Qua kết quả thí nghiệm của các nội dung nghiên cứu trên chúng tôi đã chọn được điều kiện thuận lợi và tốt nhất cho sự phát triển của tảo N. oculata. Sử dụng môi trường dinh dưỡng phù hợp (môi trường Walne) với độ mặn 30‰ và mật độ ban đầu 8 triệu tb/ml để thử nghiệm nuôi sinh khối tảo. Thí nghiệm được bố trí
trong túi nilon 10L , đặt ở ngoài trời, có mái che để giảm bớt cường độ ánh sáng và nhiệt độ.
Trong quá trình làm thí nghiệm tôi đã tiến hành theo dõi sự biến động của một số yếu tố môi trường (nhiệt độ, pH) ở túi nilon nuôi sinh khối. Kết quả ở Bảng 3.7.
Bảng 3.7. Sự biến động yếu tố môi trường trong thí nghiệm sinh khối N. oculata
Yếu tố môi trường Sáng Chiều
Nhiệt độ 28 ± 0,6 27 ÷ 28
29,5 ± 0,5 28 ÷ 31 pH 7,8 ÷ 8,6 8,1 ÷ 8,9
Nhìn chung các yếu tố nhiệt độ, pH trong quá trình nuôi sinh khối tương đối ổn định (nhiệt độ: 27 ÷ 31oC, pH: 7,8 ÷ 8,9) và nằm trong giới hạn chịu đựng của N. oculata.
Kết quả thí nghiệm được thể hiện rõ trên hình 3.4.
Bảng 3.8. Sự phát triển của tảo N. oculata trong điều kiện nuôi sinh khối
Ngày nuôi Mật độ (triệu tb/mL)
0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 8,00 ± 0,00 15,39 ± 1,09 19,24 ± 2,21 31,37 ± 1,83 35,68 ± 1,13 48,73 ± 1,51 59,38 ± 0,75 65,28 ± 1,39 61,28 ± 1,46 54,36 ± 0,56 50,38 ± 0,48 43,57 ± 0,92
Số liệu trình bày trong bảng là giá trị trung bình ± sai số chuẩn (S.E).
Khi nuôi với điều kiện dinh dưỡng, độ mặn, mật độ ban đầu thích hợp tảo
N. oculata phát triển nhanh, sắc tố đậm, tế bào căng tròn. Tảo đạt sinh khối cực đại khá lớn 65,28 ± 1,39 triệu tb/mL vào ngày thứ 7 của chu kỳ nuôi, pha cân bằng và pha tàn lụi kéo dài (sau 11 ngày nuôi). Điều này có ý nghĩa rất lớn khi ta tiến hành các biện pháp kỹ thuật cấy tảo và thu sinh khối tảo để sử dụng. Giá trị dinh dưỡng của tảo sẽ cao hơn khi chúng ta tiến hành thu tảo ở giai đoạn tăng mật độ tế bào và cũng trong giai đoạn này nên tiến hành pha loãng tảo sang môi trường mới, bổ sung chất dinh dưỡng khi hàm lượng chất dinh dưỡng trong môi trường đã cạn kiệt.
Màu của dịch tảo thay đổi rất rõ rệt. Ban đầu, dung dịch tảo màu xanh nhạt, khi mật độ cực đại thì dịch tảo chuyển sang màu xanh đậm và khi tảo tàn, màu dịch tảo trở nên trong và xanh nhạt hơn, tảo tàn bám thành từng mảng và nổi lên trên mặt nước, đồng thời tảo bám nhiều vào thành túi và lắng đáy rất nhiều, mật độ tảo giảm từ 65,28 ± 1,39 triệu tb/mL xuống 43,57 ± 0,92 triệu tb/mL. Trong quá trình làm thí nghiệm nuôi sinh khối, điều kiện thời tiết khá thuận lợi cho sự phát triển của tảo. Tuy nhiên đây là loài tảo nhập nội nên chúng có thể chưa thích nghi với điều kiện thời tiết, khí hậu nước ta đặc biệt với điều kiện bất lợi nên mật độ cực đại đạt được không cao bằng trong phòng thí nghiệm.
Tảo N. oculata phát triển khá chậm trong những ngày nuôi đầu, sang ngày thứ 3 tảo bắt đầu phát triển nhanh hơn. Điều này có thể do tảo chưa thích nghi kịp với điều kiện nuôi ngoài trời. Sau khi đạt mật độ cực đại mật độ giảm nhanh do nhiệt độ khá cao, nắng nóng kéo dài, sự hạn chế ánh sáng do hiện tượng tự che khuất khi mật độ tế bào cao, sự suy giảm chất dinh dưỡng trong môi trường nuôi.
Trong thực tế nuôi tảo chỉ sử dụng sục khí thông thường thì không thể hạn chế được sự biến động của pH. Bởi CO2 là nhân tố quan trọng chi phối sự tăng giảm pH, mà lượng CO2 trong không khí chỉ chiếm 0,03%. Vì vậy trong qua trình quang hợp tảo sử dụng CO2 rất mạnh mẽ là nguyên nhân gây ra pH tăng cao. Vì vậy phải có biện pháp phù hợp điều chỉnh pH ổn định cho sự phát triển của tảo.
Hoàng Thị Ngọc (2003) trong thí nghiệm trên hai loài tảo N. oculata và
Tetraselmis sp đã cho thấy hiệu quả khi sử dụng CO2 bổ sung vào môi trường nuôi tảo, khi không có CO2 giá trị pH dao động từ 6,8 – 10,1 còn khi bổ sung CO2 thì pH chỉ dao động trong khoảng 6,8 – 8,2. Thành công của thí nghiệm còn được thể hiện khi mật độ tảo cũng lần lượt cao hơn ở các thí nghiệm có bổ sung CO2, mật độ cực đại của tảo khi không bổ sung CO2 là 2417x104 tb/mL, còn khi bổ sung CO2 thì mật độ cực đại đạt 3292,8x104 tb/mL. Như vậy, xét về khía cạnh kỹ thuật thì việc bổ sung CO2 cũng có thể là một giải pháp nhằm hạ thấp pH, nâng cao sinh khối tảo.