Cu trúc phức hợp màu tím

Một phần của tài liệu (LUẬN văn THẠC sĩ) xác định đồng thời methanol và ethanol trong huyết tương người bằng phương pháp sắc ký khí (GC) (Trang 26)

Tron p n p áp này, các dung dịch methanol chuẩn đã đ điều chế, sau đó đ c oxy hóa bởi kali p rman anat đ tạo thành formaldehyde. Trong một nghiên cứu tr ớ đ y, đ ờng uẩn làm vi đ c tạo ra bởi bộ dung dịch methanol chuẩn với nồn độ 7,91; 31,66; 39,57; 47,48 và 74,19 mg/L [41]. Sodium pyrosulfit đã đ c thêm vào đ ó đ c dung dịch khơng màu, sau đó sử dụng acid romotropi đ tạo phản ứng màu với formaldehyde. Sau đó, quang phổ UV-VIS đ c sử dụn đ đo độ hấp thụ của các dung dịch chuẩn từ đó rút ra đ ờn on ấp t ụ và àm l n m t anol t o p n p áp đ ờn uẩn.

P n p áp này ó iới hạn phát hi n là 1,0 mg/L, độ l ch chuẩn t n đối lớn nhất là 2,41%, hi u suất thu hồi 97,8 ~ 104,5%, cho thấy p n p áp ó độ chính xác đáp ứn đ yêu ầu p n t [41].

Tá iả McCreery v ộn sự [38] đã sử dụn p n p áp này đ p n t m t anol tron một số sản p ẩm t ảo d . t anol đ oxi óa đ tạo t àn formaldehyde ằn kali p rman anat 3% tron môi tr ờn axit p otp ori 15%. Sau đó, formaldehyde p ản ứn với dun dị axit romotropi 5% đ tạo p ứ ở 600C. p ất màu đ đo ở 575nm.

CH3OH + MnO4- + H+ → C + n2+ + H2O nHCHO + m(HO)2C10H4(SO3H)2 → p ứ

Nồn độ m t anol, t anol tron đồ uốn ó ồn đ tá iả M unov v

ộn sự [39] sử dụn d ydro nas nzym (A ) và oxidas (A ) là ất xú

tá o quá trìn oxi óa r u t àn and yd . Sản p ẩm ủa quá trìn này sẽ t am ia p ản ứn oxy óa ỉ địn với p-p nyl n diamin đ tạo p ất màu bandrowski (4-diamine-3,6- is(p-aminop nyl) imino) -4- y lo xadi n -1) và đo ở ớ són 540nm. Giới ạn p át i n ủa p n p áp đối với t anol là 9 µmol và m t anol là 0 9 µmol/L.

N ồi axit chromotropic n t uố t ử k á n sử dụn Natri Nitroprusside. Hydroxyl có có th phản ứng với natri nitroprussid đ tạo thành ion [Fe(CN)5NO(OH)]3-(thành phần của thuốc thử tạo màu (SNP)).

OH- + [Fe(CN)5NO]2- → [ (CN)5NO(OH)]3-

Trong dung dịch kiềm, CH3O- đ c hình thành bằng cách ion hóa CH3OH: CH3OH + OH- → C 3O- + H2O

Sau đó [Fe(CN)5NO(CH3O)]3- đ c hình thành do phản ứn trao đổi giữa OH- của [Fe(CN)5NO(OH)]3- và CH3O-:

[Fe(CN)5NO(OH)]3- + CH3O- → [ (CN)5NO(CH3O)]3- + OH-

Tron p n p áp này một hỗn h p natri nitroprusside, kali ferricyanide và natri ydroxit đã đ c tạo ra đ điều chế thuốc thử tạo màu (SNP). Sau đó dun dịch chuẩn đ c chuẩn bị bằng cách giữ o l n SNP k ôn đổi và l ng

m tanol đ t ay đổi dần dần. Độ l ch chuẩn t n đối o p n p áp này là 1,5% và giới hạn phát hi n là 12 mg/L.

Đ y là một p n p áp tốt đ xá định methanol, với giới hạn phát hi n thấp và độ chính xác cao.

1.2.3.3 Phương pháp phổ hồng ngoại gần (NIR)

P n p áp p ổ ồn n oại kết p với ồi quy đa iến đ sử dụn đ đán iá một số t àn p ần tron đồ uốn ó ồn. P n p áp dựa trên sự ấp t ụ n l p ổ ồn n oại ủa á p ất óa . Sau k i ấp t ụ ứ xạ ồn n oại, á p n tử ủa p ất óa dao độn với tần số k á n au, từ đó xuất i n p ổ ấp t ụ ồn n oại đặ tr n o từn p ất. t anol ó tần số dao độn 1020 m-1 đến 1112 m-1, t anol từ 1047 m-1 đến 1987 m-1 [18].

Gabriele Reich [23] cho thấy vùng NIR của phổ đi n từ ó ớc sóng 780-

2526 nm t n ứng với dải sóng 12820-3959 cm-1

. Các dải hấp thụ nổi bật nhất xảy ra tron vùn N R ó liên quan đến các cực âm và các nhóm –CH, -NH, -OH.

Trong một nghiên cứu tr ớ đó, Heitor L. Fernandes và các cộng sự [26] sử dụng một quang phổ kế FT-NIR cung cấp một cuvet dịng chảy ó đ ờng kính 10mm và khối l ng bên trong 80 μ đ c sử dụn đ t u đ c phổ từ 14000 đến 4000 cm-1 (714 và 2500 nm), với độ phân giải 8 cm-1. Các mẫu thực tế đ c sử dụng là xăn . ột bộ đ c tạo thành bởi 120 mẫu chứa methanol và ethanol, đều ở nồng độ từ 0 đến 30% (v v) vào xăn k ôn ứa cồn. Cá đ ờng cong hi u chuẩn sử dụng PLS-1 (hi u chuẩn riêng cho methanol và ethanol) và PLS-2 (đồng thời hi u chuẩn cho cả ai) đ c xây dựng. Các kết quả đ c so sánh với các giá trị của hàm l n m t anol đ xá định bằn p n p áp uẩn. Tất cả các kết quả thu đ c nằm trong khoảng sai số t n đối ± 4% (trừ mẫu 12), đ c chấp nhận đ xác địn m t anol tron xăn .

1 2 4 Phương pháp điện hóa

Tron p n p áp vol – amp v n , t ế đi n ự làm vi đ tăn tuyến t n t o t ời ian [43]. Đi n t ế đ đo iữa đi n ự làm vi và đi n ự so sán , d n đi n đ đo iữa đi n ự làm vi và đi n ự đối.

t anol ó t đ oxy óa ở á đi n ự vàn tron dun dị kiềm t àn and yd oặ format ( < 1,0 V) và ở đi n t ế ao n 1,0 V t àn a on dioxid oặ a onat [16]. Cá d n oxy óa ao n ất t ờn đ quan sát t ấy tron á dun dị kiềm.

Sousa và các cộng sự sử dụn p n p áp vol – ampe vòng với đi n cực làm vi c Pt –Au xá địn đồng thời methanol và ethanol trong nhiên li u ethanol. an đầu, k oản tuyến t n đ t ự i n ằn á sử dụn á dun dị uẩn ỉ ứa t anol oặ m t anol và t anol o t ấy độ tuyến t n tốt tron k oản nồn độ n iên ứu (0,1 – 0,5%). Cá mẫu t ự sau đó đ p n t sau k i p a loãn dun dị đi n p n ứa 0,5 mol/L NaOH 0,1% (v/v) methanol [46]. t anol ó t đ p át i n n l tại +0,19 V, giới hạn phát hi n 0,028%. Methanol đ p át i n ở đi n t ế (+1,20 V). Độ l uẩn t n đối (n = 8) là 0,9%, iới ạn p át i n ( ) ủa m t anol là 0,045% (v/v).

Đ tách methanol và ethanol ra khỏi dầu diesel sinh h c, Shihov và các cộng

sự [11] sử dụng 1 module thấm i (VP ) với 1 màng polymer poly (phenylene

isophtalamide) (PA) chứa dung môi d . Sau k i ố i vào k oan VP , m t anol và t anol đ c vận chuy n thông qua màng PA tới buồng trộn đ c trang bị một d t tor đo t ế. Giới hạn phát hi n với cả 2 chất là 0,02%.

1 3 ác phương pháp ử l mẫu sinh học ph n t ch methanol và ethanol

Tron mẫu máu ln có tỉ l lớn các protein và các chất nội sinh làm cản trở gây ảnh h ởng tới khả năn p át i n chất p n t . o đó, mẫu cần phải đ c chiết tách, xử lý đ loại bỏ các tạp chất. Đặc bi t tron p n t định tính methanol, do protein có chứa các axit amin gây ảnh h ởng tới phản ứng oxy hóa

metanol thành fomandehit, làm sai l ch kết quả phân tích. Ph n p áp tủa protein dựa trên sự biến tính làm mất cấu trúc bâc 2 và bậc 3 của các protein có trong nền mẫu sinh h c. Các tác nhân gây tủa protein trong dịch sinh h c gồm nhi t độ, môi tr ờng axit mạn ay az , các dung môi hữu , các muối vô [45].

Kết tủa protein bằn á t ay đổi pH: mỗi protein sẽ có một đi m đẳn đi n (pI). Ở giá trị pH = pI, phân tử prot in trun a đi n sẽ không chuy n dịch trong đi n tr ờng, phân tử protein sẽ kém bền nhất và dễ bị kết tủa, các tác nhân gây tủa prot in do t ay đổi p t ờn là á axit n tri loroax ti axit (TCA) ở nồn độ 2-5% và axit percloric ở nồn độ 15% so với l ng mẫu. P n p áp tủa protein bằn axit đ c áp dụng cho những hoạt chất dễ tan tron n ớc và bền với acid[46] . Ngồi ra, ũn ó t kết tủa protein bằng các polyme không ion hoặc các ion kim loại hoặc loại bỏ protein và các phân tử có khối l ng lớn bằng ph n pháp siêu l c [21]. Tủa protein bằng dung mơi hữu : Độ hịa tan của protein trong dung dịch phụ thuộc vào nhiều yếu tố, một trong số đó là ằng số đi n môi của dung dịch. Những phân tử dung mơi có hằng số đi n môi lớn nh n ớc có th ổn định t n tá iữa chúng với các phân tử protein và tạo điều ki n thuận l i cho sự hòa tan của protein trong dung dịch. Ng c lại, các dung môi với hằng số đi n môi nhỏ nh acetonitril, khi có mặt trong mẫu ún n ăn ản sự phân tán của các phân tử protein trong môi tr ờng làm giảm độ hòa tan của các protein và xảy ra kết tủa. Tủa protein bằng muối vô , một số muối nh (NH4)2SO4, NaCl… vừa làm trung a đi n vừa loại bỏ lớp vỏ hydrat của phân tử protein gây ra hi n t ng keo tụ.

Ph n p áp tủa protein thông th ờng sử dụn tri loroax ti axit đ c cải tiến [57] bằng cách sử dụn 10% TCA a ton đ loại các albumin có trong huyết thanh, ph n p áp rất nhanh chóng loại đi l ng lớn các albumin. Nghiên cứu t n tự ũn đ c Haudenschild và các cộng sự công bố năm 2014 [19].

T ả Jiang và các cộng sự [36] đã so sánh 5 ph n p áp sử dụn đ kết

tủa protein. Tác giả đã sử dụng TCA 60%, Acetonitril, (NH4)2SO4, chloroform/ metanol và ph n p áp siêu l đ loại bỏ protein. Kết quả đo đi n di gel 2 chiều

cho thấy, sự kết tủa với TCA và acetonitril và ph n p áp siêu l c hi u quả t n đ n với nhau tại cùng nồn độ mẫu và có th khử muối. Vi c sử dụng (NH4)2SO4 từng phần hi u quả đ bỏ albumin, chiếm n 50% prot in uyết t n .

T n tự nh nghiên cứu trên, Nejadi và các cộng sự [40], ũn đã so sán 3 ph n p áp t ôn t ờng loại bỏ protein là sử dụng acetonitril, TCA/ rửa aceton và TCA/aceton. Kết quả cho thấy, sử dụng acetonitril kết tủa thì ổn địn và đ n giản n 2 p n p áp n lại.

1.4. ổng ết chung phần tổng quan

Tóm lại tổng quan tài li u tham khảo cho thấy có rất nhiều p n p áp ó th đ c áp dụn đ xá định methanol, ethanol trong nhiều chất nền. Có th dùng p n p áp quan p ổ đi n hóa và sắ ký đ xá định nồn độ methanol, ethanol trong huyết t n trầm t i n, n ớc giải k át k ôn k n ớc... Trong nghiên cứu này, chúng tôi ch n p n p áp sắ ký k với d t t r đ xá địn đồng thời methanol và ethanol trong huyết t n n ời. Đ y là p n p áp ó độ n ạy và độ n xá ao n so với á p n p áp k á .

Tron mẫu máu ln có tỉ l lớn các protein làm ản ởng tới khả năn phát hi n chất phân tích. Protein có chứa các axit amin gây ản ởng tới phản ứng oxy hóa methanol thành fomandehit, làm sai l ch kết quả phân tích. o vậy mẫu ần đ loại ỏ prot in tr ớ k i tiến àn p n t . Có rất n iều p n p áp đ sử dụn đ kết tủa prot in tron đó sử dụn acetonitril kết tủa thì ổn định và đ n iản n ất. ởi vậy ún tôi đã sử dụn acetonitrile đ loại ỏ prot in tron mẫu uyết t n n ời.

CHƢƠNG 2: THỰC NGHIỆM 2.1. Mẫu ph n t ch

Đ xây dựng và xác n ận giá trị sử dụng của p n p áp p n t đồng thời

MeOH và EtOH trong huyết t n n ời, chúng tôi tiến hành nghiên cứu trên các đối t ng mẫu sau:

- ẫu trắn : là uyết t n n ời ủa vi n uyết và truyền máu trun n . - ẫu uẩn: là mẫu trắn đ t êm l n xá địn MeOH và EtOH tạo t àn

mẫu.

- ẫu t ử: là uyết t n n n n n ộ độ MeOH, EtOH t u đ từ mẫu máu, ly t m lấy p ần uyết t n .

 S l c về máu:

* Máu chiếm khoảng 7-9% khối l n t , một n ời trung bình có 4-5 lít máu (khoảng 75-80ml/kg).

* Máu có 2 thành phần chính là huyết cầu (chiếm khoảng 40%) và huyết t n ( iếm khoảng 60%).

- Huyết cầu gồm: Hồng cầu, bạch cầu và ti u cầu

- Huyết t n là dun dịch chứa đến 96% là n ớc, 4% là các protein huyết t n và rất nhiều chất khác với l ng nhỏ: Các hormone; các protein khác; các chất thải của t ; các chất đi n giải n : Natri lo anxi kali p osp at …..

C uẩn ị mẫu uyết t ng:

- Mẫu máu toàn phần đ c lấy từ các b nh nhân ngộ độc methanol vào ống chứa chất chốn đôn ( parin).

- Mẫu này n ay sau đó đ c ly tâm 15 phút, 4000 vòng/phút. Phần huyết t n p a trên đ c lấy sang ống có nắp, l u tại -4o

C.

- 1ml mẫu huyết t n sẽ đ c xử lý loại protein bằng ACN, lấy dịch nổi đ phân t định l ng bằng ph n p áp GC-FID.

2.2. Chất chuẩn, ho chất, thiết bị

2 2 1 h t chuẩn

Chất chuẩn methanol, ethanol của hãng Merck (Germany) với độ tinh khiết t n ứng của methanol là (99,8%) và ethanol là (96%).

2.2.2 oá ch t

- N ớc cất sử dụn là n ớc cất hai lần đã đ c deion hoá.

- Chất nội chuẩn Isopropanol của hãng Merk với độ tinh khiết phân tích (>99%).

- Acetonitrile (ACN) của hãng Merk với độ tinh khiết phân tích (≥99,8%). - un dị chuẩn gốc MeOH 1g/l: Dùng micropipet hút 126µl methanol 99,8% (d = 0,792 ml) o vào ìn định mứ 100ml và định mức bằn n ớc cất đến vạch. Từ dung dịch trên ta trộn với á t t huyết t n trắn đ có nồn độ methanol 10-480 µ ml đ khảo sát và xác định giá trị sử dụng của p n p áp.

- Dung dịch chuẩn gốc EtOH 10g/l: Dùng micropipet hút 130µl ethanol 96% (d = 0,81 ml) o vào ìn định mứ 100ml và định mức bằn n ớc cất đến vạch.

Từ dung dịch trên ta trộn với á t t huyết t n trắn đ có nồn độ ethanol

100-3600 µ ml đ khảo sát và xá định giá trị sử dụng của p n p áp.

2 2 3 hiết bị, dụng cụ

Thi t bị

- Máy sắc kí khí GC- (T rmo S i ntifi ) đ c trang bị một phần mềm máy tính (Xcalibur), một cột mao quản TG-A C2 ( k t ớc 30m×0,32 mm id, độ dày của lớp film 1,2 μm).

- Cân phân tích Precisa XT 220A, độ đ c của cân 0,0001 g. - B siêu âm, Model: S30/H, Hãng ELMA, Đức.

- Máy lắc xoáy model: 3005 của hãng GFL, Đức.

- Tủ sấy model: 500 của hãng Memmert, Đứ ó n i t độ 220oC.

- Máy cất n ớc hai lần. Model: A4000D/Aquatron hãng Stuart - Barloworld Scientific, 4 l/h, Anh.

- Bộ l n ớc siêu sạch, Model: WaterPro PS/HPLC/UF hybrid - Labconco. 115V, 60Hz, Mỹ.

- Tủ lạnh bảo quản mẫu.

- P ần mềm p n t minita 16 đ xử lý số li u.  Dụng cụ

- Kim tiêm, ống nghi m đ thu và bảo quản mẫu.

- ìn định mức dung tích: 5, 10, 25, 50, 100ml; thủy tinh loại A. - Micropipet: 1-100μl; 100-1000μl; 1000-5000μl

- Ống nghi m lấy máu chứa EDTA và ống ly tâm chia vạch có nút xốy. - Giấy l c siêu mịn.

- Các dụng cụ phịng thí nghi m khác.

Tất cả các dụng cụ thủy tin đều phải đ c rửa sạch, tráng 3 lần bằn n ớc cất 2 lần, tráng lại bằn n ớc deion, sau đó sấy ở 150oC trong vòng 1 giờ, lấy ra đ nguội tr ớc khi sử dụng.

2.3. Phƣơng ph p nghiên cứu

2 3 1 Nghiên cứu dựng qu trình định lượng methanol. ethanol.

2 3 1 1 C uẩn ị m u uẩn

T o n t n ất đã iết của ancol, ancol có ai xu ớn a tan đối ch i n au là: xu ớng của nhóm -OH phân cự làm tăn t n a tan tron n ớc và xu ớng của chuỗi a on n ăn ản điều này. Vì vậy, methanol và ethanol dễ hịa tan

tron n ớc vì nhóm hydroxyl chiếm u t ế. ua đó, chúng tơi lựa ch n n ớ đ hịa tan methanol và ethanol vì n ớ k ơn độc hại, thân thi n với môi tr ờng.

Một phần của tài liệu (LUẬN văn THẠC sĩ) xác định đồng thời methanol và ethanol trong huyết tương người bằng phương pháp sắc ký khí (GC) (Trang 26)

Tải bản đầy đủ (PDF)

(79 trang)