Phương pháp nghiên cứu

Một phần của tài liệu Phân lập và nuôi cấy acetobacter xylinum tạo màng cellulose vi khuẩn (Trang 32 - 52)

2.3.1. Phân lập vi khuẩn A.xylinum

Chúng tôi lọc sạch cặn bẩn nước dừa, cho vào bình tam giác 250 ml, đậy bằng giấy báo và để lên men tự nhiên trong vòng 48 giờ ở nhiệt độ phòng từ 28oC- 32oC. Sau 48 giờ trên bề mặt dung dịch nước dừa sẽ xuất hiện váng trắng.

Chúng tôi tiến hành pha loãng váng trắng với nước cất với nồng độ 10-2.

Quá trình pha loãng được thực hiện như sau:

- Lấy 1 ml dịch có chứa váng tráng cho vào ống nghiệm 1, sau đó bổ sung 9

ml nước cất vào và trộn đều.

- Hút lấy 1 ml dung dịch trong ống nghiệm 1 cho vào ống nghiệm 2 và bổ sung vào 9 ml nước cất, trộn đều.

Quá trình cấy trang được tiến hành như sau:

- Thao tác cấy được tiến hành trong tủ cấy vô trùng. Các dụng cụ cần thiết như

đĩa pettri, que cấy đều được rửa sạch và sấy khô ở 160oC trong 2 giờ. Quá trình cấy

được thực hiện bên ngọn lửa đèn cồn.

- Đun môi trường HS (đã hấp khử trùng) cho hòa tan hoàn toàn các thành phần

rồi để nguội xuống khoảng 40oC. Tiến hành rót 15- 20 ml dung dịch vào các đĩa pettri và chờ đến khi thạch đã nguội hoàn toàn thì tiến hành cấy.

- Hút 100 µl dịch pha loãng.

- Dùng que cấy trang để trang đều dịch mẫu lên bề mặt thạch.

- Đĩa thạch sau khi cấy xong sẽ được gói lại bằng giấy báo, úp ngược.

- Điều kiện nhiệt độ phòng từ 28oC- 32oC.

- Sau 48 giờ tiến hành quan sát các đĩa thạch.

Quá trình cấy ria:

- Môi trường HS đã hấp khử trùng được đun sôi lại và để nguội đến khoảng

45-50oC thì tiến hành rót từ 15-20 ml vào đĩa pettri.

- Dùng que cấy ria chọn khuẩn lạc đặc trưng của A. xylinum sau khi đã cấy trang để ria.

- Đĩa thạch sau khi cấy xong sẽ được gói lại bằng giấy báo, úp ngược. - Điều kiện nhiệt độ phòng từ 28oC- 32oC.

2.3.2. Xác định đặc điểm hình thái vi khuẩn A. xylinum

Để xác định hình thái vi khuẩn, chúng tôi tiến hành nhuộm Gram.

Tiến hành thí nghiệm

- Khoanh vùng vị trí cần để phết khuẩn lạc lên trên lam kính.

- Nhỏ một giọt nước cất vào vị trí vừa khoanh.

- Dùng que cấy lấy một ít khuẩn lạc vừa hoạt hóa sau 24 giờ dàn đều lên trên bề mặt lam kính đã được khoanh vùng. Tiến hành hơ nhẹ qua ngọn lửa đèn cồn để cố định tiêu bản và làm khô nước.

- Nhỏ lên 1 vài giọt dung dịch violet và để trong khoảng 30 giây đến 1 phút. - Nghiêng một góc 45o dưới vòi tia để rửa nhẹ.

- Nhuộm tiếp theo bằng thuốc nhuộm Liugol trong thời gian 30 giây đến 1 phút, rồi rửa nhẹ với nước bằng bình tia. (adsbygoogle = window.adsbygoogle || []).push({});

- Sau khi nhuộm bằng Liugon thì tiến hành rửa bằng cồn 90o cho đến khi vùng

tiêu bản mất gần hết màu trong khoảng 10-15 giây rồi rửa lại bắng nước cất.

- Cuối cùng, sau khi hơ nhẹ trên ngọn lửa đèn cồn để làm khô, tiến hành nhỏ dung dịch Fuchsin trong thời gian từ 30 giây tới 1 phút và rửa lại bằng nước.

- Để khô tự nhiên hoặc dùng giấy thấm lau tiêu bản cho sạch xung quanh vùng

vi khuẩn, sau đó quan sát bằng vật kính 100X.

2.3.3. Xác định khả năng sinh trưởng của vi khuẩn A. xylinum

Khả năng sinh trưởng của vi khuẩn được xác định bằng cách đo OD ở bước sóng 600 nm. Dựa vào các số liệu thu được chúng tôi sẽ tiến hành lập đường chuẩn (đường cong sinh trưởng) để xác định các pha sinh trưởng của vi khuẩn, từ đó tiến hành các bước giữ giống và kiểm tra các đặc tính sinh hóa cho phù hợp với giai đoạn sinh trưởng.

Tiến hành thí nghiệm:

- Pha môi trường HS và hấp khử trùng.

- Tiến hành nuôi cấy tĩnh ở nhiệt độ phòng từ 28oC-32oC, hạn chế sự di chuyển các bình nuôi cấy.

- Đo OD600 sau khi cấy 24 giờ một lần.

- Đo liên tục trong 7 ngày.

- Dựng đường cong sinh trưởng của các chủng A. xylinum.

2.3.4. Xác định đặc tính sinh hóa của vi khuẩn A. xylinum

a. Phản ứng catalase

Mục đích:

Chúng tôi kiểm tra khả năng sinh enzyme catalase của A. xylinum để phân giải H2O2.

Tiến hành thí nghiệm:

- Dùng dung dịch H2O2 có nồng độ từ 3-10%, nhỏ vài giọt lên bề mặt lam kính.

- Dùng que cấy lấy một ít khuẩn lạc của vi khuẩn sau hoạt hóa 24 giờ trộn đều

với H2O2 rồi để yên một lúc.

- Quá trình thao tác được thực hiện bên ngọn lửa đèn cồn và trong tủ cấy vô trùng.

- Quan sát: Nếu có hiện tượng sủi bọt khí chứng tỏ vi khuẩn có khả năng phân giải

H2O2.

b. Xác định khả năng chuyển hóa ethanol thành acetic acid

Mục đích:

Dùng để phân lập và kiểm định các vi khuẩn thuộc họ Acetobacter.

Tiến hành thí nghiệm:

- Pha môi trường kiểm tra khả năng chuyển hóa ethanol thành acid.

- Hấp khử trùng ở 121oC trong 15 phút. (adsbygoogle = window.adsbygoogle || []).push({});

- Ethanol được bổ sung vào môi trường trước khi tiến hành cấy.

- Tiến hành rót 15-20ml môi trường vào các đĩa pettri và để nguội.

- Hút 100 µl dịch chứa vi khuẩn cho vào đĩa và dùng que cấy trang trang đều

dịch ra khắp bề mặt thạch.

- Sau đó úp ngược và gói lại bằng giấy báo, để trong điều kiện nhiệt độ phòng

c. Xác định khả năng chuyển hóa glucose thành acetic acid

Mục đích:

Chúng tôi kiểm tra khả năng chuyển hóa glucose thành acid.

Tiến hành thí nghiệm:

- Pha môi trường cơ bản và dung dịch cacbohydrat đem hấp khử trùng ở

121oC trong 15 phút.

- Rót 2,7 ml môi trường cơ bản vào ống nghiệm và thêm 0,3 ml dung dịch đường glucose 50%. Sau đó bịt kín bằng bông và giấy bạc.

- Dùng que cấy vô trùng lấy khuẩn lạc của chủng cần xác định cấy vào ống

nghiệm chứa môi trường.

- Ống nghiệm được đặt trong điều kiện nhiệt độ phòng 28oC - 32oC và quan

sát liên tục trong 5 ngày.

- Mọi thao tác đều thực hiện trong tủ cấy vô trùng.

d. Xác định khả năng tạo màng BC

Mục đích:

Chúng tôi muốn kiểm tra khả năng tạo màng của chủng cần xác định.

Tiến hành thí nghiệm:

- Hòa tan các chất gồm saccharose, (NH4)2SO4, (NH4)2HPO4 vào nước dừa và đun sôi 15 phút.

- Rót 150 ml vào các bình tam giác đã được sấy khô ở 160oC trong 2 giờ.

- Để nguội khoảng 40oC thì bổ sung acetic acid 40% và điều chỉnh pH= 5-5,5.

- Dùng que cấy vô trùng lấy khuẩn lạc của chủng cần xác định cấy vào môi trường nuôi cấy.

- Nút miệng bình tam giác bằng giấy báo và đặt trong nhiệt độ phòng 28oC-

2.3.5. Bảo quản chủng giống

Mục đích:

Lưu giữ chủng giống để sử dụng trong thời gian dài từ 3-6 tháng.

Tiến hành bảo quản: (adsbygoogle = window.adsbygoogle || []).push({});

- Nuôi cấy vi khuẩn trong các bình tam giác chứa môi trường lỏng.

- Dựa theo đường cong sinh trưởng để xác định đúng thời điểm vi khuẩn sinh

trưởng mạnh nhất.

- Hút lấy 1,5 ml dịch môi trường nuôi cấy cho vào ống eppendorf sau đó thêm

vào glycerol theo tỉ lệ 7: 3.

- Vortex nhẹ cho đều hỗn hợp, rồi đem bảo quản ở -80OC.

2.3.6. Nuôi cấy tạo màng BC

- Khi đã xác định được chủng giống cần tìm thì tiến hành nhân giống trên môi trường nước dừa để nuôi tạo màng.

- Lên men bề mặt trên các khay nhựa có kích thước 20 x 30.

- Các khay được rửa sạch, tráng qua nước sôi và phun cồn để khử trùng - Môi trường lên men có các thành phần sau:

• Nước dừa già : 1000ml

• Đường saccharose : 20 g (2%)

• (NH4)2SO4 : 8 g (0,8%)

• (NH4)2HPO4 : 2 g (0,2%)

• Acetic acid : 12 ml (1,2%)

- Các thành phần trên (trừ acetic acid ) được cho vào nước dừa già đã được lọc sạch.

- Nấu sôi, để nguội khoảng 40oC, bổ sung acetic acid vào.

- Cấy giống vào và trộn đều, lượng giống bổ sung vào phải chiếm tỷ lệ 10% .

- Sau đó phân vào các khay nhựa và đậy kín bằng giấy báo sạch rồi xếp chống

Hình 2.2. Các bước tiến hành nuôi tạo màng BC

2.3.7. Thu nhận và xử lí màng BC

- Sau 7 ngày lên men, màng BC được hình thành.

- Tiến hành lấy màng ra khỏi môi trường nuôi cấy.

- Sau khi thu sinh khối tiến hành rửa bằng nước lạnh 2-3 lần rồi ngâm trong dung

dịch Na2CO3 5% trong 10 phút để trung hoà acetic acid còn sót bên trong. - Sau đó rửa lại bằng nước vài lần.

- Tiến hành sấy khô ở 90oC.

- Màng sau khi sấy khô sẽ tiến hành tẩy màu và mùi bằng dung dịch NaOCl 10% ± 2.

- Thời gian ngâm trong dung dịch NaClO 10% từ 20-30 phút. - Sau đó rửa lại bằng nước và sấy khô.

CHƯƠNG III: KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN

3.1. Phân lập vi khuẩn A. xylinum (adsbygoogle = window.adsbygoogle || []).push({});

Sau nhiều lần tiến hành phân lập vi khuẩn từ váng trắng của nước dừa để lên men tự nhiên 3 ngày, chúng trôi đã phân lập được 7 chủng vi khuẩn nhưng qua quá trình chọn lọc sơ bộ đã giữ lại 3 chủng có mật độ xuất hiện nhiều và có hình thái khuẩn lạc gần giống với vi khuẩn A. xylinum. (bảng 8)

Dựa vào khóa phân loại của Bergey và các nghiên cứu của Frateur (1950),

Nguyễn Thúy Hương (2009) khi mô tả hình thái vi khuẩn A. xylinum ta cần chọn

lọc chủng có đặc điểm như sau: tế bào hình que, Gram âm, hình thái khuẩn lạc tròn, rìa mép nhẵn, trơn bóng, trắng đục.

Từ kết quả của bảng 8 cho thấy trong số 3 chủng vi khuẩn phân lập được thì

chủng A3 có các đặc điểm gần giống nhất.

Bảng 8. Mật độ và hình thái khuẩn lạc phân lập trên môi trường HS STT Tên chủng Mật độ tế bào

(CFU/g) Hình thái khuẩn lạc

1 A1 0,3.103

Khuẩn lạc tròn, trắng đục, bề mặt nhăn, rìa mép răng cưa, kích thước khuẩn lạc

sau 48 giờ từ 2-3,5mm

2 A2 0,5.103

Khuẩn lạc tròn, rìa mép nhẵn, trắng trong, kích thước sau 48 giờ từ 0,5-1,5mm

3 A3 1,2.103

Khuẩn lạc tròn, rìa mép nhẵn, trơn bóng, trắng đục, kích thước khuẩn lạc sau 48 giờ

từ 1,5-2mm

Mật độ của vi khuẩn A3 khá cao trong môi trường nước dừa lên men tự nhiên. Do vậy, chúng tôi chọn chủng A3 tiếp tục nuôi cấy để quan sát hình thái tế bào, thực hiện các

thử nghiệm sinh hóa như: phản ứng catalase, khả năng chuyển hóa glucose, khả năng chuyển hóa ecthanol, và nuôi tạo màng thử nghiệm.

Hình 3.1. Các khuẩn lạc của chủng vi khuẩn A3 sau 48 giờ nuôi cấy trên môi trường HS ở điều kiện pH= 5, nhiệt độ 28oC-32oC

3.2 Đặc điểm hình thái vi khuẩn A. xylinum

Chủng A3 được nuôi cấy trên môi trường HS và nhuộm Gram sau 48 giờ nuôi cấy.

Kết thúc quá trình nhuộm Gram, khi quan sát dưới kính hiển vi ở vật kính dầu 100X chúng tôi thấy vi khuẩn bắt màu hồng của thuốc nhuộm Fuchsin. Như vậy đây là vi khuẩn Gram (-).

Do thành tế bào vi khuẩn Gram (+) có lớp peptidoglycan dày (phức chất của protein và polysaccharide) và chúng liên kết chặt chẽ với nhau làm giảm tác động

của chất tẩy màu (cồn 96o) do đó sẽ giữ được màu tím của violet sau lần nhuộm đầu

tiên.

Còn đối với vi khuẩn Gram (-), ngoài lớp peptidoglycan mỏng còn lớp màng ngoài (outer membrane) là phức hợp lipodpolysaccharide (gồm lipoprotein và lipopolysaccharide) có bản chất là lipid nên để bị rửa trôi làm mất màu tím violet

khi bị rửa bằng cồn 96o. Sau đó khi nhuộm lại bằng thuốc nhuộm Fuchsin thì sẽ bắt

Hình 3.2. Tế bào vi khuẩn A3 sau khi nhuộm Gram

(Tế bào hình que, không di động, bắt màu hồng thuốc nhuộm Fuchsin, được quan sát dưới kính hiển vi có độ phóng đại 100X )

3.3. Xác định khả năng sinh trưởng (adsbygoogle = window.adsbygoogle || []).push({});

Chủng vi khuẩn A3 sau khi xác định đăc điểm hình thái thì được nuôi cấy tĩnh trong môi trường HS lỏng có pH= 5,5 và đặt trong nhiệt độ phòng từ 28oC-

32oC nhằm đo khả năng sinh trưởng (hình 3.3).

0.278 0.014 0.033 0.074 0.293 0.311 0.308 0.195 0.156 0 0.05 0.1 0.15 0.2 0.25 0.3 0.35 1 2 3 4 5 6 7 8 9

Thi gian (ngày)

M t đ t b à o ( O D 6 0 0 ) A3

Hình 3.3. Đường cong sinh trưởng của vi khuẩn A3 trên môi trường HS lỏng, pH= 5 và nhiệt độ từ 28oC- 32oC

Sau thời gian 9 ngày nuôi cấy, vi khuẩn A3 sinh trưởng và phát triển hình thành nên đường cong sinh trưởng với 4 pha sinh trưởng gồm: pha lag, pha log, pha cân bằng và pha suy vong. Dựa vào đường cong sinh trưởng dễ dàng nhận thấy, mật độ tế bào ban đầu khi bổ sung vào rất thấp (OD600=0,014) do mới chuyển từ môi trường thạch sang môi trường lỏng nên vi khuẩn cần có thời gian thích nghi, sản sinh ra các loại enzyme cần thiết để phân giải các chất trong môi trường. Vì vậy nên sự sinh trưởng và phát triển còn rất chậm.

Trong 2 ngày tiếp theo mật độ tế bào bắt đầu tăng chậm, cụ thể các giá trị

OD600 = 0,033 vào ngày thứ 2 và tăng dần lên OD600= 0,074 vào ngày thứ 3. Đây là

pha lag của quá trình sinh trưởng. Ở giai đoạn này có thể quan sát thấy huyền phù tế bào trong dịch nuôi cấy nhưng không rõ ràng do số lượng tế bào còn khá ít.

Kết thúc giai đoạn này, vi khuẩn bắt đầu gia tăng nhanh chóng về số lượng do đã hoàn toàn thích nghi với môi trường và các hoạt chất enzyme để phân giải các chất dinh dưỡng đã được tạo ra nhiều để đáp ứng nhu cầu sinh trưởng và phát triển.

Sự tăng đột biến của giá trị OD từ OD600= 0,074 lên OD600= 0,293 trong ngày thứ 4

đã thể hiện sự gia tăng nhanh về số lượng tế bào trong môi trường nuôi cấy. Đây là thời điểm huyền phù tế bào quan sát rõ nhất, các mảng cellulose nhỏ dần hình thành và nối lại với nhau.

Trong 72 giờ tiếp theo, mật độ tế bào vi khuẩn bước vào giai đoạn cân bằng thể hiện qua sự ít biến đổi của giá trị OD trong ngày thứ 5 (OD600= 0,311),thứ 6 (OD600= 0,308), ngày thứ 7 (OD600= 0.278). Trong đó ngày thứ 5 có giá trị OD600=0,311 là giá trị cao nhất, điều đó cho thấy suốt thời gian sinh trưởng (7 ngày) thì ở ngày thứ 5, vi khuẩn gia tăng cực đại về số lượng. Đây cũng là thời điểm màng cellulose hình thành rõ ràng.

Sau thời gian tăng trưởng ổn định, mật độ vi khuẩn bắt đầu giảm do nguồn dinh dưỡng trong môi trường bắt đầu cạn. Lúc này cũng là thời điểm màng cellulose đã hình thành đầy đủ, dịch môi trường nuôi cấy cũng cạn dần. Vi khuẩn bước vào

giai đoạn suy vong, các giá trị OD giảm dần, từ OD600= 0.278 của ngày thứ 7 giảm

nhanh xuống OD600=0.195 vào ngày thứ 8 và OD600=0.156 vào ngày thứ 9. Đây cũng là lúc kết thúc quá trình hình thành màng cellulose. Dựa vào đường cong sinh

trưởng có thể xác định khả năng sinh trưởng của vi khuẩn A3 đạt tốc độ cao nhất vào ngày thứ 5. Do vậy chúng tôi chọn thời điểm ngày thứ 5 để tiến hành giữ chủng và ngày thứ 7 để thu màng.

3.4. Đặc điểm sinh hóa của vi khuẩn A. xylinum

a. Phản ứng catalase

Chúng tôi tiến hành thử nghiệm phản ứng catalase đối với vi khuẩn A3 sau

thời gian 48 giờ nuôi cấy trên đĩa thạch bang cách dùng que cấy ria lấy một ít khuẩn

lạc đưa lên lam kính, nhỏ dung dịch H2O2 lên và quan sát hiện tượng. Kết quả phản

ứng thể hiện qua hình 3.4

Hình 3.4. Phản ứng catalase của vi khuẩnA3

Khi nhỏ H2O2 lên lam kính có khuẩn lạc của vi khuẩn A3 thì có có hiện

Một phần của tài liệu Phân lập và nuôi cấy acetobacter xylinum tạo màng cellulose vi khuẩn (Trang 32 - 52)