Thành phần loài,phân bố,đặc điểm sinh thái và sự nhạy cảm của véc tơ sốt rét với các hóa chất đang sử dụng trong phòng chống sốt rét ở khu vực miền trung–tây nguyên

BỘ GIÁO DỤC VÀ ĐÀO TẠO BỘ Y TẾ VIỆN SỐT RÉT - KÝ SINH TRÙNG - CÔN TRÙNG TRUNG ƯƠNG -* NGÔ KIM KHUÊ THÀNH PHẦN LOÀI, PHÂN BỐ, ĐẶC ĐIỂM SINH THÁI VÀ SỰ NHẠY CẢM CỦA VÉC TƠ SỐT RÉT VỚI CÁC HĨA CHẤT SỬ DỤNG TRONG PHỊNG CHỐNG SỐT RÉT Ở MIỀN TRUNG - TÂY NGUYÊN (2014 - 2017) LUẬN ÁN TIẾN SĨ SINH HỌC Hà Nội - 2019 BỘ GIÁO DỤC VÀ ĐÀO TẠO BỘ Y TẾ VIỆN SỐT RÉT - KÝ SINH TRÙNG - CÔN TRÙNG TRUNG ƯƠNG -* NGÔ KIM KHUÊ THÀNH PHẦN LOÀI, PHÂN BỐ, ĐẶC ĐIỂM SINH THÁI VÀ SỰ NHẠY CẢM CỦA VÉC TƠ SỐT RÉT VỚI CÁC HĨA CHẤT SỬ DỤNG TRONG PHỊNG CHỐNG SỐT RÉT Ở MIỀN TRUNG - TÂY NGUYÊN (2014 - 2017) LUẬN ÁN TIẾN SĨ SINH HỌC Chuyên ngành: Côn trùng học Mã số: 942.01.06 NGƯỜI HƯỚNG DẪN KHOA HỌC: PGS TS NGUYỄN VĂN CHƯƠNG TS NGUYỄN XUÂ Hà Nội - 2019 LỜI CAM ĐOAN Tôi xin cam đoan luận án cơng trình nghiên cứu riêng tơi Kết nghiên cứu số liệu luận án trung thực chưa công bố Tác giả luận án Ngô Kim Khuê LỜI CẢM ƠN Để hoàn thành nghiên cứu đề tài luận án xin chân thành cảm ơn: Trước tiên, kính gửi lời cảm ơn vơ sâu sắc đến Thầy PGS.TS Nguyễn Văn Chương, Viện trưởng Viện Sốt rét - Ký sinh trùng -Côn trùng Quy Nhơn Thầy TS Nguyễn Xuân Quang, Trưởng khoa Côn Trùng, Viện Sốt rét - Ký sinh trùng - Côn trùng Quy Nhơn tận tình hướng dẫn giúp đỡ tơi suốt thời gian học tập nghiên cứu để tơi hồn thành luận án cách tốt Xin chân thành cảm ơn Ban Lãnh đạo, Phòng Sau đại học, Thầy Cô Viện Sốt rét - Ký sinh trùng - Cơn trùng Trung ương hết lịng giúp đỡ tơi q trình học tập Tơi trân trọng gửi lời cảm ơn đến chú, anh, chị, em khoa Côn trùng, Viện Sốt rét - Ký sinh trùng - Côn trùng Quy Nhơn hỗ trợ việc thu mẫu, phân tích mẫu thu thập số liệu nghiên cứu điều tra thực địa Xin cảm ơn Ban lãnh đạo trường Đại học Quy Nhơn khoa SinhKTNN, nơi công tác, tạo điều kiện thuận lợi cho suốt thời gian học tập nghiên cứu Tôi xin gửi lời cảm ơn sâu sắc đến người thân gia đình quan tâm, giúp đỡ mặt, ln tạo điều kiện tốt để tơi hồn thành tốt nghiên cứu DANH MỤC CÁC CHỮ VIẾT TẮT BĐNN : Bẫy đèn nhà BĐTN : Bẫy đèn nhà BG : Bọ gậy BNSR : Bệnh nhân sốt rét c/b : con/ bát c/đ/đ : con/đèn/đêm c/n/đ : con/người/đêm c/g : con/giờ ELISA : Enzyme-Linked Immunosorbent Assay: xét nghiệm miễn dịch kháng nguyên kháng thể KSTSR : Ký sinh trùng sốt rét ma : Mật độ đốt người trung bình MNNN : Mồi người nhà MNTN : Mồi người nhà MT-TN : Miền Trung-Tây Nguyên KSTSR : Ký sinh trùng sốt rét PCSR : Phòng chống sốt rét PCVT : Phòng chống véc tơ PCR : Polymerase Chain Reaction: Phản ứng chuỗi polymerase SD : Standard Deviation: Độ lệch chuẩn SGS : Soi chuồng gia súc SNN : Soi nhà ban ngày SR : Sốt rét SVN : Soi vách SVT : Soi vách SRLH : Sốt rét lưu hành TB : Trung bình TƯ : Trung ương VSR-KST-CT : Viện Sốt rét-Ký sinh trùng-Côn trùng VTSR : Véc tơ sốt rét WHO : World Health Organization: Tổ chức Y tế Thế giới MỤC LỤC ĐẶT VẤN ĐỀ CHƯƠNG 1: TỔNG QUAN TÀI LIỆU 1.1 Thành Phần Loài Và Phân Bố Muỗi Anopheles 1.1.1 Thành phần loài phân bố muỗi Anopheles giới 1.1.2 Thành phần loài phân bố muỗi Anopheles Việt Nam 1.2 Sinh thái, tập tính, vai trị truyền bệnh muỗi Anopheles 1.2.1 Sinh thái, tập tính, vai trị truyền bệnh muỗi Anopheles giới 1.2.2 Sinh thái, tập tính vai trị truyền bệnh Anopheles Việt Nam 12 1.3 Phòng chống véc tơ sốt rét 15 1.3.1 Phòng chống véc tơ sốt rét giới 15 1.3.2 Phòng chống véc tơ sốt rét Việt Nam 16 1.4 Kháng hóa chất diệt trùng véc tơ sốt rét 19 1.4.1 Định nghĩa kháng hóa chất 19 1.4.2 Cơ sở sinh học tính kháng hóa chất diệt trùng 20 1.4.3 Một số chế kháng côn trùng 20 1.5 Tình hình kháng hóa chất diệt trùng véc tơ sốt rét 21 1.5.1 Tình hình kháng hóa chất diệt trùng véc tơ sốt rét giới 21 1.5.2 Tình hình kháng hóa chất diệt côn trùng véc tơ sốt rét Việt Nam 25 1.6 Tình hình sốt rét miền Trung - Tây Nguyên 26 CHƯƠNG 2: ĐỐI TƯỢNG VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU .29 2.1 Đối tượng, thời gian, địa điểm nghiên cứu .29 2.1.1 Đối tượng nghiên cứu 29 2.1.2 Thời gian nghiên cứu 29 2.1.3 Địa điểm nghiên cứu 30 2.2 Vật liệu nghiên cứu 35 2.3 Phạm vi nghiên cứu 36 2.4 Phương pháp nghiên cứu 36 2.4.1 Thiết kế nghiên cứu 36 2.4.2 Các kỹ thuật sử dụng nghiên cứu 37 2.4.3 Các số đánh giá .43 2.4.4 Xử lý phân tích số liệu 44 2.4.5 Đạo đức nghiên cứu 45 CHƯƠNG 3: KẾT QUẢ NGHIÊN CỨU 46 3.1 Thành phần loài Anopheles, phân bố, đặc điểm sinh thái vai trò truyền bệnh véc tơ sốt rét miền Trung-Tây Nguyên 46 3.1.1 Thành phần loài muỗi Anopheles phân bố véc tơ điểm nghiên cứu miền Trung-Tây nguyên 46 3.1.2 Một số đặc điểm sinh thái học vai trò truyền bệnh véc tơ sốt rét điểm nghiên cứu miền Trung - Tây Nguyên 52 3.1.3 Vai trò truyền bệnh véc tơ sốt rét 02 điểm nghiên cứu có sốt rét lưu hành nặng khu vực miền Trung - Tây Nguyên 76 3.2 Đánh giá nhạy cảm véc tơ sốt rét với hóa chất sử dụng phịng chống sốt rét miền Trung -Tây Nguyên 80 3.2.1 Nhạy cảm véc tơ sốt rét với hóa chất huyện Vân Canh, tỉnh Bình Định 80 3.2.2 Nhạy cảm véc tơ sốt rét với hóa chất Khánh Vĩnh-Khánh Hịa 84 3.2.3 Nhạy cảm véc tơ sốt rét với hóa chất huyện Krông Pa - Gia Lai 88 3.2.4 Nhạy cảm véc tơ sốt rét với hóa chất huyện Bắc Ái - Ninh Thuận .89 3.2.5 Nhạy cảm véc tơ sốt rét với hóa chất huyện Krơng - Na, tỉnh Đắk Lắk 92 3.2.6 Nhạy cảm véc tơ sốt rét với hóa chất huyện Ngân Thủy Quảng Bình 93 CHƯƠNG 4: BÀN LUẬN 95 4.1 Thành phần loài Anopheles, phân bố, đặc điểm sinh thái vai trò truyền bệnh véc tơ sốt rét miền Trung-Tây Nguyên 95 4.1.1 Thành phần loài muỗi Anopheles điểm nghiên cứu miền Trung - Tây nguyên 95 4.1.2 Phân bố véc tơ sốt rét điểm nghiên cứu miền Trung - Tây nguyên 97 4.1.3 Tập tính vai trị truyền bệnh véc tơ sốt rét điểm nghiên cứu miền Trung-Tây Nguyên 103 4.2 Sự nhạy cảm véc tơ sốt rét với hóa chất sử dụng phịng chống sốt rét miền Trung - Tây Nguyên 114 4.2.1 Độ nhạy cảm An minimus với hóa chất diệt trùng 114 4.2.2 Độ nhạy cảm An dirus với hóa chất diệt côn trùng 116 4.2.3 Độ nhạy cảm véc tơ phụ với hóa chất diệt trùng 116 KẾT LUẬN 119 KIẾN NGHỊ .121 TÍNH KHOA HỌC VÀ TÍNH MỚI CỦA ĐỀ TÀI CÁC CƠNG TRÌNH KHOA HỌC LIÊN QUAN ĐẾN NỘI DUNG CỦA LUẬN ÁN ĐÃ ĐƯỢC CÔNG BỐ TÀI LIỆU THAM KHẢO PHỤ LỤC DANH MỤC BẢNG Bảng 3.1 Thành phần loài Anopheles số điểm khu vực .46 Bảng 3.2 Số lượng tỷ lệ % số loài Anopheles 48 Bảng 3.3 Phân bố véc tơ sốt rét theo khu vực 49 Bảng 3.4 Phân bố véc tơ sốt rét theo sinh cảnh khu vực nghiên cứu 50 Bảng 3.5 Phân bố véc tơ sốt rét theo khu vực 51 Bảng 3.6 Mật độ véc tơ sốt rét qua phương pháp điều tra xã Ngân Thủy, huyện Lệ Thủy, tỉnh Quảng Bình 52 Bảng 3.7 Hoạt động đốt người nhà nhà Anopheles đêm xã Ngân Thủy, tỉnh Quảng Bình .53 Bảng 3.8 So sánh hoạt động đốt người muỗi Anopheles .54 Bảng 3.9 Mật độ véc tơ sốt rét qua phương pháp 54 Bảng 3.10 Hoạt động đốt người nhà nhà véc tơ sốt rét 56 Bảng 3.11 So sánh hoạt động đốt người véc tơ SR đêm xã Canh Hòa, huyện Vân Canh, tỉnh Bình Định 57 Bảng 3.12 Mật độ véc tơ sốt rét qua phương pháp điều tra xã Phước Thành - Ninh Thuận 57 Bảng 3.13 Hoạt động đốt người nhà nhà véc tơ sốt rét 58 Bảng 3.14 So sánh hoạt động đốt người véc tơ An dirus đêm xã Phước Thành, Bác Ái - Ninh Thuận 58 Bảng 3.15 Mật độ véc tơ sốt rét thu qua phương pháp điều tra Easo, Eaka, tỉnh Đắk Lắk 59 Bảng 3.16 Mật độ trú đậu véc tơ SR nhà rẫy huyện Khánh Vĩnh 60 Bảng 3.17 Mật độ trú đậu véc tơ nhà rẫy xã Khánh Phú, 61 Bảng 3.18 So sánh mật độ véc tơ SR trú đậu vách vách nhà nhà rẫy xã Khánh Phú, huyện Khánh Vĩnh 62 Bảng 3.19 Mật độ trú đậu véc tơ sốt rét 62 Bảng 3.20 So sánh mật độ véc tơ SR trú đậu vách vách nhà nhà rẫy xã Sơn Thái, huyện Khánh Vĩnh 62 Bảng 3.21 Mật độ đốt người trong, nhà rẫy .63 highly efective in sampling diverse Anopheles malaria vectors in Cambodia, Malaria Journal, 15:440, DOI 10.1186/s12936-016-1488-y 64 Brandyce St Laurent, Timothy A Burton, Siti Zubaidah, Helen C Miller, Puji B Asih et al (2017), Host attraction and biting behaviour of Anopheles mosquitoes in South Halmahera, Indonesia, Malaria Journal, 16:310, DOI 10.1186/s12936-017-1950-5 65 Chambers M., Thuy T.Q., Farrar J et al (2005), Malaria transmission and occupational risk factors in rural south-west Vietnam: A report of entomological and epidemiological studies in Dak O commune, Binh Phuoc province, 2003-2004, The 5th Vietnam National Conference on Entomology, Hanoi, 11-12 April 2005 66 Chen B, Harbach R.E., Butlin R.K (2002), Molecular and morphological studies on the Anopheles minimus group of mosquitoes in southern China: taxonomic review, distribution and malaria vector status, Medical and Veterinary Entomology, Vol.16, Issue 3, 2002, pp: 253–265 67 Dash A.P., Hazra R.K., Mahapatra N and Tripathy H.K (2000), Disappearance of malaria vector Anopheles sundaicus from Chilika Lake area of Orissa State in India, Medical Veterinary Entomology, Vol 14 (4), pp: 445-449 68 Dev V (1996), Anopheles minimus: its bionomics and role in the transmission of malaria in Assam, India, Bulletin of the World Health Organization, 74(1), pp 61-66 69 EC Mekong malaria forum, 1999, 30(4), pp 53-56 70 Emmanuel H., Corine K., Dunia M., Gad I (2016), Susceptibility of Anopheles gambiae to insecticides used for malaria vector control in Rwanda, Malaria Journal, 15:582 71 Eyles D.E., Wharton R.H., Cheong W.H & Warren M (1964), Studies on malaria and Anopheles balabacensis in Cambodia, Bulletin of the World Health Organization, 30(1), pp 7-21 72 Foley H Desmond, Leopoldo M Rueda, A Townsend Peterson, and Richard C Wilkerson (2008), Potential Distribution of Two Species in the Medically Important Anopheles minimus Complex (Diptera: Culicidae), Journal of Medical Entomology, 45(5), pp: 852-860 73 Gingrich J.B., Weatherhead A., Sattabongkot J., Pilakasiri C & Wirtz R.A (1990), Hyperendemic malaria in a Thai village: Dependence of year-round transmission on focal and seasonally circumscribed mosquito (Diptera: Culicidae) habitats, Journal of Medical Entomology, 27, pp 1016-1026 74 Harbach, R.E., Garros C., Duc Manh N., and Manguin S (2007), Formal taxonomy of species C of the Anopheles minimus sibling species complex (Diptera: Culicidae), Zootaxa 1654, pp: 41-54 75 Harbach R.E (2008), Family Culicidae Meigen 1818, http://mosquitotaxonomic –inventory.info/family –culicidse –meigen -1818 76 Harrison B.A (1980), Medical entomology studies-XIII The MyzomyiaSeries of Anopheles (Cellia) in Thailand, with emphasis on intra-interspecific variations (Diptera Culicidae), Constribution of the American Entomological Institute, 17, pp 1-195 77 Ho Dinh Trung (2003), Malaria vectors in Southeast Asia: Identification, Malaria transmission, Behavior and Control, Dissertation for the degree of Doctor in Science at the University of Antwerp 78 Htay-Aung, Min S., Thaung S Myam M.M., Than S.M., Hlaing T., Soe-Soe, Druilhe P & Queuche F (1999), Well-breeding Anopheles dirus and their role in malaria transmission in Myanmar, Southeast Asian Journal of Tropical Medicane and Public Health, 30(3), pp 447- 453 79 Ismail I.A.H., Notananda V & Schepens J (1974), Studies on malaria and responses of Anopheles balabacensis and Anopheles minimus to DDT residual spraying in Thailand, Part I: Pre-spraying observations, Acta Tropic, 31, pp 129-164 80 Ismail I.A.H., Notansda V & Schepens J (1975), Studies on malaria and responses of Anopheles balabacensis and Anopheles minimus to DDT residual spraying in Thailand, PartII: Post-spraying observations, Acta Tropica, 32, pp 206-299 81 Kengluecha A., Rongnoparut P., Boonsuepsakul S., Sithiprasasna R., Rodpradit P., and Baimai V (2005), Geographical distribution of Anopheles minimus species A and C in western Thailand, Journal of the Society for Vector Ecology, 30(2), pp: 225-230 82 Kittayapong P., Edman J.D., Harrison B.A et al (1992), Female body size, parity and malaria infection of An maculatus in Peninsular Malaysia, Journal of Medical Entomology, 29(3), pp 379-383 83 Kondrashin, Jung R.K., Akiyama J (1991), Ecological Aspects of Forest Malaria in Southeast Asia, Proceedings of an Informal Consultative Meeting WHO/MRC 18-22 February 1991, New Delhi, pp.1-28 84 Krajana Tainchum, Wanapa Ritthison, Tipwara Chuaycharoensuk, Michael J Bangs et al (2014), Diversity of Anopheles species and trophic behavior of putative malaria vectors in two malaria endemic areas of northwestern Tailand, Journal of Vector Ecology, 39 (2), pp 424-436 85 Linton Y M, Dusfour I, Howard T M, Ruiz L F, Nguyen Duc Manh, Trung Ho Dinh, Sochata T, Cooseman M, Harbach R E (2005), Anopoheles (cellia) epiroticus (Diptera: Culicidae), a new malaria vector species in the southeast Asian sundaicus Complex, Bulletin of entomological research, Vol 95, pp 329 – 339 86 Loong, K.P., Chiang G.L and Yap H.H (1988), Field studies of the bionomics of Anopheles maculatus and its role in malaria tranmission in Malaysia, Southeast Asian J Trop Med Public Health, 19(4), pp 724 87 MCNV (2005), The Khanh Phu Malaria Research Project An Overview (1994-2004), Internal report of the Medical Committee Netherlands-Vietnam 88 Mehdi Zare1, Moussa Soleimani Ahmadi, Sayed Hossein Davoodi and Alireza Sanei-Dehkordi (2016), Insecticide susceptibility of Anopheles stephensi to DDT and current insecticides in an elimination area in Iran, Parasites & Vectors, 9:571 89 Moreno M., Vicente J.L., Cano J., Berzosa P.J., de Lucio A., Nzambo S., Bobuakasi L., Buatiche J.N., Ondo M., Micha F., Do Rosario V.E., Pinto J., Benito A (2008), Knockdown resistance mutations (kdr) and insecticide susceptibility to DDT and Pyrethroids in Anopheles gambiae from Equatorial Guinea, Tropical Medicine & International Health, Vol 13, 3, pp: 430-433 90 Myo Paing, Tun Lin W & Sebatian A.A (1988), Behaviour of Anopheles minimus (Theobald) in relation to its role as vector of malaria in a forested foothill area of Burma, Tropical Biomedicine, 5, pp.161-166 91 Overgaard H.J., Ekbom B., Suwonkerd W et al (2003), Effect of landscape structure on Anopheline mosquito density and diversity in northern Thailand: Implication for malaria transmission and control, Landscape Ecology, 18, pp 605-619 92 Ratanatham S., Upatham E.S., Prasittisuk C., Rojanasunan W., Theerasilp N., Tremongkol A & Viyanant V (1988), Bionomics of Anopheles minimus and its role in malaria transmission in Thailand, Southeast Asian Journal of Tropical Medicine and Public Health, 19(2), pp 283-289 93 Rattanarithikul R, Linthicum KJ, Konishi E (1996), Seasonal abundance and parity rates of Anopheles species in southern Thailand, J Am Mosq Control Assoc, 12:75 - 83 94 Rodriguez M.M, Bisset J Ruiz M and Soca A (2000), Cross-reistance to pyrethroid and organophosphate insecticides, selection with temephos in Aedes aegypti in Cuba 95 Rosenberg R., Maheswary N.P (1982), Forest malaria in Bangladesh II Transmission by Anopheles dirus, American Journal of Tropical Medicine and Hygiene, 31(2), pp 183-191 96 Rosenberg R., Andre R.G., Somchit L (1990), Highly efficient dry season transmission of malaria in Thailand, Transactions of the Royal Society of Tropical Medicine and Hygiene, 84(1), pp 22-28 97 Sallum M A M; Peyton E L; Wilkerson R C (2005), Six new species of the Anopheles leucosphyrus group, reinterpretation of An elegans and vector implication, Med Vet Entomol, (19), pp 158 – 199 98 Scanlon J.E & Sandhinand U (1965), The distribution and biology of Anopheles balabacensis in Thailand (Diptera: Culicidae), Journal of Medical Entomology, 2(1), pp 61-69 99 Sébastien Marcombe, Julie Bobichon, Boutsady Somphong, Nothasin Phommavan et al (2017), Insecticide resistance status ofmalaria vectors in Lao PDR, PLoS ONE, 12(4): e0175984 100 Sharma V.P., Kondrashin A.V (1991), Forest Malaria in Southeast Asia, Proceedings of an Informal Consultative Meeting WHO/MRC, 234 pp 101 Sinka ME., Bangs MJ., Manguin S et al (2012), A global map of dominant malaria vectors, Parasites & Vectors, 5:69 doi: 10.1186/1756-3305-5-69 102 Suntorn Pimnon and Adisak Bhumiratana (2018), Adaptation of Anopheles Vectors to Anthropogenic Malaria-Associated Rubber Plantations and Indoor Residual Spraying: Establishing Population Dynamics and Insecticide Susceptibility, Canadian Journal of Infectious Diseases and Medical Microbiology, Volume 2018, 17 pp 103 Taye Gari, Oljira Kenea, Eskindir Loha, Wakgari Deressa, Alemayehu Hailu et al (2016), Malaria incidence and entomological findings in an area targeted for a cluster-randomized controlled trial to prevent malaria in Ethiopia: results from a pilot study, Malaria Journal, 15:145 104 Valérie Obsomer, Pierre Defourny and Marc Coosemans (2007), The Anopheles dirus complex spatial distribution and environmental drivers, Malar J., (6) p: 26 105 Van Bortel W., Trung H.D., Roelants P., Harbach R.E., Backeljau T & Coosemans M (2000), Molercular identification of Anopheles minimus s.l beyond distinguishing the members of the species complex, Insect Molercular Biology, 9(3), pp 335-340 106 Vas Dev, Tridibes Adak, Om P Singh, Nutan Nanda & Bimal K Baidya (2015), Malaria transmission in Tripura: disease distribution & determinants, Indian J Med Res, 142 (Supplement), pp.12-22 107 Victor Chaumeau, Dominique Cerqueira, John Zadrozny, Praphan Kittiphanakun, Chiara Andolina et al (2017), Insecticide resistance in malaria vectors along the Thailand-Myanmar border, Parasites & Vectors, DOI 10.1186/s13071-017-2102-z 108 Vinod P.S (1991), Environmental management in malaria control in India, London schoool of Hyglene and tropical medicine, public health Forum, 181h Edition, pp – 24 109 Wanjala Christine L., Guofa Zhou, Jernard Mbugi, Jemimah Simbauni (2015), Insecticidal decay effects of long-lastinginsecticide nets and indoor residual spraying on Anopheles gambiae and Anopheles arabiensis in Western Kenya, Parasites & Vectors, 8:588 110 WHO (1975), Manual on Practical Entomology in Malaria: Part I – Vector Bionomics and organization of antimalaria activities; part II – Methods and Techniques, WHO offset publications, No 13, Geneva 111 WHO (1998), Techniques to detect insecticide resistance mechanism, WHO/CDS/CPC/MAL/98.6 112 WHO, (2013), Test procedures for insecticide resistance monitoring in malaria vector mosquitoes 113 114 WHO (2016), World malaria report, 186 pp Wilkinson R.N., Gould D.J., Boonyakanists P & Segal H.E (1978), Observations on Anopheles balabacensis (Diptera: Culicidae) in Thailand, Journal of Medical Entomology, 14(6), pp 666-671 115 World Health Organization (1994), Entomologycal laboratory techniques for malaria control, Part I, WHO, Geneve, 160 p 116 World Health Organization (1994), Entomologycal laboratory techniques for malaria control, Part II, WHO, Geneve, 72 p 117 World malaria report 2015, Geneva, Switzerland 118 Yap H.H (1996), Effect of formulations containing soap DEET and permethrin as personal protection against outdoor mosquitoes in Malaysia, Journal of the American Mosquito Control Association, (2), pp.63-67 119 Yoshimasa Maeno, Nguyen Tuyen Quang, Richard Culleton, Satoru Kawai, Gaku Masuda, Shusuke Nakazawa, and Ron P Marchand (2015), Humans frequently exposed to a range of non-human primate malaria parasite species through the bites of Anopheles dirus mosquitoes in South-central Vietnam, Parasites & Vectors, 8:376, DOI 10.1186/s13071-015-0995-y PHỤ LỤC HÌNH ẢNH CÁC SINH CẢNH TRONG RỪNG VÀ VEN RỪNG Ở CÁC ĐIỂM NGHIÊN CỨU VÀ HOẠT ĐỘNG NGHIÊN CỨU Sinh cảnh nhà rẫy điểm nghiên cứu Gia Lai Sinh cảnh nhà rẫy điểm nghiên cứu Khánh Hòa Sinh cảnh nhà ven rừng điểm nghiên cứu Bình Định Một số hình ảnh nghiên cứu thực địa ... SỐT RÉT - KÝ SINH TRÙNG - CÔN TRÙNG TRUNG ƯƠNG -* NGÔ KIM KHU? ? THÀNH PHẦN LOÀI, PHÂN BỐ, ĐẶC ĐIỂM SINH THÁI VÀ SỰ NHẠY CẢM CỦA VÉC TƠ SỐT RÉT VỚI CÁC HĨA CHẤT SỬ DỤNG TRONG PHỊNG... Anopheles số điểm khu vực .46 Bảng 3.2 Số lượng tỷ lệ % số loài Anopheles 48 Bảng 3.3 Phân bố véc tơ sốt rét theo khu vực 49 Bảng 3.4 Phân bố véc tơ sốt rét theo sinh cảnh khu vực nghiên... Lăk (khu bảo tồn Easô, huyện Eakar) Trong rừng: sinh cảnh rừng chọn tỉnh Khánh Hòa (xã Sơn Thái xã Khánh Phú, huyện Khánh Vĩnh), tỉnh Gia Lai (xã Ia Mlah xã Chư RCăm huyện Krông Pa) Các sinh