II. Tình hình nghiên cứu cá chình trên Thế giới và Việt Nam
3. Hệ thống thí nghiệm
Thí nghiệm được bố trí trong các bể ximăng có thể tích 5 m3/bể với hệ thống lọc tuần hoàn. Các bể được sục khí liên tục 24/24. Nước nuôi được bơm từ hồ thủy điện Sông Hinh lên bể chứa 150 m3 và xử lý chorine với nồng độ 30 ppm trước khi đưa vào hệ thống bể nuôi thí nghiệm (Hình 2.1).
Hình 2.1: Hệ thống bể nuôi thí nghiệm 4. Thức ăn thí nghiệm
Gồm thức ăn tươi sống là cá rô phi (Hình 2.2.a) làm mẫu đối chứng (M) và 03 loại thức ăn công nghiệp (Hình 2.2.b) có hàm lượng Protein khác nhau:
thức ăn M1 có hàm lượng Protein 45%, M2 có hàm lượng Protein 47%, M3 có hàm lượng Protein 49%, nguyên liệu làm thức ăn gồm: bột cá, bột cám gạo, bột bắp, bột sắn mì, bã đậu nành, Vi-khoáng, dầu mực và chất chống mốc (Bảng 2.1.a, 2.1.b, 2.1.c). Thức ăn công nghiệp được sản xuất trên dây chuyền mini bao gồm: máy nghiền, máy trộn, máy ép viên, máy sấy (Hình 2.3.)
Hình 2.2.a: Cá rôphi làm thức ăn Hình 2.2.b: Thức ăn công nghiệp
5. Bố trí thí nghiệm
Cá chình giống với khối lượng trung bình 50 g/con được bố trí ngẫu nhiên vào trong các bể nuôi bằng ximăng có thể tích 5 m3/bể với mật độ 100 con/m2/bể, có hệ thống lọc nước tuần hoàn và hệ thống sục khí chạy liên tục 24/24 giờ. Mỗi loại thức ăn bố trí 02 bể. Cá được cho ăn bằng tay cho đến khi thỏa mãn trong khoảng 30 phút, cho ăn ngày 02 lần vào lúc 8 giờ sáng và 18 giờ chiều. Mỗi thí nghiệm kéo dài trong 6 tháng.
6. Chăm sóc và quản lý
- Theo dõi hoạt động bắt mồi và khả năng sử dụng thức ăn của cá chình sau mỗi lần cho ăn.
- Theo dõi các yếu tố môi trường: nhiệt độ, hàm lượng oxy hòa tan, pH được xác định hàng ngày. Hàm lượng H2S, NH3 … được phân tích tại Trung tâm Giống và Kỹ thuật thủy sản tỉnh Phú Yên mỗi tháng 01 lần. Định kỳ 10 ngày thay nước 01 lần.
7. Sơ đồ khối bố trí thí nghiệm nuôi cá chình với các loại thức ăn khác nhau trong bể xi măng
Thử nghiệm nuôi bằng thức ăn tươi và thức ăn công nghiệp có hàm lượng Protein khác nhau
Thức ăn tươi TĂCN Protein 45% (M1)
TĂCN Protein 49% (M3)
- Theo dõi diễn biến môi trường nuôi
- Hoạt động bắt mồi và khả năng sử dụng thức ăn - Tốc độ tăng trưởng, tỷ lệ sống của cá
Nhận xét, kết luận Cải tạo bể nuôi, thả giống
TĂCN Protein 47% (M2)
Hình 2.3: Dây chuyền sản xuất thức ăn công nghiệp
8. Phương pháp thu mẫu và phân tích mẫu
8.1. Phương pháp thu mẫu:
- Định kỳ 30 ngày kiểm tra tốc độ tăng trưởng và tỷ lệ sống của cá chình một lần. Mỗi bể nuôi lấy 50 cá thể để cân trọng lượng và đo chiều dài thân.
8.2. Phương pháp phân tích mẫu:
- Protein thô: phân tích theo phương pháp TCVN 4328 – 2001. - Lipid thô: phân tích theo phương pháp Floch.
- Tro: phân tích theo phương pháp TCVN 4588 – 1998. - Độ ẩm: phân tích theo phương pháp TCVN 5777 – 1994.
9. Phương pháp xử lý số liệu
- Khối lượng cá trong các lô thí nghiệm được cân tại thời điểm thả nuôi (W0) và 30 ngày cân 1 lần (W1) bằng cân điện tử có độ chính xác 0,001g.
- Chiều dài toàn thân cá đo bằng thước chia vạch có độ chính xác 0,1mm.
- Khi cân đo phải cẩn thận, tránh làm cá bị xây xát, trầy xước. Cá trước khi cân phải được thấm khô bằng vải bông. Số mẫu n = 50 con/mẫu (cân, đo).
* Tăng trưởng tuyệt đối theo ngày:
ADGW (g/ngày) =
t W W1 0
ADGL (cm/ngày) =
t L L1 0
* Tốc độ tăng trưởng tương đối theo ngày (sinh trưởng đặc thù theo ngày)
SGRW (%/ngày) = 1 0 x100 t Ln LnW W SGRL (%/ngày) = 1 0 x100 t Ln LnL L
Trong đó: W0: Khối lượng cá trung bình tại thời điểm thả.
W1: Khối lượng cá trung bình vào thời điểm thu hoạch.
L0: Chiều dài cá trung bình vào thời điểm thả.
L1: Chiều dài cá trung bình tại thời điểm thu hoạch.
t: Thời gian nuôi.
* Tỷ lệ sống (%): TLS(%) x100% Bd Thu
Trong đó: Thu : Tổng số cá thu hoạch.
Bd : Số cá thả ban đầu. * Hệ số chuyển hoá thức ăn (FCR)
Wtasd
FCR =
WG
Trong đó: Wtasd: là khối lượng thức ăn sử dụng (kg) WG: là khối lượng cá tăng thêm (kg) * Chỉ số chuyển đổi kinh tế (ECR)
ECR = FCR × Gta
Trong đó: FCR: là hệ số chuyển hóa thức ăn Gta: là giá thành thức ăn (đồng/kg)
Tất cả các số liệu được trình bày ở dạng trung bình ± sai số chuẩn (SE) và được phân tích bằng phương pháp ANOVA một nhân tố trên phần mềm SPSS Version 11.0. Sự sai khác có ý nghĩa được xem xét khi P<0,05.
Các công thức thức ăn có hàm lượng Protein khác nhau được phối trộn từ các nguyên liệu đã phân tích và tính toán dựa theo phần mềm Winfeed.
Bảng 2.1.a: Thành phần nguyên liệu và hàm lượng dinh dưỡng mẫu
thức ăn M1
Nguyên liệu Tỷ lệ (%) Protein (%) Lipit (%)
Bột cá 64,000 39,321 4,576 Bột cám gạo 7,000 0,917 0,847 Bột bắp 7,300 0,537 0,390 Bã đậu nành 8,500 3,751 0,558 Bột sắn mỳ 3,000 0,150 0,030 Vi-Khoáng 3,000 Chất chống mốc 0,200 Dầu mực 7,000 7,000 Tổng 100,000 44,677 13,402
Bảng 2.1.b: Thành phần nguyên liệu và hàm lượng dinh dưỡng mẫu
thức ăn M2
Nguyên liệu Tỷ lệ (%) Protein (%) Lipit (%)
Bột cá 67,000 41,164 4,790 Bột cám gạo 4,000 0,524 0,484 Bột bắp 3,800 0,279 0,203 Bã đậu nành 12,000 5,296 0,788 Bột sắn mỳ 3,000 0,150 0,030 Vi-Khoáng 3,000 Chất chống mốc 0,200 Dầu mực 7,000 7,000 Tổng 100,000 47,415 13,296
Bảng 2.1.c. Thành phần nguyên liệu và hàm lượng dinh dưỡng mẫu
thức ăn M3
Nguyên liệu Tỷ lệ (%) Protein (%) Lipit (%)
Bột cá 70,000 43,008 5,005 Bột cám gạo 2,000 0,262 0,242 Bột bắp 1,000 0,073 0,053 Bã đậu nành 13,800 6,091 0,906 Bột sắn mỳ 3,000 0,150 0,030 Vi-Khoáng 3,000 Chất chống mốc 0,200 Dầu mực 7,000 7,000 Tổng 100,000 49,584 13,237
Chương III
KẾT QUẢ NGHIÊN CỨU VÀ THẢO LUẬN 3.1. Một số yếu tố môi trường và thức ăn trong thí nghiệm 3.1.1. Một số yếu tố môi trường thí nghiệm
a. Nguồn nước
Nguồn nước nuôi được sử dụng là nguồn nước được bơm trực tiếp từ hồ thủy điện Sông Hinh qua bể lọc rồi đưa vào bể chứa để xử lý bằng Chorine với nồng độ 30 ppm trước khi đưa vào hệ thống bể nuôi thí nghiệm. Các yếu tố trong nước được kiểm tra tại Trung tâm Giống và Kỹ thuật thuỷ sản Phú Yên cho kết quả:
Bảng 3.1: Kết quả phân tích hoá lý các yếu tố trong nước STT Xét nghiệm hoá lý Dao động
min - max GTTB ± Se P.P thử 1 Độ cứng (mg CaCO3/l) 20 ÷ 24 22 ± 0,816 EDTA 2 Hàm lượng NO2-N (mg/l) 0,002 ÷ 0,004 0,003 ± 0,000 Disazozation 3 Hàm lượng NO3-N (mg/l) 0,600 ÷ 9,500 4,300 ± 0,100 Cadmium Reduction 4 Hàm lượng NH3-N (mg/l) 0,060 ÷ 0,080 0,102 ± 0,020 Method Salicylate 5 Hàm lượng Sunfurhydro H2S (mg/l) 0,001 ÷ 0,002 0,002 ± 0,000 Metylen Blue 6 Hàm lượng phosphat (PO4 mg/l) 0,020 ÷ 0,040 0,045 ± 0,012 Xanh Molybden
Qua bảng 3.1 cho thấy: Hàm lượng của các yếu tố trong nước tương đối thích hợp cho sự phát triển của cá chình.
Nitrat (NO3-) là hợp chất khá thông dụng trong môi trường nước, là sản phẩm cuối cùng của quá trình oxy hoá amoniac. Trong nước NO3- tạo ra môi
trường có tính khử kìm hãm sự tạo thành của khí H2S. Trong tất cả các hợp chất nitơ dạng vô cơ, NO3- được xem là hợp chất có tính độc thấp nhất. Độc tính của nitrat đối với thuỷ động vật thường trên 1000mg/l, với mức này hầu như không bao giờ xảy ra trong nuôi trồng thuỷ sản .
Sự phân huỷ các thức ăn thừa, sản phẩm bài tiết của cá sẽ tạo ra nhiều khí độc có ảnh hưởng lớn đến cá.
Amoniac (NH3)hình thành từ quá trình phân huỷ chất hữu cơ chứa Nitơ. Amoniac tồn tại trong nước ở trạng thái cân bằng thuận nghịch giữa NH4+ và NH3 tự do. Khi nước có tính acid cao (pH<7) NH3 chuyển cân bằng sang NH4+ và như vậy ít gây độc cho cá. NH3 ở trạng thái tự do rất độc đối với cá và có mặt trong nước với nồng độ cao khi pH cao và nhiệt độ cao. Trong bể nuôi cá chình, thí nghiệm đã khống chế lượng NH3 ở mức nhỏ hơn 0,25 mg/l.
H2S là khí tan trong nước và là lớp chất có độc tính cao đối với động vật. H2S hình thành trong điều kiện yếm khí, một số loại vi khuẩn dị dưỡng có khả năng sử dụng gốc sunphat (SO42-) và các hợp chất hữu cơ có chứa lưu huỳnh để tạo thành khí H2S. Dihydro Sunphua được tồn tại trong hệ cân bằng với HS- và S2-, trong đó H2S có hại cho cá, HS- và S2- được xem là ít độc hơn. H2S tồn tại nhiều trong nước khi pH xuống dưới 6,5. Với điều kiện nuôi cá trong bể xi măng thí nghiệm đã khống chế hàm lượng H2S luôn bé hơn 0,001mg/l.
Nitrit (NO2-) là hợp chất trung gian được sinh ra do sự chuyển hoá của các thành phần giàu đạm: Nitrat hoá và khử nitrat (NO3-). Mặc dù NO2- được sinh ra từ 2 quá trình nhưng phần đóng góp chính là do quá trình oxy hoá amoniac. Vì vậy, hạn chế hàm lượng amoniac trong bể và duy trì hàm lượng oxy ở mức cần thiết cũng sẽ hạn chế được nồng độ NO2- trong bể. NO2- là gốc gây độc đối với cá vì vậy cũng như các hàm lượng gây độc trên hàm lượng NO2- luôn được duy trì bé hơn 0,025mg/l.
Trong 4 lô thí nghiệm cho cá chình sử dụng thức ăn công nghiệp (M1), (M2), (M3) và cho cá chình sử dụng thức ăn tươi (M). Kết quả phân tích cho thấy hàm lượng của các yếu tố trong nước ở các lô thí nghiệm đều nằm trong khoảng chịu đựng của cá và cá phát triển bình thường. Tuy nhiên, khi phân tích các yếu
tố này thì ở lô thí nghiệm cho cá sử dụng thức ăn tươi (M) có hàm lượng NO3- thường cao hơn so với các lô thí nghiệm còn lại, biểu hiện nước nhanh đục màu và có mùi tanh nhẹ, mặt nước hay nổi váng và bọt bẩn. Với những bể này cần thường xuyên thay nước nhiều hơn so với các bể cho ăn thức ăn công nghiệp.
b. Một số yếu tố môi trường ( pH, Oxy, Nhiệt độ ) trong bể nuôi
Cũng như các loài động vật biến nhiệt sống dưới nước, hoạt động và phát triển của cá Chình bông chịu tác động rất lớn của môi trường sống đặc biệt ảnh hưởng khả năng bắt mồi, bơi lội, khả năng hấp thụ thức ăn, khả năng kháng bệnh…. Do đó, để quản lý tốt môi trường trong thí nghiệm đã tiến hành đo các yếu tố môi trường pH, Oxy, nhiệt độ hàng ngày.
Trong quá trình nuôi yếu tố nhiệt độ chi phối rất lớn đến khả năng bắt mồi từ đó ảnh hưởng đến tốc độ tăng trưởng của cá. Qua theo dõi nhiệt độ trong quá trình thí nghiệm cho thấy: Trong những tháng đầu, nhiệt độ nước thấp (25oC-27oC) thích hợp cho phát triển của cá. Do ảnh hưởng từ nhiệt độ không khí không ổn định, làm cho nhiệt độ nước tăng ở những tháng về sau, có thời điểm nhiệt độ nước lên đến 29oC. Mặc dù nhiệt độ nước nằm trong khoảng giới hạn cá có thể phát triển bình thường nhưng sự biến động lớn của nhiệt độ trong khoảng thời gian nuôi thử nghiệm (dao động trong khoảng 25- 29oC) nên ảnh hưởng nhiều đến hoạt động sống và bắt mồi của cá, từ đó ảnh hưởng đến tốc độ tăng trưởng của cá.
25 26 27 28 29 30 1 2 3 4 5 6 Tháng N h iệ t đ ộ ( ºC ) Sáng Chiều
Hình 3.1: Diễn biến của nhiệt độ nước nuôi
Oxy là một trong những yếu tố quan trọng ảnh hưởng trực tiếp đến quá trình sinh trưởng và phát triển của cá. Hàm lượng oxy được theo dõi hàng ngày cho thấy: Trong những tháng đầu hàm lượng oxy cao hơn những tháng sau, và thường vào buổi sáng hàm lượng này thấp hơn so với buổi chiều nhưng sự chênh lệch đó là không lớn. Có thể trong những tháng về sau với nhiệt độ môi trường lên cao làm cho quá trình trao đổi chất ở cá diễn ra mạnh. Hơn nữa quá trình hô hấp tỷ lệ thuận với sự tăng lên của khối lượng cá. Vì thế, cá cần nhiều oxy hơn cho các hoạt động. Ngoài ra, cá lớn dần theo thời gian, thức ăn sử dụng cho cá tăng, lượng chất thải trong nước sẽ nhiều hơn, sẽ tiêu tốn một phần oxy nào đó cho quá trình phân huỷ các chất thải trong nước. Đây cũng là lý do tiêu hao oxy làm cho hàm lượng oxy trong nước giảm. Tuy nhiên, với hàm lượng oxy luôn được duy trì ở mức >5mg/l nên cá chình bắt mồi và phát triển tương đối tốt trong quá trình nuôi thử nghiệm.
Hàm lượng oxi hòa tan trong nước được duy trì liên tục thông qua qua hệ thống sục khí trong bể và hệ thống lọc tuần hoàn.
4 5 6 7 1 2 3 4 5 6 Tháng H à m l ư ợ n g D O ( m g /l ) Sáng Chiều
Hình 3.2: Diễn biến của Ôxy nước nuôi
Độ pH của nước dao động từ 7,5-8,5. Sự biến thiên không lớn của pH, đồng thời lại nằm trong khoảng thích hợp cho cá phát triển. Đây là điều kiện thuận lợi cho cá sinh trưởng, phát triển tốt.
6,5 7,5 8,5 1 2 3 4 5 6 Tháng p H Sáng Chiều
3.1.2. Thức ăn trong thí nghiệma. Thức ăn công nghiệp a. Thức ăn công nghiệp
Cá Chình bông cũng như các loài động vật thuỷ sinh khác có nhu cầu về số lượng và chất lượng đối với một số thành phần đặc trưng. Thành phần thức ăn được lựa chọn trên cơ sở thành phần dinh dưỡng, giá trị năng lượng, khả năng tiêu hoá và tạo viên. Không một loại thức ăn nào có đủ tất cả các thành phần dinh dưỡng cần thiết cũng như một tỷ lệ đáp ứng được nhu cầu dinh dưỡng của vật nuôi. Do đó, để sản xuất được thức ăn công nghiệp cho cá Chình thì một việc hết sức cần thiết là phải tính toán được các thành phần nguyên liệu có trong thức ăn, hay còn gọi là công thức thức ăn [9]. Kết quả phân tích mẫu thức ăn công nghiệp do Viện nghiên cứu Công nghệ sinh học và Môi trường – Trường Đại học Nha Trang được thể hiện ở bảng 3.2.
Bảng 3.2: Thành phần hoá học cơ bản của các loại thức ăn công nghiệp
Chỉ tiêu STT Tên mẫu
Lipid (%) TLK Protein (%) TLK Tro (%) TLK Ẩm (%)
1 M1 16,70 42,62 0,96 10,97
2 M2 18,55 45,50 0,98 12,43
3 M3 17,77 47,80 0,96 11,66
So với công thức thức ăn mà thí nghiệm thiết lập trên phần mềm Winfeed (bảng 2.1.a, 2.1.b, 2.1.c) thì hàm lượng Protein (bảng 3.2) ở 3 mẫu thức ăn tương đối thấp hơn, nguyên nhân có thể là do sai số trong quá trình phân tích mẫu.
b. Thức ăn tươi sống
Thức ăn tươi sống là loại thức ăn có hàm lượng Protein thấp nhưng là thức ăn ưa thích của cá. Đồng thời trong thức ăn này có nhiều dưỡng chất tự nhiên. Tuy nhiên, khi sử dụng thức ăn tươi cần lưu ý bảo quản tốt, tránh không để các thành phần dinh dưỡng bị biến đổi, ảnh hưởng không tốt đến cá nuôi. Ngoài ra thức ăn tươi dễ gây ô nhiễm nước nuôi do quá trình phân huỷ của thức ăn, sử dụng thức ăn tươi sống còn không đảm bảo tính chủ động trong quá trình nuôi. Kết quả phân tích mẫu thức ăn tươi là cá rô phi do Chi cục tiêu chuẩn đo lường chất lượng tỉnh Phú Yên được thể hiện ở bảng 3.3.
Bảng 3.3: Thành phần hóa học cơ bản (% khối lượng tươi) của thức ăn tươi. Chỉ tiêu
TT Tên mẫu
Protein thô % Lipid thô %
1 Cá rô phi tươi (M) 13,000 2,500
3.2 Ảnh hưởng của hàm lượng protein đến tốc độ sinh trưởng của cá
Chình bông
3.2.1. Ảnh hưởng của các loại thức ăn công nghiệp có mức protein khác nhau lên tốc độ sinh trưởng của cá Chình bông cỡ giống 20 con/ kg khác nhau lên tốc độ sinh trưởng của cá Chình bông cỡ giống 20 con/ kg
Sự sinh trưởng của cá Chình bông thường biểu hiện thông qua sự tăng trưởng về khối lượng và kích thước của cá. Ảnh hưởng của các mức Protein khác