Lu2 e96~1

Trang 1 ĐỖ TẤT ĐẠT NGHIÊN CỨU MỘT SỐ ĐẶC ĐIỂM BỆNH LÝ CỦA LỢN MẮC VIÊM PHỔI DO ACTINOBACILLUS PLEUROPNEUMONIAE, PASTEURELLA MULTOCIDA, STREPTOCOCCUS SUIS VÀ SỬ DỤNG VACXIN PHÒNG BỆNH LUẬ

HỌC VIỆN NÔNG NGHIỆP VIỆT NAM ¯¯¯¯¯¯¯¯¯¯¯¯¯¯¯¯¯¯¯¯¯¯¯¯¯¯ ấn Lu án ĐỖ TẤT ĐẠT n tiế sĩ h àn ng NGHIÊN CỨU MỘT SỐ ĐẶC ĐIỂM BỆNH LÝ CỦA LỢN MẮC VIÊM PHỔI DO ACTINOBACILLUS PLEUROPNEUMONIAE, PASTEURELLA MULTOCIDA, STREPTOCOCCUS SUIS VÀ SỬ DỤNG VACXIN PHÒNG BỆNH H N KI TẾ LUẬN ÁN TIẾN SĨ NHÀ XUẤT BẢN HỌC VIỆN NÔNG NGHIỆP - 2021 HỌC VIỆN NÔNG NGHIỆP VIỆT NAM ¯¯¯¯¯¯¯¯¯¯¯¯¯¯¯¯¯¯¯¯¯¯¯¯¯¯¯¯¯¯¯¯ ĐỖ TẤT ĐẠT ấn Lu án NGHIÊN CỨU MỘT SỐ ĐẶC ĐIỂM BỆNH LÝ CỦA LỢN MẮC VIÊM PHỔI DO ACTINOBACILLUS PLEUROPNEUMONIAE, PASTEURELLA MULTOCIDA, STREPTOCOCCUS SUIS VÀ SỬ DỤNG VACXIN PHÒNG BỆNH n tiế sĩ h àn ng N KI Bệnh lý học chữa bệnh vật nuôi Mã số: 64 01 02 TẾ Người hướng dẫn khoa học: H Chuyên ngành: PGS.TS NGUYỄN BÁ HIÊN PGS.TS CÙ HỮU PHÚ HÀ NỘI, 2021 LỜI CAM ĐOAN Tôi xin cam đoan cơng trình nghiên cứu riêng tơi, kết nghiên cứu trình bày luận án trung thực, khách quan chưa dùng để bảo vệ lấy học vị Tôi xin cam đoan giúp đỡ cho việc thực luận án cám ơn, thơng tin trích dẫn luận án rõ nguồn gốc Hà Nội, ngày tháng năm 2021 Tác giả luận án ấn Lu án Đỗ Tất Đạt n tiế sĩ h àn ng H N KI TẾ i LỜI CẢM ƠN Trong suốt trình học tập, nghiên cứu hồn thành luận án, tơi nhận hướng dẫn, bảo tận tình thầy cô giáo, giúp đỡ, động viên bạn bè, đồng nghiệp gia đình Cho phép tơi bày tỏ lòng biết ơn sâu sắc tới PGS.TS Nguyễn Bá Hiên PGS.TS Cù Hữu Phú tận tình hướng dẫn, dành nhiều công sức, thời gian tạo điều kiện cho tơi suốt q trình học tập thực đề tài Xin bày tỏ lòng biết ơn chân thành tới Ban Giám đốc, Ban Quản lý đào tạo, Bộ Lu môn Vi sinh vật Truyền nhiễm, Khoa Thú y - Học viện Nông nghiệp Việt Nam tận tình giúp đỡ, tạo điều kiện cho tơi trình học tập, thực đề tài hồn thành ấn luận án án Tơi xin chân thành cảm ơn tập thể lãnh đạo, cán Bộ môn Vi trùng, Viện Thú tiế y, Viện Công nghệ sinh học- Viện Hàn lâm Khoa học Việt Nam, Công ty CP thuốc thú y Marphavet giúp đỡ tạo điều kiện cho tơi suốt q trình thực đề tài n Xin chân thành cảm ơn gia đình, người thân, bạn bè, đồng nghiệp sĩ quan đoàn thể tạo điều kiện thuận lợi giúp đỡ mặt, động viên ng hoàn thành luận án./ h àn Hà Nội, ngày tháng năm 2021 Tác giả luận án H N KI TẾ Đỗ Tất Đạt ii MỤC LỤC Lời cam đoan i Lời cảm ơn ii Mục lục i Danh mục chữ viết tắt v Danh mục bảng vii Danh mục hình ix Trích yếu luận án x Lu Thesis abstract xii Phần Mở đầu ấn Tính cấp thiết đề tài 1.2 Mục tiêu đề tài án 1.1 tiế 1.2.1 Mục tiêu chung 1.2.2 Mục tiêu cụ thể n 1.3 Phạm vi nghiên cứu sĩ 1.3.1 Đối tượng nghiên cứu ng 1.3.2 Phạm vi nghiên cứu Những đóng góp đề tài 1.5 Ý nghĩa khoa học thực tiễn đề tài h àn 1.4 N KI 1.5.1 Ý nghĩa khoa học 1.5.2 Ý nghĩa thực tiễn H Phần Tổng quan tài liệu TẾ 2.1 Tình hình nghiên cứu giới bệnh viêm phổi lợn vacxin phòng bệnh 2.2 Tình hình nghiên cứu Việt Nam bệnh viêm phổi lợn vacxin phòng bệnh 12 2.3 Vi khuẩn Actinobacillus pleuropneumoniae bệnh viêm phổi lợn 14 2.3.1 Vi khuẩn A pleuropneumoniae 14 2.3.2 Bệnh viêm phổi vi khuẩn A pleuropneumoniae gây lợn 17 2.4 Vi khuẩn Pasteurella multocida bệnh viêm phổi lợn 19 2.4.1 Vi khuẩn P multocida 19 2.4.2 Bệnh viêm phổi lợn vi khuẩn P multocida gây 21 i 2.5 Vi khuẩn Streptococcus suis bệnh vi khuẩn gây lợn 25 2.5.1 Vi khuẩn S suis 25 2.5.2 Bệnh vi khuẩn S suis gây lợn 29 2.6 Các chất bổ trợ thường dùng sản xuất vacxin 30 2.6.1 Chất bổ trợ vacxin 30 2.6.2 Muối khoáng 33 2.6.3 Chất nhũ tương 33 2.6.4 Cytokine 35 2.6.5 Saponin 35 Lu 2.6.6 Các chất cao phân tử 35 ấn Phần Vật liệu, nội dung và phương pháp nghiên cứu 36 Địa điểm nghiên cứu 36 3.2 Thời gian nghiên cứu 36 3.3 Vật liệu nghiên cứu 36 3.4 Nội dung nghiên cứu 37 án 3.1 n tiế sĩ 3.4.1 Nghiên cứu triệu chứng lâm sàng, bệnh tích đại thể lợn mắc bệnh ng vi khuẩn A pleuropneumoniae, P multocida S suis gây 37 3.4.2 Nghiên cứu đánh giá khả ổn định đặc tính sinh học giống sản àn xuất vacxin phòng bệnh viêm phổi lợn vi khuẩn A pleuropneumoniae, h P multocida S suis gây 37 N KI 3.4.3 Nghiên cứu quy trình sản xuất vacxin đa giá vơ hoạt nhũ dầu phịng bệnh viêm phổi lợn vi khuẩn A pleuropneumoniae, P multocida S suis H gây 37 TẾ 3.5 Phương pháp nghiên cứu 38 3.5.1 Phương pháp nghiên cứu triệu chứng lâm sàng, bệnh tích đại thể lợn mắc bệnh vi khuẩn A pleuropneumoniae, P mutocida S suis gây 38 3.5.2 Phương pháp nghiên cứu đánh giá khả ổn định đặc tính sinh học giống sản xuất vacxin phòng bệnh vi khuẩn A pleuropneumoniae, P multocida S suis gây 41 3.5.3 Phương pháp nghiên cứu quy trình sản xuất vacxin đa giá vơ hoạt nhũ dầu phòng bệnh viêm phổi lợn vi khuẩn A pleuropneumoniae, P multocida S suis gây 43 ii 3.5.4 Phương pháp xử lý số liệu 50 Phần Kết thảo luận 51 4.1 Kết nghiên cứu triệu chứng lâm sàng, bệnh tích đại thể lợn mắc bệnh vi khuẩn A pleuropneumoniae, P multocida S suis gây 51 4.1.1 Kết nghiên cứu triệu chứng lâm sàng, bệnh tích đại thể lợn mắc bệnh vi khuẩn A pneumoniae gây 51 4.1.2 Kết nghiên cứu triệu chứng lâm sàng, bệnh tích đại thể lợn mắc bệnh vi khuẩn P multocida gây 54 4.1.3 Kết nghiên cứu triệu chứng lâm sàng, bệnh tích đại thể lợn mắc Kết đánh giá khả ổn định đặc tính sinh học giống sản xuất ấn 4.2 Lu bệnh vi khuẩn S suis gây 56 vacxin phòng bệnh vi khuẩn A pleuropneumoniae, P multocida án S suis gây 59 tiế 4.2.1 Kết đánh giá khả ổn định đặc tính sinh học giống sản xuất n vacxin phòng bệnh vi khuẩn A pleuropneumoniae gây 59 sĩ 4.2.2 Kết đánh giá khả ổn định đặc tính sinh học giống sản xuất ng vacxin phòng bệnh vi khuẩn P multocida gây 65 4.2.3 Kết đánh giá khả ổn định đặc tính sinh học giống sản xuất àn vacxin phòng bệnh vi khuẩn S suis gây 70 Nghiên cứu quy trình sản xuất vacxin đa giá vơ hoạt nhũ dầu phịng bệnh h 4.3 N KI viêm phổi lợn vi khuẩn A pleuropneumoniae, P multocida S suis gây 75 H 4.3.1 Nghiên cứu xây dựng quy trình sản xuất vacxin đa giá vơ hoạt nhũ dầu phịng TẾ bệnh viêm phổi lợn vi khuẩn A pleuropneumoniae, P multocida S suis gây 75 4.3.2 Kết đánh giá chất lượng vacxin bán thành phẩm 77 4.3.3 Kết so sánh khả sinh miễn dịch vacxin đa giá bổ trợ keo phèn vacxin đa giá bổ trợ nhũ dầu chống lại vi khuẩn A pleuropneumoniae, P multocida S suis 83 4.3.4 Kết xác định liều tiêm vacxin viêm phổi lợn 90 4.3.5 Kết xây dựng quy trình sản xuất vacxin đa giá vơ hoạt bổ trợ nhũ dầu phịng bệnh viêm phổi lợn 92 iii 4.3.6 Kết xây dựng quy trình sử dụng vacxin đa giá vơ hoạt bổ trợ nhũ dầu phòng bệnh viêm phổi cho lợn 99 Phần Kết luận và đề nghị 103 5.1 Kết luận 103 5.2 Đề nghị 104 Danh mục cơng trình khoa học cơng bố có liên quan đến luận án 105 Tài liệu tham khảo 106 Phụ lục .117 ấn Lu án n tiế sĩ h àn ng H N KI TẾ iv DANH MỤC CÁC CHỮ VIẾT TẮT Chữ viết đầy đủ aa Amino acid A pleuropneumoniae Actinobacillus pleuropneumoniae BHI Brain Heart Infusion BNNPTNT Bộ Nông nghiệp Phát triển Nông thôn Bp Base pair CI Confidence Interval CHLB Cộng hòa liên bang cs Cộng DNA ấn Lu Chữ viết tắt FAO Enzyme-Linked ImmunoSorbent Assay Food and Agriculture Organization n Huyết sĩ HT Deoxyribonucleoside triphosphate tiế ELISA án dNTP Deoxyribonucleic acide Khoa học kỹ thuật M hyopneumoniae Mycoplasma hyopneumoniae NAD Nicotinamide adenine dinucleotide NXB Nhà xuất OIE Office International des Epizooties P multocida Pasteurella multocida PCR Polymerase Chain Reaction PLLO Pleuropneumonia-like organism RNA Ribonucleic acid RT-PCR Reverse transcription polymerase chain reaction S suis Streptococcus suis TCVN Tiêu chuẩn Việt Nam THB Todd Hewitt Broth TN Thí nghiệm TSB Tryptic Soy Broth TT Thông tư h àn ng KHKT H N KI TẾ v Chữ viết tắt Chữ viết đầy đủ TYE Tryptone Yeast Extract Broth TW Tryptone water USA United States of America USD United States dollar VNUA Vietnam National University of Agriculture ấn Lu án n tiế sĩ h àn ng H N KI TẾ vi 52 Halbur P., Thanawongnuwech R., Brown G., Kinyon J., Roth J., Thacker E & Thacker B (2000) Efficacy of antimicrobial treatments and vaccination regimens for control of porcine reproductive and respiratory syndrome virus and Streptococcus suis coinfection of nursery pigs Journal of clinical microbiology 38(3): 1156-1160 53 Heath P., Hunt B., Duff J & Wilkinson J (1996) Streptococcus suis serotype 14 as a cause of pig disease in the UK The Veterinary record 139(18): 450-451 54 Herczeg J., Brunier E., Szalai T., Tenk M & Thevenon J (2014) week onset of immunity of Coglapix® in swine originated from a farm naturally 55 Lu contaminated with Actinobacillus pleuropneumoniae Higgins R., Lariviere S., Mittal K., Martineau G., Rousseau P & Cameron J (1985) ấn Evaluation of a killed vaccine against porcine pleuropneumonia due to Hogg A., Amass S., Hoffman L., Wu C & Clark L (1996) A survey of tiế 56 án Haemophilus pleuropneumoniae The Canadian Veterinary Journal 26(2): 86 Streptococcus suis isolations by serotype and tissue of origin Proc Am n Assoc Swine Pract 79-81 sĩ 57 Holt M., Enright M & Alexander T (1990) Immunisation of pigs with killed ng cultures of Streptococcus suis serotype Research in veterinary science Inzana T J., Todd J., Ma J & Veit H (1991) Characterization of a non-hemolytic h 58 àn 48(1): 23-27 N KI mutant of Actinobacillus pleuropneumoniaeserotype 5: role of the 110 kilodalton hemolysin in virulence and immunoprotection Microbial H pathogenesis 10(4): 281-296 TẾ 59 Inzana T J., Todd J & Veit H P (1993) Safety, stability, and efficacy of noncapsulated mutants of Actinobacillus pleuropneumoniaefor use in live vaccines Infection and immunity 61(5): 1682-1686 60 Iwamatsu S., Mukouhara Y & Sawada T (1991) Antibiotic susceptibility of Pasteurella multocida isolated from swine from 1983 to 1986 Journal of the Japan Veterinary Medical Association (Japan) 61 Jacques M & Foiry B (1987) Electron microscopic visualization of capsular material of Pasteurella multocida serotypes A and D labeled with polycationic ferritin Journal of bacteriology 169(8): 3470-3472 111 62 Jansen R., Briaire J., Van Geel A., Kamp E M., Gielkens A & Smits M A (1994) Genetic map of the Actinobacillus pleuropneumoniaeRTX-toxin (Apx) operons: characterization of the ApxIII operons Infection and immunity 62(10): 4411-4418 63 John V S., Wilcock B & Kierstead M (1982) Streptococcus suis serotype infection in swine in Ontario: A review of clinical and pathological presentations The Canadian Veterinary Journal 23(3): 95 64 Jolie R A., Mulks M H & Thacker B J (1995) Cross-protection experiments in pigs vaccinated with Actinobacillus pleuropneumoniaesubserotypes 1A and 1B Veterinary microbiology 45(4): 383-391 Kataoka Y., Sugimoto C., Nakazawa M., Morozumi T & Kashiwazaki M (1993) Lu 65 The epidemiological studies of Streptococcus suis infections in Japan from ấn 1987 to 1991 Journal of Veterinary Medical Science 55(4): 623-626 Kielstein P (1986) On the Occurrence of Toxin‐Producing Pasteurella‐multocida‐ án 66 tiế Strains in Atrophic Rhinitis and in Pneumonias of Swine and Cattle Journal of Veterinary Medicine, Series B 33(1‐10): 418-424 n 67 Kilian M., Nicolet J & Biberstein E (1978) Biochemical and serological sĩ characterization of Haemophilus pleuropneumoniae (Matthews and Pattison ng 1961) Shope 1964 and proposal of a neoserotype strain International Journal àn of Systematic and Evolutionary Microbiology 28(1): 20-26 Kobe K (1933) Die Aetiologie der Ferkelgrippe (enzootische Pneumonie des h 68 N KI Ferkels) Z Bakt Parositenk Abt Orig 129: 161-76 69 Koehne G., Maddux R & Cornell W (1979) Lancefield group R streptococci H associated with pneumonia in swine American journal of veterinary research TẾ 40(11): 1640-1641 70 Krejci R., Newberry J & Ceva Sante Animale F (2011) Pleuropneumonia in pigs– its importance and prevention Mortality 2(6.7): 0.0007 71 Lai RPJ, Seaman MS & Tonks P (2012) Mixed adjuvantformulations reveal a new combination that elicit antibodyresponse comparable to Freund’s adjuvants (a new potentadjuvant combination) PLoS One 2012;7:e35083 72 Lin R, Tarr P & Jones TC (1995) Present status of the use ofcytokines as adjuvants with vaccines to protect againstinfectious diseases Clin Infect Dis 1995;21:1439–1449 112 73 Lun Z.-R., Wang Q.-P., Chen X.-G., Li A.-X & Zhu X.-Q (2007) Streptococcus suis: an emerging zoonotic pathogen The Lancet infectious diseases 7(3): 201-209 74 Maclennan M., Foster G., Dick K., Smith W & Nielsen B (1996) Streptococcus suis serotypes 7, and 14 from diseased pigs in Scotland British Medical Journal Publishing Group 75 Maré C & Switzer W (1965) New species: Mycoplasma hyopneumoniae A causative agent of virus pig pneumonia Veterinary Medicine60 841 76 Meeusen E N., Walker J., Peters A., Pastoret P.-P & Jungersen G (2007) Current status of veterinary vaccines Clinical microbiology reviews 20(3): 489-510 Lu 77 Mikael L G., Pawelek P D., Labrie J., Sirois M., Coulton J W & Jacques M ấn (2002) Molecular cloning and characterization of the ferric hydroxamate án uptake (fhu) operon in Actinobacillus pleuropneumoniae The GenBank accession number for the sequence of the fhuCDBA operon of Actinobacillus tiế pleuropneumoniaeserotype reference strain 4074 described in this study is n AF351135 Microbiology 148(9): 2869-2882 Nielsen R (1984) Haemophilus pleuropneumoniae serotypes cross protection sĩ 78 Nielsen R (1985) Haemophilus pleuropneumoniae (Actinobacillus pleuropneumoniae) àn 79 ng experiments Nordisk veterinaermedicin 36(7-8): 221-234 Serotypes 8, and Serological response and cross immunity in pigs Nordisk N KI 80 h veterinaermedicin 37(4): 217-227 Park C., Ha Y., Kim S., Chae C & Ryu D.-Y (2009) Construction and H characterization of an Actinobacillus pleuropneumoniaeserotype mutant lacking the Apx toxin secretion protein genes apxIIIB and apxIIID Journal of 81 TẾ Veterinary Medical Science 71(10): 1317-1323 Pattison I., Howell D & Elliot J (1957) A haemophilus-like organism isolated from pig lung and the associated pneumonic lesions Journal of Comparative Pathology and Therapeutics 67: 320-IN37 82 Perry M B (1990) Structural analysis of the lipopolysaccharide of Actinobacillus (Haemophilus) pleuropneumoniae serotype 10 Biochemistry and Cell Biology 68(4): 808-810 83 Pijoan C & Fuentes M (1987) Severe pleuritis associated with certain strains of Pasteurella multocida in swine Journal of the American Veterinary Medical Association 191(7): 823-826 113 84 Pijoan C., Lastra A., Ramirez C & Leman A (1984) Isolation of toxigenic strains of Pasteurella multocida from lungs of pneumonic swine Journal of the American Veterinary Medical Association 185(5): 522-523 85 Pijoan C & Trigo F (1990) Bacterial adhesion to mucosal surfaces with special reference to Pasteurella multocida isolates from atrophic rhinitis Canadian journal of veterinary research - Revue canadienne de recherche veterinaire 54: S16-21 86 Pohl S., Bertschinger H., Frederiksen W & Mannheim W (1983) Transfer of Haemophilus pleuropneumoniae and the Pasteurella haemolytica - like organism causing porcine necrotic pleuropneumonia to the genus Lu Actinobacillus (Actinobacillus pleuropneumoniaecomb nov.) on the basis of ấn phenoserotypeic and deoxyribonucleic acid relatedness International Journal 87 án of Systematic and Evolutionary Microbiology 33(3): 510-514 Prideaux C T., Pierce L., Krywult J & Hodgson A L (1998) Protection of mice tiế against challenge with homologous and heterologous serovars of n Actinobacillus pleuropneumoniaeafter live vaccination Current microbiology Quinn, P J., Markey, B K., Leonard, F C., FitzPatrick, E S., Fanning, S ng 88 sĩ 37(5): 324-332 89 àn (2015) Concise review of veterinary microbiology John Wiley Sons Ramjeet M., Cox A D., Hancock M A., Mourez M., Labrie J., Gottschalk M & h Jacques M (2008a) Mutation in the LPS outer core biosynthesis gene, galU, N KI affects LPS interaction with the RTX toxins ApxI and ApxII and cytolytic of Actinobacillus pleuropneumoniaeserotype H activity microbiology 70(1): 221-235 Molecular TẾ 90 Ramjeet M., Deslandes V., Gouré J & Jacques M (2008b) Actinobacillus pleuropneumoniaevaccines: from bacterins to new insights into vaccination strategies Animal Health Research Reviews 9(1): 25-45 91 Reams R Y., Harrington D D., Glickman L T., Thacker H L & Bowersock T L (1996) Multiple serotypes and strains of Streptococcus suis in naturally infected swine herds Journal of Veterinary Diagnostic Investigation 8(1): 119-121 92 Rohrbach B., Hall R & Hitchcock J (1993) Effect of subclinical infection with Actinobacillus pleuropneumoniaein commingled feeder swine Journal of the American Veterinary Medical Association 202(7): 1095-1098 114 93 Sanford S & Tilker M (1982) Streptococcus suis serotype II-associated diseases in swine: observations of a one-year study Journal of the American Veterinary Medical Association 181(7): 673-676 94 Sanford S E (1987) Gross and histopathological findings in unusual lesions caused by Streptococcus suis in pigs I Cardiac lesions Canadian Journal of Veterinary Research 51(4): 481 95 Schaller A., Kuhn R., Kuhnert P., Nicolet J., Anderson T J., Maclnnes J I., Segers R P & Frey J (1999) Characterization of apxlVA, a new RTX determinant of Actinobacillus pleuropneumoniae Microbiology 145(8): 2105-2116 96 Shakarji L., Mikael L G., Srikumar R., Kobisch M., Coulton J W & Jacques M Lu (2006) Fhua and HgbA, outer membrane proteins of Actinobacillus ấn pleuropneumoniae: their role as virulence determinants Canadian journal of 97 án microbiology 52(4): 391-396 Shope R E (1964) Porcine contagious pleuropneumonia: I Experimental tiế Transmission, Etiology, and Pathology The Journal of experimental medicine Srikumar R., Mikael L G., Pawelek P D., Khamessan A., Gibbs B F., Jacques M sĩ 98 n 119(3): 357-368 ng & Coulton J W (2004) Molecular cloning of haemoglobin-binding protein àn HgbA in the outer membrane of Actinobacillus pleuropneumoniae Microbiology 150(6): 1723-1734 h 99 Sriskandan S & Slater J D (2006) Invasive disease and toxic shock due to zoonotic N KI Streptococcus suis: an emerging infection in the East? PLoS Medicine 3(5) H 100 Straw B., Maclachlan N J., Corbett W., Carter P & Schey H (1985) Comparison of tissue reactions produced by Haemophilus pleuropneumoniae vaccines TẾ made with six different adjuvants in swine Canadian journal of comparative medicine 49(2): 149 101 Torremorell M., Pijoan C., Janni K., Walker R & Joo H S (1997) Airborne transmission of Actinobacillus pleuropneumoniaeand porcine reproductive and respiratory syndrome virus in nursery pigs American journal of veterinary research 58(8): 828-832 102 Tumamao J., Bowles R., Van Den Bosch H., Klaasen H., Fenwick B., Storie G & Blackall P (2004) Comparison of the efficacy of a subunit and a live streptomycin‐dependent porcine veterinary journal 82(6): 370-374 115 pleuropneumonia vaccine Australian 103 Thacker B & Mulks M (1988) Evaluation of commercial Haemophilus pleuropneumoniae vaccines Proc Int Pig Vet Soc 87 104 Van Den Bosch H & Frey J (2003) Interference of outer membrane protein PalA with protective immunity against Actinobacillus pleuropneumoniaeinfections in vaccinated pigs Vaccine 21(25-26): 3601-3607 105 Van Overbeke I., Chiers K., Ducatelle R & Haesebrouck F (2001) Effect of endobronchial challenge with Actinobacillus pleuropneumoniaeserotype of pigs vaccinated with a vaccine containing Apx toxins and transferrin‐binding proteins Journal of Veterinary Medicine, Series B 48(1): 15-20 106 Vecht U., Van Leengoed L & Verheijen E (1985) Streptococcus suis infections Lu in pigs in the Netherlands (Part I) Veterinary quarterly 7(4): 315-321 ấn 107 Windsor R & Elliott S (1975) Streptococcal infection in young pigs: IV An outbreak of streptococcal meningitis in weaned pigs Epidemiology án Infection 75(1): 69-78 tiế 108 Wisselink H., Vecht U., Smith H & Stockhofe-Zurwieden N (2001) Protection of pigs against challenge with virulent Streptococcus suis serotype strains by a n muramidase-released protein and extracellular factor vaccine Veterinary sĩ Record 148(15): 473-477 ng h àn 109 Witte A., Wanner G., Sulzner M & Lubitz W (1992) Dynamics of PhiX174 protein E-mediated lysis of Escherichia coli Archives of microbiology 157(4): 381-388 110 Zhang Q., Young T F & Ross R (1995) Identification and characterization of a N KI Mycoplasma hyopneumoniae adhesin Infection and immunity 63(3): 1013- H 1019 TẾ 116 PHỤ LỤC A PHƯƠNG PHÁP GIỮ GIỐNG VI KHUẨN A PLEUROPNEUMONIAE CHO KHÁNG NGUYÊN TÍNH CAO VÀ ỔN ĐỊNH I Giữ giống thạch lỏng Môi trường giữ giống Tryptone soy broth (TSB) bổ sung 20% glycerin Phương pháp giữ giống Lu - Vi khuẩn Actinobacillus pleuropneumoniae nuôi cấy môi trường ấn thạch PPLO 370C điều kiện có 5% CO2 24 án - Lấy toàn khuẩn lạc Actinobacillus pleuropneumoniaetrên thạch PPLO vào môi trường giữ giống (khuẩn lạc đĩa thạch đưa vào ml môi trường) tiế - Chia eppendorf n - Kiểm tra lại ống giữ giống cách nuôi cấy môi trường thạch PPLO sĩ thạch máu có cấy kèm Staphylococcus aureus, đạt yêu cầu bảo quản - 800C àn Môi trường giữ giống ng II Giữ giống phương pháp đông khô h Skim milk, hấp vô trùng, chia 1- 2ml môi trường vào lọ nhỏ có nắp vặn N KI Phương pháp giữ giống - Vi khuẩn Actinobacillus pleuropneumoniae nuôi cấy môi trường H thạch PPLO 370C điều kiện có 5% CO2 24 TẾ - Lấy tồn khuẩn lạc Actinobacillus pleuropneumoniae thạch PPLO vào môi trường giữ giống (khuẩn lạc 3-4 đĩa thạch đưa vào ml môi trường) - Hút hỗn dịch vào ống đông khô hấp vô trùng, cho lượng hỗn dịch thấm ướt đáy ống Lượng hỗn dịch lại dùng để kiểm tra lại ống giữ giống cách cấy thạch PPLO thạch máu có cấy kèm Staphylococcus aureus - Sử dụng máy đơng khơ hút hết khơng khí, tạo mơi trường chân không ống đông khô - Hàn kín ống đơng khơ, kiểm tra chân khơng - Bao gói cẩn thận, tránh làm nứt, vỡ ống giống, bảo quản -200C -800C 117 B PHƯƠNG PHÁP TĂNG CƯỜNG GIỐNG VI KHUẨN A PLEUROPNEUMONIAE CHO KHÁNG NGUN TÍNH CAO VÀ ỔN ĐỊNH I Tăng cường giớng phương pháp tiêm chuột Chuẩn bị canh trùng - Lấy vi khuẩn Actinobacillus pleuropneumoniae từ thạch lỏng (hoặc ống giống đông khô) nuôi cấy môi trường thạch PPLO thạch máu có cấy kèm Staphylococcus aureus, ni cấy 370C điều kiện có 5% CO2 24 - Lấy toàn khuẩn lạc Actinobacillus pleuropneumoniae thạch PPLO vào môi ấn Lu trường TYE (khuẩn lạc đĩa thạch đưa vào 100 ml TYE), nuôi cấy lắc 370C, - Chuyển canh trùng nuôi cấy lắc: từ 100 ml canh trùng chuyển vào bình có 200 án ml TYE, nuôi cấy lắc 370C, 10 tiế - Chuyển canh trùng nuôi cấy lắc: từ 300 ml canh trùng chuyển vào bình có 500 ml TYE, ni cấy lắc 370C, 20 n - Đếm số vi khuẩn trước tiêm cho chuột (số lượng vi khuẩn trung bình sau sĩ ni cấy lắc đạt khoảng – x 108 vi khuẩn/ml) àn ng Tiêm chuột - Sử dụng chuột nhắt trắng khỏe mạnh, giống vi khuẩn tiêm cho chuột h - Liều tiêm canh trùng: 0,5 ml N KI - Đường tiêm: phúc xoang - Theo dõi chuột 12 giờ, 24 giờ, 36 giờ, 48 giờ, 72 sau tiêm H - Phân lập lại vi khuẩn từ máu tim TẾ - Sau phân lập, nuôi cấy vi khuẩn, tiến hành giữ giống theo phương pháp II Tăng cường giống phương pháp tiêm động vật (lợn) Chuẩn bị canh trùng Cách làm tương tự tiêm chuột Tiêm lợn - Sử dụng lợn 30- 45 ngày tuổi, khỏe mạnh, chưa tiêm vacxin phòng viêm phổi Actinobacillus gây - Liều tiêm: ml 118 - Đường tiêm: vịnh tĩnh mạch cổ - Theo dõi lợn 12 giờ, 24 giờ, 36 giờ, 48 giờ, 72 sau tiêm - Phân lập lại vi khuẩn từ máu tim, gan, phổi, dịch họng lợn - Sau phân lập, nuôi cấy vi khuẩn, tiến hành giữ giống theo phương pháp C PHƯƠNG PHÁP TĂNG CƯỜNG GIỐNG VI KHUẨN P MULTOCIDA CHO KHÁNG NGUYÊN TÍNH CAO VÀ ỔN ĐỊNH Tăng cường giống vi khuẩn Pasteurella multocida chuột bạch: - Chuột bạch có trọng lượng 18-20 g/con, khỏe mạnh Lu - Giống vi khuẩn: Chủng vi khuẩn Pasteurella multocida serotype A D ấn - Chủng vi khuẩn giữ từ thạch lỏng ria cấy lên đĩa thạch BHI 5% máu án cừu, nuôi cấy 370C/ 24h, chọn khuẩn lạc điển hình đứng riêng lẻ - Dùng que cấy lấy khuẩn lạc cấy vào môi trường nước BHI, bồi dưỡng 18 -20 tiế nhiệt độ 370 C n - Tiêm phúc xoang, liều tiêm canh trùng 0,2 ml/ chuột chủng tiêm chuột sĩ - Theo dõi thời gian chết chuột số chuột chết chủng vi khuẩn kiểm tra ng - Chuột chết mổ khám, lấy máu tim nuôi cấy môi trường nước thịt BHI àn thạch BHI 5% máu cừu để phân lập lại vi khuẩn h - Lựa chọn chủng vi khuẩn gây chết 100% chuột thí nghiệm thời gian ngắn N KI để giữ giống vi khuẩn Tăng cường giống vi khuẩn Pasteurella multocida lợn thí nghiệm: H 2.1 Vi khuẩn gây bệnh: TẾ Chủng vi khuẩn Pasteurella multocida serotype A D có đầy đủ đặc tính sinh vật hóa học điển hình vi khuẩn P multocida, tính kháng nguyên ổn định, có độc lực cao gây chết 100% động vật thí nghiệm, số lượng kháng nguyên đủ để tiến hành gây bệnh bệnh thực nghiệm lợn 2.2 Lợn thí nghiệm: Lợn thí nghiệm có trọng lượng 12- 15kg/ con, chưa tiêm loại vacxin có chứa loại vi khuẩn Pasteurella multocida dùng để gây bệnh 2.3 Chuẩn bị canh trùng gây bệnh: - Chủng vi khuẩn Pasteurella multocida giữ từ thạch lỏng ria cấy lên đĩa thạch BHI 5% máu cừu, nuôi cấy 370C/ 24h, chọn khuẩn lạc điển hình đứng riêng lẻ 119 - Dùng que cấy lấy khuẩn lạc cấy vào môi trường nước BHI, để tủ ấm 370C /18 -20h - Xác định liều gây bệnh chủng vi khuẩn Pasteurella multocida dùng để gây bệnh thực nghiệm phương pháp đếm số thạch đĩa 2.4 Tiến hành thí nghiệm: Mỗi chủng vi khuẩn cần gây bệnh tiêm cho 02 lợn thí nghiệm với liều tiêm 6ml/ lợn đường tiêm tĩnh mạch cổ Và 05 lợn đối chứng không tiêm Theo dõi thời gian 7- 10 ngày - Các lợn thí nghiệm chết mổ khám kiểm tra bệnh tích, lấy lấy máu tim nuôi cấy môi trường nước thịt BHI thạch BHI 5% máu cừu để phân lập lại vi khuẩn Lu Lựa chọn chủng vi khuẩn gây chết 100% lợn thí nghiệm thời gian ngắn để giữ giống vi khuẩn ấn D PHƯƠNG PHÁP GIỮ GIỐNG VI KHUẨN PASTEURELLA MULTOCIDA án CHO KHÁNG NGUYÊN TÍNH CAO VÀ ỔN ĐỊNH tiế Chuẩn bị: n - Giống vi khuẩn Pasteurella multocida sĩ - Thạch BHI 5% máu cừu - Effendorf vô trùng - Pipet tip vô trùng h àn ng - Nước thịt BHI (Brain heart infusion) - Pipetman N KI - Glycerol vô trùng H Tiến hành TẾ - Cấy giống vi khuẩn Pasteurella multocida cần giữ lên môi trường thạch BHI 5% máu cừu (chú ý cấy tách khuẩn lạc riêng rẽ), nuôi tủ ấm 370C/18- 20h - Chọn khuẩn lạc điển hình vi khuẩn (đứng tách riêng) cấy vào mơi trường nước thịt BHI Để tủ ấm 370C từ – 10h - Sau – 10h bổ sung Glycerol (theo tỷ lệ BHI:85% Glycerol: 15%) vào canh trùng nuôi cấy - Lắc canh trùng với Glycerol - Dùng pipetman hút canh trùng chia vào Effendorf (1-1,5ml/tube) - Dán nhãn - Giữ nhiệt độ âm sâu – 20 đến – 800C 120 Kiểm tra độ khiết tính chất mọc vi khuẩn giữ giống Sau chia canh trùng vào Effendorf Dùng que cấy chọc vào phần canh trùng thừa lọ BHI, ria lại thạch máu, cất tủ ấm 370C/24h Sau 24 h, kiểm tra đĩa thạch vi khuẩn mọc trình giữ giống thạch lỏng đảm bảo đạt yêu cầu Quy trình đơng khơ giớng vi khuẩn I Chuẩn bị giống vi khuẩn Pasteurella multocida serotype A D II Chuẩn bị dụng cụ môi trường để đông khô Môi trường: Lu - Thạch BHI 5% máu bê cừu - Skim milk (2gram/100ml nước cất) ấn Dụng cụ: án - Ống đông khô (có nút bơng) vơ trùng tiế - Pipet Pasteur - Serotype có nút vặn n - Tăm bơng vơ trùng h Cách tiến hành: àn - Máy kiểm tra chân không ng - Máy hút chân không sĩ - Đèn khò N KI Cấy chủng vi khuẩn Pasteurella multocida cần đông khô lên môi trường thạch BHI 5% máu, với điều kiện khuẩn lạc phải (370C/ 18 giờ) H Pha Skim milk nước cất chia nhỏ vào serotype có nút vặn TẾ (1ml/serotype), hấp vô trùng 1210C/15 phút Dùng tăm bơng vơ trùng thu hoạch hết khuẩn lạc có đĩa thạch máu, sau gạt tăm bơng vào serotype Skim milk (mỗi chủng vi khuẩn sử dụng serotype Skim milk) Dùng pipet Pasteur hút Skim milk vào ống đơng khơ, tùy mục đích sử dụng mà dùng hay nhiều serotype đông khô Chú ý dùng pipet Pasteur hút lên hút xuống Skim milk phần đáy ống thấm Skim milk Dùng kéo cắt phần thừa nút ống đông khô Đồng thời dùng que nhọn đẩy nút bơng xuống phía dưới, gần chạm vào phần đáy ống đông khô 121 Bật đèn khị Cho lửa đèn khị vào vị trí ống đơng khơ, xoay trịn, nhiệt độ nóng chảy thích hợp, dùng hai tay kéo bên ống đông khô Giữ ống đông khô ngăn đá tủ lạnh 12 Cắm ống đông khô vào máy hút chân khơng, bật máy hút vịng 12 Sau 12 giờ, thu hoạch ống đông khô Kiểm tra ống đông khô Dùng máy kiểm tra chân không, thấy ống đơng khơ có màu sáng xanh chứng tỏ khơng có khơng khí ống Ngược lại, ống đơng khơ có khơng khí bên trong, ống đơng khô không đảm bảo chất lượng Lu Bảo quản: Ống đông khô bảo quản nhiệt độ thường, tránh để lẫn với vật nặng hay ấn sắc nhọn án tiế E PHƯƠNG PHÁP GIỮ GIỐNG VI KHUẨN STREPTOCOCCUS SUIS CHO KHÁNG NGUYÊN TÍNH CAO VÀ ỔN ĐỊNH n sĩ Quy trình giữ giớng vi khuẩn thạch lỏng - Giống vi khuẩn h - Thạch máu cừu 5% àn ng 1.1 Chuẩn bị - Effendorf vô trùng H N KI - Nước thịt BHI (Brain heart infusion) - Pipet tip vô trùng TẾ - Pipetman - Glycerol vô trùng 1.2 Tiến hành - Cấy giống vi khuẩn cần giữ lên môi trường thạch máu cừu 5% (chú ý cấy tách khuẩn lạc riêng rẽ), nuôi tủ ấm 370C/24h - Chọn khuẩn lạc điển hình vi khuẩn (đứng tách riêng) cấy vào môi trường nước thịt BHI - Để tủ ấm 370C từ – 10h 122 - Sau – 10h bổ sung Glycerol (theo tỷ lệ BHI:85% Glycerol: 15%) vào canh trùng nuôi cấy - Lắc canh trùng với Glycerol - Dùng pipetman hút canh trùng chia vào Effendorf (1-1,5ml/tube) - Dán nhãn - Giữ nhiệt độ âm sâu 1.3 Kiểm tra độ khiết tính chất mọc vi khuẩn giữ giống Sau chia canh trùng vào Effendorf Dùng que cấy chọc vào phần canh trùng thừa lọ BHI, ria lại thạch máu, cất tủ ấm 370C/24h Sau 24 h, kiểm tra Lu đĩa thạch vi khuẩn mọc trình giữ giống thạch lỏng đảm bảo đạt yêu cầu ấn Quy trình đơng khơ giớng vi khuẩn án III Chuẩn bị giống vi khuẩn Môi trường: n tiế IV Chuẩn bị dụng cụ môi trường để đông khô - Thạch máu bê cừu sĩ - Skim milk (2 gram/100ml nước cất) Dụng cụ: ng h - Pipet Pasteur àn - Ống đơng khơ (có nút bơng) vơ trùng N KI - Serotype có nút vặn - Tăm bơng vơ trùng H - Đèn khị TẾ - Máy hút chân không - Máy kiểm tra chân không V Cách tiến hành: 10 Cấy chủng vi khuẩn cần đông khô lên môi trường thạch máu, với điều kiện khuẩn lạc phải 11 Pha Skim milk nước cất chia nhỏ vào serotype có nút vặn (1ml/serotype), hấp vơ trùng 1210C/15 phút 123 12 Dùng tăm vô trùng thu hoạch hết khuẩn lạc có đĩa thạch máu, sau gạt tăm vào serotype Skim milk (mỗi chủng vi khuẩn sử dụng serotype Skim milk) 13 Dùng pipet Pasteur hút Skim milk vào ống đông khô, tùy mục đích sử dụng mà dùng hay nhiều serotype đông khô Chú ý dùng pipet Pasteur hút lên hút xuống Skim milk phần đáy ống thấm Skim milk 14 Dùng kéo cắt phần thừa nút ống đông khô Đồng thời dùng que nhọn đẩy nút bơng xuống phía dưới, gần chạm vào phần đáy ống đông khô 15 Bật đèn khò Cho lửa đèn khò vào vị trí ống đơng khơ, xoay Lu trịn, nhiệt độ nóng chảy thích hợp, dùng hai tay kéo bên ống đông khô ấn 16 Giữ ống đông khô ngăn đá tủ lạnh 12 án 17 Cắm ống đông khô vào máy hút chân không, bật máy hút vòng 12 tiế 18 Sau 12 giờ, thu hoạch ống đông khô VI Kiểm tra ống đông khô n Dùng máy kiểm tra chân không, thấy ống đơng khơ có màu sáng xanh chứng tỏ sĩ khơng có khơng khí ống Ngược lại, ống đơng khơ có khơng khí bên trong, ng ống đơng khô không đảm bảo chất lượng àn VII Bảo quản: h Ống đông khô bảo quản nhiệt độ thường, tránh để lẫn với vật nặng hay N KI sắc nhọn H TẾ 124 G PHƯƠNG PHÁP TĂNG CƯỜNG GIỐNG VI KHUẨN STREPTOCOCCUS SUIS CHO KHÁNG NGUYÊN TÍNH CAO VÀ ỔN ĐỊNH Tăng cường qua động vật thí nghiệm: - Chuột bạch: trọng lượng 20gram/con - Nước thịt BHI (Brain Heart Infusion) bổ sung 2% huyết ngựa - Vi khuẩn S suis cấy đĩa thạch máu bê - Vét khuẩn lạc vi khuẩn S suis vào 10ml BHI bổ sung 2% huyết ngựa - Để tủ ấm 370C/24 - Tiêm phúc xoang chuột với liều tiêm 0,5ml/con, chủng vi khuẩn tiêm 02 ấn Lu chuột - Theo dõi chuột án - Nếu chuột chết, mổ khám kiểm tra bệnh tích, lấy bệnh phẩm máu tim, ria cấy lại thạch máu nước thịt BHI Để tủ ấm 370C/24 Kiểm tra hình thái khuẩn lạc, tiế làm phản ứng sinh hóa test để khẳng định lại vi khuẩn S suis n - Giữ giống vi khuẩn S suis từ máu tim chuột sĩ Tăng cường giống vi khuẩn S suis động vật ng - Lợn có trọng lượng 10-12kg/con àn - Cấy giống S suis giữ từ thạch lỏng thạch máu đĩa, để tủ ấm 370C/24 h Sau 24h, cấy chuyển sang thạch máu đĩa lần 2, chủng vi khuẩn cấy lên đĩa thạch N KI máu - Chuẩn bị 200ml nước BHI bổ sung 2% huyết ngựa H - Vét toàn khuẩn lạc vi khuẩn S suis cấy đĩa thạch máu vào 200ml TẾ nước BHI - Để tủ ấm 370C/24 - Sau 24h, đếm số lượng vi khuẩn S suis có 1ml canh trùng nuôi cấy - Tiêm 30ml canh trùng/01 lợn với đường tiêm tĩnh mạch cổ - Theo dõi triệu chứng bệnh lợn sau tiêm canh trùng - Lợn chết, mổ khám kiểm tra bệnh tích, lấy bệnh phẩm gồm: não, dịch khớp, máu tim phổi - Ria cấy lại thạch máu nước THB - Phân lập lại vi khuẩn S suis từ bệnh phẩm lợn chết - Giữ giống S suis 125