(Luận án tiến sĩ) nghiên cứu một số đặc điểm sinh học và ảnh hưởng của kích dục tố đến khả năng sinh sản của cầy vòi hương (paradoxurus hermaphroditus pallas, 1777) trong điều kiện nuôi nhốt

BỘ GIÁO DỤC VÀ ĐÀO TẠO VIỆN HÀN LÂM KHOA HỌC VÀ CÔNG NGHỆ VIỆT NAM HỌC VIỆN KHOA HỌC VÀ CÔNG NGHỆ - Nguyễn Thị Thu Hiền NGHIÊN CỨU MỘT SỐ ĐẶC ĐIỂM SINH HỌC VÀ ẢNH HƯỞNG CỦA KÍCH DỤC TỐ ĐẾN KHẢ NĂNG SINH SẢN CỦA CẦY VÒI HƯƠNG (Paradoxurus hermaphroditus Pallas, 1777) TRONG ĐIỀU KIỆN NUÔI NHỐT LUẬN ÁN TIẾN SĨ SINH HỌC Thành phố Hồ Chí Minh – 2019 luan an BỘ GIÁO DỤC VÀ ĐÀO TẠO VIỆN HÀN LÂM KHOA HỌC VÀ CÔNG NGHỆ VIỆT NAM HỌC VIỆN KHOA HỌC VÀ CÔNG NGHỆ - Nguyễn Thị Thu Hiền NGHIÊN CỨU MỘT SỐ ĐẶC ĐIỂM SINH HỌC VÀ ẢNH HƯỞNG CỦA KÍCH DỤC TỐ ĐẾN KHẢ NĂNG SINH SẢN CỦA CẦY VÒI HƯƠNG (Paradoxurus hermaphroditus Pallas, 1777) TRONG ĐIỀU KIỆN NI NHỐT Chun ngành: Cơng nghệ sinh học Mã số: 42 02 01 NGƯỜI HƯỚNG DẪN KHOA HỌC: PGS TS Nguyễn Thanh Bình PGS TS Nguyễn Thị Phương Thảo Thành phố Hồ Chí Minh – 2019 luan an i LỜI CAM ĐOAN Tôi xin cam đoan: Luận án cơng trình nghiên cứu hướng dẫn khoa học PGS TS Nguyễn Thanh Bình PGS TS Nguyễn Thị Phương Thảo Các số liệu, kết luận án trung thực chưa công bố cơng trình khác Những trích dẫn tài liệu tham khảo luận án có nguồn gốc xác thực Thành phố Hồ Chí Minh, ngày tháng 09 năm 2019 Tác giả luận án Nguyễn Thị Thu Hiền luan an ii LỜI CẢM ƠN Luận án hoàn thành Viện Sinh học Nhiệt đới, Học viện Khoa học Công nghệ - Viện Hàn lâm Khoa học Cơng nghệ Việt Nam Trong q trình nghiên cứu, tác giả nhận nhiều giúp đỡ quý báu Thầy Cô, nhà khoa học, đồng nghiệp, bạn bè gia đình Tơi xin bày tỏ lời cảm ơn sâu sắc kính trọng tới PGS TS Nguyễn Thanh Bình PGS TS Nguyễn Thị Phương Thảo - người Thầy tận tâm hướng dẫn khoa học, động viên tạo điều kiện thuận lợi cho suốt thời gian thực luận án Tôi xin trân trọng cảm ơn Học viện Khoa học Công nghệ - Viện Hàn lâm Khoa học Công nghệ Việt Nam, Ban lãnh đạo Viện Sinh học Nhiệt đới, tập thể cán Học viện Viện quan tâm, giúp đỡ tạo điều kiện thuận lợi cho tơi suốt q trình học tập nghiên cứu Tôi xin chân thành cảm ơn Trung tâm Ứng dụng công nghệ sinh học Tỉnh Đồng Nai, Trang trại động vật hoang dã Thanh Long, Trung tâm Công nghệ chăn nuôi-Phân viện chăn nuôi Nam Bộ ủng hộ sở, vật chất việc thực luận án; BS thú y Đỗ Đức Thiện giúp đỡ thu thập mẫu trình nghiên cứu Tôi xin chân thành cảm ơn tới Trường Đại học Thủ Dầu Một, Khoa Khoa học Tự nhiên đồng nghiệp ủng hộ, tạo điều kiện thuận lợi cho suốt thời gian làm nghiên cứu sinh Tôi xin chân thành cảm ơn Quỹ phát triển khoa học trường Đại học Thủ Dầu Một tài trợ kinh phí cho hai đề tài nghiên cứu khoa học cấp sở để thực luận án Tơi xin bày tỏ lịng biết ơn sâu sắc tới gia đình, bạn bè người thân ln quan tâm, khích lệ, động viên tơi suốt trình học tập nghiên cứu luan an iii MỤC LỤC LỜI CAM ĐOAN i LỜI CẢM ƠN .ii MỤC LỤC iii DANH MỤC CÁC CHỮ VIẾT TẮT vii DANH MỤC CÁC BẢNG ix DANH MỤC CÁC HÌNH x MỞ ĐẦU 1 Tính cấp thiết luận án Mục tiêu nghiên cứu luận án Nội dung nghiên cứu luận án Ý nghĩa khoa học ý nghĩa thực tiễn luận án Tính luận án CHƯƠNG TỔNG QUAN 1.1 Sơ lược cầy vòi hương 1.1.1 Phân loại 1.1.2 Đặc điểm ngoại hình 1.1.3 Tập tính sinh sản 1.1.4 Phân bố 1.1.5 Tình hình ni cầy vòi hương 1.2 Tình hình nghiên cứu cầy vịi hương 1.2.1 Tình hình nghiên cứu ngồi nước 1.2.1.1 Nghiên cứu tập tính, phân bố trạng loài tự nhiên 1.2.1.2 Nghiên cứu đặc điểm giải phẫu, sinh lý-sinh hóa máu 1.2.1.3 Nghiên cứu tính đa dạng di truyền phát sinh lồi 11 1.2.2 Tình hình nghiên cứu nước 13 1.3 Tổng quan PMSG HCG 15 1.3.1 Cấu trúc, chức PMSG 15 luan an iv 1.3.1.1 Nguồn gốc cấu trúc PMSG (eCG) 15 1.3.1.2 Vai trò eCG ngựa 16 1.3.1.3 Hoạt động sinh học eCG 17 1.3.1.4 Ứng dụng PMSG 17 1.3.2 Cấu trúc, chức HCG 19 1.3.2.1 Nguồn gốc cấu trúc HCG 19 1.3.2.2 Chức HCG 19 1.3.3 Tình hình sử dụng kích dục tố PMSG HCG hỗ trợ sinh sản 20 1.4 Tổng quan estrogen progesterone 25 1.4.1 Cấu trúc chức estrogen 25 1.4.2 Cấu trúc chức progesterone 25 1.4.3 Xác định đường chuyển hoá tiết hormone estrogen progesterone 26 1.4.4 Phương pháp ly trích steroid 27 1.4.5 Xác định động thái sinh sản dựa vào đánh giá steroid phân 28 CHƯƠNG VẬT LIỆU VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU 33 2.1 Địa điểm, thời gian nghiên cứu 33 2.2 Chuồng trại, thức ăn, nước uống 33 2.3 Nội dung phương pháp nghiên cứu 34 2.3.1 Nghiên cứu số đặc điểm sinh học cầy vòi hương điều kiện nuôi nhốt 34 2.3.1.1 Vật liệu 34 2.3.1.2 Chỉ tiêu khảo sát 34 2.3.1.3 Phương pháp xác định khối lượng kích thước chiều đo 35 2.3.1.4 Phương pháp nghiên cứu tốc độ sinh trưởng 35 2.3.1.5 Phương pháp nghiên cứu đặc điểm sinh sản 35 2.3.2 Nghiên cứu số tiêu sinh lí – sinh hóa máu, nước tiểu cầy vịi hương điều kiện ni nhốt 36 2.3.2.1 Vật liệu 36 2.3.2.2 Chỉ tiêu khảo sát 36 luan an v 2.3.2.3 Phương pháp thu mẫu phân tích máu 37 2.3.3 Nghiên cứu thay đổi hàm lượng hormone sinh dục cầy vòi hương điều kiện nuôi nhốt 38 2.3.3.1 Vật liệu 38 2.3.3.2 Chỉ tiêu khảo sát 38 2.3.3.3 Phương pháp thu mẫu chiết xuất phân……………………… 39 2.3.3.4 Phương pháp xét nghiệm hormone 40 2.3.4 Nghiên cứu ảnh hưởng kích thích tố sinh dục (PMSG, hCG) đến khả sinh sản cầy vòi hương 41 2.3.4.1 Vật liệu 41 2.3.4.2 Chỉ tiêu khảo sát 41 2.3.4.3 Loại hormone sinh sản sử dụng ………………………………… 42 2.3.4.4 Các công thức tiêm hormone sinh sản 42 2.3.4.5 Bố trí thí nghiệm 42 2.3.4.6 Quy trình tiêm 42 2.3.4.7 Phương pháp xác định thay đổi hormone 42 2.4 Xử lí số liệu 43 CHƯƠNG KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN 44 3.1 Kết nghiên cứu đặc điểm sinh học 44 3.1.1 Đặc điểm hình thái, dinh dưỡng số tập tính cầy vịi hương điều kiện nuôi nhốt 44 3.1.2 Đặc điểm sinh trưởng cầy vịi hương điều kiện ni nhốt… 46 3.1.2.1 Tăng trưởng khối lượng 46 3.1.2.2 Tăng trưởng chiều dài thân đầu 47 3.1.2.3 Tăng trưởng chiều dài đi……………………………………… 48 3.1.2.4 Tăng trưởng vịng ngực 49 3.1.3 Đặc điểm sinh sản cầy vòi hương điều kiện nuôi nhốt……… 50 3.1.3.1 Tuổi thành thục sinh dục biểu động dục 51 3.1.2.2 Hoạt động giao phối, tỉ lệ mang thai thời gian mang thai 53 luan an vi 3.1.3.3 Số cầy sinh lứa, tỉ lệ sống sót, đặc điểm sơ sinh tuổi cai sữa 55 3.2 Kết nghiên cứu số tiêu sinh lí – sinh hóa máu, nước tiểu cầy vòi hương điều kiện nuôi nhốt 58 3.2.1 Một số tiêu sinh lí máu cầy vịi hương theo giới tính 58 3.2.2 Một số tiêu sinh lí máu cầy vòi hương theo tuổi 60 3.2.3 Các số sinh hóa máu cầy vịi hương 62 3.2.4 Một số tiêu sinh hóa nước tiểu cầy vịi hương theo giới tính 65 3.2.5 Một số tiêu sinh hóa nước tiểu cầy vòi hương theo tuổi 68 3.3 Kết nghiên cứu thay đổi hàm lượng hormone sinh dục cầy vòi hương điều kiện nuôi nhốt 70 3.3.1 Sự thay đổi hàm lượng estradiol progesterone phân cầy vịi hương khơng mang thai 70 3.3.2 Sự thay đổi hàm lượng estradiol progesterone phân cầy vòi hương mang thai 74 3.3.3 Sự thay đổi hàm lượng estradiol progesterone phân cầy vòi hương mang thai giả 77 3.4 Kết nghiên cứu ảnh hưởng kích thích tố sinh dục (PMSG, HCG) đến khả sinh sản cầy vòi hương 79 3.4.1 Sự thay đổi hàm lượng estradiol progesterone sau tiêm kích dục tố 79 3.4.2 Thời gian xuất biểu kéo dài động dục 85 3.4.3 Kết sử dụng công thức hormone lên số tiêu sinh sản 87 KẾT LUẬN VÀ KIẾN NGHỊ 91 Kết luận 91 Kiến nghị 92 DANH MỤC CƠNG TRÌNH CỦA TÁC GIẢ 93 TÀI LIỆU THAM KHẢO 94 luan an vii DANH MỤC CÁC CHỮ VIẾT TẮT Chữ viết tắt Diễn giải tiếng Anh Diễn giải tiếng Việt ASC Ascorbic acid Axit Ascorbic ALT Alanin amino transferase Enzyme chuyển hoá Alanin ALP Alkaline phosphatase Enzym Alkaline phosphatase AST Aspartate transaminase Enzyme chuyển hoá Aspartate BUN Blood urea nitrogen Nitơ u rê máu CP Corpus leteum Hoàng thể CTAB Cetyltrimethyl ammonium bromide Cetyltrimethyl ammonium bromide ECG Equine chorionic Gonadotropin Gonadotropin màng đệm ngựa EDTA Ethylene diamine tetra acetic acid Ethylene diamine tetra acetic acid EIA Enzyme Immune Assay Xét nghiệm miễn dịch enzyme ELISA Enzyme-Linked ImmunoSorbent Assay Xét nghiệm miễn dịch liên kết với enzyme E2 Estradiol Estradiol FSH Follicle Stimulating Hormone Hormone kích thích nang trứng GnRH Gonadotropin-Releasing Hormone Hormone giải phóng Gonadotropin HCT Hematocrit Dung tích hồng cầu HCG Human Chorionic Gonadotropin Gonadotropin màng đệm người luan an viii HGB Hemoglobin Hemoglobin HPLC High Performance Liquid Sắc ký lỏng hiệu cao Chromatography IU International Unit Đơn vị quốc tế LH Luteinizing Hormone Hormone Luteinizing MCV Mean corpuscular volume Thể tích trung bình hồng cầu MCH Mean corpuscular hemoglobin Lượng hemoglobin trung bình hồng cầu MCHC MPV Mean corpuscular hemoglobin Nồng độ hồng cầu trung concentration bình Mean platelet volume Thể tích trung bình tiểu cầu PCR Polymerase Chain Reaction Phản ứng chuỗi polymerase PCT Plateletcrit Dung tích bạch cầu PMSG Pregnant Mare's Serum Gonadotropin Huyết ngựa chửa P4 Progesterone Progesterone PDW Platelet distribution width Độ phân bố tiểu cầu PTL Platelet Tiểu cầu RIA Radio Immuno Assay Xét nghiệm miễn dịch phóng xạ RBC Red blood cells Hồng cầu RDW Red cell distribution width Độ phân bố hồng cầu SG Specific gravity Tỷ trọng nước tiểu WBC White blood cells Bạch cầu luan an 97 habitat connectivity in an anthropogenic environment in West Java, Indonesia, Small Carnivore Conservation, 2014, 51, 85-87 [28] Y Nakashima, E Inoue, M I Murayama and J A Sukor, High Potential of a Disturbance-Tolerant Frugivore, the Common Palm Civet Paradoxurus hermaphroditus (Viverridae), as a Seed Disperser for Large-Seeded Plants, Mammal Study, 2010, 35 (3), 209-215 [29] A H Chua., K P Kelvin, Lim and H S Celine Low, The diversity and status of the civets (Viverridae) of Singapore Marcus, Small Carnivore Conservation, 2012, 47, 1–10 [30] Y Nakashima, M Nakabayashi and J Abd.sukor, Space use, habitat selection, and day-beds of the common palm civet (Paradoxurus hermaphroditus) in human-modified habitats in Sabah, Borneo, Journal of Mammalogy, 2013, 9495) [31] S Guraya, Morphology of the civet cat (Paradoxurus hermaphroditus) ovary during the follicular phase, 1979, 84 (4), 321-336 [32] S Guraya, Histochemical observations on the civet cat (Paradoxurus hermaphroditus) ovary during the period of follicular activity, 1981, 86 (1-2), 71 [33] T Rung-ruangkijkrai, W Klomkleaw and P Prachammuang, Arteries of the heart of a common palm civet (Paradoxurus hermaphroditus), Proceeding of AZWMP, 2006, 27 [34] K G Patil, K S Janbandhu, V A Shende, A V Ramteke and M K Patil, Adaptations in the kidney of Palm Civet, Paradoxurus hermaphroditus, Int J of Life Sciences, 2016, (2), 198-202 [35] M Sasaki, J Yamada, B Teguh, H Endo, J Kimura, T Tsubota, Y Hayashi and N Kitamura, Immunohistochemical localization of the steroidogenic enzyme and steroid receptors in the testis and perineal gland of the common palm civet (Paradoxurus hermaphroditus), The 2nd MORPHOLOGY, 2008, (1), 59 luan an Congress of the AAVA 98 [36] C Salakij, J Salakij, N Narkkong, D Tongthainun, K Prihirunkit and S Itara, Hematology, Cytochemistry and Ultrastructure of Blood Cells in Common Palm Civet (Paradoxurus hermaphroditus), Kasetsart J (Nat Sci.), 2007, 41, 705 – 716 [37] A A Ahmad, P Jayarajah, G W Yee Han, S Jocelyn, W Yin OH and A Rasedee, Hematology and serum biochemistry parameters for rescued common palm civets (Paradoxurus hermaphroditus) in different age groups, The Journal of Veterinary Medical Science, 2017, 79 (6), 1134–1137 [38] L Yu and Y.P Zhang, Phylogenetic studies of pantherine cats (Felidae) based on multiple genes, with novel application of nuclear b-fibrinogen intron to carnivores, Molecular Phylogenetics and Evolution, 2005, 35, 483–495 [39] M L Patoua, R Debruyneb, A P Jenningsa, A Zubaidd, J J Rovie-Ryane and G Verona, Phylogenetic relationships of the Asian palm civets (Hemigalinae & Paradoxurinae, Viverridae, Carnivora, Molecular Phylogenetics and Evolution, 2008, 47, 883–892 [40] M L Patou, A Wilting, P Gaubert, J A Esselstyn, C Cruaud, A P Jennings, J Fickel and G Veron, Evolutionary history of the Paradoxurus palm civets – a new model for Asian biogeography, Journal of Biogeography, 2010, 37, 2077– 2097 [41] G Veron, M Patou, M Toth, M Goonatilake and A P Jennings, How many species of Paradoxurus civets are there? New insights from India and Sri Lanka, J Zoolog Syst Evol Res, 2015, 53, 161—174 [42] AFS D Silva, VPR Minim, JBP Chaves, PC Stringheta and MM Ribeiro, Evaluation of the bitter taste of the drink coffee (Coffea arabica L.) by analyzing organic intensity time, Food Science Technology, 2004, 24, 468–472 [43] Roberton, The Status and Conservation of Small Carnivores in Vietnam, PhD thesis, University of East Anglia School of Biological Sciences Centre for Ecology, 2007 luan an 99 [44] B Murphy, Equine chorionic gonadotropin: an enigmatic but essential tool, Anim Reprod, 2012, (3), 223-230 [45] W.T Jr Moore, D.N Ward, Pregnant mare serum gonadotropin Rapid chromatographic procedures for the purification of intact hormone and isolation of subunits, J Biol Chem, 1980, 255, 6923-6929 [46] G.B Sherman, M.W Wolfe, T.A Farmerie, C.M Clay, D.S Threadgill, D.C Sharp and J.H Nilson, A single gene encodes the beta-subunits of equine luteinizing hormone and chorionic gonadotropin, Mol Endocrinol, 1992, 6, 951959 [47] T Matsui, H Sugino, H Miura, G.R Bousfield, D.N Ward, K Titani and T Mizuochi, Beta-subunits of equine chorionic gonadotropin and lutenizing hormone with an identical amino acid sequence have different asparagine-linked oligosaccharide chains, Biochem Biophys Res Commun, 1991, 174, 940-945 [48] S.D Martinuk, A.W Manning, W.D Black and B.D Murphy, Effects of carbohydrates on the pharmacokinetics and biological activity of equine chorionic gonadotropin in vivo, Biol Reprod, 1991, 45, 598-604 [49] M Saint-Dizier, F Foulon-Gauze, F Lecompte, Y Combarnous and M Chopineau, The additional N-glycosylation site of the equine LH/CG receptor is not responsible for the limited cyclic AMP pathway activation by equine chorionic gonadotropin relative to luteinizing hormone, Reprod Biol, 2011, 11, 157-164 [50] M Saint-Dizier, F Foulon-Gauze, F Lecompte, Y Combarnous and M Chopineau, Cloning and functional expression of the equine luteinizing hormone/chorionic gonadotrophin receptor, J Endocrinol, 2004, 183, 551-559 [51] M Boeta, L Zarco, Endocrine alterations around the time of abortion in mares impregnated with donkey or horse semen, Anim Reprod Sci, 2010, 121, 124-130 [52] R.L Matteri, D.M Baldwin, B.L Lasley and H Papkoff, Biological and immunological properties of zebra pituitary gonadotropins: comparison with horse and donkey gonadotropins, Biol Reprod, 1987, 36, 1134-1141 luan an 100 [53] B.D Murphy, S.D Martinuk, Equine chorionic gonadotropin, Endocr Rev, 1991 12, 27-44 [54] A Bartlett, S.J Pain, P.E Hughes, P Stott and W.H Wettere, The effects of PG600 and boar exposure on oestrus detection and potential litter size following mating at either the induced (pubertal) or second oestrus, Anim Reprod Sci, 2009, 114, 219-227 [55] M.N Sawalha, R.T Kridli, K.I Jawasreh and C.A Meza- Herrera, The use of melatonin and progestagen-eCG to initiate reproductive activity in prepuberal Awassi ewe lambs, Trop Anim Health Prod, 2011, 43, 1345-1350 [56] M.M Bevers, S.J Dieleman, H.T van Tol, D.M Blankenstein and J V D Broek, Changes in pulsatile secretion patterns of LH, FSH, progesterone, androstenedione and oestradiol in cows after superovulation with PMSG, J Reprod Fertil , 1989, 87, 745- 754 [57] D Monniaux, J.C Mariana and W.R Gibson, Action of PMSG on follicular populations in the heifer, J Reprod Fertil, 1984, 70, 243-253 [58] A Gonzalez, H Wang, T.D Carruthers, B.D Murphy and R.J Mapletoft, Superovulation in the cow with pregnant mare serum gonadotrophin: effects of dose and antipregnant mare serum gonadotrophin serum, Can Vet J, 1994, 35, 158-162 [59] M.C Mattos, M.R Bastos, M.M Guardieiro, J.O Carvalho, M.M Franco, G.B Mourao, C.M Barros and R Sartori, Improvement of embryo production by the replacement of the last two doses of porcine follicle- stimulating hormone with equine chorionic gonadotropin in Sindhi donors, Anim Reprod Sci, 2011, 125, 119-123 [60] M.F Sá Filho, J.R Torres-Junior, L Penteado, L.U Gimenes, R.M Ferreira, H Ayres, E PL.A Castro, J.N Sales and P.S Baruselli, Equine chorionic gonadotropin improves the efficacy of a progestin-based fixed-time artificial insemination protocol in Nelore (Bos indicus) heifers, Anim Reprod Sci, 2010, 118, 182-187 luan an 101 [61] G Martemucci, A.G D'Alessandro, Synchronization of oestrus and ovulation by short time combined FGA, PGF(2alpha), GnRH, eCG treatments for natural service or AI fixed-time, Anim Reprod Sci, 2011, 123, 32-39 [62] G.A Bo, L.C Peres, L.E Cutaia, D Pincinato, P.S Baruselli and R.J Mapletoft, Treatments for the synchronisation of bovine recipients for fixed-time embryo transfer and improvement of pregnancy rates, Reprod Fertil Dev, 2011, 24, 272277 [63] C.C Dias, F.S Wechsler, M.L Day and J.L Vasconcelos, Progesterone concentrations, exogenous equine chorionic gonadotropin, and timing of prostaglandin F(2alpha) treatment affect fertility in postpuberal Nelore heifers, Theriogenology, 2009, 72, 378-385 [64] M.F Nogueira, D.S Melo, L.M Carvalho, E.J Fuck, L.A Trinca and C.M Barros, Do high progesterone concentrations decrease pregnancy rates in embryo recipients synchronized with PGF2alpha and eCG?, Theriogenology, 2004, 61, 1283-1290 [65] P.S Baruselli, R.M Ferreira, M.F Sá Filho, L.F.T Nasser, C.A Rodrigues and G.A Bo, Bovine embryo transfer recipient synchronisation and management in tropical environments, Reprod Fertil Dev, 2010, 22, 67-74 [66] R.B Lea ̃ o, S.C Esteves, Gonadotropin therapy in assisted reproduction: an evolutionary perspective from biologics to biotech, Clinics, 2014, 69 (4), 279293 [67] A C Laurence, New discoveries on the biology and detection of human chorionic gonadotropin, Reproductive Biology and Endocrinology, 2009, 7-8 [68] A C Laurence, Biological functions of hCG and hCG-related molecules, Reproductive Biology and Endocrinology, 2010, 8-102 [69] F D Rensis, F López- Gatius, I Garcia-Ispierto and M Techakumpu, Clinical use of human chorionic gonadotropin in dairy cows: an update, Theriogenology, 2010, 73 (8), 1001-1008 luan an 102 [70] E Popova, A Krivokharchenko, D Ganten and M Bader, Comparison between PMSG- and FSH-induced superovulation for the generation of transgenic rats, Mol Reprod Dev, 2002, 63 (2), 177-82 [71] C Luo, J Zuñiga, E Edison, S Palla, W Dong and J P Thornburg, Superovulation Strategies for Commonly Used Mouse Strains, J Am Assoc Lab Anim Sci, 2011, 50 (4), 471–478 [72] Trần Tiến Dũng, Kết ứng dụng hormone sinh sản điều trị tựơng chậm động dục lại sau đẻ lợn nái, Tạp chí KHKT Nơng nghiệp, 2004, (1), 66-72 [73] Nguyễn Đình Giậu, Nguyễn Chi Mai Trần Thị Việt Hồng, Sinh lí người động vật, NXB Đại học quốc gia Thành phố Hồ Chí Minh, 2000, Thành phố Hồ Chí Minh [74] V.M Shille; M.A Haggerty, C Shackleton and B.L Lasley, Metabolites of estradiol in semm, bile, intestine and feces of the domestic cat (Felis catus), Theriogenology, 1990, 34, 779-794 [75] R Palme, P Fischer, H Schildorfer and M.N Ismail, Excretion of infused “14 C-steroid hormones via faeces and urine in domestic Iivestock, Anim Reprod Sci., 1996, 43, 43-63 [76] F Schwarzenberger, E Mostl; R Palme and E Bamberg, Fecal steroid analysis for noninvasive monitoring of reproductive status in farm, wild and zoo animals, Animal reproduction science, 1996, 42 (1-4), 515-526 [77] N.R Adams, LA Abordi, J.R Briegel and M.R Sanders, Effect of diet on the clearance of estradiol-17ß in the ewe, Biol Reprod., 1994, 51, 668-674 [78] R Palme, Measuring Faecal steroids: guidelines for practical application, Ann N.Y Acad Sci., 2005, 1046, 75-80 [79] R Palme, A Holzmann and T Mitterer, Measuring fecal estrogens for the diagnosis of cryptorchidism in horses, Theriogenology, 1994, 42, 1381 - 1387 [80] S.K Wasser, S.L Monfort, J Southers and D.E Wildt, Excretion rates and metabolites of oestradiol and progesterone in baboon (Papio cytwcephalus cynocephalus) faeces, J Reprod Fertil., 1994, 101, 213-220 luan an 103 [81] L.H Graham, J.L Brown, Cortisol metabolism in the domestic cat and implications for develop- ing a non-invasive measure of adrencortical ac- tivity in non-domestic felids, Zoo Biology, 1996, 15, 71-82 [82] S.A Hattab, A.K Kadom, R Palme and E Bamberg, Effect of Crestar on estrus synchronization and the relationship between faecal and plasma concentrations of progesterone in buffalo cows, Theriogenology, 2000, 54, 1007-1017 [83] M C E F a C O A Capezzuto, Correlation between serum and fecal concentrations of reproductive steroids throughout gestation in goats, Anim Reprod, 2008, 103, 78-86 [84] F Schwarzenberger, E Möstl, E Bamberg, Pammer and O Schmehlik, Concentrations of progestagens and oestrogens in the faeces of pregnant Lipizzan, Trotter and Thoroughbmd mares, J Reprod Fert., Suppl., 1991, 44, 489-499 [85] N Isobe, M.Akita, T Nakao, H Yamashiro and H Kubota, Pregnancy diagnosis based on the faecal progesterone concentration in beef and dairy heifers and beef cows, Anim Reprod Sci., 2005, 90, 211-218 [86] F Schwarzenberger, W Rietschel, J Vahala, D Holeckova, P Thomas, J Maltzan, K Baumgartner and W Schaftenaar, Assessment of ovarian cycle by fecal progesterone and estradiol-17 β in exotic cat, Gen C Endoc, 2000, 119(3), 300-307 [87] H.D Putranto, S Kusuda, Y Mori and K.O Inagaki, Assessment of ovarian cycle by fecal progesterone and estradiol-17 β in exotic cat, Proceedings of AZWMP Chulalongkorn Uni Fac of Vet Sc., 2006, 26-29 [88] H D Putranto, A non-invasive identification of hormone metabolites, gonadal event and reproductive status of captive female tigers, Biodiversitas, 2011, 12 (3), 131-135 [89] S Fujita, F Mitsunaga, H Sugiura and K Shimizu, Measurement of urinary and fecal steroid metabolites during the ovarian cycle in captive and wild Japanese macaques, Macaca fuscata, Am J Primatol., 2001, 53 (4), 167-176 luan an 104 [90] B Biancani, L Da Dalt, G Lacave, S Romagnoli and G Gabai, Measuring fecal progestogens as a tool to monitor reproductive activity in captive female bottlenose dolphins (Tursiops truncatus), Theriogenology, 2009, 72, 1282–1292 [91] S E Shideler, A M Ortuño, F M Morán, E A Moorman and B L Lasley, Simple extraction and enzyme immunoassays for estrogen and progesterone metabolites in the feces of Macaca fascicularis during non-conceptive and conceptive ovarian cycles, Biol Reprod, 1993, 48 (6), 1290-1298 [92] J.L Brown, S.K Wasser, D.E Wildt and L.H Graham, Comparative aspects of steroid hormone metabolism and ovarian activity in felids, measured non invasively in faeces, Biol Reprod., 1994, 51, 776-786 [93] K Wasser, S.L Monfort, J Southers and D.E Wildt, Excretion rates and metabolites of oestradiol and progesterone in baboon (Papio cynocephalus cynocephalus) faeces, J Reprod Fertil, 1994, 101, 213-220 [94] T E Ziegler, G Scheffler, D.J Wittwer, N Schultz-Darken, C.T Snowdon and D.H Abbott, Metabolism of reproductive steroids during the ovarian cycle in two species of Callitrichids, Sanguinus oedipus and Callithrix jacchus, and estimation of the ovulatory period from fecal steroids, Biol Reprod, 1996, 54, 91-99 [95] A Kumar, S Mehrotra, SS Dangi, G Singh, S Chand, L Singh, AS Mahla, S Kumar and K Nehra, Faecal steroid metabolites assay as a non-invasive monitoring of reproductive status in animals, Vet World, 2013, (1), 59-63 [96] H Amer, G Shawki and R Ismail, Ovarian and endocrine changes during oestrus and early pregnancy in Arabian mares, The Internet Journal of Veterinary Medicine, 2007, (1), 1-7 [97] E Macchi, C A Starvaggi, P Badino, R Odore, F Re, L Bevilacqua and A Malfatti, Seasonality of reproduction in wild boar (Sus scrofa) assessed by fecal and plasmatic steroids, Theriogenology, 2010, 73, 1230–1237 [98] H Ncube, P Duncan, , S Grange, E.Z Cameron, F Barnier and A Ganswindt, Pattern of faecal 20-oxopregnane and oestrogen concentrations during luan an 105 pregnancy in wild plains zebra mares, General and Comparative Endocrinology, 2011, 172, 358–362 [99] D W G L R T a P L N A S Monica, Use of urinary biomakers of ovarian funtion and altrenogest supplementation to enhance captive breeding success in the Indian rhinoceros (Rhinoceros unicornis), Zoo Biol, 2014, 33, 83-88 [100] H Maheshwari, L Sjahfirdi, P Astuti and B Purwantara, Fecal steroid profile of female Javan gibbons (Hylobates moloch) maintained in pairing-typed cage, Hayati Journal of Biosciences, 2010, 17, 43-49 [101] J Arunji, Non-invasive monitoring of buffalo estrous cycle, M V Sc Thesis, 2008 [102] N.M Czekala, E.A MacDonald, K Steinman, S Walker, N.M Garrigues, D Olson and J.L Brown, Estrogen and LH dynamics during the follicular phase of the estrous cycle in the Asian elephant, Zoo Biol., 2003, 22, 27–36 [103] I Adachi, S Kusuda, E Nagao, Y Taira, M Asano, T Tsubota and O Doi, Fecal steroid metabolites and reproductive monitoring in a female Tsushima leopard cat (Prionailurus bengalensis euptilurus), Theriogenology, 2010, 74 (8), 1499-1503 [104] J.M Busso, M.F Ponzio, F.D.M Cuneo and R.D Ruiz, Reproduction in chinchilla (Chinchilla lanigera): current status of environmental control of gonadal activity and advances in reproductive techniques, Theriogenology, 2012, 78, 1–11 [105] E Curry, M.A Stoops and T.L Roth, Non invasive detection of candidate pregnancy protein biomarkers in the feces of captive polar bears (Ursus maritimus), Theriogenology, 2012, 78 (2), 308-314 [106] F Schwarzenberger, R Palme, E Bamberg and Mostl, A review of fecal progesterone metabolite analysis for noninvasive monitoring of reproductive function in mammals, Zeitschrift fur Saugetierkunde, 1997, 62, 214-221 [107] C-J C Morden, Fecal hormone as a non-invasive population monitoring method for Reindeer, Journal of Wildlife Management, 2011, 75 (6), 1426-1435 luan an 106 [108] Chung Anh Dzung, Le Xuan Cuong, Vuong Ngoc Long, Dinh Van Cai, Dang Phuoc Chung and Pham Ho Hai, Constraints on efficiency of artificial insemination and effect of nutrition on reproductive performance of dairy cattle in smallholder farms, Proceeding of IAEA Final Research Co-ordination Meeting in Uppsala, 2001, 67-78 [109] C Frederick, R Kyes, K Hunt, D Collins, B Durrant and S.K Wasser, Method of estrus detection and correlates of reproductive cycle in the sun bear (Helarctos malayanus), Theriogennology, 2010, 74, 1121-1135 [110] J.W Duckworth, P Widmann, C Custodio, J.C Gonzalez, A Jennings and G Veron, "Paradoxurus hermaphroditus" IUCN Red List of Threatened Species, International Union for Conservation of Nature, 2017, Version 2017.3 [111] J Nelson, Paradoxurus hermaphroditus, Animal Diversity Web, Accessed May 23, 2017 at http://animaldiversity.org/accounts/Paradoxurus hermaphroditus [112] P B Sanghani, Human anatomy and physiology, Tata McGraw Hill, 2012, New York, Hoa Kỳ [113] S Meliani, B Benallou, A Hamdi and S Boubdelii, Influence of Age on Haematological Parameters in Post-Partum Pure Bred Arabian Mares Raised in Tiaret Algeria, J Microb Biochem Technol, 2014, 7, 8-10 [114] Đỗ Văn Thu, Nguyễn Văn Bộ, Đồn Việt Bình, Nguyễn Ngọc Hưng, Trần Xn Khôi, Lê Thị Huệ Nguyễn Thị Thịnh, Nghiên cứu số tiêu sinh lý-sinh hóa huyết học giống chó Bắc Hà H’Mong ni cách ly, Tạp chí sinh học, 2015, 37 (4), 503-508 [115] J.A Junior, N Songsasen, F.C Azevedo, J.P Santos, R.C Paula, F.H.G Rodrigues, M.D Rodden, D.E Wildt and R.G Morato, Hematology and blood chemistry parameters differ in free-ranging maned wolves (Chrysocyon brachyurus) living in the Serra Da Canastra National Park versus adjacent farmlands, Brazil J Wildl Dis., 2009, 45, 81-90 luan an 107 [116] M.K Rostal, A.L Evans, E.J Solberg and J.M Arnemo, Hematology and serum chemistry reference ranges for free-ranging moose (Alces alces) in Norway, J Wildl Dis., 2012, 48, 548-559 [117] C Özkan, A Kaya and Y Akgül, Normal values of haematological and some biochemical parameters in serum and urine of New Zealand White rabbits, World Rabbit Sci., 2012, 20, 253-259 [118] P Rui, Ma Z.J., Zhang X.Z., Li P.G., Gao G.P., Yang Z.Z and Zhang J.H., Hematology and serum biochemistry values in adult racoon dogs and foxes in Changli farms of Hebei province, China, Afr J Microbiol Res., 2011, 5, 46674672 [119] J Brown, Female reproductive cycles of wild female felids, Animal Reproduction Science, 2011, 124, 155–162 [120] J Cavalieri, G Hepworth, K.I Parker, P.J Wright and K.L Macmillan, Effect of treatment with progesterone and oestradiol when starting treatment with an intravaginal progesterone releasing insert on ovarian follicular development and hormonal concentrations in Holstein cows, Animal Reproduction Science, 2003, 76, 177–193 [121] Y Kameyama, K Arai and Y Ishijima, Interval between PMSG Priming and hCG Injection in Superovulation of the Mongolian Gerbil, J Mamm Ova Res, 2004, 21, 105-109 luan an a PHỤ LỤC Hình Trang trại ni cầy vịi hương Trung tâm Hình Trang trại động vật hoang dã Thanh Long, ứng dụng CNSH tỉnh Đồng Nai Hình Cầy chui vào ống Thủ Đức-Thành phố Hồ Chí Minh Hình Hình4.12 Cầy Cầy ngủ ngủ vàovào ban ban luan an b Hình Cầy ăn cháo Hình Cầy ăn chuối Hình Chuẩn bị thức ăn cho cầy Hình Cầy giao phối luan an c Hình Máy phân tích máu tự động Mindray BC-2800 Hình 11 Phiếu xét nghiệm nước tiểu Hình 10 Bộ KIT ELISA Hình 12 Phiếu xét nghiệm hormone luan an d Hình 13 Phân tích mẫu phân phịng thí nghiệm trường Hình 14 Dị tìm tĩnh mạch gốc Đại học Thủ Dầu Một Hình 15 Mẫu phân thu thập, lưu trữ ly trích luan an Hình 16 Lấy mẫu máu tĩnh mạch gốc đuôi ... đề tài ? ?Nghiên cứu số đặc điểm sinh học ảnh hưởng kích dục tố đến khả sinh sản cầy vòi hương (Paradoxurus hermaphroditus Pallas, 1777) điều kiện nuôi nhốt” thực Mục tiêu nghiên cứu luận án - Xác... định đặc điểm sinh học số tiêu sinh lí -sinh hóa máu, nước tiểu cầy vịi hương điều kiện ni nhốt - Đánh giá thay đổi hormone sinh dục cầy vòi hương tác động kích dục tố lên khả sinh sản cầy vòi hương. .. cầy vịi hương điều kiện ni nhốt - Nghiên cứu số tiêu sinh lí – sinh hóa máu, nước tiểu cầy vòi hương điều kiện nuôi nhốt - Nghiên cứu thay đổi hormone sinh dục của cầy vòi hương điều kiện nuôi nhốt