Đánh giá ảnh hưởng của thức ăn được phối trộn sinh khối tảo lên màu sắc của tép neocaridina davidi

Bộ GIÁO DỤC VÀ ĐÀO TẠO TRƯỜNG ĐẠI HỌC NGUYÊN TẤT THÀNH VIỆN KỸ THUẬT CÔNG NGHỆ CAO NTT NGÀNH CƠNG NGHỆ SINH HỌC NGUYEN TA I THANH KHĨA LUẬN TỐT NGHIỆP ĐỀ TÀI: ĐÁNH GIÁ ẢNH HƯỞNG CỦA THỨC ĂN ĐƯỢC PHÔI TRỘN SINH KHỐI TẢO LÊN MÀU SẮC CỦA TÉP NEOCARIDINA DA VIDI GVHD : ThS ÔNG BỈNH NGUYÊN SVTH : LÊ vũ QUÓC HUNG MSSV : 1800006206 LỚP : 18DSH1A TP HCM, ngày 18 tháng 04 năm 2022 Bộ GIÁO DỤC VÀ ĐÀO TẠO TRƯỜNG ĐẠI HỌC NGUYỄN TẤT THÀNH VIỆN KỸ THUẬT CÔNG NGHỆ CAO NTT NGÀNH CƠNG NGHỆ SINH HỌC NGUYEN TAT THANH KHĨA LUẬN TỐT NGHIỆP ĐỀ TÀI: ĐÁNH GIÁ ẢNH HƯỞNG CỦA THỨC ĂN ĐƯỢC PHÓI TRỘN SINH KHỐI TẢO LÊN MÀU SẮC CỦA TÉP NEOCARIDINA DA VIDI GVHD : ThS ÔNG BỈNH NGUYÊN SVTH : LÊ vũ QUÓC HUNG MSSV : 1800006206 LỚP : 18DSH1A TP HCM, ngày 18 tháng 04 năm 2022 LỜI CẢM ƠN Với tất lòng biết ơn, trước hết em xin gửi lời cảm ơn sâu sắc tới (thầy) ThS Ơng Bỉnh Ngun đà tận tình giúp đỡ em q trình hồn thành khóa luận tốt nghiệp Em xin gửi lời cảm ơn thầy giáo tận tình truyền đạt kiến thức quan trọng bố ích khơng tảng cho q trình thực khóa luận mà cịn hành trang cho chặng đường phía trước Ngồi ra, em xin cảm ơn Ban lãnh đạo Trường Đại học Nguyễn Tất Thành phòng ban trường tạo điều kiện, sở vật chất đe em có hội mơi trường học tập, rèn luyện Do kiến thức khả lý luận nhiều hạn chế nên khóa luận vần cịn thiếu sót định Em mong nhận đóng góp thầy giáo, giáo để khóa luận tốt nghiệp em hoàn thiện Cuối cùng, em xin kính chúc thầy giáo ban lãnh đạo phòng ban chức Trường Đại học Nguyền Tất Thành dồi sức khỏe thành công nghiệp Em xin chân thành cảm ơn! Sinh viên (kỷ ghi rõ họ tên) Lê Vũ Quốc Hưng NHẬN XÉT CỦA GIẢNG VIÊN HƯỚNG DẪN 1/ Trình độ lý luận: Sinh viên tích cực tìm hiểu, thu thập kiến thức từ nghiên cứu khoa học công bố liên quan đến đề tài Lý luận chặt chẽ có tính logic cao 2/ Kỹ nghề nghiệp: Kỳ chuyên nghiệp thái độ làm việc nghiêm túc 3/ Nội dung báo cáo: số liệu phân tích phù hợp đáng tin cậy 4/ Hình thức báo cáo: Hình thức báo cáo đẹp gọn gàng Điểm: 9,5 TP HCM, ngày 18 thảng 04 năm 2022 (Ký ghi rõ họ tên) Ông Bỉnh Nguyên 11 NHẬN XÉT CỦA GIẢNG VIÊN PHẢN BIỆN 1/ Trình độ lý luận: 2/ Kỳ nghề nghiệp: 3/ Nội dung báo cáo: 4/ Hình thức báo cáo: Điêm: TP HCM, ngày 18 thảng 04 năm 2022 (Ký ghi rõ họ tên) iii MỤC LỤC LỜI CẢM ƠN ỉ NHẶN XÉT CỦA GIẢNG VIÊN HƯỚNG DẢN .ii NHẶN XÉT CỦA GIẢNG VIÊN PHẢN BIỆN iii MỤC LỤC iv DANH MỤC CÁC BẢNG BIÉU vi DANH MỤC CÁC HÌNH ẢNH, so ĐỊ, BIÉU ĐỊ vi KÝ HIỆU CÁC CỤM TỪ VIÉT TẢT viii LỊÌ MỎ ĐẦU ix CHƯƠNG TỐNG QUAN TÀI LIỆU 1.1 Tổng quan Red Cherry Shrimp 1.1.1 Giới thiệu chung 1.1.2 Phân bố 1.1.3 Vòng đời tập tính tép R.C 1.1.4 Yeu tố ảnh hưởng lên màu sắc tép 1.2 Vai trò cúa tảo chăn nuôi thủy hải sản 1.2.1 Chlorella vulgaris 10 1.2.2 Nannochỉoropsỉs oculata 11 1.2.3 Haematococcus plưvialis 12 1.2.4 Spirulina 14 CHƯƠNG NỘI DUNG VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN cứu 16 2.1 Noi thực 16 2.2 Nội dung nghiên cứu 16 IV CHƯƠNG KÉT QUẢ VÀ THẢO LUẬN 20 3.1 Ket nghiên cứu phối trộn thức ăn có chứa sinh khối vi tảo 20 3.2 Kết nghiên cứu ảnh hưởng thức ăn bổ sung bột tảo lên màu sac tép RC 23 KÉT LUẬN VÀ ĐÈ NGHỊ 30 PHỤ LỤC 31 TÀI LIỆU THAM KHẢO 49 V DANH MỤC CÁC BẢNG BIỂU Bảng 1.1 Một số đặc điểm Red Cherry Shrimp Bảng 2.1 Thành phần dinh dưỡng thức ăn dùng thí nghiệm 17 Bảng 2.2 Thành phần dinh dưỡng thức công nghiệp chuyên dụng 17 Bảng 3.1 Thành phần phối trộn thức ăn dùng thí nghiệm 20 VI DANH MỤC CÁC HÌNH ẢNH, sơ ĐỊ, BIẾU ĐỊ Hình 1.1 Red Cherry Shrimp (RCS) Hình 3.1 Nghiệm thức 1: Thức ăn có bo sung bột vi tảo Spiruỉina sp 21 Hình 3.2 Nghiệm thức 2: Thức ăn có bo sung bột vi tảo Chlorella vulgaris .21 Hình 3.3 Nghiệm thức 3: Thức ăn có bo sung vi tảo N oculata 21 Hình 3.4 Nghiệm thức 4: Đối chứng (+): Thức ăn công nghiệp chuyên dụng tạo màu cho tép RC (Thủy Mộc Shrimp Feed) 22 Hình 3.5 Nghiệm thức 5: Thức ăn bo sung vi tảo Haematococcus pluvialis 22 Hình 3.6 Nghiệm thức 6: Đối chứng (-): Thức ăn phối trộn không bổ sung vi tảo 22 Hình 3.7 Biểu đồ thức ăn bổ sung bột vi tảo ảnh huởng màu sắc tép RC theo thời gian 24 Hình 3.8 Kết cùa NT 1: thức ăn có bổ sung bột vi tảo spỉrulỉna sp 27 Hình 3.9 Kết NT2: thức ăn có bổ sung bột vi tảo Chỉorella vulgaris 27 Hình 3.10 Kết NT3: thức ăn có bồ sung bột vi tảo Nannochloropsis oculata 28 Hình 3.11 Ket NT4: Đối chứng (+): Thức ăn công nghiệp chuyên dụng tạo màu cho tép RC (Thủy Mộc Shrimp Feed) 28 Hình 3.12 Kết cùa NT5: thức ăn có bổ sung bột vi tảo Haematococcus pluvialis 28 Hình 3.13 Kết NT6: Đối chứng (-): Thức ăn phối trộn không bổ sung bột vi tảo 29 vii KÝ HIỆU CÁC CỤM TỪ VIÉT TÁT TỪ VIÉT TẮT GIẢI THÍCH RCS Tép Anh Đào (Red Cherry Shrimp) Tép RC Tép Red Cherry N davidi Neocaridina davỉdi pH Chỉ số xác định tính base hay acid °C Đơn vị đo nhiệt độ (Celsius) gH Đơn vị đo độ cứng nước kH Đơn vị đo độ kiềm nước Tổng số chất rắn hồ tan ton the tích nước định TDS Ppm IUCN (Total Dissolved Solids) Đơn vị đo mật độ thể tích (Parts Per Million) Liên minh Bảo tồn Thiên nhiên Quốc tế (International Union for Conservation of Nature) N oculatci Nannochỉoropsis ocidata H pluvialis Haematococcus pluvỉalis NT Nghiệm thức Tacn Thức ăn công nghiệp viii PHỤ LỤC 3: MÚC Độ HẮP THU Ở BƯỚC SÓNG 473 NM Thòi gian Spi Cho Nan Hae Neg Pos 4 6 8 1,2940 1,2910 1,2929 1,2971 1,2950 1,2967 1,3401 1,3391 1,3393 1,4411 1,4390 1,4388 1,7589 1,7561 1,7574 1,7889 1,7870 1,7880 1,2230 1,2211 1,2218 1,2570 1,2551 1,2562 1,2910 1,2887 1,2894 1,2320 1,2237 1,2272 1,2570 1,2560 1,2566 1,2891 1,2910 1,2894 1,1429 1,1420 1,1424 1,1330 1,1296 1,1307 1,1120 1,1089 1,1107 1,2050 1,2098 1,2073 1,4201 1,4189 1,4193 1,8430 1,8470 1,8441 PHỤ LỤC 4: HÀM LƯỢNG CAROTENOID Ở TÉP Thòi gian Spi Cho 4 6 8 0,6775 0,6759 0,6769 0,6791 0,6780 0,6789 0,7016 0,7011 0,7012 0,7545 0,7534 0,7533 0,9209 0,9194 0,9201 0,9366 0,9356 0,9361 Nan Hae 0,6403 0,6450 0,6393 0,6407 0,6397 0,6425 0,6581 0,6581 0,6571 0,6576 0,6577 0,6579 0,6759 0,6749 0,6747 0,6759 0,6751 0,6751 Neg Pos 0,5984 0,5979 0,5981 0,5932 0,5914 0,5920 0,5822 0,5806 0,5815 0,6309 0,6334 0,6321 0,7435 0,7429 0,7431 0,9649 0,9670 0,9655 38 PHỤ LỤC 5: KẾT QUẢ xử LÝ THỐNG KÊ Univariate Analysis of Variance Levene's Test of Equality of Error Variances3 Dependent Variable: Caro F df2 dfl 4,605 17 Sig 36 ,000 Tests the null hypothesis that the error variance of the dependent variable is equal across groups, a a Design: Intercept + Spe + Time + Spe * Time Tests of Between-Subjects Effects Dependent Variable: Caro Source Type III Sum Mean df of Squares Corrected F Sig Square ,695a 17 ,041 27,015 27,015 spe ,456 ,091 38211,394 ,000 Time ,087 ,043 18160,503 ,000 spe * Time ,153 10 ,015 6394,328 ,000 Model Intercept 17136,544 11325223,12 ,000 ,000 39 Error 8,587E-005 36 Total 27,710 54 ,695 53 Corrected Total 2,385E-006 a R Squared = 1,000 (Adjusted R Squared = 1,000) 40 Post Hoc Tests Multiple Comparisons Dependent Variable: Caro (I)Spe (J) Spe Mean Std Difference (I- Error Sig J) Cho 95% Confidence Interval Lower Upper Bound Bound Hae ,2103* ,00073 ,000 ,2088 ,2117 Nan ,2124* ,00073 ,000 ,2110 ,2139 Neg ,2794* ,00073 ,000 ,2779 ,2809 Pos ,0896* ,00073 ,000 ,0881 ,0911 Spi ,1844* ,00073 ,000 ,1829 ,1859 Cho -,2103* ,00073 ,000 -,2117 -,2088 Nan ,0022* ,00073 ,005 ,0007 ,0037 Neg ,0691* ,00073 ,000 ,0677 ,0706 Pos -,1206* ,00073 ,000 -,1221 -,1192 spi -,0258* ,00073 ,000 -,0273 -,0244 Cho -,2124* ,00073 ,000 -,2139 -,2110 Hae -,0022* ,00073 ,005 -,0037 -,0007 Neg ,0670* ,00073 ,000 ,0655 ,0684 Pos -,1228* ,00073 ,000 -,1243 -,1213 LSD Hae Nan 41 Neg Pos Spi spi -,0280* ,00073 ,000 -,0295 -,0266 Cho -,2794* ,00073 ,000 -,2809 -,2779 Hae -,0691* ,00073 ,000 -,0706 -,0677 Nan -,0670* ,00073 ,000 -,0684 -,0655 Pos -,1898* ,00073 ,000 -,1913 -,1883 Spi -,0950* ,00073 ,000 -,0965 -,0935 Cho -,0896* ,00073 ,000 -,0911 -,0881 Hae ,1206* ,00073 ,000 ,1192 ,1221 Nan ,1228* ,00073 ,000 ,1213 ,1243 Neg ,1898* ,00073 ,000 ,1883 ,1913 Spi ,0948* ,00073 ,000 ,0933 ,0963 Cho -,1844* ,00073 ,000 -,1859 -,1829 Hae ,0258* ,00073 ,000 ,0244 ,0273 Nan ,0280* ,00073 ,000 ,0266 ,0295 Neg ,0950* ,00073 ,000 ,0935 ,0965 Pos -,0948* ,00073 ,000 -,0963 -,0933 Based on observed means The error term is Mean Square(Error) = 2,385E-006 * The mean difference is significant at the ,05 level 42 Homogeneous Subsets Carotenoid Spe Subset N Neg Nan Hae Spi Pos Cho Neg Nan Hae Duncana'b Spi Pos Cho ,5906 ,6575 ,6597 Tukey Bab Sig ,6856 ,7804 ,8700 ,5906 ,6575 ,6597 ,6856 ,7804 ,8700 1,000 1,000 1,000 1,000 1,000 1,000 Means for groups in homogeneous subsets are displayed Based on observed means The error term is Mean Square(Error) = 2,385E-006 a Uses Harmonic Mean Sample Size = 9,000 43 b Alpha = ,05 Thời gian Multiple Comparisons Dependent Variable: Carotenoid (I) Time (J) Time Mean Std Difference (I- Error Sig J) 95% Confidence Interval Lower Upper Bound Bound -,0505* ,00051 ,000 -,0516 -,0495 -,0981* ,00051 ,000 -,0991 -,0971 ,0505* ,00051 ,000 ,0495 ,0516 -,0476* ,00051 ,000 -,0486 -,0465 ,0981* ,00051 ,000 ,0971 ,0991 ,0476* ,00051 ,000 ,0465 ,0486 LSD Based on observed means The error term is Mean Square(Error) = 2,385E-006 * The mean difference is significant at the ,05 level 44 Homogeneous Subsets Carotenoid Time Subset N 18 Tukey Bab 18 18 18 18 18 ,6578 ,7083 ,7559 ,6578 ,7083 Duncana'b Sig ,7559 1,000 1,000 1,000 Means for groups in homogeneous subsets are displayed Based on observed means The error term is Mean Square(Error) = 2,385E-006 a Uses Harmonic Mean Sample Size = 18,000 b Alpha = ,05 45 Spe Time PHỤ LỤC 5: HÌNH ẢNH VỎ TÉP QUAN SÁT DƯỚI KÍNH H1ÉN VI VỚI Độ PHĨNG ĐẠI 100X 46 47 48 TÀI LIỆU THAM KHẢO Tiếng Anh Mohamed F Abdelghany, Hanan B El-Sawy, Samah A A Abd El-Hameed, Mohamed K Khames, Hany M R Abdel-Latif, Mohammed A E Naiel (2020), Effects of dietary Nannochloropsis oculata on growth performance, serum biochemical parameters, immune responses, and resistance against Aeromonas veronii challenge in Nile tilapia (Oreochromis niloticus), Fish & Shellfish Immunology, 107: 277-288 Muhammad Talba Ahmad, Mohamed Shariff, Fatimah Md Yusoff, Yong Meng Goh, Sanjoy Banerjee (2020), Applications of microalga Chlorella vulgaris in aquaculture, Reviews in Aquaculture, 12(1): 328-346 E c Amar, V Kiron, s Satoh, T Watanabe (2001), Influence of various dietary synthetic carotenoids on bio-defence mechanisms in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum), Aquaculture research, 32: 162-173 Aquacop G Cuzon (1989), Selected ingredients for shrimp feeds, Aquacop/Ifremer, Tahiti R E Armenta, I Guerrero Legarreta, s Huerta (2002), Extraction de caroproteinas a partir de residues de camarón fermentados, Revista mexicana de ingenieria quimica, 1(1-2): 49-55 Tartiel M Badwy, E M Ibrahim, M M Zeinhom (2008), Partial replacement of fishmeal with dried microalga (Chlorella spp and Scenedesnuis spp.) in Nile tilapia (Oreochromis niloticus) diets, 8th International Symposium on Tilapia in Aquaculture, 801-811 Myrna N Bautista-Teruel, Armando c Fermin, Shunsuke s Koshio (2003), Diet development and evaluation for juvenile abalone, Haliotis asinina: animal and plant protein sources, Aquaculture, 219(1-4): 645-653 Hsin Liang Chen, Si Shen Li, Rang Huang, Huai-Jen Tsai (2008), Conditional production of a functional fish growth hormone in the transgenic line of nannochloropsis oculata (Eustigmatophyceae) 1, Journal of phycology, 44(3): 768776 G Ingle de la Mora, J L Arredondo-Figueroa, J T Ponce-Palafox, J E VernonCarter (2006), Comparison of red chilli (Capsicum annuum) oleoresin and astaxanthin on rainbow trout (Oncorhyncus mykiss) fillet pigmentation, Aquaculture, 258(1-4): 487-495 10 A Dominguez, M Ferreira, p Coutinho, J Fabregas, A Otero (2005), Delivery of astaxanthin from Haematocuccus pluvialis to the aquaculture food chain, Aquaculture, 250(1-2): 424-430 11 A A El-Dahhar, M E Salama, Y T Moustafa, E M Elmorshedy (2014), Effect of Using Algae (Nannochloropsis Oculata) in Grey Mullet (Liza Ramada) 49 Larval Diets on Growth Performance and Feed Utilization, Journal of the Arabian Aquaculture Society, 374(3354): 1-14 12 Oluyemi K Gbadamosi Ingrid Lupatsch (2018), Effects of dietary Nannochloropsis salina on the nutritional performance and fatty acid profile of Nile tilapia, Oreochromis niloticus, Algal research, 33: 48-54 13 Reinhold Hanel, D Broekmann, s De Graaf, Dietrich Schnack (2007), Partial replacement offishmeal by lyophylized powder of the microalgae Spirulina platensis in Pacific white shrimp diets, The Open Marine Biology Journal, 1: 1-5 14 Nakagawa Heisuke Gabriel Gomez-Diaz (1995), Usefulness ofSpirulina sp meal as feed additive for giant freshwater prawn, Macrobrachium rosenbergii, Aquaculture Science, 43(4): 521-526 15 Barbarito J Jaime-Ceballos, Alfredo Hernandez-Llamas, Tsai Garcia-Galano, Humberto Villarreal (2006), Substitution of Chaetoceros muelleri by Spirulina platensis meal in diets for Litopenaeus schmitti larvae, Aquaculture, 260(1-4): 215220 16 Eon-Seon Jin, Choul-Gyun Lee, Jurgen EW Polle (2006), Secondary carotenoid accumulation in Haematococcus (Chlorophyceae): biosynthesis, regulation, and biotechnology, Journal of microbiology and biotechnology, 16(6): 821-831 17 Mona Khani, Mehdi Soltani, Mehdi s Mehrjan, Farhad Foroudi, Mansoureh Ghaeni (2017), The effect of Chlorella vulgaris (Chlorophyta, Volvocales) microalga on some hematological and immune system parameters of Koi carp (Cyprinus carpio), Iranian Journal of Ichthyology, 4(1): 62-68 18 Yi-Oh Kim, Jae-Yoon Jo, Sung-Yong Oh (2008), Effects of dietary Spirulina, Chlorella, and Astaxanthin on the body color of Red-and White-colored carp, Cyprinus carpio, Korean Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 41(3): 193-200 19 He-Xiang Li, Xin-Jiang Lu, Chang-Hong Li, Jiong Chen (2014), Molecular characterization and functional analysis of two distinct liver-expressed antimicrobial peptide (LEAP-2) genes in large yellow croaker (Larimichthys crocea), Fish & shellfish immunology, 38(2): 330-339 20 Yanqun Li, Mark Horsman, Nan Wu, Christopher Ọ Lan, Nathalie DuboisCalero (2008), Biofuels from microalgae, Biotechnology progress, 24(4): 815-820 21 Jin Liu, Zheng Sun, Henri Gerken, Zheng Liu, Yue Jiang, Feng Chen (2014), Chlorella zofingiensis as an alternative microalgal producer of astaxanthin: biology and industrial potential, Marine drugs, 12(6): 3487-3515 22.1 Lupatsch c Blake (2013), Algae Alternative: Chlorella studied as protein source in tilapia feeds, Global Aquaculture Advocate, 16: 78-79 23 Aleksandre Maisashvili, Henry Bryant, James Richardson, David Anderson, Tryon Wickersham, Merritt Drewery (2015), The values of whole algae and lipid extracted algae mealfor aquaculture, Algal Research, 9: 133-142 24 Anisuzzaman Md, Feng Jin, U-Cheol Jeong, Jong-Kuk Choi, Da-In Lee, Hak Sun Yu, Seok-Joong Kang (2018), Effects of Nannochloropsis concentration in diet 50 on growth, survival and anti-inflammatory cytokine (Interleukin-10) production of the sea cucumber Apostichopus japonicus, Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 18(4): 567-575 25 Samuel p Meyers David Bligh (1981), Characterization of astaxanthin pigments from heat-processed crawfish waste, Journal of Agricultural and Food Chemistry, 29(3): 505-508 26 Nazia Mojib, Maan Amad, Manjula Thimma, Naroa Aldanondo, Mande Kumaran, Xabier Irigoien (2014), Carotenoid metabolic profiling and transcriptome-genome mining reveal functional equivalence among blue-pigmented copepods and appendicularia, Molecular ecology, 23(11): 2740-2756 27 Masanori Okauchi (2004), An assesment of the beneficial roles of Nannochloropsis oculata in larval rearing of marine finfish, BULLETIN­ FISHERIES RESEARCH AGENCY JAPAN: 83-90.' 28 M A Olvera-Novoa, L J Dominguez-Cen, L Olivera-Castillo, Carlos A Martinez-Palacios (1998), Effect of the use of the microalga Spirulina maxima as fish meal replacement in diets for tilapia, Oreochromis mossambicus (Peters), fry, Aquaculture research, 29(10): 709-715 29 Joao A F Pantaleao, Rafael A Gregati, Rogerio c da Costa, Laura s LopezGreco, Maria L Negreiros-Fransozo (2017), Post-hatching development of the ornamental ‘Red Cherry Shrimp'Neocaridina davidi (Bouvier, 1904)(Crustacea, Caridea, Atyidae) under laboratorial conditions, Aquaculture Research, 48(2): 553569 30 J Parisenti, L H Beirào, M Maraschin, J L Mourino, F Do Nascimento Vieira, L H Bedin, E Rodrigues (2011), Pigmentation and carotenoid content of shrimp fed with Haematococcus pluvialis and soy lecithin, Aquaculture Nutrition, 17(2): e530-e535 31 Jesus T Ponce-Palafox, José L Arredondo-Figueroa, Enrique J Vernon-Carter (2006), Carotenoids from plants used in diets for the culture of the pacific white shrimp (Litopenaeus vannamei), Revista Mexicana de Ingenieria Quimica, 5(2): 157-165 32 Janice Alano Ragaza, Md Sakhawat Hossain, Kristen A Meiler, Stephanie F Velasquez, Vikas Kumar (2020), A review on Spirulina: alternative media for cultivation and nutritive value as an aquafeed, Reviews in Aquaculture, 12(4): 2371-2395 33.1 Ronnestad, s Helland, Lie (1998), Feeding Artemia to larvae ofAtlantic halibut (Hippoglossus hippoglossus L.) results in lower larval vitamin A content compared with feeding copepods, Aquaculture, 165(1-2): 159-164 34 Najmeh Sheikhzadeh, Isaac Koochaki Panchah, Reza Asadpour, Hossein Tayefi-Nasrabadi, Hadi Mahmoudi (2012), Effects of Haematococcus pluvialis in maternal diet on reproductive performance and egg quality in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss), Animal reproduction science, 130(1-2): 119-123 51 35 Kenneth L Simpson (1988), Metabolism of astaxanthin in the rainbow trout (Salmo gairdneri), Comparative Biochemistry and Physiology Part B: Comparative Biochemistry, 91(3): 563-568 36 Ivaylo Sirakov, Katya Velichkova, Stefka Stoyanova, Yordan Staykov (2015), The importance of microalgae for aquaculture industry Review, International Journal of Fisheries and Aquatic Studies, 2(4): 81-84 37 Carrie Suen Jennifer Lynn Gillett-Kaufman (2021), Cherry Shrimp Neocaridina davidi (Bouvier 1904)(Crustacea: Decopoda: Atyidae), EDIS, 2021(2) 38 s Tolasa, s Cakli, u Ostermeyer (2005), Determination of astaxanthin and canthaxanthin in salmonid, European Food Research and Technology, 221(6): 787791 39 Luisa Maria Pinheiro Valente, Marco Custódio, Sónia Batista, Helena Fernandes, Viswanath Kiron (2019), Defatted microalgae (Nannochloropsis sp.) from biorefinery as a potential feed protein source to replace fishmeal in European sea bass diets, Fish physiology and biochemistry, 45(3): 1067-1081 40 Ryan J Weaver, Bryson K Gonzalez, Scott R Santos, Justin c Havird (2020), Red coloration in an anchialine shrimp: carotenoids, genetic variation, and candidate genes, The Biological Bulletin, 238(2): 119-130 41 Sebastian Weber Walter Traunspurger (2016), Influence of the ornamental red cherry shrimp Neocaridina davidi (Bouvier, 1904) on freshwater meiofaunal assemblages, Limnologica, 59: 155-161 42 Shiwei Xie, Weiping Fang, Dan Wei, Yongjian Liu, Peng Yin, Jin Niu, Lixia Tian (2018), Dietary supplementation of Haematococcus pluvialis improved the immune capacity and low salinity tolerance ability ofpost-larval white shrimp, Litopenaeus vannamei, Fish & shellfish immunology, 80: 452-457 43 Qihuan Zhang, Ming Qiu, Wei Xu, Zhen Gao, Rong Shao, Zhitao Qi (2014), Effects of dietary administration of Chlorella on the immune status of gibel carp, Carassius auratus gibelio, Italian Journal of Animal Science, 13(3): 3168 52