(Luận án tiến sĩ) ảnh hưởng của nhiệt độ và co2 cao lên tăng trưởng và phát triển của tôm sú (penaeus monodon fabricius, 1798) và tôm thẻ chân trắng (litopenaeus vannamei boone, 1931)

BỘ GIÁO DỤC VÀ ĐÀO TẠO TRƯỜNG ĐẠI HỌC CẦN THƠ ĐỖ VĂN BƯỚC ẢNH HƯỞNG CỦA NHIỆT ĐỘ VÀ CO2 CAO LÊN TĂNG TRƯỞNG VÀ PHÁT TRIỂN CỦA TÔM SÚ (Penaeus monodon Fabricius, 1798) VÀ TÔM THẺ CHÂN TRẮNG (Litopenaeus vannamei Boone, 1931) LUẬN ÁN TIẾN SĨ NGÀNH NUÔI TRỒNG THỦY SẢN 2021 luan an BỘ GIÁO DỤC VÀ ĐÀO TẠO TRƯỜNG ĐẠI HỌC CẦN THƠ ĐỖ VĂN BƯỚC ẢNH HƯỞNG CỦA NHIỆT ĐỘ VÀ CO2 CAO LÊN TĂNG TRƯỞNG VÀ PHÁT TRIỂN CỦA TÔM SÚ (Penaeus monodon Fabricius, 1798) VÀ TÔM THẺ CHÂN TRẮNG (Litopenaeus vannamei Boone, 1931) LUẬN ÁN TIẾN SĨ NGÀNH NUÔI TRỒNG THỦY SẢN MÃ NGÀNH: 9620301 CÁN BỘ HƯỚNG DẪN GS.TS NGUYỄN THANH PHƯƠNG PGS.TS CHÂU TÀI TẢO 2021 luan an THÔNG TIN TỔNG QUÁT Họ tên Nghiên cứu sinh: Đỗ Văn Bước Giới tính: Nam Ngày tháng năm sinh: 23-08-1982 Nơi sinh: An Minh - Kiên Giang Điện thoại: 0917488188 Đơn vị công tác: Chi cục Thủy sản tỉnh Kiên Giang Địa nay: Số 113, đường Trần Huy Liệu, thành phố Rạch Giá, tỉnh Kiên Giang Tốt nghiệp Đại học ngành: Nuôi trồng thủy sản Năm: 2005 Tại: Trường Đại học Cần Thơ Tốt nghiệp Thạc sĩ ngành: Nuôi trồng thủy sản Năm: 2010 Tại: Trường Đại học Cần Thơ Hình thức đào tạo tiến sĩ: Không tập trung Thời gian đào tạo: 04 năm Tên đề cương tiến sĩ: Ảnh hưởng nhiệt độ CO2 cao lên tăng trưởng phát triển tôm sú (Penaeus monodon Fabricius, 1798) tôm thẻ chân trắng (Litopenaeus vannamei Boone, 1931) Chuyên ngành: Nuôi trồng thủy sản Mã ngành: 9620301 Người hướng dẫn chính: GS.TS Nguyễn Thanh Phương Địa chỉ: Trường Đại học Cần Thơ i luan an LỜI CẢM TẠ Trước hết, tơi xin trân trọng bày tỏ lịng biết ơn sâu sắc đến GS.TS Nguyễn Thanh Phương, GS.TS Đỗ Thị Thanh Hương PGS.TS Châu Tài Tảo tận tình hướng dẫn, động viên, giúp đỡ tạo điều kiện thuận lợi cho học tập, nghiên cứu hồn thành nội dung Luận án Tiến sĩ Tơi xin gửi lời cảm ơn chân thành đến Ban Giám hiệu, Ban Chủ nhiệm Khoa Thủy sản Khoa Sau Đại học, Trường Đại học Cần Thơ; Thầy, Cô Bộ môn Dinh dưỡng Chế biến Thủy sản Bộ môn Thủy sinh học ứng dụng, Khoa Thủy sản, Trường Đại học Cần Thơ tạo điều kiện thuận lợi cho tơi hồn thành chương trình học tập nghiên cứu Cám ơn Dự án hợp tác kỹ thuật (Teachnical Cooporation) Chính phủ Nhật Bản hỗ trợ kinh phí thực nghiên cứu Xin gửi lời cảm ơn đến em sinh viên, học viên cao học hỗ trợ tơi q trình thực nghiên cứu Xin chân thành cảm ơn anh, chị bạn nghiên cứu sinh Khóa 2013, 2014 2015 gắn bó, hỗ trợ suốt thời gian học tập Cuối xin biết ơn sâu sắc đến gia đình, bạn bè, đồng nghiệp người thân chia sẻ, giúp đỡ, động viên tinh thần để tơi có động lực hồn thành tốt kết học tập nội dung nghiên cứu Luận án Tiến sĩ Đỗ Văn Bước ii luan an TÓM TẮT Nghiên cứu thực với nội dung gồm (i) khảo sát biến động yếu tố môi trường nước ao nuôi tôm thâm canh, (ii) ảnh hưởng nhiệt độ CO2 cao lên phát triển tôm sú (Penaeus monodon Fabricius, 1798) tôm thẻ chân trắng (Litopenaeus vannamei Boone, 1931) gồm phát triển phôi, tỉ lệ nở, chiều dài tỉ lệ sống ấu trùng đến PL15, tăng trưởng phát triển giai đoạn ấu niên tiền trưởng thành Các tiêu môi trường nước (nhiệt độ, pH, oxy hòa tan, CO2, độ kiềm độ mặn) ao nuôi tôm thu thập giai đoạn chu kỳ nuôi gồm đầu vụ, vụ cuối vụ, tương ứng với thời điểm sau thả giống 15-20 ngày, 50-60 ngày 80-90 ngày Kết cho thấy ao tôm sú nhiệt độ dao động 29,3-29,7ºC, pH từ 7,82-8,04, oxy hòa tan 6,65-6,75 mg/L, CO2 3,18-3,50 mg/L, độ kiềm 79-102 mg/L độ mặn 5,33-15,0‰ Ao ni tơm thẻ chân trắng nhiệt độ dao động 28,9-29,5ºC, pH 7,82-8,07, oxy hòa tan 5,33-6,08 mg/L, CO2 4,16-4,70 mg/L, độ kiềm 145-191 mg/L độ mặn 10-11‰ Kết nghiên cứu ảnh hưởng nhiệt độ CO2 lên tôm sú cho thấy, tỉ lệ nở cao nhiệt độ 28oC (92,2%) 30oC (90,3%), nhiệt độ 34oC trứng không nở; thời gian phát triển phôi ngắn chiều dài ấu trùng (PL15) dài nhiệt độ 32oC, tỉ lệ sống PL15 cao 28oC (50,8%) Tỉ lệ nở tỉ lệ sống tôm giảm đáng kể hàm lượng CO2 cao, hàm lượng 44-45 mg/L (tương đương pH=6,8) trứng không nở; hàm lượng CO2 cao phôi chậm phát triển chiều dài ấu trùng nhỏ so với nghiệm thức khác Tỉ lệ nở tỉ lệ sống bị ảnh hưởng tương tác nhiệt độ CO2, nhiệt độ cao CO2 cao giảm đáng kể tỉ lệ nở tỉ lệ sống PL15, chiều dài ấu trùng khơng bị ảnh hưởng tương tác nhiệt độ kết hợp CO2 Ở giai đoạn ấu niên tôm sú cho thấy tăng trưởng khối lượng chiều dài cao nghiệm thức 30-31oC thấp 27-28oC; tỉ lệ sống cao nghiệm thức 27-28oC (65%) nghiệm thức không kiểm soát nhiệt độ (63,7%), nhiệt độ 36-37oC sau 15 ngày tơm chết hồn tồn; glucose, enzyme tiêu hóa tăng cao nhiệt độ cao (33-34oC) Tăng trưởng, tỉ lệ sống, enzyme tiêu hóa giảm hàm lượng CO2 tăng cao, hàm lượng glucose cao nghiệm thức CO2 43,9 mg/L Các tiêu tăng trưởng, enzyme tiêu hóa, glucose, tỉ lệ sống tôm không bị ảnh hưởng tương tác nhiệt độ CO2 Giai đoạn tiền trưởng thành nhiệt độ 33-34°C tăng trưởng cao thấp nhiệt độ 27-28oC; hoạt tính enzyme tiêu hoá, glucose gia tăng theo gia tăng nhiệt độ; tỉ lệ sống tôm sú cao nghiệm thức khơng kiểm sốt nhiệt độ (68,3%) thấp 36-37oC (0%), nhiệt độ cao ảnh hưởng đến lớp biểu bì mang tơm sú Hàm lượng CO2 cao làm giảm tiêu tăng trưởng, tỉ lệ sống, hoạt tính enzyme tiêu hóa tăng iii luan an hàm lượng glucose máu tôm; lớp biểu bì mang tơm hàm lượng CO2 cao (44,7 mg/L) trở nên mỏng biến mất; nhiệt độ cao kết hợp với CO2 không ảnh hưởng tương tác lên tăng trưởng, enzyme tiêu hóa, glucose, tỉ lệ sống tơm sú Tơm thẻ chân trắng có tỉ lệ nở, tỉ lệ sống ấu trùng đến PL15 cao nghiệm thức 28oC 30oC, nhiệt độ cao thời gian phát triển phôi ngắn chiều dài ấu trùng dài hơn; hàm lượng CO2 cao làm giảm tỉ lệ nở, tỉ lệ sống, chiều dài ấu trùng kéo dài thời gian phát triển phôi; kết hợp nhiệt độ CO2 không ảnh hưởng tương tác lên tỉ lệ nở, tỉ lệ sống, chiều dài ấu trùng Giai đoạn ấu niên tôm tăng trưởng nhanh nhiệt độ 36-37oC 33-34oC, tỉ lệ sống giảm thấp; enzyme tiêu hóa, glucose gia tăng theo nhiệt độ cao Tăng trưởng, tỉ lệ sống, enzyme tiêu hóa giảm hàm lượng CO2 tăng cao, hàm lượng glucose cao hàm lượng CO2 45,6 mg/L (37,5 mg/100 mL); khơng có ảnh hưởng tương giác nhiệt độ cao CO2 lên tăng trưởng, hoạt tính enzyme tiêu hóa glucose, tỉ lệ sống tôm Tương tự, giai đoạn tiền trưởng thành nhiệt độ cao tôm phát triển nhanh, nhiệt độ 33-34°C khối lượng chiều dài đạt cao (13,8 g 11,3 cm) thấp nhiệt độ 27-28oC; hoạt tính enzyme tiêu hố hàm lượng glucose tăng nhiệt độ cao (33-34oC); tỉ lệ sống cao nghiệm thức khơng kiểm sốt nhiệt độ (79,2%), thấp nhiệt độ 36-37oC (2,50±1,4%); nhiệt độ 33-34oC ảnh hưởng đến thay đổi cấu trúc mang tôm thẻ chân trắng so với nhiệt độ thấp Trong giai đoạn hàm lượng CO2 cao gây ảnh hưởng đáng kể lên tôm thẻ chân trắng giảm tăng trưởng, ức chế hoạt tính enzym tiêu hóa, gia tăng tình trạng căng thẳng (hàm lượng glucose máu cao) tỉ lệ sống tôm giảm (15,8% hàm lượng 44,1 mg/L); có thay đổi đặc điểm cấu trúc mang tôm tiếp xúc với hàm lượng CO2 cao số sợi mang khơng cịn tồn lớp biểu bì, khoảng khơng lớp biểu bì khơng diện so với mang tôm tiếp xúc hàm lượng CO2 thấp; nhiệt độ cao kết hợp với CO2 có ảnh hưởng tương tác lên tăng trưởng tơm, hoạt tính enzyme tiêu hóa, glucose, tỉ lệ sống khơng bị ảnh hưởng Như vậy, nhiệt độ CO2 cao tác động tiêu cực đến trình tăng trưởng, tỉ lệ nở, tỉ lệ sống số tiêu sinh lý tôm sú tôm thẻ chân trắng giai đoạn từ phôi đến tiền trưởng thành Từ khoá: CO2, nhiệt độ, tăng trưởng, tỉ lệ sống, tôm sú, tôm thẻ chân trắng iv luan an ABSTRACT This study were consisted of a survey on the fluctuation of water parameters in intensive shrimp ponds (temperature, pH, dissolved oxygen, carbon dioxide, alkalinity, salinity, and ammonia); and the effects of elevated temperature and carbon dioxide (CO2) on embryo development, hatching rate, survival rate of Post larvae 15 (PL15), growth rate of juvenile and sub-adult of black tiger shrimp and white leg shrimp Water parameters were collected at time points of a production cycle including after stocking juveniles 15-20 days, 50-60 days and 80-90 days, respectively The survey showed that in black tiger shrimp ponds had temperature, pH, dissolved oxygen, carbon dioxide, alkalinity and salinity varied from 29.3-29.7°C, 6.65-6.75 mg/L, 3.18-3.5 mg/L, 79-102 mg/L and 5.33-15.0‰, respectively These parameters were recorded in white leg shrimp ponds as temperature from 28.9 to 29.5ºC, pH 7.82-8.07, dissolved oxygen 5.336.08 mg/L, CO2 4.16-4.70 mg/L, alkalinity 145-191 mg/L and salinity 10-11‰ The experiment on the effects of temperature and CO2 on black tiger shrimp showed that the highest hatching rate was at 28°C (92.2%) followed by 30°C (with 90.3%), and the egg was not hatched at 34°C; the highest survival rate of PL15 was at 28°C (50.8%) and the embryo developed in a short period of time and the length of PL15 was longer at 32°C The hatching rate and survival rate of shrimp decreased significantly as concentration of CO2 was high, the egg was unhatched at 44-45 mg/L (pH=6.8); high concentration of CO2 led to the embryo stunt and the length of larvae was shorter than other treatments The hatching rate and the survival rate were interactively affected by temperature and CO2, high temperature and high concentration of CO2 caused the decline of the hatching rate and survival rate of PL15 significantly, whereas the length of larvae was not affected by the interaction of temperature and CO2 Rearing black tiger shrimp from PL15 to PL60 indicated that weight and length were highest at 30-31°C treatment and lowest at 27-28°C treatment; survival rate was highest at 27-28°C treatment (65%) and ambient temperature (63.7%), shrimp were entirely mortal at 36-37°C after 15 days Glucose and digestive enzyme increased at high temperature (33-34°C) In addition, growth, survival rate and digestive enzymes decreased as concentration of CO2 increased; glucose was highest at 43.9 mgCO2/L Growth indicators, digestive enzyme, glucose, and survival rate were not affected by the interaction between temperature and CO2 In the period of PL60 to PL120, growth gained highest at 33-34°C whilst lowest at 27-28°C; active digestive enzyme, glucose increased as the temperature increased, the survival rate of black tiger shrimp reached highest at ambient temperature (68.3%) and lowest at 36-37°C (0%), high temperature effected on the epidermis of black tiger v luan an shrimp gills High concentration of CO2 resulted in the decline of growth indicators, survival rate, active digestive enzyme and increase of glucose in blood; at 44.7 mgCO2/L, the epidermis of shrimp gills became thin and disappeared; high temperature in combination with CO2 had no effect on growth, digestive enzyme, glucose and survival rate of black tiger shrimp White leg shrimp obtained the highest hatching rate and survival rate of PL15 were at 28oC and 30oC, high temperature shortened embryo development and lengthen larvae length; high CO2 concentration decreased hatching rate, survival rate, larvae length and prolonged embryo development, the combination of temperature and CO2 had no impact on hatching rate, survival rate, larvae length The stage of juvenile, shrimp grew fast at 36-37oC and 3334oC, but the survival rate was low; digestive enzyme, glucose increased as temperature rose Growth rate, survival rate, digestive enzyme declined when CO2 increased; the highest glucose concentration at 45.6 mgCO2/L (37.5 mg/100 mL), and there was no impact of the interaction of high temperature and CO2 on growth, active digestive enzyme, glucose, and survival rate of shrimp Similarly, at the stage of sub-adult, shrimp grew fast as temperature increased; at 33-34oC, shrimp had the highest weight and was longest (13.8 g and 11.3 cm) and lowest at 27-28oC; active digestive enzyme and glucose concentration increased at high temperature (33-34oC); the highest survival rate at ambient temperature (79.2%), lowest at 36-37oC (2.50±1.4%); at 33-34oC, gill structure of white leg shrimp was impacted compared to lower temperature In this stage, high concentration of CO2 had significant effect on white leg shrimp such as stunting, deactivated digestive enzyme, stress (glucose concentration was high) and the survival rate decreased (15.8% at the concentration 44.1 mgCO2/L); there was a significant change in shrimp gill structure when exposed to high concentration of CO2 as couple fiber of gills lost their epidermis, the space beneath the epidermis disappeared compared to those exposed to low concentration of CO2; high temperature combined with CO2 interactively impacted on shrimp growth whereas active digestive enzyme, glucose, survival rate were not Accordingly, high temperatures and high concentrations of CO2 resulted in negative effects on growth, hatching rate, survival rate and several physiological indicators of black tiger shrimp and white leg shrimp from embryo development to pre-mature stage Key words: CO2, growth rate, Liptopenaeus vannamei, Penaeus monodon, survival rate, temperature vi luan an LỜI CAM KẾT KẾT QUẢ Tơi xin cam kết Luận án hồn thành dựa kết nghiên cứu khuôn khổ Dự án ODA-TC2016-3 (Nhật Bản) Dự án có quyền sử dụng kết Luận án để phục vụ cho Dự án Ngày … tháng … năm 2021 TÁC GIẢ Đỗ Văn Bước vii luan an (Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931) MỤC LỤC THÔNG TIN TỔNG QUÁT i LỜI CẢM TẠ ii TÓM TẮT iii ABSTRACT v LỜI CAM KẾT KẾT QUẢ vii MỤC LỤC viii DANH SÁCH BẢNG xi DANH SÁCH HÌNH xv DANH MỤC TỪ VIẾT TẮT xviii Phần 1: GIỚI THIỆU 1.1 Đặt vấn đề 1.2 Mục tiêu nghiên cứu 1.3 Ý nghĩa luận án 1.4 Nội dung nghiên cứu 1.5 Điểm luận án Phần 2: TỔNG QUAN TÀI LIỆU 2.1 Đặc điểm tôm sú tôm TCT 2.1.1 Vị trí phân loại tôm sú tôm TCT 2.1.2 Vịng đời tơm sú tôm TCT 2.1.3 Các giai đoạn phát triển tôm 2.2 Tình hình ni tôm sú tôm TCT giới 2.3 Tình hình ni tơm sú tôm TCT Việt Nam 10 2.4 Một số nghiên cứu ảnh hưởng nhiệt độ lên giáp xác 11 2.5 Nghiên cứu ảnh hưởng CO2 lên thủy sinh vật 12 2.6 Một số nghiên cứu ảnh hưởng kết hợp nhiệt độ CO2 lên thủy sinh vật 14 2.7 Một số tiêu sinh lý tôm động vật giáp xác khác 15 2.7.1 Glucose máu 15 2.7.2 Enzyme (men) tiêu hóa 16 2.7.3 Chức mang 17 Phần 3: PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU 18 viii (Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931) luan an (Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931) and unstirred layers The Journal of General Physiology, 69(6): 779 74 Habashy, M M., (2013) On the breeding behaviour and reproduction of the freshwater prawn, Macrobrachium rosenbergii (de Man 1879) (DecapodaCrustacea) under laboratory conditions Aquaculture Research, 44(3): 395– 403 75 Hall, M R., & Van Ham, E H., (1998) The effects of different types of stress on blood glucose in the giant tiger prawn Penaeus monodon Journal of the World Aquaculture Society, 29(3): 290–299 76 Hamasaki, K., (2003) Effects of temperature on the egg incubation period, survival and developmental period of larvae of the mud crab Scylla serrata (Forskål) (Brachyura: Portunidae) reared in the laboratory Aquaculture, 219(1–4): 561–572 77 Hans, S., Fehsenfeld, S., Treberg, J R., & Weihrauch, D ,(2014) Acid-base regulation in the Dungeness crab (Metacarcinus magister) Marine Biology, 161(5): 1179–1193 78 Harms, L., Frickenhaus, S., Schiffer, M., Mark, F C., Storch, D., Held, C., … Lucassen, M., (2014) Gene expression profiling in gills of the great spider crab Hyas araneus in response to ocean acidification and warming BMC Genomics, 15(1): 789 79 Harrington, A M., Tudor, M S., Reese, H R., Bouchard, D A., & Hamlin, H J., (2019) Effects of temperature on larval American lobster (Homarus americanus): Is there a trade-off between growth rate and developmental stability? Ecological Indicators, 96: 404–411 80 Hartnoll, R G., (2001) Growth in Crustacea - Twenty years on Hydrobiologia, 449(1): 111–122 81 Harvell, C D., Mitchell, C E., Ward, J R., Altizer, S., Dobson, A P., Ostfeld, Richard, S., & Samuel, M D., (2002) Climate warming and disease risks for terrestrial and marine biota Science, 296(5576): 2158–2163 82 Hauton, C., Tyrrell, T., & Williams, J., (2009) The subtle effects of sea water acidification on the amphipod Gammarus locusta Biogeosciences, 6(8): 1479– 1489 83 Henry, R P., Lucu, Č., Onken, H., & Weihrauch, D., (2012) Multiple functions of the crustacean gill: Osmotic/ionic regulation, acid-base balance, ammonia excretion, and bioaccumulation of toxic metals Frontiers in Physiology, 3: 431 84 Henry, R P., & Wheatly, M G., (1992) Interaction of respiration, ion regulation, and acid-base balance in the everyday life of aquatic crustaceans American Zoologist, 32: 407–416 85 Hernandez-Sandoval, P., Diaz-Herrera, F., Diaz-Gaxiola, J M., MartinezValenzuela, C., & Garcia-Guerrero, M., (2018) Effect of temperature on growth, survival, thermal behavior, and critical thermal maximum in the juveniles of Macrobrachium occidentale (Holthuis, 1950) (Decapoda: Caridea: Palaemonidae) from Mexico Journal of Crustacean Biology, 38(4): 483–488 86 Hewitt, D R., & Duncan, P F., (2001) Effect of high water temperature on the survival, moulting and food consumption of Penaeus (Marsupenaeus) japonicus (Bate, 1888) Aquaculture Research, 32(4): 305–313 87 Hines, A H., & Ruiz, G M., (1995) Temporal variation in juvenile blue crab mortality: Nearshore shallows and cannibalism in Chesapeake Bay Bulletin of Marine Science, 57(3): 884–901 88 Hoàng Ngọc Oanh Nguyễn Văn Âu, (1998) Khí Thủy Nhà 133 (Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931) luan an (Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931) xuất Giáo dục 89 Hoegh-Guldberg, O., Mumby, P J., Hooten, A J., Steneck, R S., Greenfield, P., Gomez, E., … Hatziolos, M E., (2007) Coral reefs under rapid climate change and ocean acidification Science (New York), 318(5857): 1737–1742 90 Hofer, R., & Schiemer, F., (1981) Proteolytic activity in the digestive tract of several species of fish with different feeding habits Oecologia, 48(3), 342– 345 91 Hoseinifar, S H., Dadar, M., & Ring, E., (2017) Modulation of nutrient digestibility and digestive enzyme activities in aquatic animals: The functional feed additives scenario Aquaculture Research, 48(8): 3987–4000 92 Jackson, C J, & Wang, Y.-G., (1998) Modelling growth rate of Penaeus monodon Fabricius in intensively managed ponds: effects of temperature, pond age and stocking density Aquaculture Research, 29(1), 27–36 93 Jackson, Christopher J, & Burford, M A., (2003) The effects of temperature and salinity on growth and survival of larval shrimp Penaeus semisulcatus (Decapoda: Penaeoidea ) Journal Of Crustacean Biology, 23(4): 819–826 94 James, P., Vasilyev, R., Siikavuopio, S., Kovatcheva, N., Samuelsen, T A., Mundheim, H., & Carlehög, M., (2013) The effects of varying the percentage of herring versus salmon protein in manufactured diets on the survival, meat content, hepatosomatic index and meat sensory quality of adult red king crab Paralithodes camtschaticus held in captivity Aquaculture, 416–417: 390–395 95 Johnston, D., & Freeman, J., (2005) Dietary preference and digestive enzyme activities as indicators of trophic resource utilization by six species of crab Biological Bulletin, 208(1) 96 Juarez, L M., Moss, S M., & Figueras, E., (2010) Maturation and larval rearing of the Pacific white shrimp, Penaeus vannamei In The Shrimp Book k (ed by V AldaySanz): 305–352 97 Kartamulia, I., & Rouse, D B., (1992) Survival and growth of marron cherax tenuimanus in outdoor tanks in the Southeastern USA Journal of the World Aquaculture Society, 23(2): 169–173 98 Keppel, E A., Scrosati, R A., & Courtenay, S C., (2012) Ocean acidification decreases growth and development in American lobster (Homarus americanus) larvae Journal of Northwest Atlantic Fishery Science, 44: 61–66 99 Khairy, H M., Shaltout, N A., El-Naggar, M F., & El-Naggar, N A., (2014) Impact of elevated CO2 concentrations on the growth and ultrastructure of noncalcifying marine diatom (Chaetoceros gracilis F.Schutt) Egyptian Journal of Aquatic Research, 40(3): 243–250 100 Khojasteh, Z., Davoodi, R., Vaghei, R G., & Nooryazdan, H., (2013) Survival, development and growth of whiteleg shrimp, Litopenaeus vannamei zoea fed with monoalgae (Chaetoceros and Tetraselmis) Diets World Journal of Fish and Marine Sciences, 5(5), 553–555 101 Kroeker, K J., Kordas, R L., Crim, R., Hendriks, I E., Ramajo, L., Singh, G S., … Gattuso, J.-P., (2013) Impacts of ocean acidification on marine organisms: quantifying sensitivities and interaction with warming Global Change Biology, 19(6): 1884–1896 102 Kuhn, A A., & Darnell, M Z., (2019) Elevated temperature induces a decrease in intermolt period and growth per molt in the lesser blue crab Callinectes similis Williams, 1966 (Decapoda: Brachyura: Portunidae) Journal of Crustacean Biology, 39(1): 22–27 103 Kumlu, M., Eroldogan, O T., & Aktas, M., (2000) Effects of temperature and 134 (Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931) luan an (Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931) salinity on larval growth, survival and development of Penaeus semisulcatus Aquaculture, 188(1–2): 167–173 104 Kumlu, M., & Eroldogan, T., (2000) Effects of temperature and substrate on growth and survival of Penaeus semisulcatus (decapoda: Penaeidae) postlarvae Turkish Journal of Zoology, 24(3): 337–341 105 Kumlu, Metin., (1999) Feeding and digestion in larval decapod crustaceans Turkish Journal of Biology, 23(2): 215–230 106 Kungvankij, P., L.B Tiro, Jr., B.J Pudadera, Jr., I.O Potestas, K.G Corre, E Borlongan, G.A Talean, L.F Bustilo, E.T Tech, A Unggui, T E C., (1985) Shrimp hatchery design, operation and management Bangkok, Thailand: Network of Aquaculture Centres in Asia, 88 p 107 Kurihara, H., (2008) Effects of CO2-driven ocean acidification on the early developmental stages of invertebrates Marine Ecology Progress Series, 373: 275–284 108 Kurihara, Haruko, & Ishimatsu, A., (2008) Effects of high CO2 seawater on the copepod (Acartia tsuensis) through all life stages and subsequent generations Marine Pollution Bulletin, 56(6): 1086–1090 109 Kurihara, Haruko, Matsui, M., Furukawa, H., Hayashi, M., & Ishimatsu, A., (2008) Long-term effects of predicted future seawater CO2 conditions on the survival and growth of the marine shrimp Palaemon pacificus Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, 367(1): 41–46 110 Kurihara, Haruko, Shimode, S., & Shirayama, Y., (2004) Effects of raised CO2 concentration on the egg production rate and early development of two marine copepods (Acartia steueri and Acartia erythraea) Marine Pollution Bulletin, 49(9–10): 721–727 111 Lagerspetz, K Y H., & Vainio, L A., (2006) Thermal behaviour of crustaceans Biological Reviews, 81(02): 237 112 Lazur, A., (2007) Growout pond and water quality management Journal for Food Safety and Applied Nutrition, 1: 7–8 113 Lee, P G., Smith, L L., & Lawrence, A L., (1984) Digestive proteases of Penaeus vannamei: Relationship between enzyme activity, size and diet Aquaculture, 42(3–4): 225–239 114 Li, E., Chen, L., Zeng, C., Chen, X., Yu, N., Lai, Q., & Qin, J G., (2007) Growth, body composition, respiration and ambient ammonia nitrogen tolerance of the juvenile white shrimp, Litopenaeus vannamei, at different salinities Aquaculture, 265(1–4): 385–390 115 Li, N., Zhao, Y., & Yang, J., (2007) Impact of waterborne copper on the structure of gills and hepatopancreas and its impact on the content of metallothionein in juvenile giant freshwater prawn Macrobrachium rosenbergii (Crustacea: Decapoda) Archives of Environmental Contamination and Toxicology, 52(1): 73–79 116 Liang, J., Li, J., Li, J., Liu, P., Zhao, F., Liu, D., & Dai, F., (2013) Effects of water temperature on the embryonic development, survival and development period of larvae of ridgetail white prawn (Exopalaemon carinicauda) reared in the laboratory Shengtai Xuebao/Acta Ecologica Sinica, 33(4):1142–1152 117 Liao, I C and Liu, F G., (1998) A brief review of nutritional studies for Penaeus monodon Advances in Tropical Aquaculture, 32(1): 79–85 118 Liao, I C., & Chien, Y.-H., (2011) The Pacific White Shrimp, Litopenaeus vannamei, in Asia: The World’s Most Widely Cultured Alien Crustacean In In the Wrong Place - Alien Marine Crustaceans: Distribution, Biology and 135 (Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931) luan an (Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931) Impacts: 489–519 119 Lin, W., Ren, Z., Mu, C., Ye, Y., & Wang, C., (2020) Effects of elevated pCO2 on the survival and growth of Portunus trituberculatus Frontiers in Physiology, 11: 750 120 Long, W C., Swiney, K M., Harris, C., Page, H N., & Foy, R J., (2013) Effects of Ocean acidification on juvenile Red King Crab (Paralithodes camtschaticus) and Tanner Crab (Chionoecetes bairdi) Growth, Condition, Calcification, and Survival PLoS ONE, 8(4), e60959 121 Long, W C., Van Sant, S B., Swiney, K M., & Foy, R J., (2017) Survival, growth, and morphology of blue king crabs: Effect of ocean acidification decreases with exposure time Journal of Marine Science, 74(4): 1033–1041 122 Lorenzon, S., (2005) Hyperglycemic stress response in Crustacea Invertebrate Survival Journal, 2(2): 132–141 123 Lorenzon, S., Giulianini, P G., Martinis, M., & Ferrero, E A., (2007) Stress effect of different temperatures and air exposure during transport on physiological profiles in the American lobster Homarus americanus Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Molecular & Integrative Physiology, 147(1): 94–102 124 Lowder, K B., Allen, M C., Day, J M D., Deheyn, D D., & Taylor, J R A., (2017) Assessment of ocean acidification and warming on the growth , calcification , and biophotonics of a California grass shrimp ICES Journal of Marine Science: 1–9 125 Ngô Văn Lực, (2013) Thử nghiệm mơ hình ni tơm he chân trắng (Litopenaeus vannamei Boone, 1931) suất cao Khánh Hòa Tạp chí Khoa học - Cơng nghệ Thuỷ sản: 42–48 126 Marcogliese, D J., (2008) The impact of climate change on the parasites and infectious diseases of aquatic animals Revue Scientifique et Technique, 27(2): 467–484 127 Martinez-Porchas, M., Martinez-Cordova, L T., & Ramos-Enriquez, R., (2009) Cortisol and Glucose : Reliable indicators of fish stress? Journal of Aquatic Sciences, 4: 158–178 128 Maus, B., Bock, C., & Pörtner, H O., (2018) Water bicarbonate modulates the response of the shore crab Carcinus maenas to ocean acidification Journal of Comparative Physiology B: Biochemical, Systemic, and Environmental Physiology, 188(5): 749–764 129 Mayor, D J., Matthews, C., Cook, K., Zuur, A F., & Hay, S., (2007) CO2induced acidification affects hatching success in Calanus finmarchicus Marine Ecology Progress Series, 350(11), 91–97 130 McDonald, M R., McClintock, J B., Amsler, C D., Rittschof, D., Angus, R A., Orihuela, B., & Lutostanski, K., (2009) Effects of ocean acidification over the life history of the barnacle Amphibalanus amphitrite Marine Ecology Progress Series, 385, 179–187 131 Meadows, A S., Ingels, J., Widdicombe, S., Hale, R., & Rundle, S D., (2015) Effects of elevated CO2 and temperature on an intertidal meiobenthic community Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, 469: 44– 56 132 Mercier, L., Palacios, E., Campa-Córdova, Á I., Tovar-Ramírez, D., Hernandez-Herrera, R., & Racotta, I S., (2006) Metabolic and immune responses in Pacific whiteleg shrimp Litopenaeus vannamei exposed to a repeated handling stress Aquaculture, 258(1): 633–640 136 (Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931) luan an (Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931) 133 Meseck, S L., Alix, J H., Swiney, K M., Long, W C., Wikfors, G H., & Foy, R J., (2016) Ocean acidification affects hemocyte physiology in the tanner crab (Chionoecetes bairdi) PLoS ONE, 11(2), e0148477 134 Metzger, R., Sartoris, F J., Langenbuch, M., & Pörtner, H O., (2007) Influence of elevated CO2 concentrations on thermal tolerance of the edible crab Cancer pagurus Journal of Thermal Biology, 32(3): 144–151 135 Michaelidis, B., Ouzounis, C., Paleras, A., & Pörtner, H O., (2005) Effects of long-term moderate hypercapnia on acid-base balance and growth rate in marine mussels Mytilus galloprovincialis Marine Ecology Progress Series, 293: 109–118 136 Mohanty, R K., (2001) Effect of pond aeration on growth and survival of Penaeus Fish Res., 5: 59–65 137 Montagna, M C., (2011) Effect of temperature on the survival and growth of freshwater prawns Macrobrachium borellii and Palaemonetes argentinus (Crustacea, Palaemonidae) Iheringia Série Zoologia, 101(3): 233–238 138 Motoh, H., (1981) Studies on the fisheries biology of the giant tiger prawn, Penaeus monodon in the Philippines Technical Report No Tigbauan,Iloilo, Philippines: Aquaculture Department, Southeast Asian FisheriesDevelopment Center., 128 p 139 Nagar, N., Pradesh, A., Godavari, E., & Pradesh, A., (2017) Water quality assessment of pacific white shrimp (Litopenaeus vannamei) in semi-intensive culture systems at villages of Prakasam district , Andhra Pradesh , India International Journal of Advanced Science and Research, 2(4): 123–129 140 Negro, C L., (2015) Histopathological effects of endosulfan to hepatopancreas, gills and ovary of the freshwater crab Zilchiopsis collastinensis (Decapoda: Trichodactylidae) Ecotoxicology and Environmental Safety, 113: 87–94 141 New, M B., (1995) Status of freshwater prawn farming: a review Aquaculture Research, 26(1): 1–54 142 Nguyễn Văn Chung, (2000) Cơ sở sinh học kỹ thuật sản xuất giống nhân tạo tôm sú Nhà xuất Nông nghiệp Hà Nội 71 trang 143 Nicholls, R.J., P.P Wong, V.R Burkett, J.O Codignotto, J.E Hay, R.F McLean, S R and C D W., (2007) Coastal systems and low-lying areas Climate Change 2007: Impacts, Adaptation and Vulnerability Contribution of Working Group II to the Fourth Assessment Report of the Intergovernmental Panel on Climate Change, M.L Parry, O.F Canziani, J.P Palutikof: 315–356 144 Niu, C., Lee, D., Goshima, S., & Nakao, S., (2003) Effects of temperature on food consumption, growth and oxygen consumption of freshwater prawn Macrobrachium rosenbergii (de Man 1879) postlarvae Aquaculture Research, 34(6): 501–506 145 Nonwachai, T., Purivirojku, W., Chuchird, N., & Limsuwan, C., (2011) Effects of dissolved oxygen levels on growth, survival and immune response of juvenile pacific white shrimp Litopenaeus vannamei Journal of Fisheries and Environment, 35(3): 1–10 146 O’Brien, C J., (1994) The effects of temperature and salinity on growth and survival of juvenile tiger prawns Penaeus esculentus (Haswell) Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, 183(1): 133–145 147 Ocampo, L., Patino, D., & Ramirez, C., (2003) Effect of temperature on hemolymph lactate and glucose concentrations in spiny lobster Panulirus interruptus during progressive hypoxia Journal of Experimental Marine 137 (Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931) luan an (Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931) Biology and Ecology, 296(1), 71–77 148 Pane, E., & Barry, J., (2007) Extracellular acid&base regulation during shortterm hypercapnia is effective in a shallow-water crab, but ineffective in a deepsea crab Marine Ecology Progress Series, 334: 1–9 149 Parado-Estepa, Fe D., Quinitio, Emilia T and Borlongan, E L ,(1996) Prawn hatchery operations (Rev ed.) Tigbauan, Iloilo, Philippines: Aquaculture Department, Southeast Asian Fisheries Development Center Development 45 150 Parado-Estepa, F D (1998) Survival of Penaeus monodon postlarvae and juveniles at different salinity and temperature levels Isr J Aquac.-Bamidgeh 50 (4): 174–183 151 Pascual, C., Gaxiola, G., & Rosas, C., (2003) Blood metabolites and hemocyanin of the white shrimp, Litopenaeus vannamei: The effect of culture conditions and a comparison with other crustacean species Marine Biology, 142(4): 735–745 152 Pavasovic, M., Richardson, N A., Anderson, A J., Mann, D., & Mather, P B, (2004) Effect of pH, temperature and diet on digestive enzyme profiles in the mud crab, Scylla serrata Aquaculture, 242(1–4): 641–654 153 Pedersen, S A., Hakedal, O J., Salaberria, I., Tagliati, A., Gustavson, L M., Jenssen, B M., … Altin, D., (2014) Multigenerational exposure to ocean acidification during food limitation reveals consequences for copepod scope for growth and vital rates Environmental Science and Technology, 48(20): 12275–12284 154 Perez Morales, A., Band Schmidt, C., & Martinez Diaz, S., (2016) Changes in mortality rates during the larval stage of the Pacific white shrimp (Litopenaeus vannamei) on the basis of algal (Chaetoceros calcitrans or Tetraselmis suecica) food density Ecosistemas y Recursos Agropecuarios, 3(9): 415–420 155 Phạm Thị Tuyết Ngân Trương Quốc Phú, (2010) Biến động yếu tố môi trường ao ni tơm sú thâm canh tỉnh Sóc Trăng Tạp chí Khoa học 2010, Trường Đại học Cần Thơ, 15a: 179–188 156 Ponce-Palafox, J., Martinez-Palacios, C A., & Ross, L G., (1997) The effects of salinity and temperature on the growth and survival rates of juvenile white shrimp, Penaeus vannamei, Boone, 1931 Aquaculture, 157(1–2): 107–115 157 Ponce-Palafox, J T., Pavia, A A., Mendoza Lopez, D G., ArredondoFigueroa, J L., Lango-Reynoso, F., Castaneda-Chavez, M del R., … PerazaGomez, V., (2019) Response surface analysis of temperature-salinity interaction effects on water quality, growth and survival of shrimp Penaeus vannamei postlarvae raised in biofloc intensive nursery production Aquaculture, 503: 312–321 158 Portner, H O., (2008) Ecosystem effects of ocean acidification in times of ocean warming: A physiologist’s view Marine Ecology Progress Series 159 Portner, H O., Langenbuch, M., & Reipschlager, A., (2004) Biological impact of elevated ocean CO2 concentrations: Lessons from animal physiology and earth history Journal of Oceanography, 60(4): 705–718 160 Preston, N., (1985) The combined effects of temperature and salinity on hatching success and the survival, growth, and development of the larval stages of Metapenaeus bennettae (Racek & Dall) Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, 85(1): 57–74 161 Principe, S C., Augusto, A., & Costa, T M., (2019) Point-of-care testing for measuring haemolymph glucose in invertebrates is not a validmethod Conservation Physiology, 7(1): 1–11 138 (Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931) luan an (Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931) 162 Pushparajan, N., & Soundarapandian, P., (2010) Recent farming of marine black tiger shrimp, Penaeus Monodon (Fabricius) in South India African Jounrnal of Basic & Applied Sciences, 2(Table 2): 33–36 163 Racotta, I S., & Palacios, E., (1998) Hemolymph metabolic variables in response to experimental manipulation stress and serotonin injection in Penaeus vannamei Journal of the World Aquaculture Society, 29(3): 351–356 164 Ragagnin, M N., McCarthy, I D., Fernandez, W S., Tschiptschin, A P., & Turra, A., (2018) Vulnerability of juvenile hermit crabs to reduced seawater pH and shading Marine Environmental Research, 142: 130–140 165 Rajendiran, S., Muhammad Iqbal, B M., & Vasudevan, S., (2016) Induced thermal stress on serotonin levels in the blue swimmer crab, Portunus pelagicus Biochemistry and Biophysics Reports, 5: 425–429 166 Randa, M A., Polz, M F., & Lim, E., (2004) Effects of temperature and salinity on growth and reproduction of the freshwater prawn, Macrobrachium rosenbergii (Crustacea- Decapoda) in Egypt Microbiology, 70(9): 5469–5476 167 Ray, A J., Lewis, B L., Browdy, C L., & Leffler, J W., (2010) Suspended solids removal to improve shrimp (Litopenaeus vannamei) production and an evaluation of a plant-based feed in minimal-exchange, superintensive culture systems Aquaculture, 299(1–4): 89–98 168 Reddy, M H., & Mounika, K., (2018) Determination and comparative study of water quality parameters in shrimp culture ponds International Journal for Research in Applied Science & Engineering Technology, 6: 216–221 169 Reyes, E P., (1985) Effect of temperature and salinity on the hatching of eggs and larval development of sugpo, Penaeus monodon Aquaculture Department, Southeast Asian Fisheries Development Center: 177–178 170 Ries, J B., Cohen, A L., & McCorkle, D C., (2009) Marine calcifiers exhibit mixed responses to CO2-induced ocean acidification Geology, 37(12): 1131– 1134 171 Robertson, W D., & Kruger, A (1994) Size at maturity, mating and spawning in the portunid crab Scylla serrata (Forskal) in Natal, South Africa Estuarine, Coastal and Shelf Science, 39(2): 185–200 172 Rosa, R., Pimentel, M., Galan, J G., Baptista, M., Lopes, V M., Couto, A., … Repolho, T., (2016) Deficit in digestive capabilities of bamboo shark early stages under climate change Marine Biology, 163(3): 1–5 173 Roy, L A., Davis, D A., Saoud, I P., Boyd, C A., Pine, H J., & Boyd, C E., (2010) Shrimp culture in inland low salinity waters Reviews in Aquaculture, 2(4): 191–208 174 Sainz, J C., Sierra-Beltrán, A., García-Carro, F., & Hernández-Cortés, P., (2004) Trypsin Synthesis and storage as zymogen in the midgut gland of the shrimp Litopenaeus vannamei Journal of Crustacean Biology, 24(2): 266–273 175 Salma, U., Uddowla, M H., Lee, G., Yeo, Y., & Kim, H W., (2012) Effects of pH change by CO2 induction and salinity on the hatching rate of Artemia franciscana Fisheries and Aquatic Sciences, 15(2): 177–181 176 Schiffer, M, Harms, L., Pörtner, H., Mark, F., & Storch, D., (2014) Prehatching seawater pCO2 affects development and survival of zoea stages of Arctic spider crab Hyas araneus Marine Ecology Progress Series, 501: 127– 139 177 Schiffer, Melanie, Harms, L., Pörtner, H O., Mark, F C., & Storch, D., (2014) Pre-hatching seawater pCO2 affects development and survival of zoea stages of Arctic spider crab Hyas araneus Marine Ecology Progress Series, 501: 127– 139 (Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931) luan an (Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931) 139 178 Schock, T B., Stancyk, D A., Thibodeaux, L., Burnett, K G., Burnett, L E., Boroujerdi, A F B., & Bearden, D W., (2010) Metabolomic analysis of Atlantic blue crab, Callinectes sapidus, hemolymph following oxidative stress Metabolomics, 6(2), 250–262 179 Seema S S., and Nitin A K., (2015) Impact of physico-chemical parameters on gills of freshwater crab Barytelphusa cunicularis (Westwood, 1836) Sakhare and Kamble, IJPSR, 6(3): 1248–1257 180 Serrano, A E., (2015) Properties of chymotrypsin-like enzyme in the mudcrab Scylla serrata, brine shrimp Artemia salina and rotifer Brachionus plicatilis Der Pharma Chemica, 7(9): 66–73 181 Serrano Jr A E., P E M., (2015) The effects of temperature, pH and metal ions on alpha amylase activity of the brine shrimp Artemia salina International Journal of the Bioflux Society, 7(2): 77–86 182 Shaari, A L., Surif, M., Latiff, F A., Omar, W M W., & Ahmad, M N., (2011) Monitoring of Water quality and microalgae species composition of Penaeus monodon ponds in Pulau Pinang, Malaysia Tropical Life Sciences Research, 22(1): 51–69 183 Simbeye, D S., & Yang, S F., (2014) Water quality monitoring and control for aquaculture based on wireless sensor networks Journal of Networks, 9(4): 840–849 184 Soegianto, A, Charmantierdaures, M., Trilles, J., & Charmantier, G., (1999) Impact of cadmium on the structure of gills and epipodites of the shrimp (Crustacea: Decapoda) Aquatic Living Resources, 12(1): 57–70 185 Soegianto, Agoes, Charmantier-Daures, M., Trilles, J P., & Charmantier, G., (1999) Impact of copper on the structure of gills and epipodites of the shrimp Penaeus japonicus (Decapoda) Journal of Crustacean Biology, 19(2), 209– 223 186 Soegianto, Agoes, Irawan, B., & Affandi, M., (2008) Toxicity of drilling waste and its impact on gill structure of post larvae of tiger prawn (Penaeus monodon) Global Journal of Environmental Research, 2(1): 36–41 187 Somero, G N., & Childress, J J., (1990) Scaling of ATP-supplying enzymes, myofibrillar proteins and buffering capacity in fish muscle: Relationship to locomotory habit Journal of Experimental Biology, 149: 319–333 188 Soundarapandian P, D G and V D., (2014) Effect of Temperatures on the Embryonic Development, Morphometrics and Survival of Macrobrachium idella idella (Hilgendorf, 1898) Journal of Aquaculture Research & Development, 05(07) 189 Souza Buarque, D., Fernandes Castro, C., Ł bio Marcel Silva Santos, F., Lemos, D., Bezerra Carvalho Ju, L., & Souza Bezerra, R., (2009) Digestive peptidases and proteinases in the midgut gland of the pink shrimp Farfantepenaeus paulensis Aquaculture Research, 40: 861–870 190 Spaargaren, D H., & Haefner, P A., (1987) The effect of environmental osmotic conditions on blood and tissue glucose levels in the brown shrimp, Crangon crangon (L.) Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Physiology, 87(4): 1045–1050 191 Spicer, J I., Raffo, A., & Widdicombe, S., (2007) Influence of CO2-related seawater acidification on extracellular acid-base balance in the velvet swimming crab Necora puber Marine Biology, 151(3): 1117–1125 192 Staples, D J., & Heales, D S., (1991) Temperature and salinity optima for 140 (Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931) luan an (Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931) growth and survival of juvenile banana prawns Penaeus merguiensis Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, 154(2): 251–274 193 Stoner, A W., Ottmar, M L., & Copeman, L A., (2010) Temperature effects on the molting, growth, and lipid composition of newly-settled red king crab Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, 393(1–2): 138–147 194 Strefezza, T F., De Andrade, I M., & Augusto, A., (2019) Reduced pH and elevated salinities affect the physiology of intertidal crab Minuca mordax (Crustacea, Decapoda) Marine and Freshwater Behaviour and Physiology, 52(5): 241–254 195 Styf, H K., Nilsson Sköld, H., & Eriksson, S P., (2013) Embryonic response to long-term exposure of the marine crustacean Nephrops norvegicus to ocean acidification and elevated temperature Ecology and Evolution, 3(15): 5055– 5065 196 Su, Y., Feng, C., & Ma, S., (2010) Effects of salinity fluctuation on the growth and energy budget of juvenile Litopenaeus vannamei at different temperatures Journal of Crustacean Biology, 30(3): 430–434 197 Taylor, J R A., Gilleard, J M., Allen, M C., & Deheyn, D D., (2015) Effects of CO2-induced pH reduction on the exoskeleton structure and biophotonic properties of the shrimp Lysmata californica Scientific Reports: 1–12 198 Telford, M., (1974) Blood glucose in crayfish—II Variations induced by artificial stress Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Physiology, 48(3): 555–560 199 Tian, X., Dong, S., & Wang, F., (2004) Effects of different temperatures on the growth and energy budget of Chinese shrimp, Fenneropenaeus chinensis Ying Yong Sheng Tai Xue Bao, The Journal of Applied Ecology, 15(4): 678– 682 200 Tidwell, J H., & Allan, G L., (2001) Fish as food: Aquaculture’s contribution Ecological and economic impacts and contributions of fish farming and capture fisheries EMBO Reports, 2(11): 958–963 201 Trần Ngọc Hải Nguyễn Thanh Phương, (2009) Nguyên lý kỹ thuật nuôi tôm sú (Penaeus monodon).Nhà xuất Nông nghiệp TP Hồ Chí Minh 203 trang 202 Tropea, C., Stumpf, L., & Lopez Greco, L S., (2015) Effect of temperature on biochemical composition, growth and reproduction of the ornamental red cherry shrimp Neocaridina heteropoda heteropoda (Decapoda, Caridea) PLoS ONE, 10(3) 203 Tổng cục Thuỷ sản, 2020 Tôm thẻ chân trắng tăng trưởng mạnh giai đoạn 2015-2019 https://tongcucthuysan.gov.vn/ cập nhật ngày 17-04-2020 204 Tyler, A., & Scheer, B T., (1937) Inhibition of fertilization in eggs of marine animals by means of acid Journal of Experimental Zoology, 75(2): 179–197 205 Uthicke, S., Liddy, M., Nguyen, H D., & Byrne, M., (2014) Interactive effects of near-future temperature increase and ocean acidification on physiology and gonad development in adult Pacific sea urchin, Echinometra sp A Coral Reefs, 33(3): 831–845 206 Valencia-Castaneda, G., Frias-Espericueta, M G., Vanegas-Perez, R C., Chavez-Sanchez, M C., & Paez-Osuna, F., (2020) Physiological changes in the hemolymph of juvenile shrimp Litopenaeus vannamei to sublethal nitrite and nitrate stress in low-salinity waters Environmental Toxicology and Pharmacology, 80: 1–9 207 Van Wyk, P., & Scarpa, J., (1999) Water quality requirements and 141 (Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931) luan an (Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931) management farming marine shrimp in recirculating freshwater systems, (4520): 141–161 208 Venkateswarlu, V., Seshaiah, P V, Arun, P., & Behra, P C ,(2019) A study on water quality parameters in shrimp L vannamei semi-intensive grow out culture farms in coastal districts of Andhra Pradesh , India, 7(4): 394–399 209 Veroonica, A., & Gimenez, F., (2013) Digestive physiology of three species of decapod crustaceans of Argentina Journal of Shellfish Research, 32(3): 767–777 210 Vinatea, L., Gálvez, A O., Venero, J., Leffler, J., & Browdy, C., (2009) Consumo de oxigênio de juvenis de Litopenaeus vannamei em meio heterotrúfico sem renovaỗóo de ỏgua Pesquisa Agropecuaria Brasileira, 44(5): 534–538 211 Võ Nam Sơn, Trương Tấn Nguyên Nguyễn Thanh Phương, (2014) So sánh đặc điểm kỹ thuật chất lượng môi trường ao nuôi tôm sú tơm thẻ chân trắng thâm canh tỉnh Sóc Trăng Tạp chí Khoa học Trường Đại học Cần Thơ, Số chuyên đề: Thủy sản (2): 70-78 212 Vũ Thế Trụ, (1994) Cải tiến kỹ thuật nuôi tôm Việt Nam Nhà xuất Nông nghiệp Hà Nội 201 trang 213 Walther, K., Anger, K., & Pörtner, H., (2010) Effects of ocean acidification and warming on the larval development of the spider crab Hyas araneus from different latitudes Marine Ecology Progress Series, 417: 159–170 214 Wang, J., Russell, B D., Ding, M.-W., & Dong, Y.-W., (2018) Ocean acidification increases the sensitivity of and variability in physiological responses of an intertidal limpet to thermal stress Biogeosciences, 15(9): 2803–2817 215 Wang Xingqiang, Ma Shen, D S., (1979) Studies on the biology and cultural ecology of Litopenaeus vannamei: A review Transactions of Oceanology and Limnology, (4): 94–100 216 Wei, J., Zhang, X., Yu, Y., Huang, H., Li, F., & Xiang, J., (2014) Comparative transcriptomic characterization of the early development in pacific white shrimp Litopenaeus vannamei PLoS ONE, 9(9), e106201 217 Whetstone, J M., Treece, G D., Browdy, C L., & Stokes, A D., (2002) Opportunities and constraints in marine shrimp farming Southern Regional Aquaculture Center Publication, (2600): 1–8 218 Whiteley, N M., (2011) Physiological and ecological responses of crustaceans to ocean acidification Marine Ecology Progress Series, 430: 257–271 219 Wickins, J F., (1984) The effect of hypercapnic sea water on growth and mineralization in penaied prawns Aquaculture, 41(1): 37–48 220 Widdicombe, S., & Spicer, J I., (2008) Predicting the impact of ocean acidification on benthic biodiversity: What can animal physiology tell us? Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, 366(1–2): 187–197 221 Wilcockson, D C., Chung, S J., & Webster, S G., (2002) Is crustacean hyperglycaemic hormone precursor-related peptide a circulating neuro hormone in crabs? Cell and Tissue Research, 307(1): 129–138 222 William C G Burns., (2008) Anthropogenic carbon dioxide emissions and ocean acidification: The Potential impacts on ocean biodiversity Saving Biological Diversity Balancing Protection of Endangered Species and Ecosystems 223 Wood, H L., Sköld, H N., & Eriksson, S P.,(2014) Health and populationdependent effects of ocean acidification on the marine isopod Idotea balthica 142 (Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931) luan an (Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931) Marine Biology, 161(10): 2423–2431 224 Wood, H L., Spicer, J I., & Widdicombe, S., (2008) Ocean acidification may increase calcification rates, but at a cost Proceedings of the Royal Society B: Biological Sciences, 275(1644:, 1767–1773 225 Wosnick, N., Ye, Y., Wang, C., Lin, W., Ren, Z., & Mu, C., (2020) Citation: Effects of elevated pCO2 on the survival and growth of Portunus trituberculatus Front Physiol, 11, 750 226 Wouters, R., Cobo, M L., Dhont, J., Wille, M., Nv, I T., & Dendermonde, B., (2009) Developments in feed formulations , feeding practices and culture techniques for marine shrimp larvae Craig L Browdy and Darryl E Jory, Editors The Rising Tide, Proceedings of the special session on sustainable shrimp farming, Aquaculture 2009 The World Aquaculture Society, Baton Rouge Louisiana, USA: 79–91 227 Wu, J P., Chen, H C., & Huang, D J., (2009) Histopathological alterations in gills of white shrimp, Litopenaeus vannamei (Boone) after acute exposure to cadmium and zinc Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology, 82(1): 90–95 228 Wurts, W A., (1992) Alkalinity and hardness in production ponds Kentucky State University CEP at UK Research and Education Center P.O Box 469, Princeton, KY 42445, 229 Wurts, W A., & Durborow, R M., (1992) Interactions of pH, carbon dioxide, alkalinity and hardness in fish ponds, 0(464): 1–4 230 Wyban, James, Walsh, W A., & Godin, D M.,(1995) Temperature effects on growth, feeding rate and feed conversion of the Pacific white shrimp (Penaeus vannamei) Aquaculture, 138(1–4): 267–279 231 Wyban, Jim, & Leung, P., (1987) Design, operation, and comparative financial analysis of shrimp farms in Hawaii and Texas Technical Report, 876,: 19 232 Xie, S wei, Tian, L xia, Jin, Y., Yang, H jun, Liang, G ying, & Liu, Y., (2014) Effect of glycine supplementation on growth performance, body composition and salinity stress of juvenile Pacific white shrimp, Litopenaeus vannamei fed low fishmeal diet Aquaculture, 418–419: 159–164 233 Xingqiang, W., Shen, M., & Shuanglin, D., (2006) Effects of water temperature and dietary carbohydrate levels on growth and energy budget of juvenile Litopenaeus vannamei Chinese Journal of Oceanology and Limnology, 24(3): 318–324 234 Yıldırım, Ş., Çoban, D., Suzer, C., Kırım, B., Fırat, K., & Saka, Ş., (2014) Early morphological development and allometric growth patterns in hatcheryreared red porgy (Pagrus pagrus) Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 14: 817–824 235 Yue, C F., Wang, T T., Wang, Y F., & Peng, Y., (2009) Effect of combined photoperiod, water calcium concentration and pH on survival, growth, and moulting of juvenile crayfish (Procambarus clarkii) cultured under laboratory conditions Aquaculture Research, 40(11): 1243–1250 236 Zacharia, S., & Kakati, V S., (2004) Optimal salinity and temperature for early developmental stages of Penaeus merguiensis De man Aquaculture, 232(1–4): 373–382 237 Zanotto, F P., & Wheatly, M G., (1993) The effect of ambient pH on electrolyte regulation during the postmoult period in freshwater crayfish Procambarus clarkii Journal of Experimental Biology, 178(1): 1–19 143 (Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931) luan an (Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931) 238 Zervoudaki, S., Frangoulis, C., Giannoudi, L., Krasakopoulou, E., (2013) Effects of low pH and raised temperature on egg production, hatching and metabolic rates of a Mediterranean copepod species (Acartia clausi) under oligotrophic conditions Mediterranean Marine Science, 15(1), 74 239 Zhang, P., Zhang, X., Li, J., & Huang, G., (2006) The effects of body weight, temperature, salinity, pH, light intensity and feeding condition on lethal DO levels of whiteleg shrimp, Litopenaeus vannamei (Boone, 1931) Aquaculture, 256(1): 579–587 240 Zheng, C qun, Jeswin, J., Shen, K li, Lablche, M., Wang, K jian, & Liu, H., (2015) Detrimental effect of CO2-driven seawater acidification on a crustacean brine shrimp, Artemia sinica Fish and Shellfish Immunology, 43(1): 181–190 241 Zheng CQ, Jeswin J, Shen KL, Lablche M, Wang KJ, L H., (2015) Detrimental effect of CO2-driven seawater acidification on a crustacean brine shrimp, Artemia sinica Fish Shellfish Immunol 43(1): 181–190 242 Zweig, R D., Morton, J D., & Stewart, M M., (1999) Source water quality for aquaculture: a guide for assessment, 72 pp 243 Zhou, M., Wang, A L., & Xian, J A., (2011) Variation of free amino acid and carbohydrate concentrations in white shrimp, Litopenaeus vannamei: Effects of continuous cold stress Aquaculture, 317(1–4): 182–186 144 (Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931) luan an (Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931) PHỤ LỤC Phương pháp phân tích glucose Phân tích glucose theo phương pháp Hugget and Nixon (1957) sau: Nguyên lý: glucose chuyển đổi thành glucose peroxide enzyme glucose oxidase Glucose peroxide phản ứng với ABTS (2,2 Azino-di- (3ethylbenxoline sulfonate)) nhờ xúc tác loại enzyme khác peroxidase để chuyển thành hợp chất màu xanh đọc bước sóng 436 nm Hóa chất: dung dịch cần có để đo glucose máu tơm: - Phosphate buffer (0,6M): gồm 28,36 g Na2HPO4 (PM = 141,96), 13,625 g KH2PO4 (PM = 136,09) hòa tan 500 mL nước cất; chỉnh pH sang 7,5, trữ nhiệt độ phòng để sử dụng - Phosphate buffer (0,1M): 100 mL Phosphate buffer (0,6M) hòa tan 500 mL nước cất, chỉnh pH sang 7,5 - Perchloric acid (0,33M): gồm 97,165 mL nước cất 2,835 mL HCLO4 (70%) - Glucose hòa tan (1 g/L): gồm 20 mg glucose 20 mL nước cất - Chuẩn bị thuốc thử: gồm 2.000 đơn vị glucose oxidase (nếu 148.400 đơn vị/g, hòa tan 13,4 mg bột), 147 đơn vị peroxidise (nếu 113 đơn vị/mg, hòa tan 1,3 mg bột), 125 mg ABTS (2,2 Azino-di-(3-ethylbenzoline sulfonate)), cho thêm vào 500 mL dung dịch đệm phosphate 0,1M Để dung dịch nơi tối, bao quanh giấy nhôm (enzyme nhạy ánh sáng) pha lần sử dụng - Chuẩn bị dung dịch chuẩn: Dung dịch chuẩn S0 S1 S2 S3 S4 S5 S6 S7 Glucose hòa tan (μL) 10 20 40 60 80 100 Nước cất (μL) Perchloric acid (μL) 100 95 90 80 60 40 20 200 200 200 200 200 200 200 200 - Loại protein: dùng microtube (500 µL) lấy: 25 µL huyết thanh/chuẩn, 50 µL perchloric acid, trộn đều, ly tâm 3.000 vòng/phút 10 phút - Đo đường: cho vào tuýp nhựa 25 µL dịch nổi, mL thuốc thử, trộn ủ 38°C 15 phút - Đọc kết độ hấp phụ 436 nm - Tính tốn: đường chuẩn glucose có hình cong Điểm hấp thụ mẫu quy từ đường cong chuẩn Phân tích enzym tiêu hóa a) Hóa chất nghiền mẫu Dung dịch đệm pH=6,9: KH2PO4 20 mM NaCl mM b) Hóa chất phân tích Trypsine (Tseng et al, 1982) 145 (Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931) luan an (Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931) Dung dịch đệm pH=8,2: Tris HCl: 50 mL CaCl2 20 mM BAPNA 0,1M (Nα-Benzoyl-DL Arginine P-nitroanilide (B 4875)): 10,87mg/250 µL DMSO Dung dịch BAPNA ủ 25oC suốt q trình phân tích mẫu c) Hóa chất phân tích Chymotrypsine (Worthington, 1982) Methanol 50% (w/v): 60 mL methanol 50 mL nước cất Dung dịch đệm pH=7,8: Tris HCl 80 mM: 0,9688 g; CaCl2 100 mM: 1,1 g; trộn chung lại thêm nước cất vừa đủ 100 mL BTEE (Benzoyl tyrosine ethyl ester): 16,8 mg/50 mL methanol 50% Dung dịch đệm pH=7,8 BTEE ủ 250C suốt q trình phân tích mẫu d) Hóa chất phân tích Amylase (Bernfeld, 1951) Dung dịch đệm sodium phosphate pH=6,9: - NaH2PO4 20 mM: 2,76 g - NaCl mM: 0.351 g - Thêm nước cất vừa đủ lít NaOH M: Hịa tan g 100 mL Chất nền: - Hòa tan g chất 3,5-dinitrosalisylic acid 50 mL nước cất - Thêm Sodium potassium tartrate tetrahydrate: 30g - NaOH 2M: 20 mL - Thêm nước cất vừa đủ 100 mL Starch 1%: 100 mg/10 mL sodium phosphate (pH=6,9) Ủ 25oC 4-5 phút trước sử dụng Dung dịch chuẩn Maltose µM: Cân 18 mg Maltose với 10 mL nước cất Chuẩn bị đường chuẩn: Nồng độ Maltose (µM) Maltose (μL) 40 80 100 160 200 Phương pháp phân tích cấu trúc mang tôm Nước cất (μL) 200 160 100 80 40 - 3.1 Thu mẫu mang Thu toàn mẫu mang tôm cho vào dung dịch cố định Davidson’S formaline 10%) thể tích dung dịch gấp 10 lần thể tích mang 3.2 Xử lý mẫu mang Mẫu mang chọn định tính tiến hành xử lý thông qua dung dịch cồn 70, 96, 99% để loại bỏ hoàn toàn nước mẫu theo quy trình sau: - Dung dịch Davidson’S formaline 10%: 146 (Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931) luan an (Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931) (Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)(Luan.an.tien.si).anh.huong.cua.nhiet.do.va.co2.cao.len.tang.truong.va.phat.trien.cua.tom.su.(penaeus.monodon.fabricius 1798).va.tom.the.chan.trang.(litopenaeus.vannamei.boone 1931)