hoàn chỉnh.
Sau 6 tuần nuôi cấy trên môi trường bổ sung IBA, hiệu quả ra rễ cây Artichoke giống tím đã được ghi nhận và trình bày ở bảng 3.3 và hình 3.3
Trên môi trường bổ sung IBA, hiệu quả ra rễ ở nồng độ 4,0 mg/L IBA ( 67.7%) cao gấp 30.77 lần so với đối chứng; trong khi hiệu quả ra rễ thấp hơn ở các nồng độ thấp hơn 6,0 và 8,0 mg/L IBA đều đạt lần lượt 7,7% và 51,1% tỷ lệ ra rễ. Tuy nhiên, khi nồng độ IBA ở 2,0 mg/L hiệu quả ra rễ đã giảm rõ rệt (7,7%). Quan sát hình thái cho thấy, rễ được hình thành trên môi trường bổ sung 2 mg/L IBA có cấu trúc xốp rời, dễ gãy và bị hoại tử ngay trên môi trường nuôi cấy; trong khi hình thái rễ hoàn toàn bình thường trong môi trường bổ sung nồng độ IBA cao hơn (Hình 3.3). Đặc biệt, rễ to và dài khi được hình thành trên môi trường chứa 4,0 mg/L IBA đã được quan sát; cũng
như chất lượng cây được cải thiện đáng kể thông qua các chỉ tiêu về chiều cao cây, chiều dài rễ, khối lượng tươi và khối lượng khô khi so sánh với đối chứng và các nghiệm thức còn lại (Bảng 3.3).
Bảng 3.7. Ảnh hưởng của IBA lên khả năng ra rễ cây Artichoke giống tím sau 6 tuần nuôi cấy. Môi trường Chiều cao cây (cm) Tỷ lệ ra rễ (%) Chiều dài rễ (cm) Khối lượng tươi (g) Khối lượng khô (g) ĐC 3,4c 2,2c 0,26c 0,49c 0,02a
2 IBA 5,4bc 7,7c 1,08ab 0,6bc 0,02a
4 IBA 8,2a 67,7a 1,64a 1,06a 0,1a
6 IBA 6,4ab 51,1ab 0,77bc 1,03ab 0,07a
8 IBA 4,9bc 40b 0,58bc 0,61bc 0,02a
Ghi chú: *Những ký tự khác nhau (a, b, c…) trong cột thể hiện sự khác biệt có ý nghĩa với độ tin cậy P ≤ 0,05 trong phép thử Duncan
Hình 3.8. Ảnh hưởng của IBA lên khả năng ra rễ cây Artichoke giống tím sau 6 tuần nuôi cấy.
CHƯƠNG 4: KẾT LUẬN VÀ KIẾN NGHỊ 4.1. Kết luận
Sau quá trình nuôi cấy, thu thập và xử lý số liệu chung tôi đã kết luận như sau:
Nhân nhanh và cải thiện chất lượng chồi cây Artichoke:
- Môi trường khoáng ¼ MS, 30 g/L sucrose, 8 g/L agar (4,067 chồi/cụm; trong
đó, chiều cao chồi 1,4 cm, chiều dài lá 1,8 cm ).
- Môi trường ¼ MS bổ sung 0,5 mg/L KIN, 30 g/L sucrose, 8 g/L agar (3,8
chồi/cụm; trong đó, chiều cao chồi 1,01 cm, chều dài lá 1,04 cm).
Cải thiện khả năng ra rễ in vitro:
- Môi trường MS bổ sung 4,0 mg/L IBA , 30 g/L sucrose, 8 g/L agar ( tỷ lệ ra rễ
67,7% và chiều cao cây 8,2 cm)
4.2. Kiến nghị
- Tiếp tục theo dõi sinh trưởng và phát triển của Cây Artichoke giống tím có
nguồn gốc từ nuôi cấy mô đến giai đoạn ra hoa.
- Tiếp tục theo dõi sinh trưởng và phát triển của các giống khác của cây
Artichoke có nguồn gốc từ nuôi cấy mô.
TÀI LIỆU THAM KHẢO
1. Acquadro, A., Papanice, M. A., Lanteri, S., Bottalico, G., Portis, E.,
Campanale, A., Gallitelli, D. (2010). Production and fingerprinting of virus-free clones in a reflowering Globe Artichoke. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 100(3), 329- 337
2. Ancora, G., Belli-Donini, M. L., Cuozzo, L. (1981). Globe Artichoke plants
obtained from shoot apices through rapid in vitro micropropagation. Scientia Horticulturae, 14(3), 207-213.
3. Aloni, R., Aloni, E., Langhans, M., Ullrich, C. I. (2006). Role of cytokinin and
auxin in shaping root architecture: regulating vascular differentiation, lateral root initiation, root apical dominance and root gravitropism. Annals of Botany, 97(5), 883- 893.
4. Apóstolo, N. M., Brutti, C. B., Llorente, B. E. (2005). Leaf anatomy of Cynara
scolymus L. in successive micropropagation stages. In Vitro Cellular and Developmental Biology-Plant, 41(3), 307-313.
5. Bedini, L., Lucchesini, M., Bertozzi, F., Graifenberg, A. (2012). Plant tissue
cultures from four Tuscan Globe Artichoke cultivars. Open Life Sciences, 7(4), 680- 689.
6. Bekheet, S. A. (2007). In vitro preservation of Globe Artichoke germplasm.
Plant Tissue Culture and Biotechnology, 17(1), 1-9.
7. Bianco, P., Robey, P. G. (2000). Marrow stromal stem cells. The Journal of
Clinical Investigation, 105(12), 1663-1668.
8. Boullani, R. E., Elmoslih, A., Finti, A. E., Mousadik, A. E., Serghini, M. A.
(2012). Improved in vitro micropropagation of Artichoke (Cynara cardunculus var. scolymus L.). European Journal of Scientific Research, 80:430-436.
9. Brutti, C., Apostolo, N. M., Ferrarotti, S. A., Llorente, B. E., Krymkiewicz, N.
(2000). Micropropagation of Cynara scolymus L. employing cyclodextrins to promote rhizogenesis. Scientia Horticulturae, 83(1), 1-10.
10. Catacora, E., Olivera, J., Ramos, Z., Alve, Z., Pinedo, R. (2019).
Micropropagation of clonal lines of thorny Artichoke (Cynara scolymus L.). Peruvian Journal of Agronomy, 3(1), 29-38.
11. Clifford, M.N., Brown, J.E. (2006). Dietary flavonoids and health – broadening the perspective. In: Andersen, O., Markham, K.R. (Eds), Flavonoids: Chemistry, Biochemistry and Applications. CRC Press, Boca Raton, Florida, pp. 320- 370.
12. Cardarelli, M., Rouphael, Y., Saccardo, F., Colla, G. (2005). An innovative
vegetative propagation system for large - scale production of Globe Artichoke transplants. Part I. Propagation system setup. Horticultural Technology, 15(4), 812- 816.
13. de Falco, B., Incerti, G., Amato, M., Lanzotti, V. (2015). Artichoke:
botanical, agronomical, phytochemical, and pharmacological overview.
Phytochemistry Reviews, 14(6), 993-1018.
14. Dharmasiri, N., Estelle, M. (2004). Auxin signaling and regulated protein
degradation. Trends in Plant Science, 9(6), 302-308.
15. El-Zeiny, O. A. H., El-Behairy, U. A., Zocchi, G., Rashwan, M. M. (2013).
Commercial production of Globe Artichoke (Cynara scolymus L.) in vitro. Egyptian Journal of Agricultural Research, 91(3), 933-1007.
16. Finet, C., Jaillais, Y. (2012). Auxology: when auxin meets plant evo-devo.
Developmental Biology, 369(1), 19-31.
17. Gallitelli, D., Mascia, T., Martelli, G. P. (2012). Viruses in Artichoke. In
Advances in Virus Research, 84, 289-324. Academic Press.
18. Gomes, F., Simões, M., Lopes, M. L., Canhoto, J. M. (2010). Effect of plant
growth regulators and genotype on the micropropagation of adult trees of Arbutus unedo L. (Strawberry tree). New Biotechnology, 27(6), 882-892.
19. Harbaoui, Y. (1980). Multiplication in vitro de clones selectionees
d’Artichaut (cynara scolymus L.).
20. Iapichino, G. (2012). Micropropagation of Globe Artichoke (Cynara
cardunculus L. var. scolymus). In: Lambardi M., Ozudogru, E. A., Jain, S., M. (Eds), Protocols for Micropropagation of Selected Economically – Important Horticultural Plants. Humana Press, United States, pp. 369-380
21. Imin, N., Nizamidin, M., Wu, T., Rolfe, B. G. (2007). Factors involved in
root formation in Medicago truncatula. Journal of experimental botany, 58(3), 439- 451.
22. Klerk, G., Marinova, S., Rouf, S., Brugge, J. (1996, June). Salicylic acid affects rooting of Apple microcuttings by enhancement of oxidation of auxin. In III International Symposium on In Vitro Culture and Horticultural Breeding 447, pp. 247- 250.
23. Konstantatos, G., Howard, I., Fischer, A., Hoogland, S., Clifford, J., Klem,
E., Sargent, E. H. (2006). Ultrasensitive solution - cast quantum dot photodetectors. Nature, 442(7099), 180-183.
24. Laplaze, L., Benkova, E., Casimiro, I., Maes, L., Vanneste, S., Swarup, R.,
Weijers, D., Calvo, V; Parizot, B; Herrena-Rodroguez, M, B; Offringa, R; Gramha, N., Doumas, P; Friml, J; Bogusz, D; Beeckman, T; Bennett, M. (2007). Cytokinins act directly on lateral root founder cells to inhibit root initiation. The Plant Cell, 19(12), 3889-3900.
25. López-Pérez, A. J., Martínez, J. A. (2015). In vitro root induction
improvement by culture in darkness for different Globe Artichoke cultivars. In Vitro Cellular and Developmental Biology-Plant, 51(2), 160-165.
26. Nordström, A., Tarkowski, P., Tarkowska, D., Norbaek, R., Åstot, C.,
Dolezal, K., Sandberg, G. (2004). Auxin regulation of cytokinin biosynthesis in 74 Arabidopsis thaliana: a factor of potential importance for auxin - cytokinin regulated development. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 101(21), 8039-8044.
27. Morone-Fortunato, I. (2007). La propagazione del carciofo: vivaismo e
innovazione tecnologica. Italus Hortus, 14, 47-57
28. Pandino, G., Lombardo, S., Mauromicale, G., Williamson, G. (2011).
Phenolic acids and flavonoids in leaf and floral stem of cultivated and wild Cynara cardunculus L. genotypes. Food Chemistry, 126(2), 417-422.
29. Pacifici, S., Lucchesini, M., Curadi, M., Graifenberg, A. (2007). Influence of
medium composition and vessel ventilation during the micropropagation stages of Cynara scolymus L. cv. Grato 1. Advances in Horticultural Science, 21(2) 83- 88.
30. Reid, J. B., Petrie, R. A. (1991). Effects of soil aeration on root demography
31. Schneider, F. (2005). Effect of different cultural conditions on micropropagation of Rose (Rosa sp.) and Globe Artichoke (Cynara scolymus L.) Doctoral Dissertation, Technische Universität München, Germany, 130 p.
32. Tavazza, R., Papacchioli, V., Ancora, G. (2004). An improved medium for in
vitro propagation of Globe Artichoke (Cynara scolymus L.) Cv. "spinoso sardo". Acta Horticulturae, 660, 91-97
33. Vaast, P., Zasoski, R. J., Bledsoe, C. S. (1997). Effects of vesicular -
arbuscular mycorrhizal inoculation at different soil P availabilities on growth and nutrient uptake of in vitro propagated Coffee (Coffea arabica L.) plants. Mycorrhiza, 6(6), 493-497.