Đậu xanh là một loại cõy đậu đỗ quan trọng cú giỏ trị kinh tế cao được trồng chủ yếu để lấy hạt. Ở nhiều nước trờn thế giới trong đú cú Việt Nam, sản xuất và chế biến đậu xanh đó đỏp ứng nhu cầu tiờu thụ lớn và đa dạng trong nước. Hạt đậu xanh được chế biến thành nhiều thức ăn quan trọng và thuốc chữa bệnh cho con người.
Giỏ trị dinh dưỡng của đậu xanh thể hiện ở thành phần, hàm lượng cỏc chất như protein, lipid,…cỏc quỏ trỡnh tổng hợp, tớch luỹ hay phõn giải cỏc chất như protein dự trữ, amilaza, cỏc amino acid,…đều liờn quan đến sự sinh trưởng, phỏt triển và khả năng chống chịu của cõy đậu xanh.
Vỡ vậy, việc nghiờn cứu hoỏ sinh hạt đậu xanh nhằm tỡm ra cỏc giống đậu xanh cú năng suất cao, chất lượng tốt và chống chịu được cỏc điều kiện bất lợi của mụi trường là gúp phần chọn được cỏc giống cú năng suất và chất lượng ổn định.
Những cụng trỡnh nghiờn cứu quan hệ di truyền của cõy đậu xanh ở nước ta cũn ớt. Sự đa dạng di truyền sẽ chỉ ra những mức độ sai khỏc giữa cỏc giống đậu xanh nghiờn cứu ở mức độ phõn tử và giải thớch được tớnh đa dạng nguồn gen của cõy đậu xanh.
Chƣơng 2
VẬT LIỆU VÀ PHƢƠNG PHÁP NGHIấN CỨU 2.1. VẬT LIỆU NGHIấN CỨU
2.1.1. Vật liệu thực vật
Vật liệu nghiờn cứu của đề tài là hạt của 30 giống đậu xanh khỏc nhau, trong đú 10 giống do Viện nghiờn cứu Ngụ cung cấp và 20 giống thu thập được từ cỏc địa phương. Nguồn gốc của cỏc giống đậu xanh nghiờn cứu được trỡnh bày ở bảng 2.1.
Bảng 2.1. Nguồn gốc cỏc giống đậu xanh nghiờn cứu
TT Tờn giống
Nguồn gốc TT Tờn giống
Nguồn gốc
1 T1 Bắc Sơn - Lạng Sơn 16 T16 Kim Động - Hưng Yờn 2 T2 Mai Chõu - Hoà Bỡnh 17 T17 Yờn Phong - Bắc Ninh 3 T3 Bỏt Xỏt - Lào Cai 18 T18 Đỡnh Bảng - Bắc Ninh 4 T4 Mộc Chõu - Sơn La 19 T19 Nam Sỏch - Hải Dương 5 T5 Bảo Lạc - Cao Bằng 20 T20 Yờn Thế - Bắc Giang 6 T6 Xuất Hoỏ - Bắc Kạn 21 T21 Việt Yờn - Bắc Giang 7 T7 Đồng Hỷ - Thỏi Nguyờn 22 T22 044/DX06 - Viện NC Ngụ 8 T8 Phỳ Lương - Thỏi Nguyờn 23 T23 Từ Liờm - Hà Nội
9 T9 Hàm Yờn - Tuyờn Quang 24 T24 Long Biờn - Hà Nội 10 T10 Sơn Dương - Tuyờn Quang 25 T25 VN99-3 - Viện NC Ngụ 11 T11 Bắc Quang - Hà Giang 26 T26 DXVN4 - Viện NC Ngụ 12 T12 Hoàng Su Phỡ - Hà Giang 27 T27 DXVN5 - Viện NC Ngụ 13 T13 Thanh Thuỷ - Phỳ Thọ 28 T28 VN93-1 - Viện NC Ngụ 14 T14 Yờn Bỡnh - Yờn Bỏi 29 T29 Vĩnh Bảo - Hải Phũng 15 T15 Kim Bảng - Hà Nam 30 T30 Yờn Lạc - Vĩnh Phỳc
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T9 T10 T11 T12 T13 T14 T15 T16 T17 T18 19 T20 T21 T22 T23 T24 T25 T26 T27 T28 T29 T30
2.1.2. Hoỏ chất và thiết bị
Hoỏ chất: Sử dụng cỏc húa chất tinh khiết của cỏc nước và cỏc
hóng nổi tiếng như Taq - polymerase, buffer PCR của hóng
Invitrogen EDTA, Tris, Agarose,… của Đức.
Cỏc loại thiết bị mỏy múc: Cỏc thiết bị mỏy múc phục vụ sinh học phõn tử như mỏy PCR, mỏy quang phổ UV - Visible Spectrometer (cintra 40) của Australia, mỏy li tõm lạnh eppendorf của Đức, nồi hấp khử trựng, mỏy soi gel, bộ điện di, box cấy, mỏy lắc, lũ vi súng, cõn điện tử, tủ sấy, tủ lạnh, bể ổn nhiệt, pipetman, mỏy làm khụ DNA (Speed Vac) và một số thiết bị, mỏy múc cần thiết khỏc.
2.1.3. Địa điểm nghiờn cứu
Cỏc thớ nghiệm được tiến hành tại Bộ mụn Sinh học phõn tử và Cụng nghệ gen - Viện Khoa học Sự sống - Đại học Thỏi Nguyờn; Phũng thớ nghiệm sinh học - Khoa Khoa học sự sống - Trường Đại học khoa học - Đại học Thỏi Nguyờn và Phũng Cụng nghệ Tế bào thực vật - Viện Cụng nghệ Sinh học - Viện Khoa học và Cụng nghệ Việt Nam.
2.2. PHƢƠNG PHÁP NGHIấN CỨU2.2.1. Phƣơng phỏp hoỏ sinh 2.2.1. Phƣơng phỏp hoỏ sinh
2.2.1.1. Định lƣợng lipid tổng số
Hàm lượng lipid được xỏc định bằng phương phỏp Soxhlet [2].
* Nguyờn tắc
Dựa vào khả năng hoà tan của lipid trong dung mụi hữu cơ để chiết lipid cú trong hạt đậu xanh.
Dung mụi hữu cơ được sử dụng là petroleum ether.
* Tiến hành
Hạt đậu xanh được sấy khụ ở 700C đến khối lượng khụng đổi, nghiền
ether, lắc đều trong 10 phỳt, bảo quản mẫu ở 40C trong 24 giờ. Sau đú mang
đi li tõm 12000 vũng/phỳt ở 40C trong 20 phỳt, loại bỏ dịch. Lặp lại quy trỡnh
như trờn 3 lần.
Hàm lượng lipid tớnh bằng hiệu số khối lượng mẫu trước và sau khi chiết phần trăm khối lượng khụ.
%L = a − b *100%
a
Trong đú: % L - % của lipid
a - khối lượng mẫu trước khi chiết b - khối lượng mẫu sau khi chiết
2.2.1.2. Định lƣợng protein
Định lượng protein tan trong hạt đậu xanh theo phương phỏp Lowry [2].
* Nguyờn tắc
Dựa vào cường độ màu xanh của phức chất đồng, protein khử hỗn hợp phosphomolipdate - phosphovonphramate (thuốc thử Foling - Ciocalteau). Cường độ màu tỷ lệ thuận với hàm lượng protein.
* Lập đồ thị chuẩn định lƣợng protein
Nguyờn liệu và hoỏ chất: Albumin tiờu chuẩn 100%.
Dung dịch A: Na2CO3 2% trong NaOH 0,1N.
Dung dịch B: CuSO4 0,5% trong Natri, kali tactrate 1%.
Dung dịch C: 49 ml dung dịch A : 1 ml dung dịch B. Thuốc thử Foling.
Pha dung dịch albumin 0,02% từ albumin gốc tinh khiết 100%. Lấy 6 ống nghiệm, đỏnh số thứ tự từ 1 đến 6, cho cỏc chất tham gia phản ứng như trong bảng 2.2. Sau đú đo độ hấp thụ quang phổ ở bước súng 750 nm.
Bảng 2.2. Xõy dựng đường chuẩn định lượng protein theo Lowry Cỏc ống nghiệm Húa chất 1 2 3 4 5 6 Protein 0,02% (ml) 0,0 0,2 0,4 0,6 0,8 1,0 Nƣớc cất (ml) 1,0 0,8 0,6 0,4 0,2 0,0 Lƣợng protein (mg) 0,00 0,04 0,08 0,12 0,16 0,20 Dung dịch C (ml) 4 4 4 4 4 4 Thuốc thử Folin (ml) 0,5 0,5 0,5 0,5 0,5 0,5 Kết quả đo OD ở 750 nm 0,00 0,11 0,20 0,31 0,39 0,49
Đồ thị chuẩn định lượng protein theo phương phỏp Lowry được thể hiện như hỡnh 2.2. A 0,6 0,5 0,49 0,4 0,39 0,3 0,31 0,2 0,20 0,1 0,11 0 0,00 0 0,04 0,08 0,12 0,16 0,2 mg/ml
* Tiến hành định lƣợng
Dựng cỏc dung dịch đệm phosphate citrate (pH = 10), NaCl 1M và
nước cất để chiết protein tan cú trong hạt. Mẫu sấy khụ tuyệt đối ở 1050C,
nghiền mịn, cõn 0,05 g bột mẫu cho vào ống eppendorf 2 ml, thờm 1,5 ml
dung dịch đệm chiết, lắc đều trong 10 phỳt, bảo quản mẫu ở 40C trong 24 giờ.
Sau đú mang đi li tõm 12000 vũng/phỳt ở 40C trong 20 phỳt, thu lấy dịch. Lặp
lại quy trỡnh như trờn 3 lần nhưng lần thứ hai chỉ cần để lạnh trong 8 - 10 giờ, lần ba là 6 - 8 giờ. Sau khi chiết bằng dung dịch đệm phosphate citrate (pH = 10), tiếp tục tiến hành chiết bằng dung dịch NaCl 1M và nước cất. Dịch chiết chứa protein hoà tan đem xỏc định hàm lượng cựng protein chuẩn là albumin huyết thanh bũ theo phương phỏp quang phổ hấp thụ bước súng 750 nm với thuốc thử Foling. Đơn vị tớnh hàm lượng protein là phần trăm khối lượng khụ. Hàm lượng protein được xỏc định dựa trờn đồ thị chuẩn định lượng protein theo phương phỏp Lowry (hỡnh 2.2). Cỏch tớnh hàm lượng protein:
%Pr = a.H *100%
g
Trong đú: a: số đo trờn mỏy quang phổ
H : hệ số pha loóng G : số mg mẫu phõn tớch
2.2.2. Phƣơng phỏp sinh học phõn tử
2.2.2.1. Phƣơng phỏp tỏch chiết DNA tổng số
Quy trỡnh tỏch chiết và làm sạch DNA tổng số theo Gawel và Jarret (1991) [40] như sau:
(1) Lấy 200mg lỏ non nghiền trong nitơ lỏng thành bột mịn.
(2) Bổ sung 0,8 ml đệm rửa (Tris HCl 1M, EDTA 0,5M, pH=8, Sobitol 2M,
NaH2PO4 0,4 %, H2O), li tõm 15 phỳt tốc độ 12000 vũng /phỳt, loại bỏ dịch
(3)Thờm 700 μl đệm tỏch (Tris HCl 1M, pH=8, NaCl 5M, EDTA 0,5M,
CTAB 4%, H2O), trộn nhẹ. Ủ 650C ớt nhất 1 giờ, 5 phỳt lắc đều 1 lần, lấy ra
để ở nhiệt độ phũng 5 phỳt.
(4) Thờm 600 μl chloroform : isoamyl (24:1), trộn đều 20 phỳt. (5) Li tõm 13000 vũng/phỳt trong 10 phỳt.
(6) Hỳt 500 μl dịch trong sang ống 1,5 ml, bỏ tủa.
(7) Thờm 500 μl isoprropanol, trộn nhẹ đặt lờn đỏ chờ cú tủa trắng.
(8) Li tõm 13000 vũng /phỳt trong 5 phỳt, bỏ dịch, ỳp xuống giấy cho khụ. (9) Bổ sung 300 μl cồn 70% bỳng nhẹ.
(10) Li tõm 13000 vũng/phỳt, 5 phỳt, loại bỏ cồn. (11) Làm khụ DNA bằng mỏy speed vac.
(12) Hoà tan DNA trong H2O khử ion.
2.2.2.2. Phƣơng phỏp xỏc định hàm lƣợng và độ tinh sạch DNA tổng số
Chỳng tụi tiến hành định lượng và kiểm tra độ tinh sạch của DNA tỏch chiết được bằng 2 phương phỏp.
* Phương phỏp quang phổ hấp thụ
Nguyờn tắc: Dựa vào sự hấp thụ mạnh ỏnh sỏng tử ngoại ở bước súng 260 nm của cỏc base purin và pyrimidin. Giỏ trị mật độ quang ở bước súng 260 nm (A260) của cỏc mẫu cho phộp xỏc định hàm lượng acid nucleic trong mẫu dựa vào mối tương quan: một đơn vị A260 tương ứng với nồng độ 50 ng/àl cho dung dịch chứa DNA sợi đụi.
Hàm lượng DNA (ng/àl) = A260 x 50 x hệ số pha loóng
Để kiể m tra độ tinh sạch của mẫu DNA tỏch chiết được, chỳng tụi tiến hành đo thờm giỏ trị mật độ quang ở bước súng 280 nm (A280). Độ tinh sạch được thể hiện ở tỷ số A260/A280. Một dung dịch acid nucleic được coi là sạch khi tỷ số A260/A280 dao động trong khoảng 1,8 - 2,0.
* Phương phỏp điện di DNA tổng số trờn gel agarose
Điện di kiểm tra DNA tổng số của mẫu thớ nghiệm trờn gel agarose 0,8% (0,8 g agarose trong 100 ml dung dịch TAE 1X). Sản phẩm điện di được nhuộm bằng dung dịch ethydium bromide, soi và chụp ảnh dưới ỏnh sỏng cực tớm.
Dựa vào hỡnh ảnh điện di cú thể đỏnh giỏ nồng độ và độ tinh sạch của DNA trong mẫu thớ nghiệm đó tỏch
chiết.
2.2.2.3. Phƣơng phỏp RAPD
Phản ứng RAPD được tiến hành với cỏc mồi ngẫu nhiờn theo phương phỏp của Foolad và cs (1990) [39]. Sử dụng 10 mồi ngẫu nhiờn được tổng hợp bởi hóng Invitrogen, mỗi mồi dài 10 nucleotide, thụng tin về trỡnh tự cỏc mồi sử dụng được trỡnh bày trong bảng 2.3.
Bảng 2.3. Trỡnh tự nucleotide của 10 mồi sử dụng trong nghiờn cứu
Tờn
mồi Trỡnh tự mồi
Tờn
mồi Trỡnh tự mồi
OPP08 5’ACATCGCCCA 3’ RA159 5’AACCGACGGG 3’
OPV06 5’ACGCCCACGT3’ RA50 5’GCTGTGCCAG 3’
OPD13 5’GGGGTGACGA3’ RA32 5’GTGAGGCGTC 3’
OPB10 5CTGCTGGGAC’3’ OPA15 5’GACACAGCCC3’
RA142 5’CAATCGCCGT 3’ RA40 5’GGCGGACTGT3’
Phản ứng RAPD được thực hiện trong 25àl dung dịch và sản phẩm RAPD được điện di trờn gel agarose 1,8%, nhuộm ethidium bromide và chụp ảnh.
Thành phần và chu trỡnh nhiệt phản ứng RAPD được trỡnh bày trong bảng 2.4 và 2.5. Bảng 2.4. Thành phần phản ứng RAPD STT Thành phần Thể tớch (àl) 1 Nước cất khử trựng 17 2 Dung dịch đệm 10X 2,0 3 MgCl2 (2,5mM) 2,0 4 dNTPs (2,5 mM) 1,2 5 Mồi (10 àM) 1,6
6 Taq-polymerase (5U/1àl) 0,4
8 DNA mẫu (10 ng) 0,8
Tổng 25
Phản ứng PCR- RAPD thực hiện trong mỏy PCR- Thermal Cycler PTC 100 theo chu kỳ nhiệt được trỡnh bày ở bảng 2.5 như sau:
Bảng 2.5. Chu trỡnh nhiệt của phản ứng RAPD
Bƣớc Phản ứng Nhiệt độ (0C) Thời gian Chu kỳ
1 Biến tớnh 94 3 phỳt 1
2 Biến tớnh 92 1 phỳt
45
3 Gắn mồi 35 45 giõy
4 Kộo dài chuỗi 72 1 phỳt
5 Hoàn tất kộo dài 72 10 phỳt 1
x
2.2.2.4. Phõn tớch số liệu RAPD
Dựa vào hỡnh ảnh điện di sản phẩm RAPD, sự xuất hiện cỏc băng điện di được ước lượng kớch thước và thống kờ cỏc băng điện di với từng mồi ở từng mẫu nghiờn cứu. Sự xuất hiện hay khụng xuất hiện cỏc băng điện di được tập hợp để phõn tớch số liệu theo nguyờn tắc: Số 1- xuất hiện phõn đoạn DNA và số 0 - khụng xuất hiện phõn đoạn DNA. Cỏc số liệu này được xử lý trờn mỏy tớnh theo phần mềm NTSYS pc version 2.0 (USA, 1998) để xỏc định quan hệ di truyền của cỏc giống đậu xanh.
2.2.3. Phƣơng phỏp xử lý kết quả và số liệu
Mỗi thớ nghiệm được nhắc lại 3 lần. Sử dụng toỏn thống kờ để xỏc định
trị số thống kờ như trung bỡnh mẫu ( x ), phương sai (σ2), độ lệch chuẩn (σ),
và sai số trung bỡnh mẫu ( S ), với n ≤ 30, α = 0,05. Cỏc số liệu được xử lý
trờn
Chƣơng 3
KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN
3.1. ĐẶC ĐIỂM HèNH THÁI, HOÁ SINH HẠT CỦA CÁC GIỐNGĐẬU XANH NGHIấN CỨU ĐẬU XANH NGHIấN CỨU
Nhằm đỏnh giỏ chất lượng hạt của cỏc giống đậu xanh nghiờn cứu, chỳng tụi đó tiến hành phõn tớch đặc điểm hỡnh thỏi, khối lượng hạt, xỏc định hàm lượng protein, lipid trong hạt của cỏc giống đậu xanh nghiờn cứu.
3.1.1. Đặc điểm hỡnh thỏi và khối lƣợng 1000 hạt của 30 giống đậu xanh
Hỡnh thỏi và khối lượng hạt là một trong những đặc tớnh quan trọng được quan tõm trong cụng tỏc chọn tạo giống đậu xanh.
Kết quả nghiờn cứu một số đặc điểm hỡnh thỏi và khối lượng 1000 hạt của cỏc giống đậu xanh nghiờn cứu được trỡnh bày ở bảng 3.1.
Qua bảng 3.1, chỳng tụi rỳt ra một số nhận xột về đặc điểm hỡnh thỏi của 30 giống đậu xanh như sau:
Về khối lƣợng 1000 hạt: Khối lượng hạt của cỏc giống đậu xanh khỏc nhau là khỏc nhau, khối lượng 1000 hạt phụ thuộc vào kớch thước và độ đồng đều của hạt. Kớch thước hạt lớn thỡ khối lượng 1000 hạt sẽ càng cao. Khối lượng hạt của 30 giống đậu xanh dao động từ 40,27g đến 65,44g.
Trong cỏc giống đậu xanh nghiờn cứu thỡ giống T8 khối lượng hạt cao nhất 65,44g, thấp nhất là giống T15 cú khối lượng 40,27g. Cú thể xếp theo thứ tự từ cao đến thấp về khối lượng 1000 hạt của cỏc giống đậu xanh như sau: T8 > T14 > T19 > T22 > T5 > T12 > T2 > T21 > T27 > T24 > T6 > T25> T13 > T11 > T9 > T26 > T23 > T4 > T29 > T1 > T10 > T13 > T7 > T3 > T20 > T28 > T18 > T30 > T17 > T15.
Khối lượng 1000 hạt là một trong cỏc yếu tố quan trọng cấu thành năng suất của cõy đậu xanh. Khối lượng hạt cú thể thay đổi do chế độ chăm súc, mựa vụ và điều kiện mụi trường.
Bảng 3.1. Đặc điểm hỡnh thỏi và khối lượng 1000 hạt của 30 giống đậu xanh
TT Tờn giống Màu gốc thõn mầm Hỡnh dạng hạt Màu vỏ hạt P 1000 hạt (g)
1 T1 Tớm Bầu dục Xanh mốc 50,24 ± 0,84 2 T2 Tớm Trụ Xanh mốc 55,00 ± 0,20 3 T3 Tớm Trụ Xanh mốc 47,68 ± 0,34 4 T4 Xanh Trụ Xanh mốc 51,30 ± 0,27 5 T5 Xanh ễ van Xanh búng 57,30 ± 0,48 6 T6 Tớm Bầu dục Xanh mốc 53,00 ± 0,20 7 T7 Xanh ễ van Xanh mốc 48,10 ± 0,44 8 T8 Tớm Trụ Xanh búng 65,44 ± 0,43
9 T9 Xanh ễvan Xanh búng 52,12 ± 0,45 10 T10 Xanh Bầu dục Xanh mốc 48,35 ± 0,48 11 T11 Xanh ễ van Xanh búng 52,20 ± 0,55 12 T12 Tớm ễ van Xanh mốc 57,32 ± 0,33 13 T13 Tớm Trụ Xanh mốc 48,25 ± 0,57 14 T14 Xanh Bầu dục Xanh búng 63,48 ± 0,53 15 T15 Tớm ễ van Xanh mốc 40,27 ± 0,26
16 T16 Tớm Bầu dục Xanh mốc 52,38 ± 0,33 17 T17 Xanh Trụ Vàng 42,45 ± 0,28 18 T18 Xanh Bầu dục Xanh búng 44,26 ± 0,32 19 T19 Xanh Trụ Xanh mốc 60,17 ± 0,47 20 T20 Xanh ễ van Vàng 47,25 ± 0,55 21 T21 Xanh Trụ Xanh mốc 54,30 ± 0,47 22 T22 Xanh Trụ Xanh mốc 58,00 ± 0,60