Định lượng stipuleanosid R2 phân lập được- 123docz.net

Yêu cầu: Hàm lượng không được thấp hơn 95,0% tính theo nguyên trạng.

Tiến hành:

Pha mẫu hợp chất stipuleanosid R2 phân lập được: dùng cân phân tích cân chính xác 6 mẫu, mỗi mẫu khoảng 10 mg chất phân lập vào bình định mức 20 mL, hòa tan

và pha loãng vừa đủ bằng MeOH, sau đó siêu âm 10 phút, rồi lọc qua màng lọc 0,45

µm.

Pha mẫu dung dịch đối chiếu stipuleanosid R2: dùng cân phân tích cân chính xác khoảng 10 mg chuẩn stipuleanosid R2 vào bình định mức 20 mL, hòa tan và pha

loãng vừa đủ bằng MeOH, siêu âm 10 phút, ly tâm lấy dịch chiết rồi lọc qua màng lọc 0,45 µm.

Tiến hành chạy HPLC với điều kiện sắc ký như đã nêu ở mục 3.3.1

Thu được kết quả sắc ký trình bày ở bảng 3.6

Bảng 3.6. Kết quảđịnh lượng nguyên liệu thiết lập chất chuẩn

Mẫu thử Khối lượng (mg) Diện tích pic (mAU*s)

Hàm lượng (%) Pic chính Tổng pic 1 9,45 1353,027 1411,314 95,87 2 10,17 1428,131 1483,772 96,25 3 9,34 1249,639 1299,271 96,18 4 9,61 1397,682 1444,782 96,74 5 10,28 1442,078 1499,042 96,20 6 10,74 1482,191 1542,503 96,09 Hàm lượng trung bình (%) 96,22  0,11 RSD (%) 0,26

Nhận xét: Các mẫu thửđều có hàm lượng lớn hơn 95,0% (tính theo nguyên trạng), theo lý thuyết là đạt yêu cầu để thiết lập chất chuẩn đối chiếu, tuy nhiên chưa thể

kết luận một cách chắc chắn, cần phải tiến hành thêm các phương pháp đặc hiệu và

CHƯƠNG 4: BÀN LUẬN 4.1. Về chiết xuất, phân lập và tinh chế

4.1.1 Chiết xuất

Với quy trình chiết xuất dược liệu SVD bằng phương pháp chiết siêu âm sử

dụng dung môi ethanol 70o, cất quay thu cắn toàn phần, phương pháp chiết siêu âm

có ưu điểm làm tăng tốc độ chiết, giảm nhiệt độ và áp suất khi chiết. Từ cao chiết toàn phần phân đoạn lần lượt bằng phương pháp chiết lỏng - lỏng với các dung môi

có độ phân cực tăng dần: ether, ethyl acetat và n-butanol thu được các cắn phân

đoạn với khối lượng ether (1,26 %), EtOAc (0,59 %), BuOH (4,71%) so với nguyên liệu khô ban đầu. Hợp chất stipuleanosid R2 bản chất là một saponin phân cực, chính vì vậy việc chiết lỏng – lỏng với các dung môi có độ phân cực tăng dần nhằm mục đích loại bỏ các thành phần không phân cực và kém phân cực tan trong dung môi ether và ethyl acetat, chuẩn bị cho bước phân lập được tiến hành nhanh và

chính xác hơn.

4.1.2 Phân lập và tinh chế

Phân đoạn n-butanol thu được với hàm lượng cao nhất và được sử dụng để

tiến hành phân lập stipuleanosid R2 bằng sắc ký cột pha thuận với hệ dung môi rửa

giải CH2Cl2 – MeOH theo gradient nồng độ. Kết hợp với SKLM để đánh giá từng

phân đoạn thu được, cho thấy phân đoạn B4 cho sắc ký đồ trên bản mỏng có một vết màu hồng tím rõ nét phù hợp so với đặc tính của hợp chất cần phân lập. Sau đó

chúng tôi đã tiến hành sắc ký cột pha đảo để tinh chế được stipuleanosid R2 trong

dược liệu SVD thu được 180 mg bột màu trắng. Kiểm tra độ tinh khiết của chất tinh chế được bằng phương pháp SKLM cho thấy cắn tinh chế được hiện một vết màu hồng sau đó chuyển sang màu tím, đây là đặc trưng của dẫn xuất triterpen. Kết quả

này cũng góp phần đánh giá stipuleanosid R2 tinh chế được có độ tinh khiết khá cao, có thể ứng dụng phương pháp này trong việc phân lập hợp chất stipuleanosid

R2 trong SVD và các dược liệu khác chứa thành phần này.

Như đã trình bày ở phần tổng quan, stipuleanosid R2 có nhiều tác dụng dược lý rất có ý nghĩa trên lâm sàng, có thể sử dụng đểđiều trị nhiều bệnh trong đó có tác

dụng gây độc trên một số dòng tế bào ung thư. Hiện nay các tác dụng này của

stipuleanosid R2 chưa được dùng nhiều trên lâm sàng nhưng nếu trong tương lai stipuleanosid R2 được nghiên cứu sử dụng rộng rãi trên người thì phâp lập và tinh chế stipuleanosid R2 là cần thiết phục vụ cho việc nghiên cứu tác dụng sinh học

như vậy thì quy trình chiết xuất, phân lập và tinh chế mà chúng tôi đưa ra có thể ứng dụng được.

4.2. Bước đầu xây dựng bộ dữ liệu nhận dạng

Việc xác minh lại cấu trúc của stipuleanosid R2 tinh chế được trong dược

liệu Sâm vũ diệp (Panax bipinnatifidus Seem.) bằng phương pháp phổ cộng hưởng

từ hạt nhân NMR (1H-NMR, 13C-NMR, DEPT) và phân tích khối phổ (ESI-MS) đã

khẳng định công thức phân tử cũng như cấu trúc của stipuleanosid R2 tinh chếđược là phù hợp với lý thuyết. Đồng thời kết quả nhiệt độ nóng chảy đo được của chất

phân lập được cũng góp phần khẳng định sản phẩm tinh chế của chúng tôi đúng là

hợp chất stipuleanosid R2.

4.3. Phân tích định tính, định lượng stipuleanosid R2 phân lập được bằng HPLC HPLC

4.3.1. Xây dựng phương pháp

Chúng tôi thực hiện xây dựng phương pháp HPLC với detector DAD để định

tính, định lượng stipuleanosid R2 tinh chế được. Đề tài sử dụng phương pháp phân tích định lượng saponin bằng HPLC là phương pháp được Dược điển các nước công

nhận đạt yêu cầu về tính tiên tiến so với phương pháp quang phổ hay phương pháp

khối lượng của phần lớn các chuyên luận dược liệu hiện nay. Đây là phương pháp

có nhiều ưu điểm như có thể tiến hành đơn giản từ việc pha mẫu, chuẩn bị dung

môi pha động đến tiến hành sắc ký. Trong khoảng nồng độ khảo sát, giữa diện tích

pic và nồng độ chất phân tích có mối tương quan tuyến tính chặt chẽ. Phương pháp

còn đảm bảo độđúng và độđặc hiệu cao.

Tham khảo một số tài liệu kết hợp với các điều kiện có sẵn, chúng tôi đã lựa chọn được chương trình sắc ký như mô tảở mục 3.3.1. Với điều kiện sắc ký đã lựa chọn, chất nghiên cứu trong mẫu thử chuẩn bị từ dịch chiết n-butanol thân rễ SVD và chất phân lập được tách tương đối tốt, pic cân đối, thời gian lưu hợp lý, phù hợp

đểđịnh lượng thành phần trong thân rễ SVD.

4.3.2. Phân tích định tính và định lượng stipuleanosid R2 tinh chế được 4.3.2.1. Định tính

Kết quả trên SKĐ chạy HPLC của 3 mẫu: stipuleanosid R2 phân lập được,

cao BuOH và chất chuẩn đối chiếu đều cho pic ở thời gian lưu ở khoảng phút thứ

15. Theo các tài liệu nghiên cứu cho đến hiện nay, có thể khẳng định thời gian lưu

đó là của hợp chất stipuleanosid R2.

Bằng phương pháp HPLC với detector UV đã xây dựng để định tính, định

lượng stipuleanosid R2 và xác định giới hạn tạp chất liên quan của stipuleanosid R2 tinh chế được, chúng tôi đã xác định được chính xác hàm lượng stipuleanosid R2

tinh chế được là 96,22  0,11 (%) > 95,0% (tính theo nguyên trạng),

đạt yêu cầu để thiết lập chất chuẩn đối chiếu.

Stipuleanosid R2 được tinh chế và xây dựng thành chất đối chiếu sử dụng trong phân tích, xây dựng tiêu chuẩn. Với mục đích xa hơn là thiết lập chất chuẩn

phục vụ cho công tác kiểm nghiệm dược liệu SVD, sau khi xác định độ tinh khiết

bằng SKLM và HPLC saponin chính phân lập được, do thời gian có hạn, chúng tôi

mới dừng lại ở việc chiết xuất, phân lập và tinh chế. Việc thiết lập chất chuẩn stipuleanosid R2 còn cần đánh giá thêm một vài chỉ tiêu khác theo tiêu chí của

KẾT LUẬN VÀ KIẾN NGHỊ KẾT LUẬN

Với các kết quả thực nghiệm thu được đềtài đã đạt được các mục tiêu đề ra là: 1. Nghiên cứu chiết xuất, phân lập và tinh chế Stipuleanosid R2 từ dược liệu

sâm vũ diệp.

2. Bước đầu xác minh cấu trúc hóa học, xây dựng bộ dữ liệu nhận dạng của chất tinh chếđược.

3. Định tính, định lượng stipuleanosid R2 phân lập được.

Như vậy, việc xây dựng tiêu chuẩn cho hợp chất saponin chính từ thân rễ

SVD – stipuleanosid R2 đã góp phần ý nghĩa vào cơ sở dữ liệu về hóa thực vật và

tiêu chuẩn hóa dược liệu SVD cũng như làm cơ sở định hướng cho các nghiên cứu

hoạt tính sinh học của đối tượng tiềm năng thuộc chi Panax này. Và thêm vào đó

các kết quả này còn có ý nghĩa thực tiễn trong công tác kiểm nghiệm thuốc nói chung và kiểm nghiệm dược liệu nói riêng.

KIẾN NGHỊ

Hướng nghiên cứu tiếp theo, tôi xin phép được kiến nghị:

1. Nghiên cứu thiết lập tiêu chuẩn chất chuẩn stipuleanosid R2 để có tài liệu bổ

sung về chất chuẩn đối chiếu trên vào Dược điển Việt Nam xuất bản lần thứ

2. Tiến hành nghiên cứu thiết lập các chất chuẩn đối chiếu khác có nguồn gốc

dược liệu phục vụ nhu cầu kiểm tra chất lượng dược liệu cũng như các sản phẩm từdược liệu.

TÀI LIỆU THAM KHẢO A. TIẾNG VIỆT:

[1] .Lê Đình Bích, Trần Văn Ơn (2007) Thực vật học tập 1, NXB Y học, Hà Nội.

[2] Đỗ Huy Bích, Đặng Quang Chung, Bùi Xuân Chương, Nguyễn Thượng Dong

cùng cộng sự (2003), Cây thuốc và Động vật làm thuốc ở Việt Nam tập 2, Nhà

xuất bản khoa học kỹ thuật, tr. 711 - 714.

[3] Bộ y tế (2017), Dược điển Việt Nam V tập 2, Nhà xuất bản y học, tr. PL-113, phụ lục 2.

[4] Bộ Y tế, Vụ khoa học và đào tạo (2007), Kiểm nghiệm dược phẩm, Nhà xuất bản

Y học, tr. 79-82, 84-110.

[5] Nguyễn Thượng Dong, TS. Trần Công Luận, TS. Nguyễn Thị Thu Hương

(2007), Sâm Việt Nam và một số cây thuốc họ Nhân sâm, NXB Khoa học và Kỹ

thuật, Hà Nội, tr. 263-266.

[6] GS.TS.Nguyễn Minh Đức (2013), Tổng quan chất chuẩn, Đại học Y dược

TP.Hồ Chí Minh.

[7] Đỗ Văn Hào (2017), Nghiên cứu thành phần hóa học của cây sâm vũ diệp thu hái ở Tây Bắc, Khóa luận tốt nghiệp, Khoa Y dược, Đại học Quốc Gia Hà Nội. [8] Nguyễn Thị Huệ (2017), Phân tích acid oleanolic và saponin tổng số trong rễ

cây sâm vũ diệp thu hái ở Sa Pa, Khóa luận tốt nghiệp, Khoa Y dược, Đại học

Quốc Gia Hà Nội.

[9] Dương Thị Phượng (2018), Định lượng Stipuleanosid R2 trong thân rễ Sâm vũ

diệp, Khóa luận tốt nghiệp, Khoa Y dược,Đại học Quốc gia Hà Nội.

[10] Lê Thị Tâm (2017), Nghiên cứu tác dụng chống ngưng tập tiểu cầu của các

phân đoạn dịch chiết sâm vũ diệp (Panax bipinnatifidus Seem.) và tam thất

hoang (Panax stipuleanatus H. T sai et K. M. Feng) trên in vitro, Khoá luận tốt

nghiệp đại học, Khoa Y dược, Đại học Quốc gia Hà Nội.

[11] Nguyễn Văn Tập, Phạm Thanh Huyền, Lê Thanh Sơn (2006), “Kết quả nghiên cứu về phân bố, sinh thái Sâm Vũ Diệp và Tam thất hoang ở Việt Nam”, Tạp chí dược liệu, 11(5), tr. 177-180.

[12] Nguyễn Văn Tập (2005), “Các loài thuộc chi Panax L. ở Việt Nam”, Tạp chí dược liệu, 10(3), tr. 71-76.

[13] Ngô Vân Thu, Trần Hùng (2011), Dược liệu học tập 1, NXB Y học – Bộ Y tế,

[14] Ngô Vân Thu (1990), Hóa học Saponin, Khoa Dược – Trường Đại học Y Dược

thành phố Hồ Chí Minh, tr. 109-114.

[15] Trường Đại học Dược Hà Nội, Bộ môn hóa phân tích (2006), Hóa phân tích II, tr.17, 99-146, 173-222.

[16] Viện nghiên cứu thực vật Vân Nam (1975), “Triterpene trong cây thuộc chi

nhân sâm và mối liên quan đến hệ thống phân loại, phân bố địa lý”, Thực vật

phân loại học báo cáo, 13(2), 29-44.

B. TIẾNG ANH

[17] Agrawal PK (1992), "NMR spectroscopy in the structural elucidation of

oligossacharides and glycosides", Phytochemistry, 31, pp. 1307-1330.

[18] Satinder Ahuja, Elsevier Publiccations (2003), Hand Book of Isolation and

Characterization of Impurities In Pharmaceuticals, p.119.

[19] Center for Drug Evaluation and Research Food and Drug Administration

Department of Health and Human Services (1987), Guideline for submitting

supporting documentation in drug applications for the manufacture of drugs substances, p.29.

[20] Choi K. T. (2008), "Botanical characteristics, pharmacological effects and

medicinal components of Korean Panax ginseng CA Meyer",

ActaPharmacologica Sinica, 29(9), 1109 – 1118.

[21] Shao-Xing Dai, Wen-Xing Li et al. (2016), "In silico identification of anti- cancer compounds and plants from traditional Chinese medicine database",

Scientific Reports, 25462.

[22] Y. Fan, D. Y. Guo, Q. Song, and T. Li (2013), "Effect of total saponin of aralia

taibaiensis on proliferation of leukemia cells", Zhong Yao Cai, 36(4), pp. 604- 607.

[23] Mahato S, Kundu A (1994), "13C NMR spectra of pentacyclic triterpenoids-a

complication and some salient features", Phytochemistry, 37, pp. 1517-1575.

[24] H. T. Nguyen, H. Q. Tran, T. T. Nguyen, V. M. Chau, K. A. Bui, Q. L. Pham, et

al. (2011), "Oleanolic triterpene saponins from the roots of Panax

bipinnatifidus", Chem Pharm Bull (Tokyo), 59(11), pp. 1417-1420.

[25] C. Liang, Y. Ding, H. T. Nguyen, J. A. Kim, H. J. Boo, H. K. Kang, et al.

(2010), "Oleanane-type triterpenoids from Panax stipuleanatus and their

[26] Liu F et al. (2008), Method Development for Gypenosides Fingerprint by High

Performance Liquid Chromatography with Diode-Array Detection and the Addition of Internal Standard, pp. 389-393.

[27] Y. Satoh, S. Sakai, M. Katsumata, M. Nagasao, M. Miyakoshi, Y. Ida, et al.

(1994), "Oleanolic acid saponins from root-bark of Aralia elata",

Phytochemistry, 36(1), pp. 147-152.

[28] Schwarz M et al (2009), “Herbal Reference Standards”, Planta Med, 75, 689–

703.

[29] H. F. Tang, Y. H. Yi, Z. Z. Wang, Y. P. Jiang, and Y. Q. Li (1997), "Oleanolic

acid saponins from the root bark of Aralia taibaiensis", Yao XueXue Bao, 32(9),

pp. 685-90.

[30] Vu Thi Thom et al (2018), “Antithrombotic Activity and Saponin Coposition of

the Roots of Panax bipinnatifidus Seem. Growing in Vietnam”, Pharmacognosy

Research, 10(4), pp. 333-338.

[31] D. Q. Wang, J. Fan, B. S. Feng, S. R. Li, X. B. Wang, C. R. Yang, et al. (1989),

"Studies on saponins from the leaves of Panax japonicus var.

bipinnatifidus(Seem.)Wu et Feng", Yao Xue Xue Bao, 24(8), pp. 593-599.

[32] Y. Weng, L. Yu, J. Cui, Y. R. Zhu, C. Guo, G. Wei, et al. (2014),

"Antihyperglycemic, hypolipidemic and antioxidant activities of total saponins

extracted from Aralia taibaiensis in experimental type 2 diabetic rats", J

Ethnopharmacol, 152(3), pp. 553-560.

[33] WHO (1997), A WHO guide to good manufacturing practice (GMP)

requirements - Part 2: Validation, Word Health Organization, Geneva.

[34] World Health Organization (2006), General guidelines for the

establishment, maintenance and distribution of chemical reference substances, Genève, 3-24.

[35] Yuchi Zhang et al (2016), “Saponins from Panax bipinnatifidus Seem: New

strategy of extraction, isolation, and evaluation of tyrosinase inhibitory activity

based on mathematical calculations”, Journal of Chromatography B, 1039:79-

87.

C. TRANG WEB

[36] https://www.pharmacopoeia.com/

[37] http://pubchem.ncbi.nlm.nih.gov/compound/74029835#section=Top

PHỤ LỤC Phụ lục 01. Phiếu kết quả giám định mẫu

Phụ lục 02. Sắc ký đồ mẫu trắng (MeOH)