Làm đồng nhất chế phẩm đem kiểm tra bằng cách xử lý một lượng thích hợp như đã
mô tả ở phần chế tạo mẫu thử nghiệm và ủ ở 35 - 37oC một thời gian thích hợp (th-
ường từ 2 - 5 h) trong môi trường canh thang lactose để phục hồi lại vi khuẩn mà
không làm tăng vi khuẩn. Lắc bình chứa và chuyển một lượng đã đồng nhất của chế
phẩm tương đương khoảng 1 g hoặc 1 ml chế phẩm vào 100 ml môi trường lỏng
violet-red có chứa lactose và glucose ủ ở 35 -37oC trong 18 - 48 h. Chế phẩm không
có Enterobacteria nếu không thấy mọc những khuẩn lạc vi khuẩn Gram âm trên đĩa.
Đánh giá số lượng: ủ một lượng thích hợp môi trường lỏng Enterobacteria - Mossel với
những lượng chế phẩm đem kiểm tra đã được làm đồng nhất chứa 1,0 g; 0,1 g và 10
mg hoặc 1,0 ml; 0,1 ml và 10 l. Nếu cần có thể pha loãng chế phẩm, ủ ở 35 -37oC trong 24 - 48 h. Các khuẩn lạc đã phát triển tốt thường đỏ hoặc đĩa đỏ, nhuộm vi
khuẩn bắt màu Gram âm, chứng tỏ kết quả dương tính. Ghi lượng nhỏ nhất của chế
phẩm mà ở đó cho kết quả dương tính và lượng lớn nhất của chế phẩm mà ở đó cho kết
quả âm tính. Xác định số lượng Bacteria theo bảng 6.
Bảng 6. Tính lượng Bacteria trong chế phẩm
Kết quả đối với mỗi lượng sản phẩm
1,0 g hoặc 1 ml 0,1 g hoặc 0,1 ml 0,01 g hoặc 0,01 ml Số Bacteria có trong 1 gam sản phẩm + + + Lớn hơn 102
+ + - ít hơn 102 nhưng lớn hơn 10
+ - - ít hơn 10 nhưng lớn hơn 1
- - - ít hơn 1
Đếm tổng số nấm, mốc, và men
Dùng phương pháp đĩa thạch tương tự như đếm tổng số vi khuẩn hiếu khí, nhưng sử
dụng môi trường thạch Sabouraud hoặc môi trường thạch - khoai tây- glucose, ủ các
đĩa ở nhiệt độ ở 20 - 25oC, theo dõi trong 5 ngày.
Tìm Clostridia
Thử nghiệm thứ nhất dùng cho những sản phẩm qui định không có Clostridia. Thử
nghiệm thứ hai là bán định lượng đối với Clostridium perfringens ỏp dụng với những
sản phẩm có tiêu chuẩn về số lượng Clostridium perfringens.
Thử nghiệm tìm Clostridia
Chuẩn bị mẫu thử như trong mục “ chuẩn bị thí nghiệm”. Lấy hai mẫu để kiểm tra
khoảng 1 g (ml) mỗi mẫu, cho vào hai bình đã chứa sẵn 100 ml môi trường tăng sinh
cho Clostridia. Một mẫu đem đun nóng tới 80oC trong 10 phút rồi làm lạnh ngay. Ủ cả (adsbygoogle = window.adsbygoogle || []).push({});
sang một ống môi trường thạch Columbia đã thêm gentamycin và tiếp tục ủ ở 35 -
37oC trong 48h. Nếu không thấy có vi khuẩn mọc, mẫu thử đạt yêu cầu.
Khi thấy vi khuẩn mọc, chọn một khuẩn lạc điển hình cấy chuyển sang môi trường
thạch Columbia không có gentamycin và ủ ở hai điều kiện kỵ khí và hiếu khí. Khi chỉ
thấy mọc ở điều kiện kỵ khí, trực khuẩn Gram dương (có hoặc không có nội bào tử);
phản ứng catalase âm tính tức là có Clostridium spp. Nếu cần so sánh sự phát triển của
khuẩn lạc trên hai đĩa và dùng thử nghiệm catalase để loại trừ những nòi Bacillusspp.
kỵ khí và hiếu khí có phản ứng catalase dương tính. Thử nghiệm này cũng được dùng
để phân biệt những khuẩn lạc cùng dạng trên thạch hoặc bằng cách chuyển vi khuẩn
lên trên phiến kính và nhỏ dung dịch nước oxy già loãng, nếu thấy có sủi bọt nghĩa là
phản ứng catalase dương tính.
Đếm Clostridium perfringens
Tạo mẫu thử như mô tả ở mục “chuẩn bị thí nghiệm”. Pha loãng bằng dung dịch đệm
pepton-natri clorid có pH 7,0 đến các dung dịch chế phẩm có nồng độ 10-2, 10-3 . Tiến hành xác định tổng số vi khuẩn giống như xác định tổng số vi khuẩn hiếu khí sống lại
được mục “Tiến hành”. Mỗi lần chuyển 1ml đã làm đồng đều sang một ống chứa sẵn 9
ml môi trường sulfit - lactose và một ống nhỏ Durham. Lắc nhẹ nhàng và đem ủ ở 46 +
0,5oC trong khoảng 24 đến 48 h.
Các ống có màu đen (sắt sulfid) và sinh hơi trong ống Durham (ít nhất 1/10 thể tích) là
Những nòi vi khuẩn dùng để kiểm tra:
Thử nghiệm thứ 1: Clostridium sporogenes ATCC 19404 và NCTC 532
Thử nghiệm thứ 2: Clostridium perfringens ATCC 13124 và NCTC 6125
Nếu cần, kết hợp với dùng Clostridium perfringens để kiểm tra điều kiện nhạy cảm và
điều kiện kỵ khí.
Lặp lại thí nghiệm
Khi nghi ngờ, cần được thử nghiệm lại như hướng dẫn ở trên với một lượng chế
phẩm tăng gấp đôi.
Yêu cầu giới hạn nhiễm khuẩn
Nếu không có chỉ dẫn trong chuyên luận riêng thì giới hạn nhiễm khuẩn cho các loại
thuốc có quá trình sản xuất không tiệt khuẩn như sau:
Bảng 7. Yêu cầu giới hạn nhiễm khuẩn (adsbygoogle = window.adsbygoogle || []).push({});
Mứ c
1 Các chế phẩm dùng cho
bỏng và các vết loét sâu
Không có các vi khuẩn có thể sống lại trong 1 g
(ml) mẫu thử
2 Các chế phẩm dùng tại
chỗ như chữa xưng tấy,
tổn thương, và các màng
nhầy (mũi, họng, tai, âm
đạo ...)
Tổng số vi khuẩn hiếu khí sống lại đuợc không
quá 100 trong 1 g (ml)
Mẫu thử phải không có Enterobacteria,
Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus
aureus, nấm và mốc trong 1 g (ml)
3 Các chế phẩm dùng tại
chỗ cho da như kem bôi,
nước thơm, dầu, dung
dịch, bột...
Tổng số vi khuẩn hiếu khí sống lại được không
quá 500 trong 1 g (ml)
Mẫu thử phải không có Enterobacteria,
Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus
aureus, nấm và mốc trong 1 g (ml)
4 Các chế phẩm dùng
uống; qua trực tràng;
thấm qua da.
Tổng số vi khuẩn hiếu khí sống lại được không
quá 104 trong 1 g (ml) (adsbygoogle = window.adsbygoogle || []).push({});
g (ml)
Nấm và mốc không quá 100 trong1 g (ml)
Không được có Salmonella trong 10 g(ml)
Mẫu không có Escherichia coli, Pseudomonas
aeruginosa, Staphylococcus aureus. trong
1g(ml) 5 Các chế phẩm có chứa các nguyên liệu có nguồn gốc thực vật, động vật không thể xử lí theo qui trình làm giảm lượng vi khuẩn.
Tổng số vi khuẩn hiếu khí sống lại được 5.104
trong 1 g (ml)
Nấm và mốc không quá 500 trong 1 g (ml)
Tống số Enterobacteria không quá 500 trong1
g (ml)
Không được có Salmonella trong 10 g(ml)
Mẫu không có Escherichia coli, Pseudomonas
aeruginosa, Staphylococcus aureus trong