1. Sản phẩm không đạt chất lƣợng
Cho tỉ lệ sản phẩm lỗi là 0.05% (Cứ 6000 kg sản phẩm sẽ có 1 kg sản phẩm không đạt chất lƣợng).
Số lƣợng sản phẩm không đạt chất lƣợng trong 1 năm: =0.05% × (600 × 1000) = 300 (kg sản phẩm).
Chi phí hao hụt do sản phẩm khơng đạt:
= 300 x 131.000 = 39.300.000 ( VND)
67 Giả sử hàng tồn kho cuối năm là 2%
Cuối năm tồn kho: 2% x (600 x 1000)= 12000 (kg sản phẩm)
Hao hụt do hàng tồn kho là: 12000 x 131.000 = 1.572.000.000 (VND)
2.1. Rủi ro trong quá trình vận chuyển
Giả sử tỉ lệ rủi ro trong quá trình vận chuyển là 0.005%
Hao hụt chi phí: 0.005% × (600 × 1000) × 131.000 = 3.930.000 (VNĐ)
Giả sử tỉ lệ hƣ sản phẩm do tác động của môi trƣờng xung quanh (mƣa, cơn trùng) trong q trình vận chuyển là 0.1%.
Chi phí hao hụt: 0.1% × (600 × 1000) × 131.000= 78.600.000 (VNĐ)
2.2. Tổng chi phí rủi ro
68
TÀI LIỆU THAM KHẢO
1. Hamilton LM, Kelly CT, Fogarty WM. Production and properties of the raw starch-digesting α-amylase of Bacillus sp. IMD 435. Process Biochem. 1999;35(1–2):27–31.
2. Biol TJ. Increase of the α-amylase yield by Some Bacillus. Food Eng. 2000;24:299–308.
3. Duy TH, Lê Phạm Tấn Quốc, Cẩm TTH, Ngọc PTK, Đào ĐTA. Tối ƣu hóa trích ly thu nhận dịch saponin thô từ đảng sâm codonopsis javanica (blume) hook. F. Bằng enzyme alpha-amylase. Hoạt động nghiên cứu khoa học địa phƣơng. 2006;
4. Nguyễn Hoàng Anh. Nghiên cứu ứng dụng enzyme amylase, protease và nấm men thuần chủng trong sản xuất rƣợu vang nếp. Trƣờng Đại học Trà Vinh. 2010;141.
5. Fiddaman PJ, Rossall S. Effect of substrate on the production of antifungal volatiles from Bacillus subtilis. J Appl Bacteriol. 1994;76(4):395–405. 6. Hồ Thị Việt Thu. Hiệu quả của bào tử bacillus subtilis biểu hiện interferon
alpha gà (b. Subtilis-chifnα) trong phòng bệnh newcastle trên gà. Tạp chí Khoa học. 2012;(304–310).
7. Nguyễn Lân Dũng. Vi sinh vật học. Nhà xuất bản Giáo Dục. 2003; 8. Do Nascimento WCA, Leal Martins ML. Production and properties of an
extracellular protease from thermophilic Bacillus sp. Brazilian J Microbiol. 2004;35(1–2):91–6.
9. Nguyễn Đức Lƣợng. Công Nghệ Enzyme. Đại Học Quốc Gia TPHCM. 2004;284.
10. Đặng Thị Thu, Tú LTN, Anh TK, Thủy PT, Sâm NX. Công Nghệ Enzyme. Nhà xuất bản Khoa Học và Kỹ Thuật. 2012;312.
69
bacillus subtilis BI19 and optimization of production conditions for enhanced production of extracellular amylase. Biomed Res Int. 2015;2015.
12. Chen J, Gai Y, Fu G, Zhou W, Zhang D, Wen J. Enhanced extracellular production of α-amylase in Bacillus subtilis by optimization of regulatory elements and over-expression of PrsA lipoprotein. Biotechnol Lett.
2015;37(4):899–906.
13. Elumalai P, Lim JM, Park YJ, Cho M, Shea PJ, Oh BT. Enhanced amylase production by a Bacillus subtilis strain under blue light-emitting diodes. Prep Biochem Biotechnol [Internet]. 2019;49(2):143–50. Available at:
https://doi.org/10.1080/10826068.2018.1550656
14. Salman T, Kamal M, Ahmed M, Siddiqa SM, Khan RA, Hassan A. Medium optimization for the production of amylase by Bacillus subtilis RM16 in Shake- flask fermentation. Pak J Pharm Sci. 2016;29(2):439–44.
15. Gikanga B, Turok R, Hui A, Bowen M, Stauch OB, Maa YF. Manufacturing of High-Concentration Monoclonal Antibody Formulations via Spray Drying-the Road to Manufacturing Scale. PDA J Pharm Sci Technol. 2015;69(1):59–73. 16. Sverdlov Arzi R, Sosnik A. Electrohydrodynamic atomization and spray-drying
for the production of pure drug nanocrystals and co-crystals. Adv Drug Deliv Rev [Internet]. 2018;131:79–100. Available at:
https://doi.org/10.1016/j.addr.2018.07.012
17. Amutha K, Jaya Priya K. Effect of pH, temperature and metal ions on amylase activity from bacillus subtilis KCX 006. Int J Pharma Bio Sci. 2011;2(2):407– 13.
18. Katsanos KH, Kitsanou M, Christodoulou DK, Tsianos E V. High CA 19-9 levels in benign biliary tract diseases: Report of four cases and review of the literature. Eur J Intern Med. 2002;13(2):132–5.
19. Pastor MD, Lorda GS, Balatti A. Protease obtention using Bacillus subtilis 3411 and amaranth seed meal medium at different aeration rates. Brazilian J
70 Microbiol. 2001;32(1):6–9.
20. Datar R, Rosén CG. Centrifugal separation in the recovery of intracellular protein from E. coli. Chem Eng J. 1987;34(3):49–56.
21. Joshi RD, Umrikar AM, Bhate MA, Kulkarni SS. Production, purification and characterization of L-asparaginase from soil isolate of Bacillus species. Int J Recent Sci Res. 2015;6(1):2472–6.
22. Gebremariam MM, Zarnkow M, Becker T. Effect of Drying Temperature and Time on Alpha-Amylase, Beta-Amylase, Limit Dextrinase Activities and Dimethyl Sulphide Level of Teff (Eragrostis tef) Malt. Food Bioprocess Technol. 2013;6(12):3462–72.
23. Davis DA, Lynch HC, Varley J. The production of Surfactin in batch culture by Bacillus subtilis ATCC 21332 is strongly influenced by the conditions of
nitrogen metabolism. Enzyme Microb Technol. 1999;25(3–5):322–9.
24. Trần Xoa. Sổ tay q trình và thiết bị cơng nghệ hóa chất tập 1. Khoa học Kỹ thuật. 2006;
25. Lê Văn Hồng. Các thiết bị lên men ni cấy chìm vi sinh vật trong các mơi trƣờng dinh dƣỡng lỏng. 2013;
26. Gimbun J, Dayang Radiah AB, Chuah TG. Bioreactor design via spreadsheet - A study on the monosodium glutamate (MSG) process. J Food Eng.
2004;64(3):277–83.
27. Nguyễn Hồng Lộc. Giáo trình Nhập mơn cơng nghệ sinh học. NXB Đại học Huế. 2007;
28. Kilonzo PM, Margaritis A. The effects of non-Newtonian fermentation broth viscosity and small bubble segregation on oxygen mass transfer in gas-lift bioreactors: A critical review. Biochem Eng J. 2004;17(1):27–40.
29. Chenikher S, Guez JS, Coutte F, Pekpe M, Jacques P, Cassar JP. Control of the specific growth rate of Bacillus subtilis for the production of biosurfactant lipopeptides in bioreactors with foam overflow. Process Biochem.
71 2010;45(11):1800–7.
30. Liu XD, Xu Y. A novel raw starch digesting α-amylase from a newly isolated Bacillus sp. YX-1: Purification and characterization. Bioresour Technol. 2008;99(10):4315–20.
31. Brar SK, Verma M, Tyagi RD, Valéro JR, Surampalli RY. Efficient centrifugal recovery of Bacillus thuringiensis biopesticides from fermented wastewater and wastewater sludge. Water Res. 2006;40(6):1310–20.
32. Bezawada J, Yan S, John RP, Tyagi RD, Surampalli RY. Recovery of Bacillus licheniformis Alkaline Protease from Supernatant of Fermented Wastewater Sludge Using Ultrafiltration and Its Characterization . Biotechnol Res Int. 2011;2011:1–11.
33. E.FISCHER, Stein E. The enzyme. 1960;313–143.
34. Sheehan JJ, Hamilton BK, Levy PF. Pilot-Scale Membrane Filtration Process for the Recovery of an Extracellular Bacterial Protease. 1990;130–55.
35. Sellami-Kamoun A, Haddar A, Ali NEH, Ghorbel-Frikha B, Kanoun S, Nasri M. Stability of thermostable alkaline protease from Bacillus licheniformis RP1 in commercial solid laundry detergent formulations. Microbiol Res.