hiệuquảcủamôitrờngGEYCtrongbảoquản
lạnh sâutinhtrùng ngời
Trịnh Bình, Trịnh Sinh Tiên
Nguyễn Ngọc Hùng và Nguyễn Thị Bình
Đại học Y Hà Nội
Sử dụng môitrờngGEYC đợc tự pha tại phòng thí nghiệm bảoquản 30 mẫu tinhtrùng ngời
bằng lạnhsâu cho kết quả chất lợng tinhtrùngsaubảoquản đảm bảo theo tiêu chuẩn của AATB.
Môi trờngGEYC có thể chủ động tự pha tại phòng thí nghiệm có giá thành phù hợp với điều kiện
Việt Nam.
(Từ viết tắt: GEYC: Glycerol-Egg Yolk-Citrat; CSF: Cryosurvival factor; TT: tinh trùng)
I. đặt vấn đề
Theo thời gian, nhiều môitrờng đã đợc sử
dụng để bảoquảnlạnhtinhtrùng ngời. Những
công bố về hiệuquảcủa các môitrờngtrong
bảo quảnlạnhtinhtrùng rất khác nhau.
Theo các tác giả Silva A.L, Yamasaki R, de
Sala M.M, Cabrera M da G, de Sa M.F (1996)
[6], qua nghiên cứu Đánh giá hiệuquả khi
thêm sodium citrate và fructose hoặc sodium
citrate vào môitrờng có egg yolk, glycerol và
TEST trongbảoquảnlạnhtinhtrùng ngời đã
có nhận xét: tỷ lệ tinhtrùng di động và tỷ lệ tinh
trùng sống đều giảm ở cả 2 khoảng thời gian
bảo quản so với trớc khi bảo quản. Các chỉ số
này không có sự khác biệt khi so sánh 3 loại
môi trờng và ở 2 khoảng thời gian bảo quản.
Sau tan đông 2 giờ, các chỉ số đều giảm so với
phân tích ngay sau khi tan đông.
Năm 1999, J.K Sherman [5] kết luận: tỷ lệ
tinh trùng sống saubảoquản nếu sử dụng môi
trờng bảoquản là glycerol-egg yolk hay
glycerol đơn thuần đều không có sự khác nhau.
Năm 2000, các tác giả Hallak J, Sharma
R.K, Wellstead C, Agarwal A [3] đã nghiên cứu
so sánh khi sử dụng môitrờngbảoquản là
TEST-Yolk và glycerol ở các khoảng thời gian
bảo quản 0; 60; 120; 180 phút. Kết quả cho
thấy: tỷ lệ tinhtrùng di động giảm ở cả hai
nhóm, nhng tỷ lệ tinhtrùng di động nhóm
TEST-Yolk cao hơn ở các khoảng thời gian bảo
quản so với nhóm glycerol. Về mặt hình thái, tỷ
lệ tinhtrùng bình thờng ở nhóm TEST Yolk
cũng cao hơn (p < 0,05). Kết quả đã khẳng định
sử dụng TEST Yolk là môitrờngbảoquản
lạnh tinh dịch sẽ đem lại mẫu tinh dịch saubảo
quản lạnh có chất lợng tốt hơn so với việc sử
dụng glycerol. Do đó, các tác giả đã có khuyến
cáo TEST Yolk là môitrờng đợc lựa chọn
đầu tiên để bảoquảnlạnhtinhtrùng ngời.
ở Việt Nam, bảoquảnlạnhtinhtrùng ngời
để phục vụ cho việc chăm sóc sức khoẻ sinh
sản là vấn đề rất cần thiết và mới mẻ. Trong số
các môitrờng đợc các nhà chuyên môn trên
thế giới cũng nh trong nớc đã sử dụng để
bảo quảnlạnhtinh trùng, môitrờng nào phù
hợp với điều kiện, hoàn cảnh Việt Nam? Nh
vậy, môitrờngbảoquản có ý nghĩa quan
trọng đến chất lợng bảoquảntinh trùng. Để
có thể vừa chủ động đợc môi trờng, vừa đảm
bảo đợc chất lợng bảoquảntinhtrùng cũng
nh với giá thành hợp lý chúng tôi mạnh dạn
nghiên cứu HiệuquảcủamôitrờngGEYC
trong bảoquảnlạnhsâutinhtrùng ngời với
mục tiêu: Đánh giá hiệuquảcủamôitrờng
GEYC trongbảoquảntinhtrùng ngời bằng
lạnh sâu.
II. Đối tợng và phơng pháp
nghiên cứu
1. Đối tợng nghiên cứu.
- 30 mẫu tinh dịch có tinh dịch đồ bình
9
- Công trình đợc thực hiện tại Lao. bảoquản Mô - Phôi củatrờng Đại học Y Hà Nội.
thờng đợc xét nghiệm và bảoquảnlạnhsâu
tại phòng bảoquản Mô - Phôi, Trờng Đại học
Y Hà Nội.
- Tiêu chuẩn chọn đối tợng nghiên cứu:
+ Nam giới trong độ tuổi sinh sản.
+ Đã không xuất tinh từ 3 đến 5 ngày.
+ Không sốt, không dùng thuốc, không
uống rợu tại thời điểm lấy mẫu.
2. Phơng pháp nghiên cứu.
Sử dụng phơng pháp nghiên cứu can
thiệp. Đánh giá trớc và sau can thiệp tại các
thời điểm khác nhau.
2.1. Xét nghiệm tinh dịch.
a. Khảo sát đại thể.
b. Khảo sát vi thể: Đánh giá mật độ và
độ di động tinhtrùng bằng kính hiển vi quang
học và buồng đếm Makler. Tiến hành sau khi
mẫu tinh dịch đã ly giải hoàn toàn.
- Đánh giá tỷ lệ tinhtrùng di động.
+ Tinhtrùng di động tiến tới nhanh.
+ Tinhtrùng di động chậm và tại chỗ.
+ Tinhtrùng không di động.
Đếm tổng cộng 200 tinhtrùng trên vi trờng
bằng máy bách phân bạch cầu. Sau đó tính tỷ
lệ phần trăm mỗi loại.
- Đánh giá mật độ tinh trùng.
Không cần pha loãng tinh dịch, bất động
tinh trùng bằng nhiệt trớc khi đếm.
- Đánh giá hình thái.
+ Kỹ thuật nhuộm Giemsa.
+ Kỹ thuật nhuộm phiến đồ theo phơng
pháp Papanicolaou.
- Đánh giá tỷ lệ tinhtrùng sống: phơng
pháp nhuộm eosin.
c. Đánh giá mẫu tinh dịch bình thờng:
Theo tiêu chuẩn chọn mẫu tinh dịch có tinh
dịch đồ bình thờng theo WHO 1999 [8].
2.2. Chuẩn bị môitrờngbảoquảnlạnh
Glycerol - egg yolk - citrat (GEYC) [1]:
* Pha theo công thức của Ackerman.
- Thành phần:
Thành phần để pha 200 ml môitrờng
1 Penicillin 1triệu UI 01 lọ
2 Streptomycin 1 gam 01 lọ
3 Egg yolks Bột khô 40 gam
4 Glycerol PA
30 ml
5 Glycocol Glycin 2 gam
6 Glucose
2,6 gam
7 Natri citrat PA 2,3 gam
8 Nớc cất 2 lần,
khử ion kim loại
130 ml
- Kỹ thuật pha:
1. Lấy 30 ml nớc cất hoà tan hết tinh thể
(5; 6;7) đợc dung dịch A.
2. Lọc vô khuẩn dung dịch A. Lỗ màng lọc <
0.22 àm.
3. Cho Glycerol và Egg yolks vào dung dịch
đã lọc, lắc đều bằng máy.
4. Cho đủ nớc cất để đợc 200ml.
5. ủ ở tủ sấy 56
o
C trong 30 phút.
6. Chuẩn độ pH #7,2 bằng NaHCO
3
hoặc
HCl 1N là đạt đợc dung dịch cần pha.
* Kỹ thuật bảoquảntinh trùng.
- Cho môitrờngbảoquảnlạnh vào tinh dịch:
- Đóng gói.
- Hạ nhiệt độ: Sử dụng máy hạ nhiệt độ từ
từ -Nicool 10.
- Lu trữ.
- Tan đông: Tan đông các mẫu tinh dịch
đợc bảoquảnlạnhsâu để kiểm tra ở các thời
điểm saubảoquản 1 ngày, 2 ngày, 30 ngày và
90 ngày.
2.3. Xử lý số liệu.
Các số liệu đợc xử lý theo phần mềm Epi-
Info Version 6.0 của WHO. Kiểm định sự khác
biệt bằng test t và sự khác biệt có ý nghĩa
thống kê khi p < 0,05.
3. Chỉ tiêu đánh giá.
- Tỷ lệ tinhtrùng di động nhanh.
- Tỷ lệ tinhtrùng di động (nhanh & chậm)
- Tỷ lệ tinhtrùng sống.
10
1.2. Tỷ lệ % tinhtrùng di động (nhanh &
chậm) trớc và saubảo quản:
- Chỉ số CSF di động nhanh = % tinhtrùng
di động nhanh saubảo quản: % tinhtrùng di
động nhanh trớc bảoquản ì 100.
Bảng 2: Tỷ lệ % tinhtrùng di động
(nhanh & chậm): X
SD.
- Chỉ số CSF di động (nhanh & chậm) = %
tinh trùng di động (nhanh & chậm) saubảo
quản: % tinhtrùng di động (nhanh & chậm)
trớc bảoquản ì 100.
Trớc bảoquản (A)
70,0 10,0
So
A với B
1 ngày
48,5 12,1
2 ngày
43,1 11,3
30 ngày
43,1 8,4
Sau bảo
quản (B)
GEYC
90 ngày
45,0 10,2
P < 0,001
- Chỉ số tinhtrùng sống = % tinhtrùng sống
sau bảo quản: % tinhtrùng sống trớc bảo
quản ì 100.
III. kết quả
Từ tháng 5/2002 đến tháng 8/2002, 30 mẫu
tinh dịch đã đợc lấy tại phòng xét nghiệm bảo
quản Mô - Phôi, Trờng Đại học Y Hà Nội.
Những mẫu tinh dịch này đều đợc kết luận là
bình thờng theo tiêu chuẩn của WHO (1999)
và đợc bảoquản bằng lạnhsâu (-196C) môi
trờng GEYC. Đánh giá tại các khoảng thời
gian bảoquản 1 ngày, 2 ngày, 30 ngày, 90
ngày. Các chỉ tiêu đánh giá trớc và saubảo
quản là tỷ lệ di động và sống củatinh trùng.
Kết quả trên cho thấy:
- Nhìn chung, tỷ lệ tinhtrùng di động
(nhanh & chậm) saubảoquản ở tất cả các thời
điểm đánh giá đều giảm.
- Tỷ lệ di động (nhanh & chậm) củatinh
trùng saubảo quản: giá trị trung bình thấp nhất
ở khoảng thời gian bảoquản 30 ngày (43,1%),
cao nhất ở khoảng thời gian bảoquản 1 ngày
(48,5%) và đều thấp hơn tỷ lệ tinhtrùng di
động (nhanh & chậm) trớc bảoquản (43,1%
so với 70,0%; 48,5% so với 70,0%). Sự khác
biệt này có ý nghĩa thống kê (p < 0,001).
1. ảnh hởng củabảoquản bằng lạnh sâu.
1.1. Tỷ lệ % tinhtrùng di động nhanh trớc
và saubảo quản:
1.3. Tỷ lệ % tinhtrùng sống trớc và sau
bảo quản:
Bảng 1: Tỷ lệ % tinhtrùng di động nhanh
(X
SD).
Bảng 3: Tỷ lệ % tinhtrùng sống: X
SD.
Trớc bảoquản (A)
41,9 20
So
A với B
1 ngày
21,4 8,6
2 ngày
19,8 8,6
30 ngày
20,2 6,6
Sau bảo
quản (B)
GEYC
90 ngày
21,6 8,2
P < 0,001
Trớc bảoquản (A)
81,0 6,9
So
A với B
1 ngày
61,2 12,9
2 ngày
58,1 11,7
30 ngày
61,0 11,3
Sau bảo
quản (B)
GEYC
90 ngày
59,7 11,1
P < 0,001
Qua bảng 3.1 cho thấy:
Qua bảng 3 cho thấy:
- Nhìn chung, tỷ lệ tinhtrùng di động nhanh
sau bảoquản ở các thời điểm đều giảm.
- Tỷ lệ tinhtrùng sống saubảoquản ở tất
cả các thời điểm đánh giá đều giảm.
- Tỷ lệ di động nhanh củatinhtrùngsau
bảo quản: giá trị trung bình thấp nhất ở khoảng
thời gian bảoquản 2 ngày (19,8%), cao nhất ở
khoảng thời gian bảoquản 90 ngày (21,6%) và
đều thấp hơn tỷ lệ tinhtrùng di động nhanh
trớc bảoquản (41,9%). Sự khác biệt có ý
nghĩa thống kê (p < 0,001).
- Tỷ lệ sống củatinhtrùngsaubảo quản:
giá trị trung bình thấp nhất ở khoảng thời gian
bảo quản 2 ngày (58,1%), cao nhất ở khoảng
thời gian bảoquản 1 ngày (61,2%) và đều thấp
hơn tỷ lệ tinhtrùng sống trớc bảoquản
(58,1% so với 81,0%; 61,2% so với 81,0%). Sự
khác biệt có ý nghĩa thống kê (p < 0,001).
11
2. Đánh giá tác dụng củamôitrờngGEYCqua các khoảng thời gian bảo
quản khác nhau.
Bảng 4. Chỉ số chất lợng tinhtrùng ở các khoảng thời gian bảoquản khi sử dụng
môi trờngGEYC (X
SD).
Thời gian BQ
Chỉ số (%)
1 ngày (I) 2 ngày (II) 30 ngày (III) 90 ngày (IV) P
I,II,III,IV
CSF (DĐ nhanh)
56,7 0,2 52,3 18,3 55,7 23,0 56,7 18,8
p > 0,05
CSF (DĐ nhanh &
chậm)
69,0 5,2 62,3 16,5 62,3 12,2 64,0 13,5
p > 0,05
Chỉ số TT sống
76,0 3,5 72,0 13,0 75,3 13,8 73,7 13,8
p > 0,05
Qua kết quả trên cho thấy:
- Chỉ số CSF di động nhanh có giá trị trung
bình thấp nhất ở khoảng thời gian bảoquản 2
ngày (52,3%) và cao nhất ở khoảng thời gian
bảo quản 1 ngày (56,7%). Tuy nhiên, khi so
sánh từng cặp, sự khác biệt này không có ý
nghĩa thống kê (P
I,II,III,IV
> 0,05). Nh vậy không
có sự liên quan chỉ số CSF cao hay thấp với
khoảng thời gian lu trữ dài hay ngắn trongmôi
trờng GEYC. ở các khoảng thời gian bảoquản
chỉ số này đều đạt yêu cầu do AATB quy định.
- Chỉ số CSF di động (nhanh & chậm) có
giá trị trung bình thấp nhất ở khoảng thời gian
bảo quản 2 ngày (62,3%) và cao nhất ở
khoảng thời gian bảoquản 1 ngày (69,0%). Khi
so sánh từng cặp, sự khác biệt không có ý
nghĩa thống kê (P
I,II,III,IV
> 0,05). Nh vậy không
có sự liên quan chỉ số CSF cao hay thấp với
khoảng thời gian lu trữ dài hay ngắn khi dùng
môi trờng GEYC. ở các khoảng thời gian bảo
quản, chỉ số này đều đạt yêu cầu do AATB quy
định.
- Chỉ số tinhtrùng sống có giá trị thấp nhất
ở khoảng thời gian bảoquản 2 ngày (72,0%)
và cao nhất ở khoảng thời gian bảoquản 1
ngày (76,0%). Khi so sánh từng cặp, sự khác
biệt không có ý nghĩa thống kê (P
I,II,III,IV
> 0,05).
IV. bàn luận
* Môitrờng glycerol đơn thuần và các môi
trờng phối hợp nhiều thành phần:
Môitrờngbảoquảntinhtrùng đợc các
nhà nghiên cứu quan tâm bởi vai trò của nó để
nâng cao chất lợng tinhtrùngsaubảo quản.
Theo thời gian đã có nhiều môitrờng đợc sử
dụng, công bố về hiệuquảcủa các môitrờng
trong bảoquảntinhtrùng cũng rất khác nhau.
Năm 1949, Polge [5] đã sử dụng glycerol là
môi trờngbảoquảnlạnhtinhtrùng đã đem lại
kết quả khả quan, cho đến nay Ngân hàng tinh
trờng Đại học tổng hợp Arkansas vẫn sử dụng
glycerol đơn thuần. Các nghiên cứu 10 năm
gần đây đợc công bố, đã đề cập nhiều đến
các môitrờng phối hợp bởi nhiều thành phần
nh: egg yolk, glycerol, glucose, fructose,
glycine, citrate [Na citrate, K citrate], TES [N-
tris (hydroxymethyl) aminomethane sulfonic
acid], tris [(hydroxymethyl) aminomethane],
Đã chứng tỏ rằng môitrờng phối hợp đó đã
đem lại chất lợng tinhtrùngsaubảoquản tốt
hơn so với glycerol đơn thuần. Hallak [3] đã
khẳng định sử dụng môitrờng TEST (TES &
tris) Yolk tốt hơn glycerol. Foote R.H [2] kết
luận môitrờng egg yolk-citrate-glucose-
glycerol và egg yolk-tris-glucose-glycerol tốt
hơn rất nhiều so với glycerol đơn thuần. Trong
nghiên cứu này sử dụng môitrờng GEYC, kết
quả cho thấy:
Chỉ số CSF di động nhanh và CSF di động
(nhanh và chậm) cũng nh tỷ lệ % tinhtrùng di
động nhanh và chậm ở các khoảng thời gian
sau bảoquản đều có giảm so với trớc bảo
quản với p < 0,001 (bảng 1; 2 và 3). Tuy nhiên
mức độ giảm có khác nhau.
12
Kết quả trên cho thấy sử dụng môitrờng
GEYC bảoquảntinhtrùng ngời phù hợp với
nhận xét của các tác giả trong và ngoài nớc.
* Môitrờng có egg yolk và các môitrờng
phối hợp không có egg yolk:
Môi trờng nhiều thành phần có egg yolk đã
đợc khẳng định trongbảoquảntinh trùng.
Năm 1999, theo J.K. Sherman [5] có rất nhiều
trung tâm bảoquảntinhtrùng trên thế giới sử
dụng môitrờng có chứa egg yolk nh: Ngân
hàng gen và tinh trùng, trờng Đại học Tổng
hợp Nebraska và Ngân hàng gen lạnh quốc tế
sử dụng TESNaK-EYG có glucose không có
citrate. Ngân hàng lạnh Califonia và Phòng thí
nghiệm gen lạnh Quốc tế sử dụng TEST-EYG
không có glucose, có citrate. Hiện nay còn
nhiều quan điểm khác nhau về môitrờng egg
yolk và các thành phần khác.
Silva A.L [6] đã kết luận môitrờng TEST-
Yolk, TEST-Yolk thêm 20% sodium citrate, 2%
fructose và TEST-Yolk thêm 20% sodium
citrate khi sử dụng bảoquảntinhtrùng đều tốt
nh nhau. Còn theo Stanic P [7] và Hammadeh
M.E [4], môitrờng TEST-Yolk tốt hơn HSPM
(môi trờng Tyrode có glycerol). Các tác giả
khuyến cáo TEST-Yolk là môitrờng đợc lựa
chọn đầu tiên bảoquảntinh trùng.
Chỉ số CSF di động (nhanh & chậm) ở
khoảng thời gian saubảoquản 1 ngày, 2 ngày,
30 ngày và 90 ngày đều đạt khá cao (69,0%;
62,3%; 62,3% và 64%) (Bảng 3.4). Kết quả
này chứng tỏ hiệuquảcủamôitrờngGEYC
cho bảoquảntinhtrùngtronglạnhsâu đạt yêu
cầu do AATB quy định.
Với những môitrờng nhiều thành phần có
egg yolk, có hoặc không có TEST thì chất lợng
cho bảoquản có khác nhau không? Trong 10
năm gần đây không thấy nghiên cứu nào công
bố. Theo Foote R.H [2], sử dụng môitrờng egg
yolk-citrate-glucose-glycerol và egg yolk-tris-
glucose-glycerol cho kết quả tỷ lệ di động sau tan
đông tơng ứng là 35% và 37%. Tác giả khuyến
cáo một môitrờng có egg yolk và tris nên đợc
sử dụng trongbảoquảntinh trùng.
Với môitrờngGEYC chúng tôi áp dụng
pha theo công thức do Ackerman giới thiệu.
Chúng tôi tự pha lấy, trong đó không có thành
phần TEST, các nguyên liệu khác đều nhập từ
nớc ngoài, quy trình tơng đối phức tạp, đòi
hỏi tiêu chuẩn cao về vô trùng và an toàn sinh
học, cho nên phải bổ sung thêm kháng sinh.
Tuy nhiên giá thành so với môitrờng khác
trên thị trờng thì tơng đối rẻ. Mỗi lần chúng
tôi pha 200ml, chia thành các ống nhỏ 2ml bảo
quản ở -20
0
C, sử dụng trong 3 tháng. Không sử
dụng lại sau tan đông. Môitrờng Sperm
freeze nhập ngoại đợc đóng gói vô trùng.
Chai 20ml, bảoquản ở 2
0
C-8
0
C, giá thành khá
cao.
Sau tan đông, quan sát những mẫu tinh
trùng đợc bảoquảntrongmôitrờngGEYC
dới kính hiển vi quang học, chúng tôi nhận
thấy có nhiều hạt egg yolk xen lẫn với tinh
trùng. Những hạt này có thể gây khó khăn khi
lọc rửa tinhtrùngsaubảo quản. Để khắc phục
vấn đề này cần đợc phối hợp nghiên cứu chi
tiết hơn.
Qua những kết quả thu đợc, chúng tôi cho
rằng với u thế về chất lợng, giá cả, chủ
động, tiện lợi và tính khoa học, môitrờng
GEYC thích hợp cho bảoquảntinhtrùng bằng
lạnh sâu. Tuy nhiên, để đáp ứng đợc cho thực
tiễn các nhà lâm sàng cũng nh ứng dụng rộng
rãi trongbảoquảntinhtrùng cần có những
nghiên cứu tiếp theo với quy mô và thời gian
lớn hơn để có kết luận thoả đáng hơn.
V. kết luận
Nghiên cứu hiệuquảcủamôitrờngGEYC
trong bảoquảnlạnhsâutinhtrùng ngời,
chúng tôi có những kết luận sau:
1. Chất lợng tinhtrùngsaubảoquản bằng
môi trờngGEYC đảm bảo theo tiêu chuẩn
của AATB.
2. MôitrờngGEYC có thể tự chủ động pha
tại phòng thí nghiệm với giá thành phù hợp với
điều kiện Việt Nam.
- Báo cáo là một phần trong luận văn cao học.
Bạn đọc có thể tìm đọc toàn văn tại th viện
trờng ĐHYHN, trung tâm thông tin Y học và
th viện Quốc gia.
tài liệu tham khảo
13
5. J.K.Sherman. (1990), Cryopreservation
of human semen, CRC Handbook of the
Laboratory Diagnosis and Treatment of
Infertility, pp: 229-258.
1. Trơng Công Hổ, Hồ Mạnh Tờng
(2001), Phơng pháp trữ tinh trùng, Phơng
pháp xét nghiệm tinh dịch, Bệnh viện Phụ sản
Từ Dũ, Thành phố Hồ Chí Minh.
6. Silva A.L., Yamasaki R., de-Sala M.M.,
Cabrera M-da-G., de-Sa M.F. (1996), The
addition of fructose or sodium citrate does not
improve recovery rates of cryopreserved
human spermatozoa, Int-J-Fertil-Menopausal-
Stud, 41(3), pp: 304-9.
2. Foote R.H., Mc Gonagle., Goldstein M.,
Feldschuh J. (2002), The influence of
cryoprotective media and processing
procedures on motility and migration of frozen-
thawed human sperm, Asian J Androl, 4(2),
pp: 137-41.
7. Stanic P., Tandara M., Sonicki Z.,
Simunic V., Radakovic B., Sukhanek E. (2000),
Comparison of protective media and freezing
techniques for cryopreservation of Human
semen, Eur-J-Obstet-Gynecol-Reprod-Biol,
91(1), pp: 65-70.
3. Hallak J., Sharma R.K., Wellstead C.,
Agarwal A. (2000), Cryopreservation of human
spermatozoa: comparison of TEST-Yolk buffer
and glycerol, Int-J-Fertil-Womens-med, 45(1),
pp: 38-42.
4. Hammadeh M.E., Greiner S.,
Rosenbaum P., Schmidt W. (2001),
Comparison between human sperm
preservation medium and TEST Yolk buffer
on protecting chromatin and morphology
integradity of human spermatozoa in fertile and
subfertile men after freeze thawing
procedure, J Androl, 22(6), pp: 1012 8.
8. World health organisation (1999). WHO
laboratory manual for the examination of
human semen and sperm Cervical mucus
interation, fourth edition, Cambridge University
press.34.
Summary
The effect of GEYC on deep-cryopreserved
human spermatozoa
Deep-cryopreserved 30 samples of human spermatozoa in GEYC medium, it is
prepared at Lab, shows that quality of cryopreserved spermatozoa conforms to criteria
of AATB. GEYC medium would be performed at Laboratory with low cost andBBPP
suitability of Vietnamese condition.
14
. cứu hiệu quả của môi trờng GEYC
trong bảo quản lạnh sâu tinh trùng ngời,
chúng tôi có những kết luận sau:
1. Chất lợng tinh trùng sau bảo quản bằng
môi.
Sau bảo
quản (B)
GEYC
90 ngày
45,0 10,2
P < 0,001
- Chỉ số tinh trùng sống = % tinh trùng sống
sau bảo quản: % tinh trùng sống trớc bảo
quản