- Sử dụng buồng đếm hồng cầu Neubauer cải tiến
Buồng đếm hồng cầu Neubauer cải tiến có 25 ô vuông lớn, mỗi ô vuông lớn có
16 ô vuông nhỏ, mỗi ô vuông nhỏ có diện tích 1/400 mm2 và độ sâu buồng đếm là
0,1 mm. Đếm số lượng tảo có trong 4 ô lớn (Hình 2.5).
Lắc đều mẫu tảo silic, dùng micropipet hút mẫu tảo silic cho vào buồng đếm đã được đậy sẵn lamen, chờ lắng 2 phút, sau đó đưa vào thị trường kính để đếm. Mẫu được đếm hằng ngày vào lúc 8 giờ sáng dưới kính hiển vi quang học Zeiss ở bội giác 10X và 40X, mỗi mẫu tảo silic được đếm 3 lần. Phương pháp dựa trên cơ sở đếm số tế bào có mặt trong một thể tích xác định sau khi đã bám dính vào một mặt phẳng trong độ sâu thị trường của hệ thống thị kính - vật kính (Hình 2.5).
Hình 2.5. Thiết bị buồng đếm hồng cầu xác định mật độ tảo
Tổng số tế bào đếm được trong các lần đếm được dùng để tính mật độ tế bào theo công thức [45]: 4 10 / n D tb ml i n: tổng số tế bào đếm được i: số lần đếm tế bào D: mật độ tế bào
- Đo mật độ quang của tảo silic Entomoneis sp.
Phương pháp đo mật độ quang (OD) còn được gọi là phương pháp đo độ hấp thụ hoặc độ đục, giúp xác định mật độ tế bào trong các nghiên cứu sinh lý cũng như xác định sự tăng trưởng qua các pha của vi tảo. Đây là phương pháp gián tiếp cho thấy sự tương quan giữa mật độ vi tảo với độ hấp thụ ánh sáng ở bước sóng cụ thể. Phương pháp đếm tế bào tốn thời gian, do đó đo mật độ quang là một phương pháp +
nhanh và hiệu quả. Lượng ánh sáng được hấp thụ bởi dịch huyền phù tế bào có thể liên quan trực tiếp đến sinh khối hoặc số lượng tế bào [46].
Mối quan hệ tuyến tính giữa độ hấp thụ cực đại và mật độ tế bào Entomoneis
sp. được xác định theo phương trình tuyến tính:
Mật độ tế bào = 322,22OD 680 - 2,8115
Hệ số xác định của mô hình hồi quy tương đối cao (R2 = 0,9537) (Hình 2.6) cho
thấy mối quan hệ giữa mật độ tế bào và độ hấp thụ là phù hợp với phương trình tuyến tính này.
Hình 2.6. Mối tương quan tuyến tính giữa mật độ tế bào và độ hấp thụ [6]