1. Trang chủ
  2. » Giáo án - Bài giảng

Phương pháp ly trích rna tổng số phục vụ giám định bệnh tristeza trên cậy có múi

31 18 3

Đang tải... (xem toàn văn)

Tài liệu hạn chế xem trước, để xem đầy đủ mời bạn chọn Tải xuống

THÔNG TIN TÀI LIỆU

Thông tin cơ bản

Tiêu đề Phương Pháp Ly Trích RNA Tổng Số Phục Vụ Giám Định Bệnh Tristeza Trên Cây Có Múi
Tác giả Phạm Nguyễn Vĩ Ân, Phan Bá Quốc Anh, Phạm Hồng Lâm
Người hướng dẫn GV: Huỳnh Văn Biết
Trường học Trường Đại Học Nông Lâm Thành Phố Hồ Chí Minh
Chuyên ngành Khoa Khoa Học Sinh Học
Thể loại Tài Liệu Tham Khảo
Năm xuất bản 2023
Thành phố Thủ Đức
Định dạng
Số trang 31
Dung lượng 4,6 MB

Nội dung

Trang 1 TRƯỜNG ĐẠI HỌC NÔNG LÂM THÀNH PHỐ HỒ CHÍ MINHKHOA KHOA HỌC SINH HỌCCHỦ ĐỀPHƯƠNG PHÁP LY TRÍCH RNA TỔNG SỐ PHỤC VỤ GIÁM ĐỊNH BỆNH TRISTEZA TRÊN CÂY CÓ MÚIThủ Đức, Thứ sáu, ngày 26

Trang 1

TRƯỜNG ĐẠI HỌC NÔNG LÂM THÀNH PHỐ HỒ CHÍ MINH

KHOA KHOA HỌC SINH HỌC

CHỦ ĐỀ

PHƯƠNG PHÁP LY TRÍCH RNA TỔNG SỐ PHỤC VỤ GIÁM

ĐỊNH BỆNH TRISTEZA TRÊN CÂY CÓ MÚI

Thủ Đức, Thứ sáu, ngày 26 tháng 10 năm 2023

Môn: Thiết bị và Kỹ Thuật CNSH

GV : Huỳnh Văn Biết

Trang 2

Thành viên Nội dung Tài liệu tham khảo

Trang 3

Thành viên Nội dung Tài liệu tham khảo

1 Giới thiệu 2 Vật liệu và

phương pháp

2

Trang 4

1 Giới thiệu

• Ở Việt Nam, tỷ lệ CCM nhiễm bệnh Tristeza đang ngày càng tăng cao tại các tỉnh phía Bắc trải dài đến Đồng bằng sông Cửu Long

• Tristeza là một bệnh virus quan trọng trên cây có múi (CCM), khoảng hơn 100 triệu cây phải tiêu hủy vào những năm 1930, gây thiệt hại đáng kể cho ngành sản xuất CCM tại nhiều nước trên thế giới

Trang 5

1 Giới thiệu

• Trước tình hình đó, sản xuất và trồng cây giống sạch bệnh virus được khuyến cáo có hiệu quả trong chiến lược ngăn chặn mầm

bệnh và để nhận biết được sự hiện diện Citrus tristeza virus

trong các giống cây người ta đã sử dụng các que thử nhanh

CTV, kỹ thuật ELISA hoặc phân tích RT- PCR

• Các phương pháp này chưa tối ưu được kinh phí để giám định

sự hiện diện của Citrus tristeza virus

• Nghiên cứu này được thực hiện nhằm xác định phương pháp ly trích RNA tổng số hiệu quả cho chẩn đoán CTV bằng kỹ thuật RT-PCR

4

Trang 6

Thành viên Nội dung Tài liệu tham khảo

1 Giới thiệu 2 Vật liệu và

phương pháp

Trang 7

2 Vật liệu và phương pháp

2.1 Vật liệu

• Các mẫu lá cam sành biểu hiện triệu chứng gân lá bị sưng

mô lá bị vàng được thu về từ vườn cam sành tại xã Tân Quới, huyện Bình Tân, tỉnh Vĩnh Long

• Loading buffer 6X (PHUSAbiochem, Việt Nam)

• Ladder 1kb của hãng Thermo Fisher (Hoa Kỳ), agarose (Sigma-Aldrich, Hoa Kỳ- A9539)

• Dung dịch đệm chạy điện di TAE 1% (Tris-HCI, acid

acetic, EDTA)

• Ethium bromide (0,5 µg/mL) 6

Trang 8

2.1 Vật liệu

Hóa chất ly trích RNA tổng số

• Dung dịch ly trích TRIzol™ Reagent của hãng Invitrogen, Hoa Kỳ (Catalog

numbers: 15596026)

• Bộ NEXprep™ plant RNA extraction mini kít (NEX-Diagnostics, Hàn Quốc)

• Bộ dung dịch ly trích tự pha theo phương pháp SDS_x0002_Phenol:

Chloroform (Zhang et al., 2016)

• Bộ dung dịch ly trích tự pha theo phương pháp Rapid_x0002_CTAB

(Gambino et al., 2008)

Trang 9

2 Vật liệu và phương pháp

2.2 Phương pháp

Có 3 bước cơ bản

• Thu mẫu

• Xác định cây bị nhiễm CTV để làm mẫu đối chứng

bệnh trong nghiên cứu

• Ly trích RNA tổng số từ mô lá cam sành bị bệnh

Tristeza:

8

Trang 10

2.2 Phương pháp

• Thu mẫu

- Các mẫu lá được thu có độ tuổi từ 1,5-2 tháng (lá thứ 2 hoặc 3 từ đọt tính xuống), vì

có nồng độ virus thường tập trung cao, thuận lợi cho phân tích RT-PCR

• Xác định cây bị nhiễm CTV để làm mẫu đối chứng bệnh trong nghiên cứu

- Thực hiện thu mẫu lá từ cây cam sành có triệu chứng kém phát triển, cơ đọt non màu

vàng, gân lá sưng về phòng thí nghiệm

- Sau đó dùng que thử nhanh CTV (Agdia, Hoa Kỳ) để xác định cây bị bệnh Tristeza

mẫu dương tính với CTV dựa vào sự xuất hiện hai vạch trên que thử, từ đó định vị cây

nhiễm bệnh và được dùng làm mẫu đối chứng trong chẩn đoán CTV trên các mẫu cam

quýt bằng kỹ thuật RT-PCR trong nghiên cứu

Trang 11

2.2 Phương pháp

• Phương pháp ly trích RNA tổng số từ mô lá cam sành bị bệnh Tristeza

- Thí nghiệm được bố trí hoàn toàn ngẫu nhiên với 3 lần lặp lại gồm 3 nghiệm thức lần lượt là 3 phương pháp: NEXprep™, Rapid-CTAB (rCTAB),

SDS_x0002_PhenokChloroforme (SDS-P:C) và một đối chứng là TRIzol™

+ Phương pháp ly trích TRIzol™ và Phương pháp ly trích NEXprep™ được thực hiện theo hướng dẫn của nhà sản xuất

+ Phương pháp ly trích rCTAB+ Phương pháp ly trích SDS-P:C

10

Trang 12

Bổ sung 900 µl dung dịch ly trích rEB

ủ mẫu ở 650C, 15 phút

Trang 13

2.2 Phương pháp

+ Phương pháp ly trích rCTABThêm 900 µL hỗn hợp Chloroform (C):

Isoamy alcohol (I)

Trộn đều và ly tâm 11.000g, 40C, 10 phút

Chuyển 500 µL phần nổi sang ống eppendorf 2,0 mL mới

Thêm 500 µL hỗn hợp C:I

Trộn đều và ly tâm 11.000g, 40C, 10 phút

Chuyển phần nổi sang ống eppendorf 2,0 mL mới

12

Trang 14

2.2 Phương pháp

+ Phương pháp ly trích rCTABThêm 500 µL LiCI2 (3M)

ủ ở thùng đá 30 phút và ly tâm 16.000g, 40C, 20 phút

Loại bỏ phần nổi phía trên

và thu kết tủa RNA Hòa tan lại kết tủa bằng

cách thêm 500 µL SSTE buffer, 500 µL hỗn hợp C:l Trộn đều và ly tâm 11.000g, 4°C, 10 phút

Chuyển 400 µL phần nổi sang ống eppendorf 2,0 mL mới

Trang 15

Loại bỏ phần nổi phía trên

và thu kết tủa RNA Rửa kết tủa RNA với 1

ml ethanol 70% và ly tâm 7.500g, 40C, 5 phút Loại bỏ phần nổi phía

trên, thu kết tủa RNA lần cuối

14

Trang 16

2.2 Phương pháp

Hoà tan lại kết tủa RNA trong 40 µL nước không chứa RNAase và lưu mẫu ở -800C

+ Phương pháp ly trích rCTAB:

Trang 17

Bổ sung 600 µL dung dịch ly trích spcEB và 600 µL hỗn hợp Phenol (P): Chloroform (C)

Ly tâm 11.000g, 40C, 10 phút

chuyển 500 µL phần nổi sang ống eppendorf 2,0 mL mới

16

Trang 20

2.2 Phương pháp

+ Chỉ tiêu ghi nhận: chi phí ly trích/mẫu (dựa vào giá thành từng loại hóa chất tại thời điểm

hiện tại từng loại hóa chất), thời gian ly trích một mẫu, nồng độ RNA tổng số, tỷ lệ tinh sạch

(A260:280), mức độ RT-PCR thành công

+ Sau khi ly trích xong thì ta sẽ tiến hành giám định bệnh Tristeza bằng RT-PCR

• Phản ứng RT- PCR được thực hiện bằng bộ hóa chất The qScript® XLT One-Step RT-PCR Kít và cặp mồi chuyên tính T36CPF-T36CPR

• Sản phẩm RT-PCR sẽ được điện di trên gel agarose 1,5% ở dung dịch đệm TAE 1X với hiệu điện thế 70 Vol trong 50 phút và hiển thị băng DNA trên máy chiếu UV với thuốc nhuộm ethidium bromide (0,5 µg/ml) Kết quà dương tính khi sản phẩm RT-PCR hiển thị trên gel có kích thước 672 bp

Trang 21

Thành viên Nội dung Tài liệu tham khảo

1 Giới thiệu 2 Vật liệu và

phương pháp

20

Trang 22

• Kết quả đánh giá mức độ hiệu quả của các phương pháp

ly trích RNA tổng số từ mô lá cam sành nhiễm bệnh

Tristeza

Trang 23

3 Kết quả

• Kết quả xác định cây bị bệnh Tristeza bằng que thử nhanh CTV và phân tích RT-PCR

Lá cam sành thu từ cây biểu hiện triệu chứng gân lá bị sưng, mô lá bị vàng cho kết quả

dương tính với que thử nhanh CTV (hình 1)

Hình 1 Lá cam sành từ cây biểu hiện triệu chứng lùn cây-vàng đầu cho kết quả

dương tính với que thử nhanh CTV (Agdia, Hoa Kỳ)

Từ kết quả này, giúp xác định được cây bị bệnh Tristeza, làm cơ sở cho phân tích RT-PCR ở các thí nghiệm tiếp theo 22

Trang 24

• Thực hiện ly trích RNA tồng số và phân tích one-step RT-PCR hai mẫu lá trên cùng một cây với

mẫu lá dương tính

• Qua phân tích RT-PCR cho thấy, hai mẫu lá từ cây biểu hiện triệu chứng cây còi cọc, kém tăng

trưởng, gân lá bị sưng, mô lá vàng cho kết quà dương tính với Tristeza, với sản phẩm RT-PCR có

kích thước khoảng 672 bp (hình 2)

Hình 2 Kết quả kiểm tra sản

phẩm One-step RT-PCR: (1) Ladder 1kb; (2 3) Mẫu lá bị bệnh CTV được ly trích bằng

TRIzol™

Qua đó, khẳng định kỹ thuật, hóa chất ly trích và phân tích RT-PCR phù hợp

Trang 25

3 Kết quả

• Kết quả đánh giá mức độ hiệu quả của các phương pháp ly trích RNA tổng số từ mô lá cam

sành nhiễm bệnh Tristeza

Bảng 1 Nồng độ và tỷ lệ tinh sạch của RNA tổng số sau ly trích và mức độ khuếch

đại thành công RT-PCR trên mô lá cam sành nhiễm bệnh Tristeza

Chú thích:

1 Thời gian ly trích cho 5-6 mẫu (phút)

2 Số lần khuếch đại đoạn gen T36CP thành công bằng RT-PCR/tổng số phản ứng

24

Trang 26

3 Kết quả

Hình 3 Kết quả kiểm tra sản phẩm One-step RT-PCR:

(1, 14) Ladder 1kb; (2) Đối chứng dương; (3) TRIzol™cho kết quả dương tính; (4,5,6) rCTAB cho kết quả dương tính; (7,8,9) NEXprep™ cho kết quả dương tính; (10,11,12,13) SDS-P:C cho kết quả dương tính với CTV

- Các mẫu lá được ly trích bằng bốn phương pháp đều cho kết quả dương tính, với sản phẩm PCR có kích thước khoảng 672 bp

RT Nồng độ RNA tổng số thu được chỉ cần đạt từ 10 ng/pL thì phản ứng RTRT PCR cũng có thể

Trang 27

Thành viên Nội dung Tài liệu tham khảo

1 Giới thiệu 2 Vật liệu và

phương pháp

26

Trang 28

4 Kết luận

• Phương pháp Rapid-CTAB có hiệu quả cao trong việc ly trích RNA tổng số từ mô lá cam sành bị bệnh Tristeza khi chẩn đoán bệnh bằng kỹ thuật one-step RT-PCR

• Tất cà 30 cây giống cam sành thu ngẫu nhiên từ cơ sở kinh

doanh giống tại Long Hồ, Vĩnh Long và Chợ Lách, Bến Tre cho kết quả dương tính 100% với bệnh Tristeza bằng kỹ

thuật RT-PCR

Trang 29

Thành viên Nội dung Tài liệu tham khảo

1 Giới thiệu 2 Vật liệu và

phương pháp

28

Trang 30

Thành viên Nội dung Tài liệu tham khảo

1 Nguyễn Thị Bích Ngọc, Lê Mai Nhát, Ngô Vĩnh Viễn, Phạm Thị Dung, Nguyễn Nam Dương,

Nguyễn Văn Viết, 2013 “Nghiên cứu cài tiến kỹ thuật vi ghép đỉnh sinh trưởng trên cây có múi”,

Tạp chí Bảo vệ thực vật, số 5 tr 36- 40 2 Nguyễn Ngọc Thanh, Tất Anh Thư, Võ Thị Vân Anh,

Nguyễn Văn Lợi, Võ Thị Gương, 2018 Đánh giá hiện trạng canh tác vườn trồng cam sành tại

huyện Tam Bình, tỉnh Vĩnh Long Tạp Chí Khoa Học Công Nghệ Nông Nghiệp Việt Nam - số

4(89)/2018, 4(89), 38-44 3 Becker, c., Hammerle-Fickinger, A., Riedmaier, I., Pfaff], M w.,

2010 mRNA and microRNA quality control for RT-qPCR analysis Methods, 50(4), 237- 243

https://doi.Org/10.1016/j.ymeth.2010.01.010 4 Dwiastuti, M E., Wuryantini, s„ Sugiyatno, A.,

Supriyanto, A., 2019 Seed Health Evaluation in the Process of Free-Virus Citrus Seed Production

on Kampar Regency, Riau Province of Indonesia Russian Journal of Agricultural and

Socio-Economic Sciences, 86(2), 273-282 https://doi.org/10.18551/rjoas 2019-02.34 5 Gambino, G.,

Perrone, I., Gribaudo, I., 2008 A rapid and effective method for RNA extraction from different

tissues of grapevine and other woody plants Phytochemical Analysis, 19(6), 520-525

https://doi.Org/10.1002/pca 1078

Trang 31

Thành viên Nội dung Tài liệu tham khảo

6 Moreno, Pedro, Silvia Ambrós, Maria R Albiach Marti, José Guerri, and Leandro Pena, 2008 “Citrus

Tristeza Virus: A Pathogen That Changed the Course of the Citrus Industry.” Molecular Plant Pathology 9

(2): 251-68 https://doi.Org/10.1111/j 1364- 3703.2007.00455.x 7 Ngo Vinh Vien, Le Mai Nhat, Nguyen

Bich Ngoc, 2012 The Current Status of HLB Epidemic in Vietnam, International Symposium on

Epidemiology and Disease management of Citrus HLB Disease for Sustainable Citrus Production in

ASPAC; 5-10 Nov 2012 8 Susana R R., Pedro M., Jose G., Silvia A., 2007 A real-time RT-PCR assay for

detection and absolute quantitation of Citrus tristeza virus in different plant tissues Journal of Virological

Methods, 145(2), 96-105 10.1016/j.jviromet.2007.05.011 https://doi.org/ 9 Roy, A., Ananthakrishnan, G.,

Hartung, J s., & Brlansky, R H, 2010 Development and Application of a Multiplex Reverse-Transcription

Polymerase Chain Reaction Assay for Screening a Global Collection of Citrus tristeza virus Isolates

Phytopathology, 100(10), 1077-1088 https://doi.Org/10.1094/phyto-04-10-0102

30

Ngày đăng: 21/03/2024, 18:06

TÀI LIỆU CÙNG NGƯỜI DÙNG

TÀI LIỆU LIÊN QUAN

w