(Đồ án hcmute) động học sinh trưởng của vi tảo chlorella vulgaris trong hệ thống closed photobioreactor ở điều kiện nuôi cấy khác nhau

BỘ GIÁO DỤC VÀ ĐÀO TẠO TRƯỜNG ĐẠI HỌC SƯ PHẠM KỸ THUẬT TP.HCM KHOA CƠNG NGHỆ HĨA HỌC VÀ THỰC PHẨM KHĨA LUẬN TỐT NGHIỆP NGÀNH CƠNG NGHỆ THỰC PHẨM ĐỘNG HỌC SINH TRƯỞNG CỦA VI TẢO CHLORELLA VULGARIS TRONG HỆ THỐNG CLOSED PHOTOBIOREATO Ở ĐIỀU KIỆN NUÔI CẤY KHÁC NHAU GVHD: TS VŨ TRẦN KHÁNH LINH SVTH: HOÀNG THỊ HỒNG MSSV: 12116031 SKL 0 4 Tp Hồ Chí Minh, tháng 07/2016 an TRƯỜNG ĐẠI HỌC SƯ PHẠM KỸ THUẬT THÀNH PHỐ HỒ CHÍ MINH KHOA CƠNG NGHỆ HĨA HỌC VÀ THỰC PHẨM BỘ MƠN CƠNG NGHỆ THỰC PHẨM KHĨA LUẬN TỐT NGHIỆP MÃ SỐ: 2016-12116031 ĐỘNG HỌC SINH TRƯỞNG CỦA VI TẢOCHLORELLA VULGARIS TRONG HỆ THỐNG CLOSED – PHOTOBIOREACTOR ỞĐIỀU KIỆN NUÔI CẤY KHÁC NHAU GVHD: TS VŨ TRẦN KHÁNH LINH SVTH: HOÀNG THỊ HỒNG MSSV: 12116031 THÀNH PHỐ HỒ CHÍ MINH – 07/2016 an TRƯỜNG ĐẠI HỌC SƯ PHẠM KỸ THUẬT THÀNH PHỐ HỒ CHÍ MINH KHOA CƠNG NGHỆ HĨA HỌC VÀ THỰC PHẨM BỘ MƠN CƠNG NGHỆ THỰC PHẨM KHĨA LUẬN TỐT NGHIỆP ĐỘNG HỌC SINH TRƯỞNG CỦA VI TẢO CHLORELLA VULGARIS TRONG HỆ THỐNG CLOSED – PHOTOBIOREACTOR Ở ĐIỀU KIỆN NUÔI CẤY KHÁC NHAU GVHD: TS VŨ TRẦN KHÁNH LINH SVTH: HOÀNG THỊ HỒNG MSSV: 12116031 THÀNH PHỐ HỒ CHÍ MINH – 07/2014 an i an an an an an an an Từ bảng 3.3 cho ta thấy: Nhìn chung hiệu suất thu hồi sinh khối khảo sát thấp Thấp thí nghiệm C1 đạt 0.031g/L.ngày thấp thí nghiệm C5 đạt 0.059 g/L.ngày Hiệu suất thu hồi sinh khối C4 cao đạt 0.290 g/L.ngày Theo kết nghiên cứu Liang cộng (2009) hiệu suất thu hồi sinh khối 10g/L glycerol 0.102 g/L.ngày cao gấp lần C1 khảo sát dù chứa 10g/L glycerol Nguyên nhân giống vi tảo khảo sát không huấn luyện trước để làm quen với môi trường sống chứa hàm lượng glycerol nên bổ sung vào môi trường chứa hàm lượng glycerol cao tảo khó thích nghi Ngồi cịn khác biệt chủng giống, sinh lý tế bào điều kiện vận hành thí nghiệm khác như: thể tích, kích thước bình ni cấy, nhiệt độ, điều kiện chiếu sáng…và môi trường sử dụng để khảo sát khác gây ảnh hưởng tới kết nghiên cứu, nghiên cứu sử dụng môi trường BBM cịn nghiên cứu Liang cộng sử dụng môi trường proteose để khảo sát 45 an CHƯƠNG IV KẾT LUẬN VÀ KIẾN NGHỊ 4.1 Kết luận Trong nghiên cứu khảo sát điều kiện nuôi cấy C.vulgaris sau: - Khảo sát ảnh hưởng mật độ tế bào ban đầu đến động học sinh trưởng tảo C.vulgaris - Khảo sát ảnh hưởng cường độ ánh sáng đến động học sinh trưởng tảo C.vulgaris - Khảo sát ảnh hưởng tỷ lệ glycerol:glucose ban đầu đến động học sinh trưởng tảo C vulgaris Chúng nhận thấy: - Ở mật độ giống cấy ban đầu 520 x 103 tế bào/mL, C vulgaris có tốc độ phát triển tốt hiệu suất thu hồi sinh khối cao (0.432g/L.ngày) - Cường độ chiếu sáng 150 µmol photons/m2s cho tốc độ sinh trưởng tốt hiệu suất thu hồi sinh khối cao đạt 0.389 g/L.ngày - Trong thí nghiệm tỷ lệ glycerol: glucose bổ sung g/L glycerol :3 g/L glucose vào mơi trường BBM sinh trưởng C vulgaris cho hiệu suất thu hồi sinh khối cao đạt 0.291 g/L.ngày 4.2 Kiến nghị: Đề tài bước đầu khảo sát số ảnh hưởng đến q trình ni trồng C.vulgaris, thời gian điều kiện không cho phép nên chưa thể mở rộng khảo sát nên kết thu cịn hạn chế Nếu có điều kiện em mong đề tài tiếp tục thử nghiệm vấn đề sau: Nâng cao khả đồng hóa glycerol C vulgaris thông qua việc huấn luyện giống trước gieo cấy 46 an TÀI LIỆU THAM KHẢO  Bài báo khoa học: [1] Adarme-Vega T, Lim DKY, Timmins M, Vernen F, Li Y, Schenk PM.2012 Microalgal biofactories: a promising approach towards sustainable omega-3 fatty acid production Microb Cell Fact Microbial Cell Factories;11(1):96 [2] Apt K.E and Behrens P.W 1999 Commercial developments in microalgal biotechnology J Phycol 35: 215–226 [3] Ben-Amotz, 1982.Industrial Production of Microalgal Cell-mass and Secondary Products – Major Industrial Species [4] Hoffman, Y., Zarka, A & Boussiba, S (2002).Isolation and characterization of a parasitic chytrid from a culture of the chlorophyte Haematococcus pluvialis [5] Bhola V, Desikan R, Santosh SK, Subburamu K, Sanniyasi E, Bux F.2011 Effects of parameters affecting biomass yield and thermal behaviour of Chlorella vulgaris J Biosci Bioeng The Society for Biotechnology, Japan,111(3):377–82 [6] Borowitzka MA.1999.Commercial production of microalgae: ponds, tanks, tubes and fermenters Journal of Biotechnology;70(1–3):313–21 [7] Bouterfas R, Belkoura M, Dauta A (2006).The effects of irradiance and photoperiod on the growth rates of three freshwater green algae isolated from a eutrophic lake Limnetica 25:647–656 [8] Bull, A.T 1974 Microbial growth In Companion to Biochemistry, Selected Topics for Further Study, pp 415-442 [9] Borowitzka M A 1997 Microalgae for aquaculture: opportunities and constraints J Appl Phycol 9: 393–401 [10] Brown MR: Nutritional value and use of microalgae in aquaculture.Avances en Nutrición Accola VI Memorias del VI Simposium Internacional de Nutrición Accola 2002, 3:281–292 [11] Brown MR, Hohmann S 2002 Effects of irradiance and growth phase on the ascorbic acid content of Isochrysis sp T.ISO (Prymnesiophyta) J Appl Phycol 14:211–214 [12] Brown M.R., Mular M., Miller I., Farmer C., and Trenerry C 1999 The vitamin content of microalgae used in aquaculture J Appl Phycol 11: 247–255 47 an [13] Bu’Lock, J D., Hamilton, D., Hulme, M A., Powell, A J., Shepherd, D., Smalley, H M and Smith, G N 1965 Metabolic development and secondary biosynthesis in Penicillium urticae Can J Micro 11, 765-778 [14] Brennan L, Owende P.2010 Biofuels from microalgae-A review of technologies for production, processing, and extractions of biofuels and co-products Renew Sustain Energy Rev Elsevier Ltd;14(2):557–77 [15] Chen YH, Walker TH 2011 Biomass and lipid production of heterotrophic microalgae Chlorella protothecoides by using biodiesel-derived crude glycerol Biotechnol Lett;33(10):1973–83 [16] Tredici M, Pinzani E, Materassi R Pushparaj B, Pelosi E As integrated culturemsystem for outdoor production of microalgae and cyanobacteria Journal of Applied Phycology 1997;9(2):113–9 [17] Chojnacka, K., Marquez-Rocha, F.J., 2004 Kinetic and stoichiometric relationships of the energy and carbon metabolism in the culture of microalgae Biotechnology,3, 21–34 [18] Chinnasamy S, Bhatnagar A, Hunt RW, Das KC (2010).Microalgae cultivation in a wastewater dominated by carpet mill effluents for biofuel applications Bioresour Technol 101:3097–3105 [19] Chisti, Y., 2007 Biodiesel from microalgae Biotechnol Adv 25, 294–306 [20] Collier, J.L & Grossman, A.R (1992) Chlorosis induced by nutrient deprivation in Synechococcus sp strain PCC 7942: not all bleaching is the same J Bacteriol., 174,4718–26 [21] CY, Yeh KL, Aisyah R, Lee DJ, Chang JS 2011 Cultivation, photobioreactor design and harvesting of microalgae for biodiesel production: A critical review Bioresour Technol.02(1):71–81 [22] Christenson L, Sims R.; 2011 Production and harvesting of microalgae for wastewater treatment, biofuels, and bioproducts Biotechnol Adv Elsevier Inc;29(6):686–702 [23] Công Văn Công,2012, Kết bước đầu nghiên cứu môi trường dinh dưỡng , độ mặn, mật độ ban đầu lên phát triển vi tảo Chaetoceros.sp thử nghiệm ni sinh khối hệ thống ni kín an toàn sinh học:Trường Đại học Vinh, 131-42 [24] Danesi EDG, Rangel-Yagui CO, Carvalho JCM, Sato S (2004) Effect of reducing the light intensity on the growth and production of chlorophyll by Spirulina platensis Biomass Bioenergy 26:29–335 48 an [25] Eriksen N 2008 The technology of microalgal culturing Biotechnology Letters 30(9):1525–36 [26] Exymol SAM: Protulines: Spirulina extract In Exymol SAM Edited by Monaco:; 2012 [27] Fenzl, F., Decker, M., Haass, D & Tanner, W (1977) Characterisation and partial purification of an inducible protein related to hexose proton co-transport of Chlorella vulgaris Eur J Biochem., 72, 509–14 [28] Franklin NM, Stauber JL, Apte SC.2002 Effect of Initial Cell Density on the Bioavailability and Toxicity of Copper in Microalgal Bioassays Environ Toxicol Chem,21(4):742–51 [29] Fraunhofer I.2005.BBM -Medium ( Bold ’ s Basal Medium + soil extract + vitamins ) Cult Collect Cryophilic Algae;(1963):6318 [30] Gupta PL, Choi HJ, Lee SM 2016 Enhanced nutrient removal from municipal wastewater assisted by mixotrophic microalgal cultivation using glycerol Environ Sci Pollut Res;1–10 [31] Gouveia, L., Marques, A.E., da Silva, T.L., Reis, A., 2009 Neochloris oleabundans UTEX #1185: a suitable renewable lipid source for biofuel production J Ind Microbiol Biotechnol 36, 821–826 [32] Gouveia, L., Oliveira, A.C., 2009 Microalgae as a raw material for biofuels production J Ind Microbiol Biotechnol 36, 269–274 [33] Grobbelaar, J.U (2000) Physiological and technological considerations for optimising mass algal cultures J Appl Phycol., 12, 201–206 [34] Guillard RRL (1973) Division rates In: Stein (ed) Handbook of phycological methods, vol Cambridge University Press, Cambridge, pp 289–312 [35] Hardie, L.P., Balkwill, D.L.&Stevens, S.E Jr (1983) Effects of iron starvation on the physiology of the cyanobacterium Agmenellum-quadruplicatum Appl Env Microbiol, 3, 999–1006 [36] Huang, G.H., Chen, F., Wei, D., Zhang, X.W., Chen, G., 2010 Biodiesel production by microalgal biotechnology Appl Energ 87, 38–46 [37] Huppe HC, Turpin DH (1994) Integration of carbon and nitrogen metabolism in plant and algal cells Annu Rev Plant Physiol Plant Mol Biol 45:577–607 49 an [38] Hoàng Thị Bích Mai, 1995 Sinh sản, sinh trưởng sở khoa học quy trình kỹ thuật ni thu sinh khối tảo silíc Skeletonema costatum (Greville) Cleve; Chaetoceros sp làm thức ăn cho ấu trùng tôm sú (Penaeus monodon Fabricius) Luận án cao học ngành NTTS, Trường Đại học Thuỷ sản Nha Trang [39] Illman, A.M., Scragg, A.H., Shales, S.W., 2000 Increase in Chlorella strains calorific values when grown in low nitrogen medium Enzyme Microb Technol 27, 631–635 [40] Johnson X, Alric J (2013) Central carbon metabolism and electron transport in Chlamydomonas reinhardtii: metabolic constraints for carbon partitioning between oil and starch Eukaryot Cell 12:776–793 [41] Jime´nez C, Cossı´o BR, Labella D, Xavier Niell F The feasibility of industrial production of Spirulina (Arthrospira) in southern Spain Aquaculture 2003;217(1– 4):179–90 [42] Kaplan, D., Richmond, A.E., Dubinsky, Z.&Aaronson, A (1986) Algal nutrition In: Handbook of Microalgal Mass Culture (ed A Richmond), pp 147–98 CRC Press,Boca Raton [43] Khoeyi ZA, Seyfabadi J, Ramezanpour Z 2012 Effect of light intensity and photoperiod on biomass and fatty acid composition of the microalgae, Chlorella vulgaris Aquac Int.;20(1):41–9 [44] Kong WB, Yang H, Cao YT, Song H, Hua SF, Xia CG 2013 Effect of glycerol and glucose on the enhancement of biomass, lipid and soluble carbohydrate production by Chlorella vulgaris in mixotrophic culture Food Technol Biotechnol;51(1):62–9 [45] Kobayashi, M 2000.In vivo antioxidant role of astaxanthin under oxidative stress in the green alga Haematococcus pluvialis Appl Microbiol Biotechnol, 54, 550–55 [46] Kurano N, Hu Q, Kawachi M, Iwasaki I, Miyachi A Ultrahigh-cell-density culture of a marine alga Chlorococcum littorale in a flat-plate photobioreactor Applied Microbiology and Biotechnology 1998;46:655–62 [47] Lee Y-K, Ding S-Y, Hoe C-H, Low C-S 1996 Mixotrophic growth of Chlorella sorokiniana in outdoor enclosed photobioreactor J Appl Phycol;8(2):163–9 50 an [48] Li Y, Horsman M, Wang B, Wu N, Lan CQ 2008 Effects of nitrogen sources on cell growth and lipid accumulation of green alga Neochloris oleoabundans Appl Microbiol Biotechnol;81(4):629–36 [49] Liang Y, Sarkany N, Cui Y.2009.Biomass and lipid productivities of Chlorella vulgaris under autotrophic, heterotrophic and mixotrophic growth conditions Biotechnol Lett;31(7):1043–9 [50] Lv JM, Cheng LH, Xu XH, Zhang L, Chen HL 2010; Enhanced lipid production of Chlorella vulgaris by adjustment of cultivation conditions Bioresour Technol Elsevier Ltd; 101(17):6797–804 [51] Liu N, Li F, Ge F et al 2015 Mechanisms of ammonium assimilation by Chlorella vulgaris F1068: isotope fractionation and proteomic approaches Bioresour Technol 190: 307–314 [52] Ma X, Zheng H, Addy M, Anderson E, Liu Y, Chen P, et al 2016 Cultivation of Chlorella vulgaris in wastewater with waste glycerol: Strategies for improving nutrients removal and enhancing lipid production Bioresour Technol Elsevier Ltd;207:252–61 [53] Mata, T.M., Martins, A.A., Caetano, N.S., 2010 Microalgae for biodiesel production and other applications: a review Renew Sust Energ Rev 14, 217–232 [54] Markou G, Nerantzis E 2013 Microalgae for high-value compounds and biofuels production: A review with focus on cultivation under stress conditions Biotechnol Adv Elsevier Inc.;31(8):1532–42 [55] Moheimani NR 2013; Inorganic carbon and pH effect on growth and lipid productivity of Tetraselmis suecica and Chlorella sp (Chlorophyta) grown outdoors in bag photobioreactors J Appl Phycol 25(2):387–98 [56] Muller–Feuga A 2000 The role of microalgae in aquaculture: situation and trends Journal of Applied Phycology 12: 527–534 [57] Myers, J & Graham, J 1958 On the mass culture of algae.II Yield as a function of cell concentration under continuous sunlight irradiance Plant Physiol 34: 345–352 [58] Lv J-Ming, Cheng LH, Xu XH, Zhang L, Chen HL 2010 Enhanced lipid production of Chlorella vulgaris by adjustment of cultivation conditions Bioresour Technol Elsevier Ltd;101(17):6797–804 51 an [59] O and apos;Grady J, Morgan JA 2011; Heterotrophic growth and lipid production of Chlorella protothecoides on glycerol Bioprocess Biosyst Eng 34(1):121–5 [60] Olla BL, Davis MW, Rose C 2000 Differences in orientation and swimming of walleye pollock Theragra chalcogramma in a trawl net under light and dark conditions: Concordance between field and laboratory observations Fish Res;44(3):261–6 [61] Philippis R, Sili C, Vincenzini M Glycogen and poly-{beta}-hydroxybutyrate synthesis in Spirulina maxima J Gen Microbiol 1992b;138:1623–8 [62] Pulz, O., 2001 Photobioreactors: production systems for phototrophic microorganisms Appl Microbiol Biotechnol 57, 287–293 [63] Raven, J.A 1988.Limits to growth In: Microalgal Biotechnology (eds M.A Borowitzka & L.J Borowitzka), pp 331–56 Cambridge: Cambridge Univ Press [64] Reitan KI, Rainuzzo JR,ie G, Olsen Y.1997.A review of the nutritional effects of algae in marine fish larvae Aquaculture, 155(1–4):207–221 [65] Rodolfi, L., Zittelli, G.C., Bassi, N., Padovani, G., Biondi, N., Bonini, G., Tredici, M.R., 2009 Microalgae for oil: strain selection, induction of lipid synthesis and outdoor mass cultivation in a low-cost photobioreactor Biotechnol Bioeng.102, 100–112 [66] Rosenberg JN, Oyler GA, Wilkinson L, Betenbaugh MJ 2008 A green light for engineered algae: Redirecting metabolism to fuel a biotechnology revolution Biotechnol; 19: 430-6 [67] Richmond A 2000 Microalgal biotechnology at the turn of the millennium: a personal view Journal of Applied Phycology 12(3–5):441–51 [68] Richmond, A., 1990 Handbook of microalgal mass culture CRC Press, Boston, MA, USA [69] Richmond, A., 2004 Handbook of microalgal culture: biotechnology and applied phycology Blackwell Science Ltd Pondicherry, Tamil Nadu, India [70] Richmond, A & Becker, E.W (1986) Technological aspects of mass cultivation – A general outline In: Handbook of Microalgal Mass Culture (ed A Richmond),pp 245– 63 CRC Press, Inc., Boca Raton 52 an [71] Sánchez-Saavedra MP, Voltolina D (2002) Effect of photon fluencerates of white and blue-green light on growth efficiency and pigment content of three diatom species in batch cultures Cienc Mar 28:273–279 [71] Samson R, Leduy A 1985 Multistage continuous cultivation of blue-green alga Spirulina maxima in flat tank photobioreactors Canadian Journal of Chemical Engineering;63:105–12 [73] Sato, T., Usui, S., Tsuchiya, Y., Kondo, Y., 2006 Invention of outdoor closed type photobioreactor for microalgae Energ Convers Manage 47, 791–799 [74] Sikyta B 1995 Progress in industrial microbiolog.Volume 31 New York: Elsevier 3356 [75] Seyfabadi,2010 Protein, fatty acid, and pigment content of Chlorella vulgaris under different light regimes J Appl Phycol (2011) 23:721–726 [76] Singh A, Nigam PS, Murphy JD; 2011 Mechanism and challenges in commercialisation of algal biofuels Bioresour Technol Elsevier Ltd;102(1):26–34 [77] Stanbury P F 1995 Principles of Fermentation Technology nd ed New York: Elsevier 13-16 [78] Spolaore P, Joannis-Cassan C, Duran E, Isambert A Commercial applications ofmicroalgae.J Biosci Bioeng 2006;101:87–96 [79] Tobergte DR, Curtis S No Title No Title J Chem Inf Model 2013;53(9):1689–99 25.Yamanel, 2001 Biomass production in mixotrophic culture of Euglena gracilis under acidic condition and its growth energetics.Biotechnology Letters 23-6 [80] Ugwu CU, Ogbonna J, Tanaka H 2002 Improvement of mass transfer characteristics and productivities of inclined tubular photobioreactors by installation of internal static mixers Applied Microbiology and Biotechnology 58(5):600–7 [81] Vonshak& A Richmond, A (1978) Spirulina culture in Israel Arch Hydrobiol Beith Ergebn Limnol, 11, 274–80 [82] Yoo, C., Jun, S.Y., Lee, J.Y., Ahn, C.Y., Oh, H.M., 2010 Selection of microalgae for lipid production under high levels carbon dioxide Bioresource Technol 101, S71–S74 [84] Yamaguchi K 1997 Recent advances in microalgal bioscience in Japan, with special reference to utilization of biomass and metabolites: a review J Appl Phycol 8: 487–502 53 an [85] Yamaguchi K: Recent advances in microalgal bioscience in Japan, with special reference to utilization of biomass and metabolites: a review J Appl Phycol 1996, 8(6):487–502 [86] M, Liu P, Xia J et al (2011) The effect of mixotrophy on microalgal growth, lipid content, and expression levels of three pathway genes in Chlorella sorokiniana Appl Microbiol Biotechnol 91:835–844 [87] Yamane, 2001, Biomass production in mixotrophic culture of Euglena gracilis under acidic condition and its growth energetics Biotechnology Letters 23: 1223–1228, 2001 [88] Yuehua C,ZhuJ,Wu R 2006 Functionalmappingforgenetic control of programmed cell death Physiol Genomics 25:458–469  SÁCH [1] Amos Richmond.2004.Handbook of Microalgal:Culture: Biotechnology and Applied Phycology UK: Blackwell [2] Andrew D Eaton, Mary Ann H Franson.2012.Standard methods for the examination of water and wastewater, 22nd edn Washington DC,1200 [3] Faizal Bux.2013.Biotechnological Applications of Microalgae: Biodiesel and ValueAdded Products, New York, 201 [4] Hagiwwa, Snell, Lubzens and Tamaru.1996.Live Food in Aquaculture: Proceedings of the Live Food and Marine Larviculture.Japan: Nagasaki.328 [5] Harisha S 2006 An introduction to practical biotechnology st ed New Deli: LTD 51-52 [6] Kathy Barker, 2005, At the Bench: A Laboratory Navigator, New York: Cold Spring Harbor, 465 54 an PHỤ LỤC Hình 1: Đĩa petri chứa tảo giống C.vulgaris Hình 2: Nhân giống C.vulgaris đĩa petri 55 an Hình 3: Bình nhân giống C.vulgaris Hình 4: Kết khảo sát mật độ bổ sung giống ban đầu C.vulgaris ngày thứ (260 x 103 tế bào/mL, 520 x 103 tế bào/mL, 780 x 103 tế bào/mL, theo hướng từ trái qua phải) 56 an Hình 5: Kết khảo sát cường độ chiếu sángC.vulgaris ngày thứ (150 µmol photons /m2s, 250 µmol photons /m2s, 350 µmol photons /m2s, 0.5 µmol photons /m2s theo hướng từ trái qua phải) Hình 6: Kết khảo sát tỷ lệ thay glycerol:glucose C.vulgaris (10 g/L glycerol môi trường, 9g/L glycerol+1g/L glucose,8g/L glycerol+2g/L glucose,7g/L glycerol+3 g/L glucose, mẫu control, theo hướng từ trái qua phải) 57 an 58 an S an K L 0 ... điều kiện nuôi cấy tốt cho sinh trưởng phát triển C .vulgaris Nội dung nghiên cứu Đề tài: ? ?Động học sinh trưởng vi tảo Chlorella vulgaris hệ thống closedphotobioreactor điều kiện nuôi cấy khác nhau? ??,... NGHỆ HĨA HỌC VÀ THỰC PHẨM BỘ MÔN CÔNG NGHỆ THỰC PHẨM KHÓA LUẬN TỐT NGHIỆP ĐỘNG HỌC SINH TRƯỞNG CỦA VI TẢO CHLORELLA VULGARIS TRONG HỆ THỐNG CLOSED – PHOTOBIOREACTOR Ở ĐIỀU KIỆN NUÔI CẤY KHÁC NHAU. .. Nhằm tìm hiểu kỹ điều kiện sinh trưởng C .vulgaris, định thực đề tài: ? ?Động học sinh trưởng vi tảo Chlorella vulgaris hệ thống closedphotobioreactor điều kiện nuôi cấy khác nhau? ?? Mục tiêu đề tài