Trước lấy máu giữ đầu heo cho thẳng với cột sống, nếu heo nái kéo dụng cụ cho đầu heo ngước lên• Dùng bông cồn lau sạch vị trí lấy • Lấy máu từ mạch máu Superior venaca lấy 3-5ml máu và
Trang 1Lấy mẫu xét nghiệm
Reported by: Thach Van Manh Area: Ha Noi, Hoa Binh, Ha Tinh, Nghe An
Trang 21 Mẫu máu (Blood sample)
• Huyết thanh (Serum sample)
• Máu và chất kháng đông (Blood sample with anticoagulant)
2 Mẫu phân (Feces sample)
3 Mẫu Swab (Swab sample)
4 Mẫu mô trong formaline 10% (Tissue sample in
formalin)
5 Mẫu nước (Water sample)
6 Mẫu thức ăn (Feed sample)
Trang 3Mẫu máu
• Xylanh 5- 10ml
• Kim số 18x1.5 trên heo nái và
heo thịt
• Kim số 18x1.0 trên heo con
• Kim số 22x1.5 trên mạch tai
Trang 4• Dùng tay bắt heo nhỏ hoặc dùng dây bắt heo thịt Trước lấy máu giữ đầu heo cho thẳng với cột sống, nếu heo nái kéo dụng cụ cho đầu heo ngước lên
• Dùng bông cồn lau sạch vị trí lấy
• Lấy máu từ mạch máu Superior venaca lấy 3-5ml máu và rút khoảng không vào xylanh
• Ghi thông tin (số tai, lứa đẻ, tuổi…) của heo lấy máu
• Để mẫu ở nhiệt độ thường khoảng 1-2 giờ
• Gởi mẫu về phòng thí nghiệm trong vòng 3 giờ nếu không kịp thì bảo quản lạnh ở nhiệt độ 4-80C
Trang 6• Dùng tay bắt heo nhỏ hoặc dùng dây bắt heo
nái theo Dùng bông cồn lau sạch vị trí lấy và
vùng xung quanh mạch máu tai
• Dùng dây thun cột gốc tai cho mạch máu nổi
lên và tiến hành lấy
• Nguyên tắc lấy máu từ ngoài vào trong
• Ghi thông tin (số tai, lứa đẻ, tuổi…) của heo
lấy máu
• Để mẫu ở nhiệt độ thường khoảng 1-2 giờ
• Gởi mẫu về phòng thí nghiệm trong vòng 3
giờ, nếu không kịp thì bảo quản lạnh ở nhiệt
độ 4-80C
Trang 71 Mẫu máu có mỡ trong huyết thanh sau khi được ly tâm
2 Mẫu máu lấy ít hơn 1cc máu hoặc lấy quá đầy ống đựng máu, ly tâm không có huyết thanh, mẫu máu lấy ít hơn 20 mẫu/1 chuồng
Mẫu máu bị mỡ sau
khi ly tâm Lấy máu ít, không có huyết thanh
Trang 8Huyết thanh sau khi ly tâm có màu đỏ
đen
Trang 94 Mẫu máu có mùi hôi thối do không bảo quản lạnh
5 Mẫu máu bị đông đá do bảo quản ở nhiệt độ thấp hơn 2-8oC trước khi gửi về phòng thí nghiệm
Trang 10Nước vào trong túi
đựng mẫu
Trang 12Dụng cụ:
• Dùng ống môi trường vận chuyển
• Tăm bông đã được tiệt trùng ở phòng thí nghiệm
• Bọc nilon, bông cồn, giấy dán
Tiến hành :
• Giữ ngược 2 chân sau của heo, lấy bông cồn lau sạch vùng hậu môn của heo
• Dùng tăm bông đưa sâu vào trong trực tràng rồi lấy ra cắm ngập vào trong môi
trường vận chuyển hình, bẻ bỏ phần tăm phía ngoài đã dùng tay cầm
• Một môi trường lấy trên nhiều heo
• Ghi chi tiết thông tin lên giấy và dán lên mẫu
• Đem đến nơi kiểm tra ngay hay gởi về phòng thí nghiệm trong ngày, nếu không phải bảo quản ở 4-80C và gởi về ngày hôm sau
* Đối với mẫu swab dịch mũi, swab dịch viêm, swab dịch khớp cũng thực hiện tương
tự, nhưng vị trí lấy là mũi heo, âm đạo, và khớp
Trang 13Sử dụng môi trường vận chuyển và tăm
bông đã tiệt trùng, bọc nylon, bông cồn
và túi nylon ở phòng thí nghiệm
Giữ ngược hai chân sau của heo lên, lấy bông cồn lau sạch vùng hậu môn.
Mẫu phân
Trang 14- Dùng tăm bông đưa sâu vào
trong trực tràng rồi lấy ra cắm ngập vào trong môi trường vận chuyển.
- Bẻ bỏ phần tăm bông đã
cầm phía ngoài.
- Thường lấy 5con của một
chuồng cho vào một ống môi trường.
Mẫu phân
Trang 15Cho ống mẫu vào bịch lynon, cột chặt miệng và bảo quản trong
điều kiện lạnh
Mẫu phân
Trang 16E.coli Clostridium spp Salmonella spp
Hemotytic E.coli
Mẫu phân
Trang 21Dụng cụ:
• Dùng ống môi trường vận chuyển
• Tăm bông đã được tiệt trùng ở phòng thí nghiệm
• Bọc nilon, bông cồn, giấy dán
Tiến hành :
• Chọn lấy mẫu ở các vị trí của chuồng nuôi sau khi vệ sinh chuẩn bị
chuồng trại xong: Nền chuồng, bạt, nền toilet, máng ăn, núm uống, dụng
cụ chăn nuôi, …
• Dùng tampon vô trùng swab diện tích 1dm2 bề mặt vị trí cần lấy
• Một môi trường lấy trên nhiều vị trí/1 chuồng
• Ghi chi tiết thông tin lên giấy và dán lên mẫu
• Đem đến nơi kiểm tra ngay hay gởi về phòng thí nghiệm trong ngày, nếu không phải bảo quản ở 4-80C và gởi về ngày hôm sau
SWAB BỀ MẶT
Trang 22Tổng vi khuẩn hiếu khí (cfu/cm2)
E.coli
Salmonella spp
Pseudomonas spp Định tính và đinh lượng Clostridium
Trang 23Bạt &Trần
Dụng cụ
Trang 25MAÃU MÔ TRONG FORMALIN 10%
• Mổ khám để chẩn đoán và lấy mẫu
• Lấy một phần nhỏ của cơ quan (hạch, thận, phổi, lách, não, ruột…) có bề dày khoảng 1cm (để quá trình ngấm formaline vào mẫu mô được hoàn toàn) bỏ và trong lọ chứa formaline 10%
• Ghi đầy đủ thông tin bệnh sử, tuổi, giống, triệu chứng bệnh, quá trình điều trị, lịch làm vaccine để làm cơ sở chẩn đoán ở phòng thí nghiệm.
• Gởi mẫu về phòng thí nghiệm trong điều kiện không bảo quản lạnh (vì sẽ làm chậm quá trình ngấm của formaline vào mẫu)
Trang 27MẪU NƯỚC
Dụng cụ:
• Sử dụng chai 500ml vô trùng do phòng thí nghiệm cung cấp
• Lấy mẫu ở 2 nguồn là giếng và núm uống
Tiến hành
• Trước khi lấy mẫu nước phải để cho nước chảy từ 3-5 phút
• Lấy nước gần đầy chai
• Dùng băng keo dán chặt miệng nút chai
• Điền đầy đủ chi tiết về mẫu, tên trại, loại nước, nơi lấy, ngày lấy
• Đem mẫu đến nơi kiểm tra hay gởi về phòng thí nghiệm trong 24 giờ nếu không phải bảo quản ở 4-80C để tránh vi khuẩn trong nước tăng sinh
Trang 28Mẫu nước
Để nước chảy khoảng 3 – 5 phút Cho nước vào chai Ghi thông tin
Kiểm tra: Tổng khuẩn, tổng coliform, E.coli, Salmonella,
Clostridium, Pseudomonas
Trang 31• Lấy cám từ bao hoặc từ thùng chứa, lấy ở nhiều vị trí khác nhau
• Lấy khoảng 100g để kiểm tra vi sinh, 2kg để kiểm tra hóa tính
• Cho mẫu cám và bọc nilon và cột chặt miệng lại, chống ẩm
• Điền đầy đủ thông tin, tên trại, ngày sản xuất, cám số, ngày hết hạn, nơi lấy mẫu
Trang 33- Ghi yêu cầu xét nghiệm vào phiếu gởi mẫu và gởi đến phòng thí nghiệm.
Trang 34Dây buộc cắt 0,7m/ dây Dây dù cắt 1m/dây
Bông cồn, thùng có đá lạnh Túi nilon, ống effendoft, ống hút, găng tay
Trang 35Chia 1ống hút, 1túi nilon, 2ống effendoft, 1 đôi găng tay và túi nilon để lấy 1 mẫu Bước 1
Cố định dây dù ở chính giữa Chuẩn bị đủ số lượng cần lấy
Trang 36Bước 2 chuồng cần lấy mẫu.
Trang 37Bước 3 Cố định dây lấy mẫu ở trong chuồng
Chọn vị trí đầu chuồng: chờ 15 phútSau đó mở dây đưa về vị trí cuối chuồng chờ tiếp 15 phút
Trang 38Sau khoảng 30 phút, mở lấy dây chứa nước bọt, sau đó một tay giữ dây buộc, tay kia đưa dây dù vào túi nilon, vừa ép mạnh túi nilon vào dây dù vừa
kéo xuồng dọc theo dây dù cho nước bọt chảy ra tùi nilon
Trang 39Bước 5 Lấy nước bọt vào ống effendoft
Dùng ống hút nước bọt Cho nước bọt vào 2 ống effendoft
Đánh đấu mẫu Để mẫu vào túi nilon, bảo quản lạnh
Trang 40Bước 6 Vệ sinh chuẩn bị lấy mẫu mới
Sau khi lấy mẫu xông, tháo găng tay củ, sát trùng tay bằng bông cồn, sau đó vào chuồng tiếp theo mang găng tay mới
(đã chuẩn bị) , tiến hành lấy mẫu
Trang 41Mẫu huyết thanh
Trang 42Mẫu thức ăn chăn nuôi
Trang 43Mẫu Swab dịch bệnh phẩm
Trang 44Mẫu bề mặt
Trang 45Mẫu chất độn chuồng
Trang 46Mẫu Mô Bệnh học
Trang 47Mâu PCR
Trang 48Mẫu nước
Trang 49Mẫu phân
Trang 522 Kết quả kiểm tra PCR PCV-2
Trang 531 Kết quả kiểm tra PRRS
a Kết quả Elisa: dựa vào chỉ số kháng thể S/P, nếu:
a1 Chỉ số S/P<0.4: Nhóm heo kiểm tra âm tính với PRRS a2 Chỉ số 0.4<S/P<2.0: Nhóm heo kiểm tra dương tính
- USA strain: Châu Mỹ
- EU strain: Châu Âu
Trang 541 Kết quả kiểm tra PRRS
Trang 553 Kết quả kiểm tra AD
Trang 564 Kết quả kiểm tra FMD
Trang 575 Kết quả kiểm tra SFV
Tiêu chuẩn titer:
1 Heo nái, nọc: 7 – 10
2 Heo con theo mẹ: 6 – 9
3 Heo cai sữa: 3 – 6
4 Heo thịt 12 tuần tuổi: 7 - 10
Trang 595 Kết quả kiểm tra kháng sinh đồ