật với khoảng thời gian pH tối ưu xác định điều kiện nhiệt độ 30 ± 1°C, 37 ± 1°C, 40 ± 1°C, 50 ± 1°C, 60 ± 1°C thiết bị điều nhiệt Sau đó, ly trích thu enzyme xác định hoạt tính phương pháp Anson cải tiến 2.3 Tiêm chủng nuôi cấy gián đoạn Chuẩn bị môi trường nuôi cấy: Kỹ Thuật Quá Trình Sinh Học Một môi trường tăng trưởng phức tạp tối ưu hóa sử dụng cho thí nghiệm lên men (nồng độ cuối g/L-1) (Raninger, 2001): Để tránh phản ứng Maillard (phản ứng đường aa hợp phần tham gia phản ứng P sản phẩm phân giải chúng với glucid), dd A chứa: 14.52 peptone từ casein (Merck KGaA, Darmstadt, Germany), 2.41 (NH4)2SO4, 3,49 KH2PO4, 3,25 Na2HPO4 × 2H20 phân vô trùng riêng khỏi dung dịch B: chứa 10 glucoza, 0,67 sắt citrat, 4,52 MgSO4 × 7H2O, 0,11 MnSO4 x H2O 26,9 dung dịch nguyên tố vi lượng SL-6 (DSMZ 2001 Deutsche Sammlung von Mikroorganismen und Zellkulturen http: // www.dsmz.de/media/med027.htm) Cả hai dung dịch hấp chín 30 phút 121°C, làm nguội trộn lại bình lắc dòng chảy tầng Môi trường đưa vào buồng lên men sử dụng kỹ thuật kết nối vô trùng Nuôi cấy gián đoạn: Thiết bị nuôi cấy tiêm với tế bào tươi đem đo mật độ quang học OD đạt 0.1 (600 nm so với nước) ủ 50°C 20 máy lắc quay 120 vòng /phút (ném 2,7 cm) Đối với thí nghiệm lên men kiểm soát, trình nuôi cấy theo mẻ thực MBR-Mini Bioreactor , Giovanolla Bioreactors Các môi trường trì pH 6,2 ± 0,1 cách thêm NaOH (15%) H3PO4 (15%) Nhiệt độ trì 50°C ± 0,2 tất trình lên men theo mẻ nngoại trừ thí nghiệm thay đổi nhiệt độ Sự thông khí đặt mức 0,5 vvm tốc độ khuấy điều chỉnh từ 400 đến 900 vòng / phút để trì nồng độ oxy không hạn chế môi trường (> 10% giá trị bão hòa) Oxy tinh khiết sử dụng cần thiết trình tăng trưởng pha log Để làm giảm bọt polypropylene glycol (PPG 2000) thêm vào pha log Các số pH, nhiệt độ, tốc độ khuấy, nồng độ oxy kiểm soát ghi lại suốt trình lên men 2.4 Kỹ thuật phục hồi protease kiềm từ nƣớc lên men  Ly tâm: Nước dùng lên men ly tâm mức 9000xg 30 phút theo thủ tục Brar et al Các lớp phủ sau ly tâm nước lên men thu thập lưu trữ ° C Kỹ Thuật Quá Trình Sinh Học Phương pháp lọc 2.5 Thiết kế tr nh ọ m ng để đ prot s iềm ủ i us i h ni ormis từ ị h s u y t m Sơ đồ trình lọc 2.5.1 Cá ƣu ý ho tr nh: Một số yếu tố ảnh hưởng đến việc thiết kế quy trình Trong số hàng đầu tài sản nguyên liệu ban đầu (thức ăn) sản phẩm, tổng thời gian cần thiết cho quy trình Hơn phần ba tất enzyme proteolytic biết protease serine Protease từ B licheniformis ATCC 21424 enzyme serine kiềm có khả chịu nhiệt alkaline, ổn định pH kiềm nhiệt độ cao  Yêu cầu thời gian: Các yêu cầu thời gian để hoàn thành trình lọc siêu lọc khác tùy theo yêu cầu đặc điểm hệ thống yếu tố định cho tính kinh tế trình tính ổn định sản phẩm Như dẫn chung, tổng thời gian cần thiết cho phạm vi hoạt động điển hình thường từ đến giờ, bao gồm chuẩn bị hệ thống dọn dẹp • Chuẩn bị lọc hệ thống xử lý (lên đến giờ) Kỹ Thuật Quá Trình Sinh Học • Tiến hành trình lọc (phụ thuộc vào ứng dụng) • Dọn dẹp xả nước cho hệ thống lọc để bảo quản (tối đa giờ) 2.5.2 Lựa chọn lọc ( lọc siêu lọc ) Màng siêu lọc có kích thước lỗ rỗng khoảng từ 20 đến 100 nm thường đặc trưng cắt giảm trọng lượng phân tử danh định (NMWC), trọng lượng phân tử protein hình cầu lớn qua màng Giá trị NMWC dao động từ đến 100 kD (kiloDalton) Các lọc sử dụng để tập trung phân đoạn dòng protein, nồng độ virus, khử muối trao đổi đệm Mục tiêu hầu hết quy trình siêu lọc giữ đại phân tử hòa tan protein kích thước định, cho phép phân tử nhỏ muối, axit amin, mono- disaccharides qua màng tế bào  Lỗ lọc Tất lọc có khuynh hướng bị dính (bị chặn vật liệu hạt tích tụ lỗ lọc), đặc biệt ứng dụng làm lysate liên quan đến vật liệu hạt Fouling rút ngắn thời gian sử dụng lọc trước phải làm sạch, hạn chế công suất chế biến tối đa cho lần chạy Việc lựa chọn kích thước lỗ lọc quan trọng để giảm thiểu sói mòn lọc Nói chung, lọc với lỗ nhỏ cho thấy xu hướng bẩn vật liệu dạng hạt xuyên qua ngăn chặn lỗ chân lông Kỹ Thuật Quá Trình Sinh Học  Kí h thƣớc màng: Các màng có trọng lượng phân tử (MWCO) 10 kDa 100 kDa sử dụng nghiên cứu (Millipore, vết thương xoắn ốc TFF-1) Màng tạo thành từ xenlulo tái sinh có dạng xoắn ốc TFF-1 PLCC với diện tích bề mặt 0,1 m2 Supernatant thông qua thông qua màng 100 kDa để loại bỏ tất tạp chất bùn khác thấm cuối thu thập nguồn enzym để thực nghiên cứu tối ưu cách sử dụng màng 10 kDa Enzyme cô đặc sử dụng cho mục đích đặc tính  Đ c tính màng lọc: Bảng 2.5.3.Chuẩn bị lọc Kỹ Thuật Quá Trình Sinh Học Chuẩn bị lọc cho trình bao gồm rửa để loại bỏ giải pháp lưu trữ điều chế lọc với đệm trình Đối với số quy trình, lọc cần khử trùng depyrogen hóa trước sử dụng Các bước chuẩn bị: Rửa rửa lọc Hoà tan dung dịch từ 0,1 đến 0,5 M NaOH (pH 13) 30 đến 60 phút 30°C đến 50°C Drain hệ thống kỹ lưỡng Rửa lọc nước 30 phút  Nguyên lý hoạt động: Thiết bị sử dụng cho trình lọc siêu lọc có dạng lọc dòng chảy tiếp tuyến (PREP / SCALE-TFF, Cartridges Millipore) với tuần hoàn Chất lỏng tiếp tuyến bơm dọc theo bề mặt màng Áp lực áp dụng để ép phần chất lỏng thông qua màng để bên permeate Các supernatant từ máy ly tâm đưa vào thiết bị siêu lọc máy bơm (Casy tải, Master Flex, Millipore) Các supernatant đưa đến nhiệt độ phòng (25°C) để tiến hành nghiên cứu siêu lọc Sau lần hoạt động siêu lọc, chất lỏng màng thoát hoàn toàn Có tính đến loại môi trường sử dụng nghiên cứu (môi trường sinh học), nên sử dụng dung dịch kiềm (0,1 N NaOH) Dung dịch kiềm truyền qua màng màng lọc Sau đó, màng lấy đảo ngược để tạo điều kiện rửa hoàn toàn Độ bền màng xác định "trọng lượng thấm thấu bình thường (NWP) hiệu suất màng phụ thuộc vào NWP  Áp suất xuyên màng (TMP = 90kPa ) Áp lực theo dõi luồng thức ăn, dòng retentate permeate suối Hai đo áp lực khác thường sử dụng, ΔP áp suất xuyên màng (TMP)  ΔP = áp suất nạp - áp suất retentate 10 Kỹ Thuật Quá Trình Sinh Học Áp suất nạp + áp suất retentate  TMP = - Áp suất thẩm thấu TMP chức áp lực retentate thức ăn điều chỉnh áp kế để có giá trị khác TMP Các giá trị TMP khác kiểm tra từ 70 kPa đến 110 kPa để có giá trị TMP tối ưu Tuy nhiên thực tế hoạt tính protease phát tất thấm Vì vậy, 83% hoạt động protease hồi phục với TMP với 90 kPa Vì vậy, rõ ràng số protease bị tiền gửi màng tế bào ống TMP cao thấp 90 kPa làm giảm giá trị hoạt động protease, protein hoà tan, tổng chất rắn chất rắn lơ lửng Điều TMP thấp giá trị tối ưu, áp suất thức ăn không đủ để vượt qua dung dịch qua màng cách hiệu thành phần xảy ống bề mặt màng Khi TMP cao, áp suất cao tạo bọt màng siêu lọc giữ lại ống dẫn cuối thành phần bị màng ống xảy dạng bọt chúng giữ lại thấm retentate Dòng chất tan màng chắn dẫn đến tắc nghẽn số lỗ chân lông, tạo thêm bề mặt để hấp phụ bốc mùi Khi điều kiện nhẹ nhàng yêu cầu để phục hồi protein nguyên vẹn, khó để loại bỏ / phục hồi protein Các chế khác tạo tổn thất thông qua màng siêu lọc, số thành phần mẫu gần với MWCO màng Nguyên nhân gây protein enzyme thông qua màng tế bào phân bố kích thước lỗ rỗng, lực cắt đóng góp cách tạo mảnh nhỏ Theo nguyên lý siêu lọc, dòng chảy tối thiểu thấm dẫn đến tổn thất tối thiểu không chất tan (protease bối cảnh tại) thấm cho nồng độ cao retentate Lưu lượng tối thiểu permeate thu với giá trị tối ưu TMP 11 Kỹ Thuật Quá Trình Sinh Học  Tố độ dòng chảy Tốc độ dòng chảy theo dõi nhiều điểm Tổng tốc độ dòng chảy khỏi lọc mặt retentate permeate với tốc độ dòng chảy thức ăn vào lọc Tốc độ dòng retentate gọi tốc độ dòng chảy chéo hay tốc độ tuần hoàn Tốc độ dòng chảy thẩm thấu (tốc độ dòng chảy chất lỏng qua màng lọc) gọi thông lượng Thông thường thường thể đơn vị lít m2 màng / (LMH) Giá trị mở rộng, có nghĩa giữ không đổi trình tăng lên III KẾT QUẢ TÌNH TOÁN  Tính thể tích cần lọc  Năng suất nhà máy sản xuất Protease 200 tấn/năm - Một năm 355 ngày, trừ ngày lễ (15 ngày) thời gian bảo trì máy móc thiết bị (30 ngày) Số ngày làm việc công ty năm: T làm việc = 355 – (15 + 30) = 320 (ngày) - Thời gian mẻ là: ngày Thời gian nghỉ mẻ 0.5 ngày Vậy tổng thời gian cho mẻ tmẻ = 3.5 ngày - Vậy số mẻ năm là: 320/(3.5) = 91 mẻ - Năng suất nhà máy: 200/91=1.1 (tấn/mẻ) = 2200 (kg/mẻ) Thống kê hao hụt trình sản xuất Tỉ lệ tổn Quá trình Nguồn thất Hisayori Shigechi cs “Direct Production of Quá trình lên men 5% Ethanol from Raw Corn Starch via Fermentation by Use of a Novel Surface-Engineered Yeast Strain Codisplaying Glucoamylase and –Amylase” Applied 12 Kỹ Thuật Quá Trình Sinh Học and environmental microbiology, Aug 2004, p 5037–5040 M.R Bilad cs, “Harvesting microalgal biomass using a magnetically induced membrane vibration Quá trình lọc bỏ 7% sinh khối (MMV) system: Filtration performance and energy consumption”, Bioresource Technology 138 (2013), p 336 T.P.King “Separation of protein by Ammonium Quá trình kết Sulfate 3% tủa Gradient Solubilization” From the Rockefeller University, New York, New York 10021, Receiced September 27, 1971 Page 368 Rajiv Datar “Centrifugal separation in the recovery Quá trình ly 5% of intracellular protein from E coli” Industrial Biotechnology, Alfa-Laval AB, Box 500, S-147 00 tâm Tumba Sweden Murray Moo-Young, Kenneth F Gregory, 1986, Quá trình sấy 2% “Microbial Biomass Proteins”, Elsevier Applied Science, USA Page 49  Sản xuất Enzyme với suất trình lên men là: 2200 * = 2757 (tấn/năm)  1L canh trường cho 6,5g enzyme (Mona K Gouda 2006) Để đạt sản lượng enzyme tạo trình lên men cần thiết phải lên men vớ i thể tích:  V lên men = 757 000 : 6,5= 424154 L = 424,154 m3  Sinh tế bào có nồng độ 15,03 g/l (Eman Zakaria Gomaa, 2014) => lượng sinh khối tế bào sau lên men mẻ: 13 Kỹ Thuật Quá Trình Sinh Học m sinh khối = 424,154 * 15,03 = 6375 (kg)  Ta áp dụng công thức : - m lọc sau loại bỏ sk = m canh trường – m sinh khối = 424,154 - 64,375 = 417,78 (tấn) - Với hiệu suất lọc 92% , lượng sản phẩm lọc thu được: m= 417,78 * = 384,35 ( tấn)  Giả sử khối lượng riêng môi trường nuôi cấy vào thiết bị lọc D = 1062 kg/m3 (Peter Frode Pind cộng sự, 2015) V cần lọc =384,35 / 1060 = 362,6 m3 Tính thể tính sau lọc:  Bể lên men tích lên men V = 362,6 m3 nên khối lượng tổng lên men tính sau: mlên men = D ×V = 1062 × 362,6 = 385081(kg)  Lượng canh trường thu sau loại bỏ sinh khối theo lý thuyết: mcanh trường = mlên men – msinh khối = 385081 –6375 = 378706(kg)  Tỉ lệ hao hụt trình lọc 7% (hiệu suất lọc 93%) giữ canh trường bã lọc, nên lượng canh trường thu sau lọc là: m = m canh trường × 0,93 = 352196(kg)  Do khối lượng sinh khối canh trường 17.6 kg/m3 với khối lượng riêng canh trường nuôi cấy D = 1062 kg/m3 nên giả sử tính khối lượng riêng canh trường sau loại bỏ sinh khối D’ = 1062 – 15,03 = 046,97(kg/m3)  Thể tích canh trường thu sau lọc theo thực tế (với tỉ lệ hao hụt 7%): V sau lọc = (352196)/( 046,97) = 336,4 (m3) Theo tham khảo loại sản phẩm sinh học có dùng lọc tổng trở lọc độ nhớt thường quy định không vượt 15,8: Rtotal * = 15,8 Xem trở lực lọc: RM = Rc = * Cs * (V/A) = (1) 14 Kỹ Thuật Quá Trình Sinh Học Áp dụng phương trình để tính thời gian lọc: = Kp * V(t) + B (Vì RM = => B = 0) (Với V(t) thể tích vật liệu qua màng lọc) Suy ra: = Kp * V(t) (Kp = * Ta có công thức lớp bã lọc: Rc = * Cs/2A2 * (2) * Cs * (V/A) Thế (1) vào (2) ta có: t= * (N/m2) (Với  3,5 * 24 = *  A = 10,6 (m2)  Số thiết bị lọc = = = 46 thiết bị (Với Ai = 0,23 m2 từ bảng 1) Điều tra phục hồi kiềm protease từ B licheniformis ATCC 21.424 lên men nước thải bùn thực cách ly tâm siêu lọc Tối ưu hóa thông số siêu lọc (áp suất màng tế bào (TMP) dòng chảy thức ăn) thực với màng 10 kDa TMP 90 kPa lưu lượng thức ăn 714 L / h / enzyme thu hồi cao (83%) từ bề mặt ly tâm  Jv =714 L/h/m2 Ta suy lưu lượng dòng sản phẩm: Qp = Jv * A = 714 * 10,6 = 7568,4 (L/h) IV KẾT LUẬN Đối với trình lọc màng để cô đặc Protease kiềm từ Bacillus licheniformis từ dịch sau ly tâm loại bỏ sinh khối với suất 200 tấn/năm ta lựa chọn:  Thiết bị siêu lọc UF với số thiết bị 46 tb  Thể tích cần lọc: 362,6 m3  Diện tích màng lọc: A = 10,6 (m2)  Vận tốc dòng dịch lọc qua màng: Jv = 714 (L/h/m2)  Lưu lượng dòng sau lọc: Qp = 7568,4 (L/h) 15 Kỹ Thuật Quá Trình Sinh Học V TÀI LIỆU THAM KHẢO https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Recovery+of+Bacillus+licheniformi s+Alkaline+Protease+from+Supernatant+of+Fermented+Wastewater+Sludge+Usi ng+Ultrafiltration+and+Its+Characterization GS.TSKH Nguyễn Bin “Các trình thiết bị công nghệ hóa chất thực phẩm” NXB Khoa học Kỹ thuật Hà Nội, 2004 PGS.TSKH Lê Văn Hoàng “Các trình thiết bị công nghệ sinh học công nghiệp” NXB Khoa học Kỹ thuật 2007 The Cross Flow Filtration Method Handbook 16 ... tâm  Jv =714 L/h/m2 Ta suy lưu lượng dòng sản phẩm: Qp = Jv * A = 714 * 10,6 = 7568,4 (L/h) IV KẾT LUẬN Đối với trình lọc màng để cô đặc Protease kiềm từ Bacillus licheniformis từ dịch sau ly. .. ly tâm loại bỏ sinh khối với suất 200 tấn/ năm ta lựa chọn:  Thiết bị siêu lọc UF với số thiết bị 46 tb  Thể tích cần lọc: 362,6 m3  Diện tích màng lọc: A = 10,6 (m2)  Vận tốc dòng dịch lọc. .. Enzyme cô đặc sử dụng cho mục đích đặc tính  Đ c tính màng lọc: Bảng 2.5.3.Chuẩn bị lọc Kỹ Thuật Quá Trình Sinh Học Chuẩn bị lọc cho trình bao gồm rửa để loại bỏ giải pháp lưu trữ điều chế lọc với