Nghiên cứu một số đặc điểm sinh học, sinh thái học và độ nhạy cảm của muỗi truyền sốt xuất huyết với hóa chất diệt côn trùng tại Hà Nội, năm 2020 – 2021

Nghiên cứu một số đặc điểm sinh học, sinh thái học và độ nhạy cảm của muỗi truyền sốt xuất huyết với hóa chất diệt côn trùng tại Hà Nội, năm 2020 – 2021.Nghiên cứu một số đặc điểm sinh học, sinh thái học và độ nhạy cảm của muỗi truyền sốt xuất huyết với hóa chất diệt côn trùng tại Hà Nội, năm 2020 – 2021.Nghiên cứu một số đặc điểm sinh học, sinh thái học và độ nhạy cảm của muỗi truyền sốt xuất huyết với hóa chất diệt côn trùng tại Hà Nội, năm 2020 – 2021.Nghiên cứu một số đặc điểm sinh học, sinh thái học và độ nhạy cảm của muỗi truyền sốt xuất huyết với hóa chất diệt côn trùng tại Hà Nội, năm 2020 – 2021.Nghiên cứu một số đặc điểm sinh học, sinh thái học và độ nhạy cảm của muỗi truyền sốt xuất huyết với hóa chất diệt côn trùng tại Hà Nội, năm 2020 – 2021.Nghiên cứu một số đặc điểm sinh học, sinh thái học và độ nhạy cảm của muỗi truyền sốt xuất huyết với hóa chất diệt côn trùng tại Hà Nội, năm 2020 – 2021.Nghiên cứu một số đặc điểm sinh học, sinh thái học và độ nhạy cảm của muỗi truyền sốt xuất huyết với hóa chất diệt côn trùng tại Hà Nội, năm 2020 – 2021.Nghiên cứu một số đặc điểm sinh học, sinh thái học và độ nhạy cảm của muỗi truyền sốt xuất huyết với hóa chất diệt côn trùng tại Hà Nội, năm 2020 – 2021.Nghiên cứu một số đặc điểm sinh học, sinh thái học và độ nhạy cảm của muỗi truyền sốt xuất huyết với hóa chất diệt côn trùng tại Hà Nội, năm 2020 – 2021.Nghiên cứu một số đặc điểm sinh học, sinh thái học và độ nhạy cảm của muỗi truyền sốt xuất huyết với hóa chất diệt côn trùng tại Hà Nội, năm 2020 – 2021.

TỔNG QUAN NGHIÊN CỨU

Muỗi Aedes trong hệ thống phân loại

Dodge (1962) theo quan điểm của Stone, A., Knight và Starke (1959) đã chia họ muỗi là 3 phân họ: Culicinae, Anophelinae và Toxorhynchitae.

Họ phụ Anophelinae bao gồm 3 giống chính: Giống Chagasia phân bố ở vùng Tân nhiệt đới, Giống Bironalla ở châu Úc, và Giống Anopheles với số lượng loài lớn nhất, phân bố rộng rãi trên toàn cầu và nhiều loài có ý nghĩa dịch tễ quan trọng Giống Anopheles được chia thành 7 phân giống: Anopheles, Baimaia, Cellia, Kerteszia, Lophopodomyia, Nyssorhynchus, và Stethomyia Tại vùng Đông Phương, giống Anopheles chỉ bao gồm các loài thuộc 2 phân giống: Anopheles và Cellia.

Phân họ Toxorhynchitae chỉ có một giống duy nhất là Toxorhynchites.

Phân họ Culicinae bao gồm nhiều giống và có số lượng loài phong phú, trong đó các giống Aedes, Mansonia, Culex và Ochlerotatus đóng vai trò quan trọng trong dịch tễ học Đặc biệt, giống Aedes và Culex có sự phân bố toàn cầu, góp phần vào sự phát triển của các bệnh truyền nhiễm.

Theo Vũ Đức Hương (1997), Việt Nam có 27 loài muỗi thuộc giống Aedes, trong đó hai loài chính là Ae aegypti (Linnaeus, 1762) và Ae albopictus (Skuse, 1894) là những véc tơ truyền bệnh sốt xuất huyết Vị trí phân loại của muỗi Ae aegypti và Ae albopictus rất quan trọng trong nghiên cứu dịch tễ học.

Loài: Aedes aegypti (Linnaeus), 1762, Aedes albopitus (Linnaeus), 1762.

Một số đặc điểm hình thái học của muỗi Ae aegypti và Ae albopictus

1.2.1 Hình thái ngoài của muỗi Ae aegypti

Trứng của muỗi Aedes aegypti có kích thước nhỏ dưới 1mm, hình oval, màu trắng khi mới đẻ và chuyển sang đen sẫm sau đó Dưới kính hiển vi, trứng giống như quả “thủy lôi” với một đầu lớn có lỗ trứng được bao bọc trong vòng globulin trong suốt Khi bám trên bề mặt ẩm hoặc giấy lọc, trứng có hình dạng như con thuyền nhỏ, với mặt trên phẳng và mặt dưới cong Bên ngoài, trứng được phủ lớp màng chorion màu trắng sữa, dễ thấy khi ngâm trong nước, nhưng khi khô, màng này bám chặt vào vỏ, làm cho bề mặt vỏ gồ ghề Khác với các loại muỗi khác như Anopheles hay Culex, trứng Aedes aegypti không có phao và không liên kết thành bè nổi, mà thường rời rạc bám vào thành các dụng cụ chứa nước, đây là đặc điểm nổi bật của giống muỗi này.

Bọ gậy Ae aegypti có những đặc điểm nổi bật như đốt bụng VIII không có tấm kitin và các răng lược xếp thành hàng với gai giữa và gai bên Siphon của bọ gậy này dài không quá 4 lần chiều rộng, không có hàng gai ở đỉnh, và chùm lông siphon nằm ngoài khoảng lược Lông siphon không có dạng gai tù, trong khi mặt lưng của ngực không có lông dạng gai Tấm yên cũng không có gai ở phía ngoài Các lông trên đầu, lông dưới, lông trước anten và lông anten đơn đều có ít gai nhỏ hoặc trơn.

Hình 1.2 Bọ gậy Ae aegypti

Bọ gậy Ae aegypti có dạng hình trụ, thon dần và màu vàng sữa Cơ thể chia làm ba phần: Đầu, ngực, bụng.

Phần đầu của sinh vật có hình cầu, với hệ thống lông và phụ kiện cảm giác giúp thu nhận thức ăn Phía trước đầu có đôi chùm lông bàn chải dạng tơ hoặc lược, cùng với đôi râu trơn hoặc có gai nhỏ Râu có lông đơn hoặc phân nhánh ở giữa, và có một số lông cứng ở đỉnh Hai bên râu là đôi mắt kép lớn, sau đó là mắt đơn Phần dưới đầu là miệng với cấu tạo phức tạp, nổi bật là tấm ngọn môi dưới hình tam giác, đặc trưng cho từng loài.

Phần ngực của cơ thể phát triển nhất, bao gồm ba đốt, với hệ thống lông dài ở mỗi đốt Lông ở mặt trên và mặt dưới ngắn hơn so với lông ở hai bên sườn Đốt ngực giữa và đốt ngực sau có mấu ở gốc kitin, trong khi đốt ngực trước không có mấu.

Phần bụng của bọ gây Aedes có 9 đốt, trong đó 7 đốt đầu tương tự nhau về hình dáng và hệ thống lông Đốt VIII nổi bật với cấu trúc và hình dạng khác biệt, bao gồm lược đốt VIII và ống thở (siphon) nằm ở mặt lưng Hai bên ống thở có lược siphon, trong khi đặc điểm đặc trưng của loài này là đôi chùm lông nằm giữa ống thở Đốt bụng cuối, hay đốt anal, nằm dưới ống thở và có cấu tạo khác biệt, với tấm yên phát triển ở phía trên và các lá mang mỏng manh cùng lông dài phía sau.

Quăng của muỗi Ae aegypti có hình dạng giống như dấu hỏi lớn, với lớp vỏ sẫm bên ngoài nhưng dễ nhận thấy mầm phụ của muỗi trưởng thành Cơ thể quăng được chia thành hai phần chính: đầu ngực và bụng.

Phần đầu ngực của quăng có hình dạng cầu với mặt trước tương đối phẳng và chứa mầm của phần phụ miệng Hai bên đầu có đôi mắt kép lớn, phía sau là 5 mắt đơn, và phía trước mắt kép là gốc râu Đốt gốc râu của quăng đực lớn hơn so với quăng cái, râu áp sát vào mặt bên của phần đầu ngực Mầm cánh nằm sau râu, trong khi mầm chân nằm trước râu Trên lưng của ngực có đôi ống thở hình trụ.

Phần bụng của cơ thể có tổng cộng 9 đốt, trong đó từ đốt II đến đốt VII có cấu trúc tương đối giống nhau Đốt I có kích thước nhỏ hơn, trong khi đốt VIII có vây và đuôi, cùng với di tích của đốt IX.

Theo kết quả nghiên cứu của Christophers (1960), đối với Ae aegypti không có sự khác nhau giữa quăng đực và quăng cái [16].

Muỗi Ae aegypti trưởng thành có hình thái dễ nhận biết với kích thước trung bình và chân, bụng có khoang đen trắng rõ rệt Thân muỗi có nhiều vảy trắng bạc tập trung thành cụm hoặc đường, vòi không có băng trắng và đỉnh pan trắng Trên lưng ngực, có hai đường vảy màu trắng bạc phình ra, tạo hình giống như hai nửa vòng cung Bên cạnh đó, trên mặt lưng bụng từ đốt II đến VIII có các đường vảy ngang, và gốc các đốt bàn chân sau có khoang trắng, đặc biệt đốt bàn chân thứ V hoàn toàn trắng, do đó muỗi còn được gọi là “muỗi vằn”.

Muỗi Ae aegypti là loài muỗi có kích thước trung bình, với sải cánh dài khoảng 4,5 - 5mm Đặc điểm nhận dạng của chúng là màu đen với các vảy bạc, do đó thường được gọi là muỗi vằn.

Cơ thể muỗi chia làm ba phần: Đầu, ngực và bụng.

Đầu có hình cầu, với trán ở phía trước, tấm gốc môi nằm dưới trán, đỉnh ở trên và gáy ở dưới Bề mặt đầu được phủ bởi nhiều vảy có hình dạng đa dạng, bao gồm vảy dẹt rộng, hẹp, cong lưỡi liềm và hình đinh vít.

Hai bên đầu có đôi mắt kép lớn Giữa hai mắt kép là vòi Hai bên vòi là pan, hai bên pan là râu.

Râu có từ 14 đến 15 đốt, trong đó đốt I thường dẹt và khó nhận thấy Đốt II, được gọi là đốt gốc râu, có hình dạng giống quả táo, không có lông và đôi khi có vảy Từ đốt III trở đi, các đốt roi có hình trụ và được bao quanh bởi lông phụ râu, trong đó lông phụ ở con đực dày hơn nhiều so với con cái.

Vòi của muỗi có kích thước gần bằng nửa thân và hình dáng thon dài, thường được phủ bởi các vảy màu đen, đôi khi có thêm vảy bạc Cấu trúc của vòi muỗi giống như dạng chích hút của côn trùng.

Pan của muỗi có 5 đốt, trong đó muỗi đực có pan dài hơn vòi, còn muỗi cái thì ngược lại Bề mặt pan thường được phủ bởi vảy đen, đôi khi xen kẽ với các cụm vảy trắng Ở một số loài, các cụm vảy trắng tập trung ở đỉnh, tạo nên màu trắng cho pan.

Phần ngực của côn trùng bao gồm ba đốt: ngực trước (Pronotum), ngực giữa (Mesonotum) và ngực sau (Metanotum), mỗi đốt được giới hạn bởi tấm lưng, hai tấm bên và tấm bụng Tấm lưng của ngực trước bị tiêu giảm, chỉ còn hai ụ nhỏ ở hai bên của ngực giữa, trong khi tấm lưng của ngực giữa là lớn nhất và chia thành hai phần: scutum ở phía trước và scutellum ở phía sau, với scutellum có ba thùy như các loài muỗi khác Tấm lưng của ngực sau nhỏ và có bề mặt trơn.

Đặc điểm sinh học của muỗi Ae aegypti và Ae albopictus

1.3.1 Đặc điểm sinh học của muỗi Ae aegypti

Vòng đời của muỗi Aedes aegypti bao gồm 4 giai đoạn: trứng, bọ gậy, quăng và muỗi trưởng thành, trong đó ba giai đoạn đầu sống trong nước và chỉ giai đoạn muỗi trưởng thành sống trên cạn Trứng có thể tồn tại tới 6 tháng hoặc lâu hơn trong điều kiện thời tiết không thuận lợi Muỗi cái cần hút máu để phát triển trứng, thường đẻ trứng trước khi hút máu lần sau, nhưng nếu quá trình này bị gián đoạn, muỗi sẽ tiếp tục hút máu và hình thành các chu kỳ sinh sản Trong suốt đời sống, muỗi cái có thể đẻ trứng khoảng 6 - 7 lần, mỗi lần từ 150 trứng, và trong điều kiện phòng thí nghiệm, muỗi có thể đẻ tới 13 lần Thời gian sống trung bình của muỗi Aedes aegypti trong phòng thí nghiệm là từ 20 - 30 ngày.

Hình 1.9 Vòng đời muỗi Ae aegypti

Thời gian phát triển của muỗi từ trứng đến quăng trung bình là 7 ngày, trong đó bọ gậy và quăng sống trong nước Thời gian từ quăng đến muỗi trưởng thành kéo dài từ 2 đến 3 ngày Sau khi nở, muỗi trú đậu trên thành vật chứa khoảng vài giờ trước khi bay đi xa khoảng 200 mét Muỗi cái trưởng thành giao phối và thực hiện đốt hút máu lần đầu vào khoảng 48 giờ sau khi nở, với hoạt động mạnh nhất vào sáng sớm và hoàng hôn Muỗi có tuổi thọ khoảng 5 ngày, và thời gian ủ bệnh vi rút Dengue trong muỗi cái là 8 - 10 ngày, khi vi rút nhân lên trong tuyến nước bọt và lây sang người qua đốt hút máu Muỗi cái sống từ 20 đến 40 ngày, trong khi muỗi đực sống ngắn hơn từ 9 đến 12 ngày Mỗi lần đẻ, muỗi cái sản xuất từ 60-100 trứng, ban đầu có màu trắng sau đó chuyển sang màu đen và có thể tồn tại đến 6 tháng trong điều kiện thuận lợi Muỗi đực hút mật hoa để sống, trong khi muỗi cái cần hút máu từ động vật có vú để phát triển trứng, phát hiện vật chủ qua các hợp chất hóa học như NH3, CO2, axít lactic và Octenol.

1.3.2 Đặc điểm sinh học của Ae albopictus

Ae albopictus đẻ trứng riêng lẻ ở những khu vực ẩm ướt, gần mặt nước hoặc nơi có mực nước thay đổi Trứng có khả năng chịu khô trong nhiều tháng và chỉ nở khi gặp nước Chúng cũng có thể tồn tại qua mùa đông lạnh.

Ae albopictus là loài muỗi trung gian truyền bệnh sốt xuất huyết, thường sống ở các bụi cây và đám cỏ, chủ yếu tại vùng nông thôn Chúng đẻ trứng rời từng chiếc trên các khu vực ẩm ướt, gần mặt nước hoặc trong các dụng cụ chứa nước tạm thời Tuy nhiên, loài muỗi này cũng ưa thích đẻ trứng tự nhiên trong rừng, vườn, tại các hốc cây, kẽ lá, và vũng nước dưới đất, cũng như trong vỏ dừa.

Giống như muỗi Ae aegypti, loài muỗi này cũng có khả năng truyền bệnh sốt xuất huyết cho con người Nhiều nghiên cứu đã chỉ ra rằng sự xuất hiện của muỗi liên quan mật thiết đến sự lây lan của bệnh tại các khu vực nhất định.

Muỗi Aedes albopictus có tỷ lệ mắc sốt xuất huyết (SXHD) thấp hơn so với muỗi Aedes aegypti Điều này chủ yếu do Aedes albopictus sống chủ yếu ngoài trời và ít tiếp xúc với con người, trong khi Aedes aegypti thường sống trong nhà và tiếp cận con người thường xuyên hơn Do đó, vai trò truyền bệnh của Aedes albopictus thấp hơn so với Aedes aegypti.

Muỗi Ae albopictus có khả năng phát tán xa hơn so với muỗi Ae aegypti, với khoảng cách phát tán trung bình của muỗi cái trưởng thành Ae aegypti là 35,3 mét và Ae albopictus là 50,6 mét trong vòng 7 ngày Khả năng phát tán tối đa của muỗi cái trưởng thành Ae aegypti đạt 100 mét, trong khi Ae albopictus có thể phát tán tới 180 mét.

Đặc điểm sinh thái của muỗi Ae aegypti và Ae albopictus

1.4.1 Đặc điểm sinh thái của muỗi Ae aegypti

Nơi trú đậu của muỗi Ae aegypti và sinh sản

Muỗi Ae aegypti là loài muỗi chủ yếu trú ẩn trong nhà, với 95,65% số lượng được tìm thấy trong môi trường sống này Trong số đó, tỉ lệ muỗi đực chiếm 17,36%, còn lại là muỗi cái Chúng thường nghỉ ngơi ở những nơi tối, khuất gió như quần áo, chăn, màn, và chiếm trên 90% tổng số Ngoài ra, muỗi cũng có thể được tìm thấy trên dây phơi và các đồ vật khác, nhưng tỉ lệ trên tường chỉ dưới 3% Muỗi Ae aegypti đẻ trứng ở những nơi có nước sạch như lu vại, bể, lọ hoa, và các vật dụng chứa nước khác, ưa thích môi trường râm mát với độ pH hơi axít, đặc biệt là nước mưa.

Tập tính đốt hút máu của muỗi Ae aegypti

Các phương pháp thu thập muỗi đã đề cập chủ yếu ghi nhận muỗi Ae aegypti hoạt động vào ban ngày Tuy nhiên, với phương pháp mồi người, muỗi Ae aegypti cũng có thể tìm mồi vào ban đêm, mặc dù tỷ lệ chỉ khoảng 0-2% Kết quả từ việc mồi người vào ban ngày đã được theo dõi kỹ lưỡng.

Nghiên cứu tại phường Đồng Tâm, quận Hai Bà Trưng, Hà Nội trong năm 1992 cho thấy muỗi hoạt động tìm mồi theo từng giờ vào ban ngày, với sự thay đổi theo mùa và phụ thuộc vào nhiệt độ Trong các tháng mùa rét từ tháng 11 đến tháng 3, muỗi chủ yếu hoạt động vào buổi trưa và chiều (từ 11 giờ đến 16 giờ) khi nhiệt độ ấm áp hơn, tạo điều kiện thuận lợi cho sự hoạt động của chúng Tuy nhiên, vào những ngày có nhiệt độ dưới 15 độ C trong tháng 12, hoạt động của muỗi giảm đáng kể.

Muỗi hoạt động chủ yếu vào hai thời điểm trong ngày, từ sáng sớm đến 11 giờ và buổi chiều từ 16 giờ đến 19 giờ, với đỉnh hoạt động cao hơn vào buổi sáng Trong các tháng mùa nóng từ tháng 4 đến tháng 10, muỗi gần như không hoạt động vào buổi trưa, đặc biệt từ tháng 5 đến tháng 9 Nghiên cứu của Vũ Đức Hương (1992) cho thấy muỗi hoạt động mạnh nhất vào lúc bình minh và hoàng hôn Sau khi đốt máu người nhiễm virus, khoảng 8 - 10 ngày sau, muỗi có khả năng truyền virus Sau khi hút máu, chúng thường đậu trên quần áo, gầm giường hoặc gầm bàn, ở độ cao dưới 2 mét.

Nghiên cứu cho thấy bọ gậy muỗi Ae aegypti chủ yếu tồn tại trong các dụng cụ chứa nước nhân tạo quanh nhà, như bể, phi, chum và các vật dụng phế thải Các thủy vực tự nhiên như ao hồ hay cống rãnh không ghi nhận sự xuất hiện của bọ gậy này Tỷ lệ bọ gậy Ae aegypti cao hơn ở các dụng cụ có diện tích bề mặt nhỏ hơn 1m², trong khi các bể lớn hơn 2m² lại có tỷ lệ gặp bọ gậy không đáng kể Bể lọc là nơi có mật độ bọ gậy cao nhất, tiếp theo là chum, vại và các dụng cụ phế thải Các bể chứa nước dội hố xí cũng gặp bọ gậy Ae aegypti, nhưng giếng nước từ ao lại không thấy chúng, chỉ có bọ gậy của giống Culex và Anopheles Điều kiện nước lý tưởng cho bọ gậy muỗi Ae aegypti bao gồm độ trong 30, pH từ 7,4 - 7,6, nitrit từ 0,2 - 0,6 mg/l, amoniac từ 0,5 - 0,2 mg/l, natri clorua từ 0,3 - 0,5 mg/l và độ hữu cơ từ 4,8 - 10,4 mg/l.

1.4.2 Đặc điểm sinh thái của muỗi Ae albopictus

Nơi trú đậu và sinh sản của Ae albopictus

Ae albopictus sống ở ngoài nhà, ẩn núp dưới các bụi cây gần nhà hay xa nhà.

Hiện nay đôi khi bắt gặp muỗi trú đậu trên bình hoa hay cây xanh ở trong nhà.

Muỗi Ae albopictus thường đẻ trứng trong các khu vực có nước sạch tự nhiên như hốc cây và kẽ lá Ngoài ra, chúng cũng có thể sinh sản trong các dụng cụ chứa nước nhân tạo như vại, chậu cây cảnh, chai lọ, vỏ dừa, lốp xe ô tô cũ và máng nước bên ngoài nhà.

Tập tính đốt hút máu Ae albopictus

Muỗi Ae albopictus có xu hướng hút máu người, chủ yếu hoạt động vào ban ngày, với cường độ cao nhất vào lúc bình minh và hoàng hôn Gần đây, chúng cũng được ghi nhận hút máu người trong nhà.

Ae albopictus thường đẻ trứng ở những nơi nước sạch ngoài tự nhiên như:

Bọ gậy thường xuất hiện trong các hốc cây, kẽ lá, và cả trong những vật chứa nhân tạo như lu, vại, bể, chậu cây cảnh, chai lọ, vỏ dừa, lốp ô tô cũ và máng nước ở những nơi râm mát Chúng chủ yếu sinh sống ở gốc nứa, gốc cây, hốc đá, cùng với các dụng cụ chứa nước và đồ phế thải có nước.

1.4.3 Một số nghiên cứu về đặc điểm sinh thái học của muỗi Ae aegypti và Ae albopictus

1.4.3.1 Các nghiên cứu trên thế giới

Nghiên cứu về hình thái và sinh thái của muỗi Aedes aegypti đã được thực hiện qua nhiều công trình, nổi bật là các nghiên cứu của Hopkin (1952), Christopher (1960), Belkin (1970) và Harison (1973) Christopher (1960) đã cung cấp một mô tả chi tiết về hình thái, phân loại, di truyền, sinh lý, sinh thái, phân bố và các giai đoạn phát triển của Ae aegypti, bao gồm trứng, bọ gậy, quăng và muỗi trưởng thành, cùng với vai trò truyền bệnh của chúng Các tác giả cũng nhấn mạnh rằng, ngoài những đặc điểm chung của loài, còn tồn tại sự khác biệt về hình thái như kích thước và màu sắc giữa các vùng địa lý khác nhau.

Nghiên cứu về sự phát triển của bọ gậy hai loài Ae aegypti và Ae albopictus ở Brazil cho thấy Ae albopictus phát triển theo mùa, với số lượng cao nhất vào mùa mưa, trong khi Ae aegypti không có sự phát triển rõ rệt theo mùa mà chỉ phát triển ở nơi có nước sạch Cả hai loài bọ gậy đều phát triển kém khi mực nước cao và độ pH thấp Ngoài ra, loài Ae albopictus có khả năng phát tán nhanh hơn Ae aegypti, với muỗi cái có thể di chuyển khoảng 800 mét trong vòng 6 ngày.

Hai loài muỗi Ae aegypti và Ae albopictus thường có tập tính hút máu vào ban ngày, đặc biệt là sáng sớm và chiều tối Nghiên cứu sử dụng máy phân tích quang phổ cho thấy Ae aegypti có khả năng tìm kiếm vật chủ tốt hơn Ae albopictus khi độ ánh sáng tăng lên.

1.4.3.2 Các nghiên cứu ở Việt Nam

Vào năm 2006, Vũ Đức Hương đã thực hiện một cuộc điều tra bổ sung về chỉ số muỗi, bọ gậy và thành phần ổ bọ gậy Ae aegypti tại 20 địa điểm thuộc 10 tỉnh và thành phố.

Kết quả nghiên cứu cho thấy chỉ số muỗi và bọ gậy của loài muỗi này vẫn cao, đặc biệt là tại vùng đồng bằng ven biển Trong số 20 địa điểm khảo sát, có 15 địa điểm (75%) có chỉ số Breatau lớn hơn 50, trong đó 3 địa điểm (6,66%) có chỉ số Breatau trên 200 Bên cạnh đó, 17 địa điểm (85%) có tỷ lệ dụng cụ bọ gậy vượt quá 10%, và 6 địa điểm (33,33%) có mật độ muỗi trên 1 con/nhà Tại vùng đồng bằng ven biển Nam Bộ, do thiếu nước sạch, số lượng dụng cụ chứa nước trung bình từ 3,5 đến 6,5 cái/nhà, trong khi ở các vùng khác, con số này chỉ từ 1-2,5 cái/nhà Ba loại ổ bọ gậy phổ biến là lọ hoa, bát chống kiến và dụng cụ phế thải, chiếm khoảng 50% tổng số dụng cụ chứa nước, do đó cần chú ý đến cả ba loại ổ bọ gậy này trong công tác phòng chống véc tơ.

Nghiên cứu của Vũ Sinh Nam (1995) về vai trò truyền bệnh của véc tơ sốt xuất huyết (SXHD) tại Việt Nam cho thấy rằng tất cả các ổ dịch SXHD đều có sự hiện diện của muỗi Ae aegypti, trong khi chỉ có một số ít ổ dịch có sự xuất hiện của hai loài muỗi, với Ae albopictus chiếm tỷ lệ rất thấp Đặc biệt, ở nhiều địa phương như Lào Cai, Cao Bằng, Phú Thọ, Hòa Bình, Hà Giang và Tuyên Quang, mặc dù có sự lưu hành của Ae albopictus với mật độ cao trong nhiều năm, nhưng không có thông báo nào về sự xuất hiện của SXHD tại những khu vực này.

Mặc dù muỗi Ae albopictus đã được phát hiện ở nhiều địa phương trên toàn quốc, vai trò của chúng trong việc truyền bệnh sốt xuất huyết (SXHD) tại Việt Nam vẫn chưa được xác định rõ ràng Nghiên cứu của Trần Văn Tiến và cộng sự thực hiện vào năm 2002-2003 tại bốn địa điểm miền cho thấy cần có thêm các nghiên cứu sâu hơn để làm sáng tỏ vấn đề này.

Tập tính của muỗi Aedes

Sau khi tiêu máu, muỗi sẽ tìm nơi đẻ trứng, và khả năng sinh sản của hai loài muỗi Ae aegypti và Ae albopictus phụ thuộc vào kích thước cơ thể và chiều dài cánh Mỗi cá thể muỗi Ae aegypti có thể đẻ trứng ở nhiều dụng cụ chứa nước khác nhau, nhưng tập tính này không phổ biến ở Thái Lan Nơi đẻ trứng thường là các ổ nước có thành cứng, màu sẫm, diện tích bề mặt nhỏ và có nhiều chất hữu cơ, bao gồm cả dụng cụ chứa nước tự nhiên và nhân tạo như chum, vại, và chậu cây Tỷ lệ ổ bọ gậy Ae aegypti trong dụng cụ chứa nước sinh hoạt chiếm 84,4%, trong khi các dụng cụ nước phế thải chỉ chiếm 15,19% Hầu hết các vật chứa nước sạch do con người tạo ra để dự trữ nước không có nắp đậy hoặc nắp không kín, đặc biệt trong mùa mưa, tạo điều kiện thuận lợi cho muỗi Ae aegypti vào đẻ trứng.

Nildimar (2006) đã nghiên cứu sự phát triển của bọ gậy hai loài Ae aegypti và Ae albopictus tại các dụng cụ tích nước ở Brazil qua điều tra hàng tháng Kết quả cho thấy Ae albopictus có tập tính phát triển theo mùa, với số lượng cao nhất vào mùa mưa, trong khi Ae aegypti không có sự phát triển theo mùa mà chỉ phát triển ở nơi có nước sạch Cả hai loài đều phát triển kém khi mực nước cao và độ pH thấp.

Lun (2007) cũng đã tiến hành nghiên cứu khả năng sống sót của bọ gậy muỗi

Muỗi Ae aegypti và Ae albopictus đã được nghiên cứu trong điều kiện nhiệt độ thấp ở Đài Loan, với Ae aegypti lần đầu tiên được phát hiện ở phía Bắc trước khi lan rộng ra toàn bộ đất liền Nhiệt độ thấp vào mùa đông có thể là nguyên nhân chính ngăn cản sự phát triển của loài muỗi này Nghiên cứu trong phòng thí nghiệm cho thấy, ở nhiệt độ 10°C, bọ gậy tuổi 1 của hai véc tơ truyền bệnh sốt xuất huyết (SXHD) gặp khó khăn trong việc phát triển.

4 của loài Ae albopictus sống tốt hơn loài Ae aegypti, tuy nhiên ở nhiệt độ 2,5 0 C –

5 0 C thì tuổi 1 của loài Ae albopictus sống tốt hơn loài Ae aegypti nhưng tuổi 4 của loài Ae aegypti sống tốt hơn loài Ae albopictus [37].

1.5.2 Tập tính hút máu và trú đậu của muỗi Aedes

Muỗi Aedes, giống như nhiều loài muỗi khác, có sự khác biệt về dinh dưỡng giữa con đực và con cái Con cái cần hút máu để sống và phát triển, trong khi con đực chỉ hút nước, nhựa cây hoặc dịch hoa quả để tồn tại.

Muỗi Aedes cái trưởng thành bắt đầu hút máu lần đầu tiên khoảng 48 giờ sau khi nở, sau đó giao phối và tiếp tục hút máu trong các chu kỳ sinh sản tiếp theo Sự sống và phát triển của muỗi Aedes chịu ảnh hưởng bởi nhiều yếu tố như nhiệt độ, độ ẩm, gió, mưa và ánh sáng, trong đó nhiệt độ và độ ẩm là hai yếu tố quan trọng Muỗi Aedes chỉ hút máu trong khoảng nhiệt độ từ 16°C đến 40°C, với nhiệt độ lý tưởng cho hoạt động này là từ 25°C.

Nhiệt độ tối ưu cho muỗi Aedes là 28°C, trong khi hoạt động hút máu của chúng giảm dần khi nhiệt độ vượt quá 34°C Khi nhiệt độ đạt khoảng 40°C, muỗi gần như ngừng hút máu và có nguy cơ chết hàng loạt; ngược lại, ở nhiệt độ dưới 18°C, muỗi hầu như không hoạt động và bám sát vào bề mặt Thời gian phát triển của chu kỳ tiêu sinh ở nhiệt độ 17°C - 18°C kéo dài gấp ba lần so với nhiệt độ 28°C - 30°C Bên cạnh đó, độ ẩm cũng ảnh hưởng đến hoạt động của muỗi, với việc hút máu diễn ra tích cực hơn trong điều kiện ẩm ướt.

Muỗi cái Ae aegypti chủ yếu hút máu người, bị thu hút bởi các yếu tố như nhiệt độ, độ ẩm, các hóa chất và CO2 do vật chủ thải ra Sau khi nở khoảng 48 giờ, muỗi trưởng thành bắt đầu hút máu, với đỉnh hoạt động vào 2-3 giờ sau bình minh và nhiều giờ trước khi trời tối, cùng một đỉnh thứ ba vào gần trưa Chúng nhanh chóng phát hiện và tấn công người, thường hoạt động vào ban ngày Trong suốt một chu kỳ tiêu máu, muỗi cái có thể hút máu nhiều lần, tỷ lệ này có thể phụ thuộc vào kích thước cơ thể và nhiệt độ môi trường.

Sau khi hút máu, muỗi Aedes tìm nơi nghỉ ngơi để tiêu hóa, thường chọn những khu vực tối tăm và có mùi cơ thể, như quần áo màu sẫm Chúng cũng có thể đậu ở gầm giường, trên tường, và cạnh tủ Vào ban ngày, muỗi Ae aegypti liên tục thay đổi vị trí nghỉ ngơi, thường trú ẩn ở những nơi ẩm ướt, tối tăm và kín gió.

Muỗi Ae albopictus thường nghỉ ngơi và hút máu ở những nơi ngoài trời như trên thân cây, lá cây, cũng như trên các dụng cụ và vật thể để ngoài nhà, bao gồm cả tường của chuồng trâu, bò và lợn.

Phân bố muỗi Ae aegypti và Ae albopictus

1.6.1 Đặc điểm phân bố của muỗi Aedes

Muỗi Aedes phân bố chủ yếu ở các vùng nhiệt đới và ôn đới, từ 35 độ vĩ Bắc đến 35 độ vĩ Nam, và có thể sống ở độ cao từ 0 đến 1200m Khả năng phát tán của muỗi Aedes chủ yếu là bị động, với khả năng bay xa thường dưới 200m quanh ổ bọ gậy Tuy nhiên, nghiên cứu cho thấy chúng có thể di chuyển xa hơn, lên đến 800m hoặc hơn, nhờ vào các phương tiện như bồn chứa nước, tàu bè và các phương tiện giao thông nhanh Khoảng cách bay của muỗi Aedes phụ thuộc vào các yếu tố sinh thái và khí hậu như gió, độ ẩm, nhiệt độ, và địa hình Muỗi cũng bay để tìm bạn tình, tìm máu và nơi đẻ trứng Việc không có sẵn chỗ đậu nghỉ và nơi sinh sản khiến muỗi cái phải bay xa hơn để tìm nơi đẻ trứng, từ đó làm tăng khả năng lây lan bệnh mà chúng truyền tải.

1.6.2 Phân bố của muỗi Aedes trên thế giới

Muỗi Aedes, với hơn 1000 loài, xuất hiện rộng rãi trên toàn cầu Trong số đó, muỗi Ae aegypti nổi bật nhất do vai trò là véc tơ truyền bệnh và ứng dụng trong nghiên cứu phòng thí nghiệm.

Các tác giả đã thống kê được Ae aegypti phân bố ở 142 quốc gia Phân bố của

Muỗi Ae albopictus đã xuất hiện ở hơn 70 quốc gia trên toàn thế giới Trong nửa đầu thế kỷ 20, Ae aegypti được phát hiện ở hầu hết các khu vực nhiệt đới và cận nhiệt đới, trải dài từ vĩ tuyến 35° Bắc đến vĩ tuyến 35° Nam tại châu Á, châu Mỹ và châu Phi Loài muỗi này phổ biến ở Nam và Trung Mỹ, trong khi ở châu Á, trước Thế chiến thứ hai, mật độ muỗi thấp và phạm vi phân bố hạn chế Tuy nhiên, sau đó, Ae aegypti đã mở rộng đáng kể vùng phân bố tại nhiều quốc gia ở châu Á và Tây Thái Bình Dương.

Hiện nay, muỗi Ae aegypti và Ae albopictus phổ biến ở hầu hết các quốc gia nhiệt đới và cận nhiệt đới, nhưng hiếm khi xuất hiện bên ngoài khu vực xích đạo giữa vĩ tuyến 35 độ Bắc và 35 độ Nam.

Phân bố địa lý của muỗi Ae aegypti và Ae albopictus đang có xu hướng mở rộng, xâm nhập vào những khu vực chưa từng có loại muỗi này, làm gia tăng nguy cơ lây lan bệnh sốt xuất huyết (SXHD) ở những cộng đồng trước đây chưa bị ảnh hưởng Tại Đông Nam Á, đặc biệt ở những vùng bán khô hạn như Ấn Độ, Ae aegypti là véc tơ truyền bệnh chính trong khu vực đô thị, với sự biến động của quần thể muỗi phụ thuộc vào lượng mưa và thói quen dự trữ nước Ở các quốc gia Đông Nam Á có lượng mưa trên 200mm mỗi năm, quần thể Ae aegypti và Ae albopictus ổn định hơn, hiện diện tại khu vực đô thị, bán đô thị và nông thôn Tại Indonesia, Myanmar và Thái Lan, thói quen dự trữ nước ở khu vực bán đô thị dẫn đến mật độ muỗi cao hơn so với khu vực đô thị Sự đô thị hóa không có kế hoạch làm gia tăng các sinh cảnh thuận lợi cho sự phát triển của Ae aegypti và Ae albopictus Ở một số thành phố có hệ thực vật phong phú, cả hai loại muỗi này đều có mặt, nhưng sự hiện diện của chúng phụ thuộc vào sinh cảnh phù hợp và mức độ đô thị hóa Ae aegypti thường chiếm ưu thế ở khu vực đô thị, trong khi Ae albopictus xuất hiện nhiều hơn ở những nơi thoáng đãng và có nhiều cây cối.

1.6.3 Phân bố của muỗi Aedes ở Việt Nam

Việt Nam, với khí hậu nhiệt đới, là nơi sinh sống phổ biến của muỗi Ae aegypti và Ae albopictus, phân bố rộng rãi ở các khu dân cư từ thành phố đến nông thôn và miền núi Hai loài muỗi này chủ yếu tập trung tại các thành phố lớn, đồng bằng ven biển và làng mạc gần đường giao thông, nơi có mật độ dân cư cao và nhiều dụng cụ chứa nước Sự phát triển kinh tế, đô thị hóa nhanh chóng và tình trạng vệ sinh môi trường kém đã tạo điều kiện cho muỗi Aedes mở rộng vùng phân bố Trước năm 1984, muỗi Ae aegypti và Ae albopictus chỉ xuất hiện ở một số khu vực trung du và đồng bằng miền Bắc, nhưng hiện nay đã lan rộng ra nhiều thành phố và khu dân cư đông đúc như Hà Nội, Hải Phòng, và các tỉnh khác.

Muỗi Ae aegypti phân bố chủ yếu ở khu vực nội thành và nội thị, tương đương với vùng đồng bằng ven biển, và thường có mật độ cao hơn so với ngoại thành và ngoại thị Tại các vùng nông thôn, muỗi chỉ xuất hiện ở những điểm giao thông thủy bộ Ở Hà Nội, nhiều nghiên cứu đã được thực hiện để tìm hiểu sự phân bố của hai loài muỗi này.

Năm 2011, Hà Nội ghi nhận chỉ số mật độ muỗi Ae aegypti và Ae albopictus trung bình lớn hơn 0,2 con/nhà, với tỷ lệ nhà có muỗi đạt 12,12% So với 11 tỉnh/thành phố khác ở miền Bắc, Hà Nội có chỉ số muỗi cao nhất.

Hà Nội, với quá trình đô thị hóa lâu dài, tạo điều kiện thuận lợi cho sự phát triển của muỗi Aedes, đặc biệt là Ae aegypti Nghiên cứu của Đỗ Thị Phương Bắc năm 2009 cho thấy bọ gậy của Ae aegypti chủ yếu xuất hiện ở bể nước lớn hơn 500 lít và bể cảnh tại ba quận Hoàng Mai, Thanh Trì, Từ Liêm Mặc dù bọ gậy Ae aegypti chỉ chiếm 24,72% tổng số bọ gậy của hai loài, nhưng muỗi trưởng thành hút máu trong nhà lại chiếm 66,30% Ae albopictus có số lượng bọ gậy nhiều hơn Ae aegypti 2,4 lần, nhưng số muỗi trưởng thành hút máu của Ae aegypti lại cao hơn 1,9 lần so với Ae albopictus Điều này phản ánh đặc tính sinh thái của từng loài, với Ae aegypti thường trú ngụ trong nhà, trong khi Ae albopictus thích sống ngoài trời Theo Vũ Trọng Dược (2015), tỷ lệ phân bố của Ae albopictus tại các khu dân cư không có ổ dịch cao hơn Ae aegypti, nhưng tại các ổ dịch, mật độ muỗi Ae aegypti lại vượt trội hơn rất nhiều.

Hóa chất diệt côn trùng và chiến lược phòng chống muỗi kháng hóa chất diệt côn trùng

1.7.1 Hóa chất diệt côn trùng

Nhóm hóa chất đầu tiên bao gồm các dẫn xuất clo từ hợp chất hữu cơ như diphenyletan, cyclodien, benzen và hexan, nổi bật với tính bền vững trong môi trường và thời gian bán phân hủy dài Những hóa chất này, như Aldrin, Dieldrin, DDT, Heptachlor và Lindan, có độc tính cao đối với côn trùng và động vật máu nóng, gây ảnh hưởng tiêu cực đến môi trường và sức khỏe con người, dẫn đến việc chúng bị cấm sử dụng.

Nhóm hóa chất carbamat, là nhóm hóa chất thứ hai với các dẫn xuất hữu cơ của acid cacbamic, có đặc điểm là ít bền vững trong môi trường tự nhiên nhưng lại có độc tính cao đối với con người và động vật Chúng tác động trực tiếp lên men cholinesterase của hệ thần kinh, gây độc tương tự như nhóm lân hữu cơ Các hợp chất trong nhóm carbamat, như izolan, dimetan, pyramat và pyrolan, ít được sử dụng do hiệu lực thấp và chi phí cao.

Nhóm hóa chất phospho hữu cơ, ra đời sau năm 1960, có tác dụng nhanh và rộng trong phòng chống côn trùng, hoạt động qua cả hai phương thức tiếp xúc và xông hơi Chúng ức chế cạnh tranh pseudocholinesterase và acetylcholinesterase, ngăn chặn sự thủy phân acetylcholine, dẫn đến tê liệt hệ thống thần kinh của côn trùng Tuy nhiên, nhóm hóa chất này có độc tính cao đối với con người, không bền vững trong môi trường và có mùi khó chịu, nên hiện tại chỉ được sử dụng hạn chế.

Nhóm hóa chất pyrethroid, ra đời từ năm 1970, bắt nguồn từ Pyrethrin chiết xuất từ hoa cúc Pyrethrum Các hợp chất trong nhóm này được phân chia thành nhiều phân nhóm: allethrin (phân nhóm 1) có tác dụng diệt ruồi và muỗi nhưng dễ bị phân hủy dưới ánh sáng; tetramethrin, resmethrin, phenothrin (phân nhóm 2); permethrin, fenvalerat (phân nhóm 3) có khả năng diệt côn trùng mạnh và bền dưới ánh sáng; và cypermethrin, deltamethrin (phân nhóm 4) Pyrethroid tác động lên hệ thần kinh trung ương của côn trùng, gây rối loạn dẫn truyền xung động qua kênh natri Hiện nay, pyrethroid được sử dụng rộng rãi nhờ tính an toàn với con người và môi trường, khả năng tự phân hủy nhanh trong đất và hiệu quả diệt côn trùng tốt.

Hóa chất nicotine, thuộc nhóm hóa chất ra đời vào những năm 1980, là một loại alkaloid có trong lá cây thuốc lá Nhóm hóa chất này tác động lên hệ thần kinh và bao gồm các thành phần như acetamiprid, clothianidin, imidacloprid, nitenpyram, nithiazine, thiacloprid và thiamethoxam So với nhóm phospho hữu cơ, nhóm neonicotinoid có độc tính thấp hơn đối với chim và động vật có vú.

1.7.1.6 Nhóm ức chế sinh trưởng

Nghiên cứu diệt ấu trùng muỗi truyền bệnh đang thu hút sự quan tâm của nhiều quốc gia thông qua việc sử dụng độc tố từ vi khuẩn, hóa chất và chất điều hòa sinh trưởng Các hóa chất ức chế sinh trưởng được chia thành hai nhóm chính: nhóm ức chế kitin, giúp ngăn chặn sự phát triển và lột xác của muỗi, với tiêu biểu là hoạt chất Diflubenzuron; và nhóm ức chế hóc môn trẻ (Juvenile hormone), tác động lên muỗi trong giai đoạn cuối của bọ gậy và quăng, với Pyriproxyfen là một trong năm hoạt chất nổi bật.

1.7.7.7 Nhóm hóa chất bổ trợ, ức chế enzym kháng

Piperonyl Butoxide (PBO) là một dẫn xuất tổng hợp của benzodioxole, được sử dụng như chất phối hợp với hóa chất diệt côn trùng PBO tăng cường tác dụng của nhóm pyrethroid bằng cách giảm khả năng khử độc của enzyme cytochrom P450 monooxygenase Nhờ đó, PBO đóng vai trò quan trọng trong việc nâng cao hiệu quả của pyrethroid đối với muỗi kháng hóa chất này.

1.7.2 Chiến lược phòng chống muỗi kháng hóa chất diệt côn trùng

Theo khuyến cáo của WHO (2016) và báo cáo toàn cầu về kháng hóa chất phòng chống véc tơ sốt rét giai đoạn 2010-2016, để kiểm soát muỗi kháng hóa chất, cần thực hiện chiến lược sử dụng hóa chất theo ba nội dung cụ thể.

Sử dụng luân phiên nhiều nhóm hóa chất

Chiến lược luân phiên hóa chất diệt côn trùng giúp giảm thiểu sự phát triển của tính kháng trong quần thể côn trùng Việc áp dụng các phương thức sử dụng khác nhau sẽ làm chậm quá trình hình thành các thể kháng mới Theo khuyến cáo của WHO (2016), việc luân chuyển hóa chất diệt côn trùng cần được thực hiện với một chiến lược cụ thể để đảm bảo hiệu quả lâu dài.

Sử dụng xen kẽ các hóa chất

Chiến lược khảm là phương pháp áp dụng xen kẽ hai hoặc nhiều loại hóa chất diệt côn trùng khác nhau, giúp giảm tần suất của các alen kháng Phương pháp này hiệu quả hơn khi côn trùng di chuyển qua các khu vực được xử lý khác nhau, tạo ra áp lực chọn lọc mạnh mẽ ở những khu vực sử dụng hóa chất thay thế Chiến lược khảm có thể được triển khai ở nhiều khu vực khác nhau trong một địa phương.

Sử dụng phối hợp nhiều nhóm hóa chất diệt

Phối hợp hóa chất diệt là việc sử dụng đồng thời nhiều nhóm hóa chất để kiểm soát quần thể muỗi kháng hóa chất Giả thuyết cho rằng xác suất phát triển kháng thấp sẽ dẫn đến việc cá thể kháng trở nên hiếm Việc áp dụng hóa chất từ các nhóm khác nhau có thể là giải pháp hiệu quả để quản lý muỗi Aedes kháng hóa chất Tuy nhiên, chương trình phòng chống sốt xuất huyết Dengue quốc gia của Việt Nam hiện tại vẫn khuyến cáo sử dụng hóa chất đơn chất, điều này gây khó khăn trong việc kiểm soát muỗi kháng Do đó, việc đánh giá các hóa chất phối hợp và dạng mới là cần thiết để cải thiện khả năng kiểm soát muỗi Aedes trong tương lai.

Thông tin chung điểm nghiên cứu

Hà Nội, thủ đô của Cộng hòa Xã hội chủ nghĩa Việt Nam, là thành phố có diện tích lớn nhất cả nước sau khi tỉnh Hà Tây được sáp nhập Với hơn 8 triệu người dân theo số liệu năm 2019, Hà Nội đứng thứ hai về dân số, và nếu tính cả những cư dân không đăng ký, con số thực tế gần đạt 10 triệu người Mật độ dân số của thành phố này rất cao, phản ánh sự phát triển nhanh chóng và đô thị hóa mạnh mẽ.

Hà Nội là 2.398 người/km², mật độ giao thông là 105,2 xe/km² mặt đường Hiện nay, Hà Nội là đô thị loại đặc biệt của Việt Nam [54].

Thủ đô Hà Nội là trung tâm chính trị, kinh tế, văn hóa, du lịch và khoa học của Việt Nam Mật độ dân số tại Hà Nội không đồng đều giữa các quận nội và ngoại thành, với mật độ trung bình đạt 2.505 người/km² Quận Đống Đa có mật độ dân số cao nhất, lên tới 35.341 người/km², trong khi các huyện ngoại thành như Sóc Sơn, Ba Vì, Mỹ Đức và Ứng Hòa có mật độ dưới 1.000 người/km².

Về cơ cấu dân số, theo số liệu 1 tháng 4 năm 1999, cư dân Hà Nội và Hà Tây chủ yếu là người Kinh, chiếm tỷ lệ 99,1% [54].

Hà Nội là trung tâm của nhiều khu công nghiệp và khu chế xuất, với hàng nghìn cơ sở sản xuất, nhà máy và làng nghề Ngoài ra, thành phố còn phát triển mạnh mẽ các trung tâm dịch vụ, tạo nên một môi trường kinh tế sôi động và đa dạng.

Hà Nội hiện có hơn 100 cơ sở giáo dục đại học, cao đẳng và trung cấp, cùng với các trung tâm đào tạo quốc tế, thu hút một lượng lớn lao động từ các tỉnh khác đến sinh sống, làm việc, du lịch và học tập Sự di cư này không chỉ bổ sung nguồn lực lao động cho thành phố mà còn thúc đẩy sự phát triển của ngành kinh tế dịch vụ Người di cư cũng đóng góp vào khu vực phi kết cấu, đáp ứng nhu cầu về nghề thủ công và lao động phổ thông, cũng như cung cấp thực phẩm Tuy nhiên, tình trạng di dân tự do này đã gây ra những tác động tiêu cực đến tình hình dịch bệnh tại Hà Nội, đặc biệt là sự gia tăng của bệnh sốt xuất huyết Dengue.

Trong 20 năm trở lại đây, Hà Nội ghi nhận nhiều vụ dịch SXHD lớn như năm

Vào năm 1998, dịch sốt xuất huyết do vi rút Dengue 3 đã bùng phát Đến năm 2009, miền Bắc ghi nhận 18.485 trường hợp mắc, trong đó Hà Nội chiếm 16.090 ca, tương đương 87% tổng số ca của toàn miền Bắc, với 4 ca tử vong Năm 2015, dịch sốt xuất huyết lại tái diễn tại miền Bắc, với 16.913 ca mắc, trong đó 90% tập trung tại Hà Nội với 15.412 trường hợp Nguyên nhân chính của dịch này là do vi rút Dengue tuýp 1 và 2.

Từ năm 2000 đến 2015, Hà Nội đã ghi nhận sự lưu hành của cả 4 tuýp virus Dengue với tỷ lệ lần lượt là 36,28% (D1), 44,87% (D2), 11,69% (D3) và 7,16% (D4) Tỷ lệ phát hiện ca dương tính ở bệnh nhân nghi mắc sốt xuất huyết tại Hà Nội trong giai đoạn này cho thấy sự đa dạng và nguy cơ của bệnh.

Trong tổng số trường hợp mắc bệnh được xét nghiệm, có 33,48% trường hợp sốt kéo dài từ 1 đến 5 ngày Tỷ lệ phát hiện dương tính với mẫu bệnh phẩm nghi ngờ mắc sốt xuất huyết trong giai đoạn từ 5 đến 10 ngày sốt bằng kỹ thuật MAC-ELISA đạt 15,6%.

Bệnh sốt xuất huyết (SXHD) do virus D1 là nguyên nhân chính gây ra dịch SXHD tại Hà Nội vào các năm 2009 và 2015 Từ năm 2003 đến 2015, đã có tổng cộng 413 bệnh phẩm dương tính với virus Dengue trong 1.164 mẫu xét nghiệm SXHD tại Hà Nội bằng phương pháp RT-PCR, trong đó virus D1 được phát hiện với tỷ lệ 36,8%, tương ứng với 152 trường hợp.

ĐỐI TƯỢNG VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU

Mục tiêu 1: Xác định đặc điểm sinh học, sinh thái học của muỗi Aedes

aegypti và Aedes albopictus tại phòng thí nghiệm.

Muỗi, bọ gậy Ae aegypti và Ae albopictus tại điểm nghiên cứu.

2.1.2 Thời gian và địa điểm nghiên cứu

- Thời gian: Từ tháng 5/2020 đến tháng 10 năm 2021

Tại phòng thí nghiệm: Phòng thí nghiệm Khoa Côn trùng, Viện Sốt rét – Ký sinh trùng – Côn trùng Trung ương.

2.1.3 Phương pháp nghiên cứu a) Thiết kế nghiên cứu

Nghiên cứu phòng thí nghiệm. b) Cỡ mẫu nghiên cứu

Tất cả mẫu muỗi, quăng, bọ gậy Aedes thu thập được tại thực địa. c) Phương pháp chọn mẫu

Tại phòng thí nghiệm, bọ gậy được nuôi để xác định các đặc điểm sinh học của chúng Các phòng nuôi được cách ly với khu vực có hóa chất, đảm bảo an toàn cho quá trình nghiên cứu Bọ gậy và muỗi được nuôi trong các phòng riêng biệt, với điều kiện nhiệt độ duy trì ở mức 26±2 độ C và độ ẩm 80±10%.

Xác định đặc điểm sinh học của muỗi Ae aegypti và Ae albopictus. e) Phương pháp xác định biến số và đo lường biến số

- Xác định khả năng sinh sản của muỗi Aedes.

- Xác định thời gian sống của muỗi Aedes. f) Phiếu thu thập số liệu.

Phiếu ghi thông tin g) Các chỉ số đánh giá

- Chu kỳ vòng đời của muỗi

- Tỷ lệ nở của trứng và ấu trùng

- Khả năng sinh sản của muỗi

- Thời gian sống của muỗi

- Hoạt động hút máu của muỗi h) Các kỹ thuật sử dụng trong nghiên cứu

- Kỹ thuật định loại muỗi, bọ gậy Aedes: Theo khóa định loại muỗi (Diptera:

Trong các nghiên cứu về muỗi tại Việt Nam, đã có những khóa định loại quan trọng cho các giống và loài thuộc phân họ Culicinae, cụ thể là hai giống Culex và Lutzia Năm 2016, khóa định loại muỗi đến loài của các giống này đã được công bố, tiếp theo là khóa định loại cho các giống thuộc phân họ Culicinae vào năm 2019.

- Kỹ thuật xác định một số đặc điểm sinh học, sinh thái của muỗi Ae aegypti và Ae. albopictus trong phòng thí nghiệm.

Bọ gậy Aedes được thu thập từ các điểm nghiên cứu đã được nuôi thành muỗi Trứng của thế hệ F1 được lấy để xác định các đặc điểm sinh học trong môi trường phòng thí nghiệm.

Nghiên cứu chu kỳ vòng đời của muỗi Ae aegypti được thực hiện bằng cách nuôi 300 trứng muỗi trong 6 lô thử nghiệm, mỗi lô gồm 50 quả trứng, trong khay men kích thước 20cmx30cmx2,5cm Điều kiện nuôi được duy trì ở nhiệt độ 26±2°C và độ ẩm 80±10% Thức ăn cho bọ gậy được cung cấp từ thức ăn của cá Quá trình theo dõi được tiến hành qua các giai đoạn: từ trứng đến bọ gậy, từ bọ gậy đến quăng, từ quăng đến muỗi, và từ khi muỗi nở cho đến khi hút máu và đẻ trứng.

* Xác định chu kỳ vòng đời muỗi Ae albopictus: Thực hiện các bước tương tự như loài muỗi Ae aegypti.

* Xác định tỷ lệ nở, phát triển của trứng và ấu trùng Ae aegypti.

Thí nghiệm được thực hiện với 300 trứng muỗi Ae aegypti, chia thành 6 lô, mỗi lô 50 trứng, được thả vào khay men kích thước 20 cm x 30 cm x 2,5 cm trong điều kiện phòng nuôi với nhiệt độ 26±2 °C và độ ẩm 80±10% Thức ăn cho bọ gậy được cung cấp từ thức ăn của cá Thời gian và số lượng trứng nở được ghi nhận từ khi trứng đầu tiên nở cho đến khi không còn trứng nào nở trong 5 ngày liên tiếp Sau đó, số lượng bọ gậy được theo dõi cho đến khi chúng phát triển thành quăng và muỗi trưởng thành.

Tỷ lệ phát triển của các giai đoạn được tính như sau:

Tỷ lệ nở của trứng (%) = -100.

Số lượng trứng theo dõi

Tỷ lệ phát triển của bọ gậy (%) = -100.

Số lượng bọ gậy theo dõi

Tỷ lệ phát triển của quăng (%) = -100.

Số lượng quăng theo dõi

Tỷ lệ phát triển từ trứng tới muỗi (%) = -100.

Tổng số trứng theo dõi

* Xác định tỷ lệ nở, phát triển của trứng và ấu trùng Ae albopictus Thực hiện các bước tương tự như loài muỗi Ae aegypti.

* Xác định khả năng sinh sản của muỗi Ae aegypti : Thả 1.500 muỗi mới nở chia thành 5 lô thử nghiệm mỗi lô 300 cá thể vào lồng kích thước 30 cm x 30 cm x

Trong nghiên cứu này, muỗi được nuôi trong điều kiện 30 cm với tỷ lệ đực/cái là 1:1 Sau 3 ngày, muỗi cái được cho hút máu từ chuột bạch Tiếp theo, sau 5 ngày, 50 muỗi cái được chọn ngẫu nhiên và nhốt riêng vào từng ống Trong quá trình theo dõi, số lượng muỗi đẻ, số lần đẻ và số trứng đẻ của mỗi muỗi cái được ghi lại cẩn thận.

Trong suốt vòng đời của một muỗi cái, số lượng trứng trung bình mà nó sinh ra được tính bằng tổng số trứng của tất cả các muỗi cái trong quá trình sinh sản, dựa trên tổng số muỗi đã được theo dõi.

- Số lần đẻ trứng trung bình của một muỗi cái được tính bằng tổng số lần đẻ trứng của tất cả muỗi trên tổng số muỗi theo dõi.

Muỗi cái trung bình đẻ một số lượng trứng nhất định trong mỗi lần sinh sản Số lượng trứng này được tính bằng tổng số trứng mà một muỗi cái có thể đẻ trong suốt vòng đời của mình, chia cho số lần đẻ trứng mà muỗi cái thực hiện.

* Xác định khả năng sinh sản của muỗi Ae albopictus: Thực hiện các bước tương tự như muỗi Ae aegypti.

Để xác định thời gian sống của muỗi Ae aegypti, 300 muỗi mới nở được thả vào lồng kích thước 30 cm x 30 cm x 30 cm với tỷ lệ đực/cái là 1:1, cho chúng hút nước đường glucose 10% Sau 3 ngày tuổi, muỗi được cho đốt chuột bạch Ba ngày sau lần đốt máu đầu tiên, dụng cụ thu trứng được đặt vào lồng nuôi Hàng ngày, trứng được thu, nước đường được thay và muỗi tiếp tục đốt chuột cho đến khi tất cả muỗi trong lồng chết.

Hàng ngày đếm số lượng muỗi đực, cái còn sống cho đến khi số muỗi theo dõi chết hết.

Thời gian sống của muỗi được tính theo công thức của Lanciani (1987) [58]

∑ S x e o = x S = o o − 2 eo: Thời gian sống x: Số ngày sau nở

Tổng số muỗi được theo dõi bao gồm số lượng muỗi sống trong từng ngày Số ngày n được tính từ khi muỗi bắt đầu nở cho đến ngày cuối cùng Để xác định thời gian sống của muỗi Ae albopictus, cần thực hiện các bước tương tự như đối với muỗi Ae aegypti.

* Xác định hoạt động đốt mồi của muỗi Ae aegypti Theo phương pháp bắt muỗi bằng bẫy màn mồi người.

- Xác định hoạt động hút máu của muỗi Ae aegypti:

+ Thả 200 muỗi cái Ae aegypti vào phòng 5 m x 4 m.

+ Trong phòng treo 2 màn: 01 màn đôi kích thước 2 m x 3 m x 3 m ở ngoài, bên trong màn đôi treo 01 màn đơn kích thước 1,2 m x 2 m x 2 m.

+ 01 người mồi muỗi ngồi phía bên trong màn đơn.

+ Khi treo màn đôi để mép dưới (chân màn) cách mặt sàn khoảng 15 – 20cm để muỗi có thể bay vào trong qua khoảng hở này.

Để kiểm soát muỗi hiệu quả, tiến hành bắt muỗi đậu trên màn (bao gồm màn đơn và màn đôi) mỗi giờ một lần Sử dụng đèn pin để soi tìm muỗi và ống tupe để bắt chúng Đồng thời, theo dõi nhiệt độ, độ ẩm và ánh sáng trong phòng để cập nhật tình hình khi tiến hành bắt muỗi.

Thời gian thực hiện từ 6 giờ sáng hôm trước đến 6 giờ sáng hôm sau.

Thí nghiệm được lặp lại 3 lần.

* Xác định hoạt động đốt mồi của muỗi Ae albopictus: Thực hiện các bước tương tự như với muỗi Ae aegypti.

2.1.4 Phương pháp kiểm soát nhiễu và sai số

- Tập huấn cho điều tra viên trước khi thực hiện.

- Tuân thủ đúng qui định trong nghiên cứu.

2.1.5 Phương pháp phân tích và xử lý số liệu

Trước khi nhập liệu, số liệu thu thập được đã được làm sạch để đảm bảo độ chính xác Quá trình nhập liệu được thực hiện trên hai máy tính độc lập nhằm so sánh và giảm thiểu sai số Dữ liệu được nhập thông qua phần mềm Microsoft Excel và sau đó được chuyển đổi sang định dạng SPSS.

Trong quá trình phân tích, việc phát hiện và loại bỏ các giá trị ngoại lai, bao gồm các loài muỗi khác, là cần thiết để đảm bảo tính chính xác và độ tin cậy của dữ liệu.

Mục tiêu 2: Xác định độ nhạy cảm với hóa chất diệt côn trùng của muỗi

Aedes aegypti và Aedes albopictus tại các điểm nghiên cứu bằng phương pháp của Tổ chức Y tế Thế giới (WHO) và của Trung tâm Kiểm soát Bệnh tật Hoa

- Muỗi, bọ gậy Ae aegypti và Ae albopictus tại điểm nghiên cứu.

- Các hoá chất diệt côn trùng của WHO cung cấp Alphacypermethrin

- Các hoá chất diệt côn trùng của USCDC cung cấp: Alphacypermethrin, lambdacyhalothrin, deltamethrin, permethrin (bảng 1).

Bảng 2.1 Liều thử nghiệm và thời gian thử nghiệm của từng loại hóa chất đối với muỗi Aedes theo phương pháp USCDC (2019) Hóa chất thử nghiệm

Liều hóa chất thử nghiệm /loài

(àg/chai) Thời gian thử

2.2.2 Thời gian và địa điểm nghiên cứu

- Thời gian: Từ tháng 5/2020 đến tháng 10 năm 2021

Chọn lựa các điểm có dịch sốt xuất huyết (SXHD) từ năm 2016 đến 2019 hoặc những nơi có nhiều ca bệnh SXHD hiện tại và/hoặc mật độ véc tơ cao (> 0,5 con/nhà) và/hoặc chỉ số Breteau cao (>20) Đặc biệt chú ý đến các khu vực đông dân cư như bệnh viện, trường học và khu công nghiệp để nâng cao hiệu quả phòng chống dịch bệnh.

Quận Hai Bà Trưng: Phường Bạch Mai và phường Vĩnh Tuy

Quận Hà Đông: Phường Kiến Hưng và xã Phú Lương

Huyện Hoài Đức: Xã Sơn Đồng và xã La Phù

2.2.3 Phương pháp nghiên cứu a) Thiết kế nghiên cứu

- Nghiên cứu phòng thí nghiệm.

- Nghiên cứu cắt ngang và mô tả. b) Cỡ mẫu nghiên cứu

- Chọn ngẫu nhiên 50 nhà mỗi xã, phường để điều tra muỗi, bọ gậy Aedes.

- Tất cả mẫu muỗi, quăng, bọ gậy Aedes thu thập được tại thực địa.

- Những mẫu muỗi còn sống sau khi tiếp xúc với hoá chất diệt côn trùng. c) Phương pháp chọn mẫu

+ Đối với muỗi, bọ gậy Aedes thu thập ở thực địa: Tất cả muỗi, bọ gậy thu được từ các hộ gia đình.

Quy trình điều tra bệnh sốt xuất huyết Dengue được quy định trong "QĐ Số 3711/QĐ-BYT ngày 19 tháng 9 năm 2014" của Bộ Y tế, nhằm hướng dẫn giám sát và phòng, chống bệnh này.

Muỗi Aedes được sử dụng để xác định độ nhạy cảm theo phương pháp của WHO (2016) và USCDC (2019) Các mẫu muỗi trưởng thành, chưa hút máu và có độ tuổi từ 2 đến 5 ngày, được nuôi từ bọ gậy/quăng thu thập từ thực địa Sau khi tiếp xúc với hóa chất diệt côn trùng, những mẫu muỗi sống sót sẽ được phân tích để tìm kiếm gen kháng.

Tại thực địa, việc điều tra và thu thập muỗi Aedes được thực hiện tại các điểm nghiên cứu, với mục tiêu đánh giá các chỉ số muỗi trưởng thành và bọ gậy Các chỉ số bao gồm: mật độ muỗi, tỷ lệ nhà có muỗi, tỷ lệ nhà có bọ gậy, tỷ lệ dụng cụ chứa nước có bọ gậy, và chỉ số BI Ngoài ra, nghiên cứu cũng xem xét tập tính trú đậu của muỗi Aedes, bao gồm nơi trú ẩn trong nhà, ngoài nhà, bề mặt giá thể và vị trí đặt giá thể Cuối cùng, xác định ổ bọ gậy Aedes cũng là một phần quan trọng, bao gồm việc phân tích vị trí (trong nhà, ngoài nhà), chất liệu, hình dáng và kích thước của ổ đẻ.

Tại phòng thí nghiệm, chúng tôi xác định độ nhạy cảm của muỗi Aedes tại các điểm nghiên cứu bằng hoá chất diệt côn trùng theo phương pháp của WHO (2016) và USCDC (2019) Phương pháp này bao gồm việc xác định biến số và đo lường các biến số liên quan để đánh giá hiệu quả của các loại hoá chất.

- Thành phần các loài muỗi Aedes tại điểm nghiên cứu.

- Mật độ các loài muỗi Aedes.

- Ổ bọ gậy nguồn của muỗi Aedes.

- Tỷ lệ muỗi chết sau 24 giờ thử nghiệm theo phương WHO.

- Tỷ lệ muỗi chết sau 30 phút thử nghiệm theo phương USCDC. f) Phiếu thu thập số liệu

- Phiếu điều tra muỗi Aedes,

- Phiếu phỏng vấn người tham gia nghiên cứu.

- Phiếu ghi thông tin g) Các chỉ số đánh giá

- Chỉ số nhà có quăng/bọ gậy (HI)(%) = (Số nhà điều tra có bọ gậy Aedes/ Tổng số nhà điều tra) x 100.

Chỉ số dụng cụ chứa nước có bọ gậy/quăng (CI) được tính bằng công thức: CI (%) = (Số dụng cụ điều tra có bọ gậy Aedes / Tổng số dụng cụ điều tra trong và ngoài nhà) x 100 Công thức này giúp đánh giá mức độ hiện diện của bọ gậy Aedes trong các dụng cụ chứa nước, từ đó hỗ trợ các biện pháp phòng chống dịch bệnh hiệu quả.

- Chỉ số Breteau (BI) = Số DCCN có bọ gậy Aedes trong 100 nhà điều tra.

- Chỉ số mật độ muỗi (CSMĐM, DI)

- DI (con/nhà) = (Tổng số muỗi cái Aedes bắt được/ Tổng số nhà điều tra)

- Chỉ số nhà có muỗi (CSNCM) (%) = (Tổng số nhà có muỗi cái Aedes/ Tổng số nhà điều tra) x 100.

- Độ nhạy cảm của muỗi Aedes với HCDCT. h) Các kỹ thuật sử dụng trong nghiên cứu

- Kỹ thuật thu thập muỗi trưởng thành và bọ gậy Aedes:

Thu thập muỗi và bọ gậy Aedes theo quy trình giám sát véc tơ của Bộ Y tế năm

Vào năm 2014, nghiên cứu được tiến hành bằng cách chọn ngẫu nhiên các hộ gia đình để điều tra muỗi và bọ gậy tại các điểm nghiên cứu Thời gian điều tra diễn ra từ 7 giờ sáng đến 11 giờ 30 phút và từ 13 giờ 30 phút đến 17 giờ, với tối thiểu 50 hộ gia đình được khảo sát tại mỗi xã/phường Mỗi xã/phường được tổ chức thành 2 nhóm điều tra, mỗi nhóm gồm 3 người: 1 người bắt muỗi, 1 người bắt bọ gậy và 1 người ghi chép số liệu Tại mỗi hộ gia đình, việc bắt muỗi được thực hiện trong toàn bộ không gian trong và ngoài nhà, nhưng không quá 15 phút Không gian trong nhà được xác định là các khu vực có tường hoặc vách và mái che, trong khi không gian ngoài nhà bao gồm các khu vực không có mái che như lối đi, sân, cũng như các khu vực quanh nhà có mái che nhưng không có tường bao như hiên nhà và ban công.

Để thu thập muỗi ngoài trời, bạn có thể sử dụng máy hút muỗi cầm tay để bắt muỗi khi chúng đậu ở những nơi thường trú như lá cây, thân cây, và các dụng cụ chứa nước hay đồ vật để ngoài trời.

Để thu thập muỗi trong nhà, hãy chú ý đến những nơi muỗi thường trú ẩn như gầm bàn, gầm giường và nơi treo quần áo Muỗi nên được lưu giữ trong các ống thủy tinh, kèm theo nhãn ghi rõ địa điểm, vị trí, thời gian và tên người bắt muỗi.

Bọ gậy được thu thập từ các DCCN và lưu giữ trong lọ mẫu có ghi đầy đủ thông tin như địa điểm, loại DCCN, số lượng bọ gậy, thời gian và tên người thu thập Sau khi thu thập, bọ gậy được bảo quản cẩn thận và vận chuyển về phòng thí nghiệm của Khoa Côn trùng thuộc Viện Sốt rét – Ký sinh trùng – Côn trùng Trung ương để tiến hành nghiên cứu.

- Kỹ thuật định loại muỗi, bọ gậy Aedes: Theo khóa định loại muỗi, bọ gậy Aedes ở

* Xác định độ nhạy cảm của muỗi Aedes với hóa chất diệt côn trùng

- Kỹ thuật thử nhạy cảm theo phương pháp của WHO (2016)

[60] Bước 1 Chuẩn bị ống nghỉ

Để thực hiện thí nghiệm, hãy chuẩn bị một tờ giấy trắng sạch có kích thước 12 x 15 cm Trên tờ giấy, ghi rõ các thông tin cần thiết như số thứ tự ống, tên hóa chất, loài muỗi và ngày tháng thử nghiệm Sử dụng kẹp bằng thép để giữ tờ giấy ép sát vào thành ống.

Bước 2 Cho muỗi vào ống nghỉ

Cho 25 con muỗi vào một ống nghỉ

Bước 3 Muỗi nghỉ trước khi tiếp xúc với giấy tẩm hoá chất

Sau khi đã cho đủ 25 con muỗi vào ống, để ống nghỉ ở tư thế thẳng đứng với đầu ống có lưới hướng lên trên trong thời gian 1 giờ

Bước 4 Chuẩn bị ống tiếp xúc

Để tiến hành thử nghiệm, hãy cho vào mỗi ống tiếp xúc một tờ giấy đã được tẩm hoá chất Cuộn tờ giấy thành hình trụ và đặt vào ống tiếp xúc Sử dụng kẹp bằng đồng để giữ cho tờ giấy ép sát vào thành ống, đảm bảo quá trình thử nghiệm diễn ra hiệu quả.

Bước 5 Chuyển muỗi từ ống nghỉ sang ống tiếp xúc

Lắp ống tiếp xúc vào tấm đế của ống nghỉ đã có muỗi, sau đó thổi nhẹ nhàng vào ống nghỉ để muỗi bay sang ống tiếp xúc.

Để thực hiện bước 6, hãy đặt ống chứa muỗi ở vị trí thẳng đứng, với đầu ống có lưới hướng lên trên, và giữ nguyên trong 60 phút để muỗi tiếp xúc với giấy tẩm hóa chất.

Bước 7 Chuyển muỗi từ ống tiếp xúc sang ống nghỉ

Ngay sau khi kết thúc thời gian tiếp xúc, chuyển muỗi từ ống tiếp xúc sang ống nghỉ

Bước 8 Muỗi nghỉ sau tiếp xúc

Giữ ống nghỉ trong 24 giờ ở nơi tách biệt, mát mẻ với nhiệt độ từ 25°C ± 2°C và độ ẩm 80% ± 10% Trong suốt thời gian theo dõi, ghi lại nhiệt độ tối đa và tối thiểu của khu vực lưu trữ ống nghỉ.

Tiêu chuẩn đánh giá độ nhạy cảm của muỗi với hoá chất diệt côn trùng:

+ Tỷ lệ muỗi chết từ 98 - 100%: muỗi nhạy cảm với hoá chất thử nghiệm

+ Tỷ lệ muỗi chết từ 90 - 97%: muỗi có khả năng kháng với hoá chất thử nghiệm + Tỷ lệ muỗi chết dưới 90%: muỗi kháng với hoá chất thử nghiệm