Một số vấn đề của sinh học phân tử part 4 doc

Để xác định vị trí +1, tức là nucleotide đầu tiên được phiên mã sang phân tử ARNm, chúng ta có thể áp dụng kỹ thuật "S1 nuclease mapping" xác định vị trí +1 bởi S1 nuclease.. Trong thí n

Hình 2.17:

Cấu trúc và kiểm soát dịch mã trên operon mã cho protein S10 ở E.coli Operon này

gồm có 11 gen mã cho các protein ribosome Protein L4 của operon làm nhiệm vụ

kiểm soát dịch mã trên phân tử ARNm polycistronic Khi tế bào có ARNr tự do, 11

protein được tổng hợp đồng bộ đảm bảo cho quá trình hình thành ribosome Tuy

nhiên, khi thiếu vắng ARNr, L4 tương tác với đầu 5' của ARNm, ngăn cản không cho

quá trình dịch mã xảy ra (theo Lodish và cs., 2000)

Hoạt động của một số gen mã cho các enzym liên quan đến một chu trình chuyển hóa sinh tổng hợp trong tế bào thường được kiểm soát bởi sản phẩm cuối cùng Một khi sản phẩm cuối cùng được cung cấp đầy đủ thì chúng thường quay lại ức chế hoạt động của các gen mã cho các protein hoạt động trước trong chu trình đó Đây chính là sự kìm hãm phản hồi (feedback inhibition) Nhờ đó, sản phẩm cuối cùng luôn được duy trì ở nồng độ tối ưu mà tế bào yêu cầu Trong cơ chế kiểm soát này, sản phẩm cuối cùng thường có khả năng tương tác với các sản phẩm hoạt động trước nó Như vậy, sản phẩm trung gian (thường là các enzym)

có chứa đồng thời hai vị trí liên kết với cơ chất và với sản phẩm cuối Tương tác với sản phẩm cuối khiến cho enzym bị biến đổi cấu hình, do đó ái lực liên kết của enzym với cơ chất bị giảm Như vậy mặc dù sản phẩm trung gian được tổng hợp, nhưng chúng không thực hiện được chức năng của mình

Bên cạnh ức chế phản hồi, hoạt động của một số gen mã cho enzym được kiểm soát theo con đường hoạt hoá phản hồi (feedback activation) Cấu trúc của các enzym thực hiện chức năng này thường có các vị trí tương tác với vài cơ chất hoặc một số phân tử trọng lượng nhỏ Ngoài ra, một enzym còn có thể tham gia cả hai cơ chế điều khiển ức chế và hoạt hoá phản hồi Ví dụ, enzym glutamine synthetase xúc tác cho phản ứng cuối cùng trong quá trình sinh tổng hợp acid amin glutamine Enzym này có cấu trúc đa phần (multimer) liên quan đến cả hai cơ chế kiểm soát sau dịch mã của 16 sản phẩm trung gian trong quá trình tổng hợp acid amin glutamine ở cả tế bào nhân sơ và tế bào nhân chuẩn Glutamine synthetase thực hiện chức năng điều khiển thông qua việc biến đổi cấu hình không gian của các sản phẩm khiến chúng không có hoạt tính

Trong tế bào prokaryot, quá trình phiên mã, dịch mã và phân hủy ARNm thường bắt đầu ngay khi ARNm chưa được tổng hợp xong Như vậy, tại bất kỳ thời điểm nào, mỗi phân tử ARNm có thể chịu sự kiểm soát của cả 3 quá trình trên Cả 3 quá trình có thể xảy ra một cách đồng thời trên một phân tử ARNm Đặc biệt tốc độ di chuyển của ribosome cũng như mức độ phân hủy xảy ra ở những vùng đặc biệt của ARNm là khác nhau ngay trên một phân tử ARNm polycistronic Ngoài ra, phân tử ARNtm (transfer-messenger RNA) tương tác với

ARNm có khả năng đánh dấu các protein bị tổng hợp sai bằng việc gắn đoạn peptide ngắn vào các phân tử này để sau đó chúng bị phân hủy

2.4 Biến đổi phân tử ARNm trong tế bào eukaryot

Trong tế bào eukaryot, quá trình phiên mã phụ thuộc vào từng loại promoter cũng như từng loại enzym ARN polymerase Các ARNr được tổng hợp nhờ ARN polymerase I, ARNm được tổng hợp bởi ARN polymerase II và các ARNt và 5S ARNr được phiên mã nhờ ARN polymerase III Promoter cho các ARN polymerase I và II thường nằm trước vùng chứa mã di truyền trong khi một số promoter cho ARN polymerase III nằm phía sau điểm bắt đầu phiên

mã (tức là promoter của ARN polymerase III nằm ngay trong vùng chứa mã di truyền) Cùng với các ARN polymerase, phản ứng tổng hợp ARN trong tế bào eukaryot chỉ thực hiện được khi có sự tham gia của nhiều protein khác Chúng tạo thuận lợi để enzym khởi động phiên mã tại promoter của các gen eukaryot Đây là điều khác biệt giữa quá trình phiên mã ở tế bào prokaryot và eukaryot Promoter ở prokaryot thường kìm hãm bởi protein ức chế, vì thế chúng được xem là promoter mạnh Ngược lại, promoter ở eukaryot thường đòi hỏi phải có các protein hoạt hoá; chúng được xem là promoter yếu

Hình 2.18:

Kỹ thuật xác định vị trí +1 sử dụng S1 nuclease Đoạn ADN chứa vị trí +1 được lai với phân tử ARNm Phân tử lai dạng kép này được xử lý với S1 nuclease để phân hủy phần nucleotide không lai Sau đó, phân tử lai được điện

di cùng với mẫu xác định trình tự của đoạn ADN ban đầu

Trên Hình 2.12 cho thấy nucleotide A chính là vị trí đầu tiên được phiên mã sang phân tử ARNm

Để xác định vị trí +1, tức là nucleotide đầu tiên được phiên mã sang phân tử ARNm, chúng ta có thể áp dụng kỹ thuật "S1 nuclease mapping" (xác định vị trí +1 bởi S1 nuclease) Đầu tiên, đoạn ADN (sàng lọc từ genome) có chứa phần 5' của gen được lai với ARNm của chính gen đó Tiếp theo, phần nucleotide ADN hoặc ARNm không lai với nhau mà ở dạng sợi đơn sẽ bị phân hủy bởi S1 nuclease Chỉ có phân tử lai dạng kép được điện di trên gel acrylamide cùng với phản ứng xác định trình tự của chính đoạn ADN ban đầu Nhờ đó, vị trí nucleotide đầu tiên +1 được xác định chính xác (Hình 2.18)

Quá trình tổng hợp ARNm eukaryot xảy ra nhờ ARN polymerase II Tuy nhiên enzym này không tự bắt đầu phản ứng mà đòi hỏi sự phối hợp của nhiều yếu tố phiên mã Nhờ tương tác với ARN polymerase II hoặc với ADN ở promoter hay ở các vị trí khác ngoài promoter,

các yếu tố này giúp enzym nhận biết dễ dàng các vị trí bảo toàn trên promoter để bắt đầu quá trình phiên mã

Cho đến nay vị trí dừng chính xác qúa trình tổng hợp ARNm trong tế bào eukaryot vẫn chưa được xác định Tuy nhiên với hầu hết các gen mã cho protein, phản ứng được dừng lại sau khi ARN polymerase II vượt qua vị trí đặc biệt AATAAA (gọi là vị trí polyA) khoảng 0,5 đến 2 kb Trong thí nghiệm invitro, việc loại bỏ vị trí polyA hoặc gây các đột biến tại đó đều khiến cho phân tử ARNm được tổng hợp rất dài do enzym không xác định được vị trí dừng

Cơ chế kiểm soát dừng tổng hợp ARNm khi ARN polymerase II đi qua vị trí polyA vẫn chưa sáng tỏ Những kết quả thực nghiệm bước đầu cho thấy đây là vị trí liên kết của phức gồm protein CPSF (Cleavage and Polyadenylation Specificity Factor) và protein CstF (Cleavage Stimulation Factor) Phần COOH của tiểu đơn vị lớn nhất của ARN polymerase II cần thiết cho việc thêm đuôi polyA Do đó, việc kết thúc phiên mã và thêm đuôi có thể xảy ra đồng thời trong nhân tế bào eukaryot (Hình 2.19)

Sau khi được phiên mã, phân tử tiền thân ARNm eukaryot phải trải qua ba thay đổi cơ bản trước khi được dùng làm khuôn để tổng hợp protein Trước hết ARNm được gắn đuôi polyA vào đầu 3', gắn "mũ" Gm7 vào đầu 5' (ở vị trí 2' của đường ribose) và cắt nối intron-exon thành phân tử ARNm hoàn chỉnh Phản ứng methyl hoá tạo cấu trúc mũ giúp cho ribosome nhận biết được phân tử ARNm và bám vào nó Cấu trúc mũ còn giúp bảo vệ đầu 5’ của ARNm không bị phân cắt bởi exonuclease

Hình 2.19:

Phối hợp giữa vị trí polyA (AATAAA) và phức protein trong quá trình tổng hợp ARNm Phức CPSF và CstF liên kết với ARN polymerase II Đến vị trí polyA, factor bị phân ly khỏi enzym khiến enzym không thể tiếp tục tổng hợp ARNm Đồng thời Poly(A) transferase thêm đuôi polyA vào đầu 3’ của ARNm

Sau khi có đuôi polyA và mũ Gm7, ARNm phải trải qua quá trình cắt bỏ các intron trước khi được vận chuyển ra ngoài tế bào chất Khoảng 30-40 nucleotide nằm ở biên giới giữa intron và exon rất quan trọng để phản ứng cắt intron xảy ra chính xác Đột biến các nucleotide nằm ở trung tâm intron không ảnh hưởng đến phản ứng này Đặc biệt trong cấu trúc của mỗi intron, hai nucleotide đầu tiên GU ở đầu 5' và hai nucleotide AG tận cùng ở đầu 3' giữ vai trò quyết định Chúng được bảo toàn ở mọi intron và là vị trí nhận biết để cắt intron ra khỏi phân

tử tiền thân ARNm

2.4.1 Phản ứng cắt intron và nối exon

Phản ứng cắt intron và nối hai exon với nhau được thực hiện theo các bước cơ bản như sau (Hình 2.20):

+ Cắt tại biên giới exon-intron ở đầu 5' của phân tử tiền thân ARNm, đầu 5' của exon được giải phóng

+ Nucleotide 5'pG ở đầu intron vừa bị cắt liên kết với 2'OH của adenine nằm cách đầu kia (phía 3') khoảng 25 base Liên kết này khiến cho intron có cấu trúc vòng

+ Cắt tại biên giới intron-exon ở đầu 3' của phân tử ARNm Intron được loại ra và hai exon được nối với nhau

Phản ứng cắt bỏ intron đòi hỏi sự tham gia của một số phân tử snARNs kích thước nhỏ (small nuclear RNA) Chúng liên kết với protein tạo thành phức ribonucleoprotein (snRNPs) Một snRNP thường chứa một phân tử ARN và khoảng 10 protein khác nhau Một số protein đặc hiệu cho từng loại snRNP, một số khác chung cho các snRNPs Phân tử snARN của snRNP có khả năng tạo liên kết theo nguyên tắc bổ sung với các đoạn nucleotide ở vùng biên giới 5' hoặc 3' giữa exon và intron Một số snARNs có thể liên kết với intron hoặc với các snARN khác Những liên kết này giữ vai trò quan trọng trong phản ứng loại bỏ intron

Hình 2.20:

Phản ứng loại bỏ intron ra khỏi phân tử ARNm Sau khi biên giới giữa exon-intron ở

đầu 5' bị cắt, cấu trúc vòng của intron được tạo ra do liên kết 5'-2' giữa G của đầu 5'

với A nằm gần đầu 3' của intron Việc cắt tại nơi tiếp giáp giữa intron-exon ở đầu 3'

cũng như việc nối hai exon với nhau xảy ra đồng thời

Thực nghiệm đã tìm ra ít nhất có 6 phân tử snARN kí hiệu từ U1 đến U6 tương ứng với 6 snRNPs Phân tử snARN U1 liên kết với 15-20 nucleotide tại nơi tiếp giáp 5' exon-intron, snARN U2 liên kết với khoảng 20 nucleotide tại đoạn chứa A (vị trí tạo cấu trúc vòng của intron), còn snARN U5 liên kết với các nucleotide tại vùng biên 3' intron-exon Ngoài ra các snARN U4, U6 có khả năng tương tác với nhau và tương tác với U2, U5 Mọi tương tác giữa các snRNP đều làm thay đổi cấu trúc không gian của phân tử ARNm, mang các đầu nối của exon lại gần nhau, tạo cấu trúc dạng vòng của intron, xúc tác cho phản ứng cắt bỏ intron và nối exon với nhau (Hình 2.21)

Hình 2.21:

Tương tác giữa các snRNP tạo spliceosome và hoạt động của chúng trong phản ứng loại intron, nối các exon với nhau

Trong thực tế, mọi snRNP và các protein tham gia phản ứng cắt bỏ intron tạo nên một cấu trúc có thể quan sát dưới kính hiển vi điển tử gọi là các spliceosome Chúng có kích thước tương tự như ribosome, bao gồm các liên kết ARN-ARN, ARN-protein và protein-protein Một số protein của spliceosome là các enzym helicase phân giải ATP, giải phóng năng lượng làm thay đổi cấu trúc không gian cần thiết của phân tử ARNm

2.4.2 Các intron có khả năng tự cắt ra khỏi phân tử ARNm-Phản ứng

self-splicing

Trên đây chúng ta đã xét phản ứng cắt bỏ intron, nối hai exon với nhau tạo phân tử ARNm hoàn chỉnh nhờ xúc tác của các snRNPs và protein (trong cấu trúc spliceosome) Ngoài ra, một số phân tử tiền thân ARNm ở ty thể hoặc lục lạp có khả năng loại bỏ các intron

mà không cần sự tham gia của các snRNP hoặc protein Nói cách khác, các intron này có thể

tự cắt ra khỏi các phân tử tiền thân ARNm và các exon được nối với nhau Chúng được chia làm hai nhóm khác nhau, tuỳ thuộc vào cách thức xảy ra phản ứng

Hình 2.22:

Phản ứng self-splicing của các intron nhóm I Phản ứng này chỉ đòi hỏi sự tham gia của G OH Trong quá trình tự cắt intron, phosphodiester được chuyển từ phân tử đường này sang phân tử đường khác (phản ứng transesterification)

Intron nhóm I: Phản ứng cắt intron nhóm I chỉ yêu cầu phân tử tiền thân ARNm (có chứa intron) và nucleotide G có nhóm OH ở vị trí 3' Sự có mặt của guanosine này dẫn đến việc cắt tại biên giới 5' exon-intron, đồng thời G được gắn vào đầu intron vừa được giải phóng (bằng việc chuyển liên kết phosphate từ đường này sang đường khác mà không ảnh hưởng đến liên kết phosphodiester) Đầu tự do 3'OH của exon sẽ tương tác với nơi tiếp giáp 3' intron-exon Tiếp theo hai exon được nối với nhau và intron tồn tại ở dạng cấu trúc vòng Cấu trúc này sau

đó sẽ chuyển sang dạng thẳng (Hình 2.22)

Intron nhóm II: Các intron thuộc nhóm này cũng có khả năng tự cắt ra khỏi phân tử tiền thân ARNm Chúng có chứa GU ở đầu 5' và cơ chế tự cắt xảy ra tương tự phản ứng đòi hỏi xúc tác của snRNPs (Hình 2.23)

Hình 2.23:

Phản ứng self-splicing của các intron nhóm II Nhóm 2'OH của A nằm gần 3' intron-exon tương tác với đầu 3' của exon 1 Nơi tiếp giáp 5' exon-intron

bị bẻ gãy tạo cấu trúc vòng cho intron Tiếp theo phản ứng nối hai exon với nhau, intron được giải phóng ra dưới dạng vòng

Tuy nhiên, trong phản ứng tự cắt này không hề có sự tham gia của bất kỳ factor nào ngoài bản thân phân tử tiền thân ARNm Điều đáng lưu ý, các intron nhóm II có cấu trúc không gian rất phức tạp Các đoạn nucleotide trong intron có thể tương tác tạo cặp với nhau Sự thay đổi

cấu trúc này làm cho phân tử ARNm có khả năng tự xúc tác cho phản ứng cắt bỏ một đoạn nucleotide của chính nó Như vậy chính cấu trúc không gian phức tạp của intron nhóm II đóng vai trò của các snRNPs trong spliceosome

2.4.3 Phản ứng trans-splicing nối hai exon của hai phân tử ARNm

Phản ứng này không đòi hỏi các snARN hoặc các protein Chính phân tử ARN cho exon thứ nhất đóng vai trò của các snRNP Mặt khác phân tử ARN này có khả năng nhận biết vị trí 5' exon-intron ở phân tử ARN thứ hai Như vậy các ARN tham gia phản ứng trans-splicing tự xúc tác cho phản ứng Phản ứng này xảy ra với hầu hết ARNm của trypanosome, giun tròn hoặc lục lạp trong tế bào thực vật (Hình 2.24)

Hình 2.24:

Phản ứng trans-splicing tạo phân tử ARNm mã cho protein photosystem A (psaA) Genome của lục lạp ở dạng vòng, dài khoảng 300 kb chứa 3 exon của ARNm ứng với protein này Exon1 được phiên mã ngược chiều với exon2 và exon3 Ba exon này được phiên mã một cách độc lập và được nối với nhau thành phân tử ARNm hoàn chỉnh Phản ứng này có thể xảy

ra trong invitro

2.4.4 Cấu trúc chung của phân tử ARNm

Ngoài phản ứng cắt intron nối exon, phân tử ARNm eukaryot còn chịu các biến đổi ở đầu 5' và 3' Đầu 5' của ARNm có 7-methylguanylate (m7G) liên kết với nucleotide đầu tiên của ARNm Mũ m7G này đóng vai trò giúp ribosome nhận biết ARNm trong quá trình tổng hợp polypeptide Đầu 3' của ARNm có đuôi polyA được xem là có vai trò trong việc vận chuyển ARNm từ trong nhân ra ngoài tế bào chất Một phân tử ARNm eukaryot hoàn chỉnh chỉ chứa exon, mang mũ Gm7 ở đầu 5', đuôi polyA ở đầu 3' Phân tử ARNm có chứa vùng 5' không dịch mã (5’ UTR) và vùng 3' không dịch mã (3’UTR) Phần 5’UTR nằm trước mã bắt đầu tổng hợp peptide"start codon" còn phần 3’UTR nằm sau mã dừng tổng hợp protein "stop codon" (Hình 2.25) Các vùng này liên quan đến kiểm soát tính bền vững của ARNm cũng như kiểm soát quá trình dịch mã trên sợi ARNm Vùng 5' không dịch mã thường chứa các đoạn oligonucleotide có thể tương tác với các protein đặc biệt hoặc có thể tạo cấu trúc bậc hai (tạo các liên kết bổ sung giữa chúng) Những tương tác đó ngăn cản ribosome di chuyển trên ARNm Mặt khác, vùng 3' UTR của một số ARNm có các vị trí nhận biết bởi endonuclease hoặc chứa các đoạn nucleotide đặc biệt (giàu AU) kích thích sự phân hủy ARNm

Hình 2.25:

Quá trình phiên mã và dịch mã Gen chứa các exon (E) và các intron (I) được phiên

mã sang phân tử ARNm tiền thân Quá trình biến đổi ARNm thành phân tử hoàn hỉnh

để sử dụng làm khuôn dịch mã trong quá trình tổng hợp protein

Phân tử ARNm eukaryot khá bền vững Thời gian bán sống cũng như khả năng dùng làm khuôn dịch mã phụ thuộc phần nào vào độ dài đuôi polyA Trong thực tế, không phát hiện được phân tử ARNm có đuôi polyA ngắn hơn 30A Độ dài của đuôi liên quan đến tính bền vững của ARNm nên việc thêm hoặc bớt các nucleotide A vào đuôi được kiểm soát rất chặt chẽ (cần lưu ý đuôi polyA được gắn vào ARNm ngay sau khi phiên mã ở trong nhân Tuy nhiên thay đổi độ dài của đuôi có thể xảy ra trong tế bào chất) Đặc biệt trong quá trình phát triển mô phôi, rất nhiều loại ARNm được phiên mã từ các gen của mẹ và được dự trữ trong tế bào trứng Chúng thường có đuôi polyA rất ngắn (10-30 A) nên không được dịch mã Chỉ sau khi trứng thụ tinh, các ARNm này được thêm đuôi polyA và trở thành khuôn để tổng hợp protein

Chương 3

KỸ THUẬT ADN TÁI TỔ HỢP

Bắt đầu từ những năm 1970 trở đi, các phương pháp nghiên cứu, phân tích ADN và gen được phát triển mạnh mẽ Nhờ những kỹ thuật hiện đại, gọi chung là kỹ thuật tách dòng và tái

tổ hợp, một gen bất kỳ có thể được phân lập và được tách ra khỏi genome Gen này được biến đổi theo ý muốn và được đưa trở lại tế bào nuôi cấy Tuy khó khăn phức tạp hơn, gen mang đột biến được đưa vào tế bào sinh dục Chúng hoạt động trong genome của cá thể và được di truyền cho các thế hệ sau

Kỹ thuật tách dòng liên quan đến việc tạo ra phân tử ADN tái tổ hợp từ các đoạn ADN có nguồn gốc khác nhau Để cắt và nối các đoạn ADN với nhau, hay nói cách khác để có thể thao

tác với các đoạn ADN, nhất thiết phải sử dụng các enzym giới hạn (restriction endo-nucleases) và ADN ligase Ví dụ, một đoạn ADN có chứa gen được cắt ra từ genome người

và được ghép vào plasmid tạo thành phân tử ADN tái tổ hợp Phân tử này được đưa trở lại

tế bào vi khuẩn Sau 24 giờ nuôi cấy, khoảng 1012 phân tử ADN giống hệt phân tử ban đầu được tạo ra Do đó, số lượng đoạn ADN mang gen của người cũng được nhân bản lên theo Lúc này đoạn ADN đó xem như đã được tách dòng và các plasmid mang ADN lạ được gọi

là vector tách dòng (cloning vector)

Các đoạn ADN đưa vào vector có thể xuất phát từ các nguồn khác nhau Nguồn sơ cấp

(primary source) có thể là ADN tách chiết trực tiếp từ genome hoặc lấy từ ngân hàng ADNc Nguồn thứ cấp (secondary source) thường là đoạn ADN phân lập từ nguồn sơ cấp được cắt thành các đoạn nhỏ hơn tiếp tục đưa vào các loại vector khác (subcloning)

Thông thường, để tách được một gen bất kỳ từ genome cần phải biết trước một đoạn ADN liên quan đến gen đó (hoặc nằm gần nó) Đoạn này được sử dụng như mồi hay còn gọi

là đầu dò (probe) để tìm ra gen cần nghiên cứu Khi sản phẩm của gen đã biết, có thể xuất

phát từ protein để suy diễn trình tự nucleotide mã cho nó Đó là những thông tin đầu tiên cần

thiết giúp cho nghiên cứu ARNm và ADN (gen) tương ứng với protein

Vấn đề đặt ra làm thế nào tách được một gen riêng biệt ra khỏi genome? Làm thế nào xác định được phân tử ARNm tương ứng với một gen? Khi đã có gen, chúng ta có thể tổng hợp

được protein invitro và invivo hay không? Mặt khác chúng ta có thể điều khiển hoạt động của

gen sau khi đã thay đổi (gây đột biến) trình tự nucleotide hay không? Trong cơ thể, đa số các gen hoạt động một cách chuyên biệt, tức là chúng thường biểu hiện ở một số hoặc thậm chí trong một loại tế bào biệt hoá ở những thời điểm nhất định, với mức độ biểu hiện khác nhau Làm thế nào để tìm ra được các gen đó và biết được chức năng của chúng? Ngoài ra có những căn bệnh do đột biến gen gây ra (bệnh di truyền) nhưng sản phẩm của gen chưa xác định được Làm thế nào để phân lập được gen và tìm ra những biến đổi ở mức độ ADN liên quan đến bệnh? vv Tất cả những vấn đề nêu trên đã và đang được sinh học phân tử giải quyết, đặc biệt nhờ áp dụng các kỹ thuật tách dòng và tái tổ hợp ADN

3.1 Phân cắt, phân ly ADN

66

Ngày nay, chúng ta có thể dễ dàng cắt genome của tế bào eukaryot gồm các phân tử ADN có kích thước rất lớn (khoảng 106 đến 1011 nucleotide) thành các đoạn ADN có kích

thước theo ý muốn nhờ các enzym giới hạn (restriction enzymes hoặc restriction

endonucleases) Vị trí cắt có thể nằm cách xa hoặc ngay tại vị trí nhận biết Các enzym

nhận biết và cắt ngay tại một vị trí được sử dụng nhiều trong kỹ thuật ADN tái tổ hợp

Chúng nhận biết các vị trí đặc hiệu gồm 4 đến 8 nucleotide trên phân tử ADN và cắt các

phân tử này thành các đoạn khác nhau Hiện nay các hãng thương mại đã giới thiệu gần

600 enzym giới hạn được sản xuất theo công nghệ ADN tái tổ hợp Chúng được tìm ra và tách chiết chủ yếu từ vi khuẩn

Hình 3.1:

Phân tử ADN bị cắt bởi enzym giới hạn Các enzym này nhận biết trình tự sắp xếp của 4 nucleotide và cắt ADN ở các vị trí này Một số enzym cắt

ADN thành các đoạn có đầu bằng (các đầu "Blunt ends") như HpaI Ngoài

ra còn có các enzym cắt ADN tạo ra các đầu dính hay còn gọi là đầu so le

(các đầu "Cohensive ends") như EcoRI

Các đoạn ADN có kích thước khác nhau được phân ly bằng phương pháp điện di trên gel agarose (điện di ngang) hoặc gel polyacrylamide (điện di đứng) Phân tử ADN tích điện âm nên chúng chuyển động từ cực âm sang cực dương trong điện trường một chiều Các phân tử ADN có kích thước lớn (~ 105-107 bp) được phân ly bằng điện di trên trường xung đẩy

"pulsed-field" Những đoạn dài từ 200 bp đến 10.000 bp được phân ly trên gel agarose hoặc acrylamide với nồng độ khác nhau Nồng độ gel lớn phù hợp với các đoạn ADN ngắn Ví dụ, những đoạn ADN ngắn 200 bp sai khác nhau không quá 10 bp có thể phân biệt trên gel agarose 4% Tuy nhiên, nồng độ agarose không thể tăng cao do gel giòn, dễ gãy và có điện trở lớn Vì vậy, gel polyacrylamide có ưu thế hơn so với gel agarose trong việc phân ly các đoạn ADN ngắn, có số lượng nucleotide chênh lệch nhau ít, mặc dù khâu chuẩn bị và thời gian điện di với gel polyacrylamide lâu hơn Gel polyacrylamide có khả năng phân giải những đoạn ADN hơn kém nhau một nucleotide (phương pháp xác định trình tự nucleotide) Sau khi điện di, các đoạn ADN trên gel có thể quan sát được dưới tia tử ngoại khi chúng được nhuộm với ethidium bromide (EtBr) hoặc có thể quan sát bằng mắt thường khi nhuộm bạc hay được đánh dấu bằng các chất phát màu khác nhau Ngoài ra, ADN còn được phát hiện bằng việc gắn phóng xạ (P32, H3 hoặc S35) Phương pháp đánh dấu phóng xạ rất nhạy, cho phép phát hiện lượng ADN rất nhỏ (cỡ ng)

3.2 Đưa các đoạn ADN vào vector

Vector được sử dụng để lưu giữ và chuyên chở ADN vào các tế bào nhận Chúng có thể tồn tại trong tế bào vi sinh vật (ví dụ plasmid trong tế bào vi khuẩn) hoặc trong tế bào eukaryot (vector YAC trong tế bào nấm men) Ngoài ra, vector được thiết kế có khả năng tồn tại ở trong các loại tế bào prokaryot và eukaryot (vector con thoi) Vì vậy, việc lựa chọn và thiết kế vector phụ thuộc vào mục đích nghiên cứu

67