Tài liệu hạn chế xem trước, để xem đầy đủ mời bạn chọn Tải xuống
1
/ 93 trang
THÔNG TIN TÀI LIỆU
Thông tin cơ bản
Định dạng
Số trang
93
Dung lượng
2,22 MB
Nội dung
BỘ GIÁO DỤC VÀ ĐÀO TẠO TRƯỜNG ĐẠI HỌC BÁCH KHOA HÀ NỘI VŨ ĐỨC THUẬT VŨ ĐỨC THUẬT Đề tài: KỸTHUẬT Y SINH ĐO NỒNG ĐỘCÁC CHẤT TRONGMÁU BẰNG PHƯƠNGPHÁPĐOKHÔNGCAN THIỆP SỬ DỤNG KỸ THUẬTTẠO ẢNH VÀPHÂN TÍCH PHỔ SÓNG QUANGÂM LUẬN VĂN THẠC SĨ Kỹthuật y sinh KHOÁ 2014B Hà Nội – Năm 2016 BỘ GIÁO DỤC VÀ ĐÀO TẠO TRƯỜNG ĐẠI HỌC BÁCH KHOA HÀ NỘI - VŨ ĐỨC THUẬT Đề tài: ĐO NỒNG ĐỘCÁC CHẤT TRONGMÁU BẰNG PHƯƠNGPHÁPĐOKHÔNGCAN THIỆP SỬ DỤNG KỸ THUẬTTẠO ẢNH VÀPHÂN TÍCH PHỔ SÓNG QUANGÂM Chuyên ngành: KỹThuật Y Sinh LUẬN VĂN THẠC SĨ Kỹthuật y sinh NGƯỜI HƯỚNG DẪN KHOA HỌC : TS Trịnh Quang Đức Hà Nội – Năm 2016 CỘNG HÒA XÃ HỘI CHỦ NGHĨA VIỆT NAM Độc lập – Tự – Hạnh phúc BẢN XÁC NHẬN CHỈNH SỬA LUẬN VĂN THẠC SĨ Họ tên tác giả luận văn: Vũ Đức Thuật Đề tài luận văn: Đonồngđộchấtmáuphươngphápđokhôngcanthiệpsửdụngkỹthuậttạoảnhphântíchphổsóngquangâm Chuyên ngành: Kỹthuật y sinh Mã số SV: CB140296 Người hướng dẫn Hội đồng chấm luận văn xác nhận tác giả chỉnh sửa luận văn Giáo viên hướng dẫn Ngày 29 tháng 10 năm 2016 Tác giả luận văn Ts Trịnh Quang Đức CHỦ TỊCH HỘI ĐỒNG TS Phạm Thành Công LỜI CẢM ƠN Để hoàn thiện luận văn Thạc sĩ xin bày tỏ lòng biết ơn sâu sắc t i TS Trịnh Quang Đức, người thầy từ đầu định hướng tận tình hướng dẫn, giúp đỡ suốt trình thực đề tài nghiên cứu Tôi xin trân trọng cảm ơn hỗ trợ học tập tạo điều kiện tốt thầy cô Bộ môn Công nghệ Điện tử Kỹthuật Y sinh, Trung tâm Điện tử Y sinh thầy cô viện Điện tử - Viễn thông suốt thời gian học tập, nghiên cứu, thực luận văn Tôi xin bày tỏ lòng biết ơn sâu sắc tới gia đình, bạn bè động viên, khích lệ tạo điều kiện tốt cho trình học tập, thực đề tài nghiên cứu Hà Nội, ngày 28 tháng năm 2016 Tác giả luận văn Vũ Đức Thuật LỜI CAM ĐOAN Tôi xin cam đoan, tất số liệu kết nghiên cứu luận văn nghiên cứu, số liệu hoàn toàn trung thực, không trùng lặp với đề tài khác chưa sửdụng để bảo vệ luận văn Tôi xin cam đoan thông tin, số liệu trích dẫn luận văn xác rõ nguồn gốc, giúp đỡ, tạo điều kiện cho việc thực luận văn cảm ơn! Hà Nội, ngày 28 tháng năm 2016 Tác giả luận văn Vũ Đức Thuật MỤC LỤC DANH MỤC CÁC BẢN VẼ DANH SÁCH CÁC BẢNG BIỂU DANH SÁCH CÁC TỪ VIẾT TẮT LỜI MỞ ĐẦU TÓM TẮT ĐỀ TÀI MỞ ĐẦU CHƯƠNG ĐẶT VẤN ĐỀ VÀ MỤC TIÊU ĐỀ TÀI 10 1.1 Sinh chấtmáu bệnh lý 10 1.2 Cácphươngphápđo sinh chấtmáu truyền thống phươngpháp đề xuất 14 1.3 Mục tiêu đề tài 17 CHƯƠNG CÁC ĐẶC TÍNH QUANG HỌC CỦA MÔ SINH HỌC, TƯƠNG TÁC CỦA MÔ SINH HỌC VỚI ÁNH SÁNG 18 2.1 Đặc tính quang học mô sinh học 18 2.1.1 Hiện tượng hấp thụ 19 2.1.2 Hiện tượng khúc xạ phản xạ 20 2.1.3 Hiện tượng tán xạ 22 2.2 Tương tác nhiệt 24 2.2.1 Sự phát sinh nhiệt 24 2.2.2 Sự truyền nhiệt 24 2.2.3 Hiệu ứng quangâm 25 2.2.3 Tần số dao động tự nhiên 28 CHƯƠNG PHƯƠNGPHÁPQUANGĐO NỒNG ĐỘCÁC CHẤT TRONGMÁU 29 3.1 Phươngphápđođộphân cực quang 29 3.1.1 Ánh sáng phân cực 29 3.1.2 Sự quay phân cực quang 30 3.1.3 Thí nghiệm 32 3.2 Phươngphápphântíchphổ Raman 33 3.2.1 Hiệu ứng Raman 33 3.3 Phươngphápđosửdụng mô hình phân tán ánh sáng 35 3.3.1 Cơ sở phươngpháp 35 3.3.2 Thực phép đo 36 3.4 Khả truyền qua tia hồng ngoại gần 37 3.4.1 Cơ sở phép đo 37 3.4.2 Phươngphápđo 38 3.4.3 Phươngphápquangâm 39 3.5 Thảo luận 39 CHƯƠNG CÁC KỸ THUẬTTẠO ẢNH QUANG 40 4.1 Tạoảnhquang 40 4.2 Cáckỹthuậttạoảnhquang 40 4.2.1 Kỹthuật OCT (Optical Coherence Tomography) 40 4.2.2 Kỹthuậttạoảnh DOT (Diffuse Optical Tomography) 43 4.2.3 Kỹthuậttạoảnhquangâm (PAT) 44 4.2.3.1 Nguyên lý tạoảnhquangâm 44 4.3.2.2 Thuật toán tái tạoảnh chuyển đổi miền thời gian (Time Reversal) 48 4.3 Thảo luận 50 CHƯƠNG KỸ THUẬTPHÂN TÍCH PHỔ QUANGÂM 52 5.1 Nguyên lý phântíchphổquangâm 52 5.2 Phương trình truyền sóngâm 53 5.3 Phân tách sóng tổng hợp 61 5.3.1 Phântích Fourier 61 5.3.2 Biến đổi Fourier rời rạc biến đổi Fourier nhanh 62 5.4 Thảo luận 63 CHƯƠNG MÔ PHỎNG ĐO NỒNG ĐỘ GLUCOSE 64 6.1 Mục đích mô 64 6.2 Yêu cầu mô 64 6.3 Giả thiết điều kiện mô 65 6.3.1 Mô hình mô phỏng 65 6.3.2 Chi tiết điều kiện mô phỏng 66 6.4 Mô 70 6.4.1 Xung kích thích 70 6.4.2 Xây dựng hàm biên độ áp suất P 72 6.4.3 Phương trình truyền áp suất chất thành phần theo thời gian 72 6.4.5 Phântíchphổ tổng hợp 73 6.4.6 Phát đỉnh, xác định áp suất Glucose 73 6.5 Kết thảo luận 74 6.5.1 Xung vuông 74 6.5.2 Sóng tổng hợp có tác dụng xung vuông vào mẫu 74 6.5.3 Kết phântíchphổsóngâm 75 6.5.5 Phát đỉnh 75 6.5.6 Biểu diễn nồngđộchất thành phầnchất tổng hợp dạng màu 76 6.5.7 Thảo luận 79 KẾT LUẬN 80 TÀI LIỆU THAM KHẢO 81 PHỤ LỤC 83 DANH MỤC CÁC HÌNH VẼ Hình 1.1 Lấy mẫumáu để xét nghiệm 11 Hình 1.2 Một mô hình xét nghiệm máukhôngcanthiệp 16 Hình 2.1 Đặc tính khúc xạ, phản xạ, hấp thụ tán xạ mô sinh học 18 Hình 2.2 Mô tả định luật Lambert- Beer 19 Hình 2.3 Phổ hấp thụ mô sinh học 20 Hình 2.4 Hiện tượng khúc xạ phản xạ 21 Hình 2.5 Phản xạ gương (bên trái), phản xạ khuếch tán (bên phải) 21 Hình 2.6 Tán xạ Rayleigh tán xạ Mie 23 Hình 2.7 Sự hình thành sóngquangâm 26 Hình 2.8 Sự hình thành thu nhận sóngquangâm 26 Hình 2.9 Tốc độ truyền âm mô nước 27 Hình 3.1 Sựphân cực sóngánh sáng 29 Hình 3.2 Ánh sáng phân cực thẳng 30 Hình 3.4 Mô hình đođộphân cực quang ứng dụngđo nồngđộ glucose mắt thỏ 32 Hình 3.5 Chu trình trao đổi lượng tán xạ Raman 34 Hình 3.6 Mô hình đonồngđộ glucose máuphươngphápkhôngcanthiệpsửdụngphântíchphổ Raman 34 Hình 3.7 Đonồngđộ glucose sửdụng mô hình phân tán ánh sáng 36 Hình 3.8 Thiết bị đonồngđộ Glucose sửdụngđo mức truyền qua thùy tai tia hồng ngoại gần 38 Hình 4.1 Giao thoa kế Michelson 41 Hình 4.2 Sơ đồ tổng quát hệ thống tạoảnh OCT 42 Hình 4.3 Tạoảnh DOT miền tần số 43 Hình 4.4 Kỹthuậttạoảnhquangâm 44 Hình 4.5 Mô hình thực kỹthuậttạoảnhquangâm 45 Hình 4.6 Một ảnh chức thay đổi chuyển động mạch máu 46 Hình 4.7 Thể thay đổi hemoglobin deoxy hemoglobin oxy mạch máu nhỏ 47 Hình 4.8 Chỉ u melanoma da cấu trúc mạch máu bao quanh 47 Hình 4.9 Cơ chế tạoảnhquangâmkỹthuật đảo ngược thời gian 49 Hình 4.10 Sự chồng lấp mức hấp thụ chất bước sóng 51 Hình 5.1 Sóng thành phần thu từ việc phântíchsóng tổng hợp 52 Hình 5.2 Thiết kế cho mô phỏng: Xung laserchiếu đến mạch máu dạng hình cầu qua lớp mô mềm 58 Hình 5.3 Tổng quát mô hình xác định nồngđộchấtmáukỹthuậttạoảnhphântíchphổsóngquangâm 63 Hình 6.1 Thuật toán mô 65 Hình 6.2 Hệ số hấp thụ số chất dải hồng ngoại 66 Hình6.3 Độ hấp thụ chuẩn hóa Glucose, Albumin, Globulin 67 Hình 6.4 Mối quan hệ áp suất sóngquangâmtạo hỗn hợp chất với độ dày mô mềm công suất laser chiếu 69 Hình 6.7 Xung vuông kích thích có chu kỳ xung 74 Hình 6.8 Sóngâm tổng hợp thu nhận 74 Hình 6.9 Phântích Fourier phổ tổng hợp 75 Hình 6.10 Phát áp suất đỉnh Glucose nước 75 Hình 6.11 Màu tổng hợp chất thành phần 76 Hình 6.12 Chất thành phần Glucose 76 Hình 6.13 Chất thành phần Urea 77 Hình 6.14 Chất thành phần Nước 77 Hình 6.15 Chất thành phần Albumin 78 Hình 6.16 Chất thành phần Globulin 78 6.5 Kết thảo luận 6.5.1 Xung vuông 1.5 r(t) 0.5 -0.5 10 15 20 25 30 t (xe-7s) Hình 6.7 Xung vuông kích thích có chu kỳ xung T=10 , độ rộng xung = s 6.5.2 Sóng tổng hợp có tác dụng xung vuông vào mẫu Pth(t) -2 -4 -6 10 15 20 25 30 35 t(x e-7s) Hình 6.8 Sóngâm tổng hợp thu nhận (khoảng thời gian t= (0:35)x 74 ) 6.5.3 Kết phântíchphổsóngâm 3.5 p(f) pa 2.5 1.5 0.5 0 f(xe7 Hz) 10 12 Hình 6.9 Phântích Fourier phổ tổng hợp; Glucose f=1x10^7 Hz, Urea f=3x10^7 Hz, Albumin f=5x10^7Hz, Globulin f=7x10^7Hz, Nước f=10x10^7 Hz 6.5.5 Phát đỉnh 3.5 p(f) pa 2.5 1.5 0.5 0 f (xe7 Hz) 10 12 Hình 6.10 Phát áp suất đỉnh Glucose nước Phát đỉnh biên độ áp suất glucose f= 1x10^7 hz là: 2.27Pa Áp dụng công thức (5.43) Tính toán nồngđộ glucose 0.016 mol/L = 2.8g/L 75 6.5.6 Biểu diễn nồngđộchất thành phầnchất tổng hợp dạng màuMàu tổng hợp: Hình 6.11 Màu tổng hợp chất thành phần Hình 6.11 thể hình ảnhmàu hỗn hợp năm chất thành phần nêu Bình thường chất dạng hỗn hợp ta thấy thông tin có mặt chất thành phần đó, nồngđộ đóng góp chúng có hỗn hợp Sửdụngphântích Fourier để bóc tách chất thành phần hỗn hợp dựa vào tần số dao động riêng, ta có thể chất thành phầnnồngđộ đóng góp chúng Glucose: 65-105 mg/dL với – 100% tương ứng Hình 6.12 Chất thành phần Glucose 76 Thể Glucose có mặt hỗn hợp với màuđỏ cho mức màu thay đổi theo nồngđộMàuđỏ tối tương ứng với mức nồngđộ Glucose thấp, màuđỏ sáng mức Glucose có mặt cao Urea :7-18 mg/dLvới 0-100% tương ứng Hình 6.13 Chất thành phần Urea Urea có mặt hỗn hợp với màu hồng cánh sen cho mức màu thay đổi theo nồngđộMàu hồng cánh sen tối tương ứng với mức nồngđộ Urea thấp, màu hồng cánh sen sáng mức Urea có mặt cao Nước: Hình 6.14 Chất thành phần Nước 77 Albumin: 3200-4800mg/dL với 0-100% tương ứng Hình 6.15 Chất thành phần Albumin Albumin có mặt hỗn hợp với màu xám cho mức màu thay đổi theo nồngđộMàu xám tối tương ứng với mức nồngđộ Albumin thấp, màu xám sáng mức Albumin có mặt cao Globulin: 500-1500mg/dL với – 100% tương ứng Hình 6.16 Chất thành phần Globulin 78 Globulin có mặt hỗn hợp với màu xanh cho mức màu thay đổi theo nồngđộMàu xanh tối tương ứng với mức nồngđộ Globulin thấp, màuđỏ sáng mức Globulin có mặt cao 6.5.7 Thảo luận Thực mô môi trường Matlab chứng minh tính khả thi phươngphápphântíchphổsóngquangâm việc việc dự đoán nồngđộchấtmáu với độ xác cao (thí dụ qua việc xác định nồngđộ Glucose hỗn hợp năm chất) Mô đưa thông số đo cho hệ thống đo thực nghiệm tương lai 79 KẾT LUẬN Luận văn lựa chọn, nghiên cứu trình bày phươngphápđokhôngcanthiệp nhằm xác định nồngđộchấtmáukỹthuậttạoảnhphântíchphổsóngquangâm cho độ xác cao đồng thời tạoảnh thành phầnchất cho ảnh có độphân giải, độ tương phản, độ sâu tạoảnh tốt Trình bày sở lý thuyết phươngphápphântíchphổsóngquang âm: tìm công thức liên hệ áp suất quangâmđo với nồngđộchất từ đưa công thức tính nồngđộchất dựa áp suất quangâm thu nhận được; sửdụngphântích Fourier phân tách sóng tổng hợp thành sóng thành phần dựa tần số dao động đặc trưng sóng qua môi trường vật chất khác cho phép xác định nồngđộchất thành phần với độ xác cao Thực mô Matlab, chứng minh tính khả thi việc kết hợp kỹthuậttạoảnhquangâmphântíchphổquangâm xác định nồngđộchấtmáu cho độ xác cao Đưa thông số tính toán cho hệ thống đo thực nghiệm tương lai Luận văn đưa mô hình lý thuyết cho kỹthuậtđo Tuy nhiên, việc thực nghiệm kỹthuật đưa thực tế chưa thực khó khăn kinh phí trang thiết bị Hướng phát triển đồ án thực kỹthuậtđo đưa thực tế, thu thập thông số đánh giá tính đắn kỹthuậtđo 80 TÀI LIỆU THAM KHẢO vi.wikipedia.org/wiki/Máu, truy cập cuối ngày 19/8/2016 http://www.dieutri.vn/ynghiaxetnghitôi/24-11-2011/S1766/Y-nghia-lam-sangchi-so-xet-nghitôi-y-hoc.htm,m , truy cập cuối ngày 19/8/2016 http://vi.wikipedia.org/wiki/Ti%E1%BB%83u_%C4%91%C6%B0%E1%BB% 9Dng, truy cập cuối ngày 19/8/2016 http://thietbivinhthanh.blogspot.com/2013/09/nguyen-ly-o-quang-trong-xetnghitôi-hoa.html, truy cập cuối ngày 19/8/2016 Zuomin Zhao, Pulsed Photoacoustic techniques and glucose determination in human blood and tissue, Oulu 2002, pp.25-27 Masad Ahmad, Non-invasive blood glucose monitoring using near – infrared spectroscopy, October 16 2013, http://www.edn.com/design/medical/4422840/Non-invasive-blood-glucosemonitoring-using-near-infrared-spectroscopy Wang.L.V and Wu.H, Biomedical Optics : Principles and Imaging, WileyInterscience, Hoboken, NJ, 2007, pp.288-313 Wang.L.V and Wu.H, Biomedical Optics : Principles and Imaging, WileyInterscience, Hoboken, NJ, 2007, pp.5-8 Zuomin Zhao, Pulsed Photoacoustic techniques and glucose determination in human blood and tissue, Oulu 2002, p48 10 Markolf H Niemz, Laser -Tissue Interactions Fundamentals and Application, Springer, Chapter 2-3 11 Markolf H Niemz, Laser -Tissue Interactions Fundamentals and Application, Springer, pp.19-24 12 Markolf H Nitôiz, Laser -Tissue Interactions Fundamentals and Application, Springer, pp.58-72 13 Theodore Brown.E., Eugene.H., LeMay.H - Chemistry The Central Science, Prentice Hall, Pearson, 2011, pp 89 14 Nguyễn Đức Thuận, Nguyễn Vũ Sơn, Trần Anh Vũ, Cơ sở kỹthuật siêu âm, NXB Khoa học kỹ thuật, 2003 15 http://www.cpo.com/ipcres/pdfs/unit4/ch12sec3.pdf, truy cập cuối ngày 07/06/2014 16 Sugar Identification using Polarimetry, Revised 10/10/08, Slweaver 17 http://en.wikipedia.org/wiki/Raman_spectroscopy, truy cập lần cuối ngày 22/5/2014 18 Annika M K Enejder, Raman spectroscopy for noninvasive glucose measurements, Journal of Biomedical Optics, Vol 10(3), 9, May/June 2005 81 19 Alwin Kienle, Spatially resolved absolute diffuse reflectance measurements for noninvasive determination of the optical scattering and absorption coefficients of biological tissue, Applied optics, Vol 35, No 13, May 1996 20 Wang.L.V and Wu.H Biomedical Optics : Principles and Imaging, WileyInterscience, Hoboken, NJ, 2007, pp.181-213 21 Wang.L.V and Wu.H Biomedical Optics : Principles and Imaging, WileyInterscience, Hoboken, NJ, 2007, pp.249-276 22 http://en.wikipedia.org/wiki/Photoacoustic_imaging_in_biomedicine, truy cập cuối ngày 06/07/2014 23 http://www.math.ens.fr/~ammari/papers/retourntôient_ttôiporel4.pdf, truy cập cuối ngày 06/7/2014 24 http://en.wikipedia.org/wiki/Photoacoustic_spectroscopy, truy cập cuối ngày 06/07/2014 25 Balasubramanian.V - Chemistry higher secondary – first year, Tamilnadu Textbook Corporation, College Road, Chennai, 1, 2004, Unit 10 26 Lương Duyên Bình – Vật lý đại cương 1, NXB Giáo Dục Việt Nam, 2009 27 Amerov.K., Jun Chen and Mark Arnold.A - Molar Absorptivities of Glucose and Other Biological Molecules in Aqueous Solutions over the First Overtone and Combination Regions of the Near-Infrared Spectrum, Applied Spectroscopy, 58, 2004, pp 1199 – 1201 28 Kastôisumran.S and colleagues, Near-infrared spectroscopic determination of human serum albumin, γ-globulin, and glucose in a control serum solution with searching combination moving window partial least squares, Analytica Chimica Acta, 512, 2004, pp 223–230 29 Theodore Brown.E., Eugene.H., Ltôiay.H - Chemistry The Central Science, Prentice Hall, Pearson, 2011, pp 89 30 Steven Zumdahl, Donald DeCoste.J - Chemical principles, Brooks/Cole, Davis Drive Belmont,7th Edition, 2011, pp.865-866 31 Mark Strege.A., Avinash Lagu.L - Capillary Electrophoresis of Proteins and Peptides, Human Press, New Jersey, 2004, pp.169 32 Kara Rogers - The conponents of Life from Nucleic Acids to Carbohydrats, Britanica Educational, New York, 1sted, 2011, pp.109 33 Larry Brown, Tom Holme - Chtôiistry for Engineering , Cengage Learning,2013, pp.79 34 Anthony.R Shaw and Henry Mantsch.H - Encyclopedia of Analytical Chemistry, John Wiley & Sons Ltd, Chichester, 2000, pp.83-102 35 Faller.A, Schuenke.M - The Humman Body: An Introduction to Structure and Function, Georg Thieme Verlag, Germany, 2004, pp 6-6 82 PHỤ LỤC Tạo xung vuông function [ Y] = Creat_pulse_square(t,T,duty ) k1= t/T; k2=floor(k1); Y=heaviside(t-k2*T)- heaviside(t-(k2*T+duty)); end Tạo hàm cosine function [ Y] = cos_pr(t,w,theta,x,v ) k=w/v; Y = cos(w*t+k*x-theta); end Hàm P_init function [p0] = P_init(ua,M) Io = 0.01; d=0.15; ut=6.88; Io1 = Io*exp(-ut*d); R=8.31; nth=1; l=0.1; V= 2*pi*(0.001/2)^2*0.001; p0= ((R*nth*Io1*(1- exp(-ua*l))))/(M*4000*V); end Hàm sóng tổng hợp t=0:0.001:35; Y=Creat_pulse_square(t,10,4); Y1=P_init(0.01,0.18)*cos_pr(t,2*pi*1,pi/4,0.05,154000).*Y; Y3=P_init(1.4*10^-4,0.06)*cos_pr(t,2*pi*3,pi/4,0.05,154000).*Y; Y4=P_init(4.18*10^-3,66.5)*cos_pr(t,2*pi*5,pi/4,0.05,154000).*Y; Y5=P_init(4.18*10^-3,150)*cos_pr(t,2*pi*7,pi/4,0.05,154000).*Y; Y6=P_init(1.34*10^-3,0.018)*cos_pr(t,2*pi*10,pi/4,0.05,154000).*Y; 83 Yth=Y1+ Y3 + Y4 + Y5 + Y6; plot(t,Yth); ylabel('Pth(t)'); xlabel ('t(x e-7s)'); holdon; %axis([0 5,-9*10^-10 9*10^-10]); Hàm phântích Fourier Fs = 100; T=1/Fs; L=10000; %L=3700; t = (0:L-1)*T; Y=Creat_pulse_square(t,10,4); Y1=P_init(0.01,0.18)*cos_pr(t,2*pi*1,pi/4,0.05,154000).*Y; Y3=P_init(1.4*10^-4,0.06)*cos_pr(t,2*pi*3,pi/4,0.05,154000).*Y; Y4=P_init(4.18*10^-3,66.5)*cos_pr(t,2*pi*5,pi/4,0.05,154000).*Y; Y5=P_init(4.18*10^-3,150)*cos_pr(t,2*pi*7,pi/4,0.05,154000).*Y; Y6=P_init(1.34*10^-3,0.018)*cos_pr(t,2*pi*10,pi/4,0.05,154000).*Y; Yth=Y1+Y3+Y4+Y5+Y6; NFFT = 2^nextpow2(L); % Next power of from length of y Yth = fft(Yth,NFFT)/3930; f = Fs/2*linspace(0,1,NFFT/2+1); plot(f,2*abs(Yth(1:NFFT/2+1))); xlabel('f(xe7 Hz)'); ylabel('p(f) pa'); axis([0 20, 2]); Detect peaks [maxtab, mintab] = peakdet(2*abs(Yth(1:NFFT/2+1)),1.142,f); holdon;%plot(mintab(:,1), mintab(:,2), 'g*'); 84 plot(maxtab(:,1), maxtab(:,2), 'r*'); xlabel('f (xe7 Hz)'); ylabel('p(f) pa'); axis([0 20, 2]); Trộn màu % thang mau function c = autumn3(m) %AUTUMN Shades of red and yellow color map % AUTUMN(M) returns an M-by-3 matrix containing a "autumn" colormap % AUTUMN, by itself, is the same length as the current figure's % colormap If no figure exists, MATLAB creates one % % For example, to reset the colormap of the current figure: % % colormap(autumn) % % See also HSV, GRAY, HOT, BONE, COPPER, PINK, FLAG, % COLORMAP, RGBPLOT % Copyright 1984-2004 The MathWorks, Inc % $Revision: 1.7.4.2 $ $Date: 2005/06/21 19:30:23 $ if nargin < 1, m = size(get(gcf,'colormap'),1); end r = (0:m-1)'/max(m-1,1); %r=(linspace(0,0.8,m))'/0.9; c = [r zeros(m,1) zeros(m,1)]; % hongcanhsen function c = hongcanhsen3(m) 85 if nargin < 1, m = size(get(gcf,'colormap'),1); end r = (0:m-1)'/max(m-1,1); c = [ r zeros(m,1) r]; % yellow function c = yellow3(m) if nargin < 1, m = size(get(gcf,'colormap'),1); end r = (0:m-1)'/max(m-1,1); c = [ r r zeros(m,1)]; % bone function c = bone3(m) if nargin < 1, m = size(get(gcf,'colormap'),1); end% chuan hoa ve 1, ex colormap 256 r = (0:m-1)'/max(m-1,1); %r=(0:m-1)'; c = [r r r ]; % Green function c = green3(m) if nargin < 1, m = size(get(gcf,'colormap'),1); end r = (0:m-1)'/max(m-1,1); c = [zeros(m,1) r zeros(m,1) ]; % Trộn màu B=loadImage('E:\Do an anh Hoan\mophongy.bmp'); A1(1:256,1:256)=zeros; A2(1:256,1:256)=zeros; A3(1:256,1:256)=zeros; 86 A4(1:256,1:256)=zeros; A5(1:256,1:256)=zeros; A6(1:256,1:256)=zeros; A7(1:256,1:256)=zeros; A8(1:256,1:256)=zeros; for i=1:256 for j=1:256 if B(i,j)==1 A1(i,j)= random('unif',0.792,1.1);%hongcanhsen3,0.03,0.15 A2(i,j)= random('unif',0.06,0.2);%yellow3,0.03,0.18 A3(i,j)= random('unif',35,50);%autumn3,0.05,0.8 A4(i,j)= random('unif',26,46);%bone3,0.01;9000,0.04 A5(i,j)= 4.824;%xanhngoc3,0.01,0.05 %A6(i,j)= random('unif',0.4,1.89);%green3,0.01,0.04 else A1(i,j)=0; A2(i,j)=0; A3(i,j)=0; A4(i,j)=0; A5(i,j)=0; A6(i,j)=0; end end end A1=uint8(A1); A2=uint8(A2); A3=uint8(A3); A4=uint8(A4); A5=uint8(A5); 87 A6=uint8(A6); map1=autumn3; RGB1=ind2rgb(A1,map1); map2=hongcanhsen3; RGB2=ind2rgb(A2,map2); map3=bone3; RGB3=ind2rgb(A3,map3); map4=green3; RGB4=ind2rgb(A4,map4); map5=xanhngoc3; RGB5=ind2rgb(A5,map5); RGB(:,:,1)=((RGB1(:,:,1)+ RGB2(:,:,1)+RGB3(:,:,1)+RGB4(:,:,1)+RGB5(:,:,1)))/5; RGB(:,:,2)=((RGB1(:,:,2)+ RGB2(:,:,2)+RGB3(:,:,2)+RGB4(:,:,2)+RGB5(:,:,2)))/5; RGB(:,:,3)=((RGB1(:,:,3)+ RGB2(:,:,3)+RGB3(:,:,3)+RGB4(:,:,3)+RGB5(:,:,3)))/5; imagesc(RGB); colormap(hsv); xlabel('x - position'); ylabel ('y - position'); colorbar('YTickLabel',{'','','','','',''}); 88 ... tài Đo nồng độ chất máu phương pháp đo không can thiệp sử dụng kỹ thuật tạo ảnh phân tích phổ sóng quang âm Mục đích đề tài: đề xuất mô hình phương pháp ông can thiệp để đo nồng độ chất máu. .. Phương pháp xét nghiệm máu không can thiệp đo nồng độ chất máu sử dụng kỹ thuật tạo ảnh phân tích phổ sóng quang âm cho kết nồng độ chất với độ xác cao, bên cạnh nhìn thấy ảnh trực quan mức phân. .. tạp, ưu điểm phương pháp đo không can thiệp phương pháp đo can thiệp, đồng thời thấy tính khả thi kết hợp kỹ thuật tạo ảnh quang âm phân tích phổ quang âm việc đo xác nồng độ chất máu Từ đưa nghiên