(Luận văn) nghiên cứu một số đặc tính sinh học của vi khuẩn actinobacillus pleuropneumoniae, pasteurella multocida, streptococcus suis gây viêm phổi trong hội chứng rối loạn hô hấp và sinh sản ở lợn tại bắc giang

BỘ GIÁO DỤC VÀ ĐÀO TẠO ĐẠI HỌC THÁI NGUYÊN –––––––––––––––––– LÊ VĂN DƢƠNG lu an n va p ie gh tn to NGHIÊN CỨU MỘT SỐ ĐẶC TÍNH SINH HỌC CỦA VI KHUẨN ACTINOBACILLUS PLEUROPNEUMONIAE, PASTEURELLA MULTOCIDA, STREPTOCOCCUS SUIS GÂY VIÊM PHỔI TRONG HỘI CHỨNG RỐI LOẠN HÔ HẤP VÀ SINH SẢN Ở LỢN TẠI BẮC GIANG, BIỆN PHÁP PHÕNG TRỊ d oa nl w u nf va an lu ll LUẬN ÁN TIẾN SĨ NÔNG NGHIỆP oi m z at nh z m co l gm @ an Lu THÁI NGUYÊN, NĂM 2013 n va ac th si BỘ GIÁO DỤC VÀ ĐÀO TẠO ĐẠI HỌC THÁI NGUYÊN –––––––––––––––––– LÊ VĂN DƢƠNG lu an n va p ie gh tn to NGHIÊN CỨU MỘT SỐ ĐẶC TÍNH SINH HỌC CỦA VI KHUẨN ACTINOBACILLUS PLEUROPNEUMONIAE, PASTEURELLA MULTOCIDA, STREPTOCOCCUS SUIS GÂY VIÊM PHỔI TRONG HỘI CHỨNG RỐI LOẠN HÔ HẤP VÀ SINH SẢN Ở LỢN TẠI BẮC GIANG, BIỆN PHÁP PHÕNG TRỊ d oa nl w Chuyên ngành: Ký sinh trùng vi sinh vật học Thú y Mã số: 62 64 01 04 lu ll u nf va an LUẬN ÁN TIẾN SĨ NÔNG NGHIỆP oi m z at nh Tập thể hướng dẫn khoa học: GS.TS Nguyễn Quang Tuyên PGS.TS Cù Hữu Phú z m co l gm @ an Lu Thái Nguyên, năm 2013 n va ac th si i LỜI CAM ĐOAN Tơi xin cam đoan cơng trình nghiên cứu riêng tôi, số liệu kết nghiên cứu luận án trung thực chưa công bố cơng trình khác chưa sử dụng để bảo vệ học vị Tôi xin cam đoan giúp đỡ cho việc thực đề tài nghiên cứu hoàn thành luận án cảm ơn, thơng tin trích dẫn xác rõ nguồn gốc Thái Nguyên, tháng năm 2013 lu an Tác giả n va tn to p ie gh NCS Lê Văn Dƣơng d oa nl w ll u nf va an lu oi m z at nh z m co l gm @ an Lu n va ac th si ii LỜI CẢM ƠN Trong suốt trình thực đề tài hồn thành luận án, tơi ln nhận giúp đỡ nhiểu tổ chức cá nhân Nhân dịp xin trân trọng cảm ơn Ban giám đốc, Ban quản lý Sau đại học Đại học Thái Nguyên, phòng Quản lý đào tạo Sau đại học, khoa Chăn nuôi Thú y, trường Đại học Nông Lâm Thái Nguyên tạo điều kiện cho theo học chương trình đào tạo nghiên cứu sinh trường Tơi xin trân trọng cảm ơn tập thể cán khoa Chăn nuôi Thú y, trường lu an Đại học Nông Lâm Thái Nguyên; Bộ môn Vi trùng, Bộ môn Virus-Viện Thú y n va Quốc gia Chi cục Thú y tỉnh Bắc Giang nhiệt tình giúp đỡ, tạo điều kiện tn to thuận lợi để tơi hồn thành đề tài nghiên cứu gh Đặc biệt, xin bày tỏ lòng biết ơn sâu sắc đến thầy hướng dẫn khoa p ie học GS.TS Nguyễn Quang Tuyên phó Viện trưởng-Viện Khoa học sống- w Đại học Thái Nguyên PGS.TS Cù Hữu Phú trưởng Bộ môn Vi trùng-Viện oa nl Thú y Quốc gia trực tiếp hướng dẫn, giúp đỡ suốt q trình thực d đề tài hồn thành luận án lu an Tôi xin gửi lời cảm ơn đến Ban lãnh đạo thầy cô giáo-Viện Thú y u nf va Quốc gia giúp đỡ, chia sẻ ý kiến quý báu, hướng dẫn thực thí ll nghiệm để hồn thiện đề tài nghiên cứu m oi Tơi ln biết ơn gia đình, bạn bè học viên cao học, em sinh Tôi xin chân thành cảm ơn./ z at nh viên đóng góp cơng sức, động viên giúp đỡ tơi hồn thành luận án z m co l gm @ Thái Nguyên, tháng năm 2013 Tác giả an Lu NCS Lê Văn Dƣơng n va ac th si iii MỤC LỤC LỜI CAM ĐOAN i LỜI CẢM ƠN .ii MỤC LỤC iii DANH MỤC CÁC CHỮ VIẾT TẮT VÀ KÝ HIỆU vi DANH MỤC CÁC BẢNG vii DANH MỤC CÁC HÌNH x MỞ ĐẦU lu Chƣơng 1: TỔNG QUAN TÀI LIỆU an 1.1 Sơ lƣợc nghiên cứu Hội chứng rối loạn hô hấp sinh sản va n (PRRS) lợn tn to 1.1.1 Cấu trúc virus gây Hội chứng rối loạn hô hấp sinh sản (PRRSV) ie gh lợn đặc tính sinh học p 1.1.2 Sức đề kháng khả gây bệnh virus nl w 1.1.3 Hội chứng rối loạn hô hấp sinh sản lợn oa 1.2 Vai trò vi khuẩn A pleuropneumoniae, P multocida S suis d Hội chứng rối loạn hô hấp sinh sản lợn lu va an 1.2.1 Vi khuẩn A pleuropneumoniae bệnh viêm phổi - màng phổi lợn 10 1.2.2 Vi khuẩn P multocida bệnh viêm phổi lợn P multocida gây 23 u nf ll 1.2.3 Vi khuẩn S suis bệnh viêm phổi lợn vi khuẩn S suis gây 31 m oi Chƣơng 2: NỘI DUNG, NGUYÊN LIỆU VÀ PHƢƠNG PHÁP z at nh NGHIÊN CỨU 40 2.1 Nội dung nghiên cứu 40 z 2.1.1 Tình hình dịch PRRS lợn kết chẩn đoán tỉnh Bắc Giang từ @ gm năm 2010 - 2012 40 m co l 2.1.2 Phân lập vi khuẩn A pleuropneumoniae, P multocida S suis mẫu bệnh phẩm lợn dương tính với PRRSV tỉnh Bắc Giang 40 an Lu 2.1.3 Nghiên cứu số đặc tính sinh học chủng A pleuropneumoniae, P multocida S suis phân lập 40 n va ac th si iv 2.1.4 Nghiên cứu biện pháp phòng, trị 40 2.2 Đối tƣợng, nguyên liệu, địa điểm thời gian nghiên cứu 41 2.2.1 Đối tượng nghiên cứu 41 2.2.2 Nguyên vật liệu 41 2.2.3 Địa điểm, thời gian nghiên cứu 42 2.3 Phƣơng pháp nghiên cứu 42 2.3.1 Phương pháp nghiên cứu dịch tễ 42 2.3.2 Phương pháp lấy mẫu 43 2.3.3 Phương pháp xác định mẫu bệnh phẩm lợn dương tính với PRRSV lu an phân lập vi khuẩn A pleuropneumoniae, P multocida, S suis 43 n va 2.3.4 Phương pháp xác định đặc tính sinh vật, hóa học vi khuẩn A 2.3.5 Phương pháp xác định serotype vi khuẩn A pleuropneumoniae, P ie gh tn to pleuropneumoniae, P multocida S suis 44 multocida S suis 44 p 2.3.6 Phương pháp tính LD50 vi khuẩn A pleuropneumoniae, P nl w multocida S suis chuột bạch 48 d oa 2.3.7 Phương pháp xác định số lượng vi khuẩn 49 an lu 2.3.8 Phương pháp xác định độc lực động vật thí nghiệm 49 va 2.3.9 Phương pháp xác định mức độ mẫn cảm với số kháng sinh u nf chủng vi khuẩn A pleuropneumoniae, P multocida S suis phân lập 49 ll 2.3.10 Xây dựng phác đồ điều trị lợn nghi mắc viêm phổi PRRS 50 m oi 2.3.11 Phương pháp chế tạo Autovaccine thử nghiệm từ chủng vi khuẩn z at nh A pleuropneumoniae, P multocida S suis phân lập 51 2.3.12 Phương pháp xử lý số liệu 53 z gm @ Chƣơng 3: KẾT QUẢ NGHIÊN CỨU VÀ THẢO LUẬN 54 3.1 Tình hình dịch PRRS lợn kết chẩn đốn tỉnh Bắc Giang l m co từ năm 2010 - 2012 54 3.1.1 Kết xác định tỷ lệ lợn mắc tử vong PRRS số huyện an Lu thuộc tỉnh Bắc Giang từ năm 2010 - 2012 54 n va ac th si v 3.1.2 Kết xác định tỷ lệ lợn mắc tử vong PRRS loại lợn 58 3.1.3 Kết xác định tỷ lệ lợn mắc tử vong PRRS theo mùa vụ 60 3.1.4 Kết tổng hợp triệu chứng, bệnh tích chủ yếu lợn mắc PRRS xác định mẫu bệnh phẩm lợn dương tính với PRRSV tỉnh Bắc Giang 62 3.2 Kết phân lập A pleuropneumoniae, P multocida S suis lợn dƣơng tính với PRRSV tỉnh Bắc Giang 64 3.3 Kết xác định số đặc tính sinh học chủng vi khuẩn A pleuropneumoniae, P multocida S suis phân lập đƣợc 68 3.3.1 Kết xác định số đặc tính sinh vật, hóa học chủng vi lu khuẩn A pleuropneumoniae, P multocida S suis phân lập 69 an P multocida S suis phân lập 77 n va 3.3.2 Kết xác định serotype chủng vi khuẩn A pleuropneumoniae, ie gh tn to 3.3.3 Kết xác định độc lực chủng vi khuẩn A pleuropneumoniae, P multocida S suis phân lập 84 p 3.3.4 Kết xác định khả mẫn cảm với số kháng sinh chủng nl w vi khuẩn A pleuropneumoniae, P multocida S suis phân lập 90 d oa 3.4 Kết nghiên cứu biện pháp phòng, trị 96 an lu 3.4.1 Kết chế tạo Autovaccine thử nghiệm phòng bệnh viêm phổi cho lợn 97 va 3.4.2 Kết xác định độ dài miễn dịch hiệu lực Autovaccine lợn u nf nuôi tỉnh Bắc Giang 107 ll 3.4.3 Kết thử nghiệm số phác đồ điều trị lợn nghi mắc viêm phổi m oi PRRS 118 z at nh KẾT LUẬN VÀ ĐỀ NGHỊ 121 Kết luận 121 z gm @ Đề nghị 122 CƠNG TRÌNH CƠNG BỐ LIÊN QUAN ĐẾN LUẬN ÁN 123 l m co TÀI I LIỆU THAM KHẢO 124 an Lu n va ac th si vi DANH MỤC CÁC CHỮ VIẾT TẮT VÀ KÝ HIỆU lu an n va p ie gh tn to ADN AGID A pleuropneumoniae Apx BHI Bp CAMP CFU CPS cs DNT ELISA H pleuropneumoniae HIP IHA LPS LD MR NAD OMPs PBS PCR PPLO P multocida PRRS PRRSV RR : Acid Deoxyribonucleic : Agargel Immuno Diffuse : Actinobaccillus pleuroneumoniae : Apx - Toxins : Brain Heart Infusion : Base pair d oa nl w ll u nf oi m z at nh z m co l gm @ an Lu Sta aureus S suis TYE TSA TSB VP YE va an lu : Chiristie - Atkinson - Munch - Peterson : Colony Forming Unit : Capsule polysaccharide : Cộng : Dermanecrotic toxin : Enzyme - linked Immuno sorbant assay : Haemophilus pleuropneumoniae : Acid hippuric : Indirect Haemagglutination test : Lypopolysaccaride : Lethal dose : Methyl red : Nicotinamide Adenine Dinucleotide : Outer membrane proteins : Phosphat buffer solution : Polymerase Chain Reaction : Pleuropneumonia - like organism : Pasteurella multocida : Porcine Reproductive and Respiratory Syndrome : Porcine Reproductive and Respiratory Syndrome Virus : Relative Risk : Staphylococcus aureus : Streptococcus suis : Tryptone Yeast Extract Broth : Tryptic Soya Agar : Tryptone soya broth : Voges Prokauer : Yeast Extract n va ac th si vii DANH MỤC CÁC BẢNG Bảng 2.1: Trình tự cặp mồi dùng để xác định serotype A, B, D vi khuẩn P multocida 45 Bảng 2.2: Trình tự mồi dùng để xác định gen mã hoá cps 47 Bảng 2.3: Thành phần chất phản ứng PCR dùng để xác định serotype số gen mã hoá yếu tố độc lực vi khuẩn S suis 47 Bảng 2.4: Các chu kỳ nhiệt phản ứng PCR dùng để xác định serotype số gen mã hoá yếu tố độc lực vi khuẩn S suis 48 lu Bảng 2.5: Bảng đánh giá mức độ mẫn cảm vi khuẩn với số loại an kháng sinh (NCCLS - 2002) 50 va n Bảng 2.6: Thí nghiệm kiểm tra an toàn Autovaccine chuột bạch 52 tn to Bảng 3.1: Kết xác định tỷ lệ lợn mắc PRRS tử vong số huyện ie gh thuộc tỉnh Bắc Giang từ năm 2010 - 2012 55 p Bảng 3.2: Kết xác định tỷ lệ lợn mắc tử vong PRRS loại lợn 58 w Bảng 3.3: Kết xác định tỷ lệ lợn mắc tử vong PRRS theo mùa vụ 60 oa nl Bảng 3.4: Kết tổng hợp triệu chứng, bệnh tích chủ yếu lợn mắc PRRS d xác định mẫu bệnh phẩm lợn dương tính với PRRSV 63 lu va an Bảng 3.5: Kết phân lập vi khuẩn A pleuropneumoniae, P multocida S suis mẫu bệnh phẩm lợn dương tính với PRRSV 67 u nf ll Bảng 3.6: Kết xác định số đặc tính sinh vật, hóa học chủng m oi vi khuẩn A pleuropneumoniae phân lập 70 z at nh Bảng 3.7: Kết xác định số đặc tính sinh vật, hóa học chủng vi khuẩn P multocida phân lập 72 z Bảng 3.8: Kết xác định số đặc tính sinh vật, hóa học chủng @ gm vi khuẩn S suis phân lập 74 m co l Bảng 3.9: Kết xác định số đặc tính sinh vật, hóa học chủng vi khuẩn S suis phân lập hệ thống API 20 Strep 76 an Lu Bảng 3.10: Kết xác định serotype chủng vi khuẩn A pleuropneumoniae phân lập phản ứng AGID 77 n va ac th si viii Bảng 3.11: Kết xác định serotype chủng vi khuẩn P multocida phân lập phản ứng PCR 79 Bảng 3.12: Kết xác định serotype chủng vi khuẩn S suis phân lập 82 Bảng 3.13: Kết kiểm tra độc lực chủng vi khuẩn A pleuropneumoniae phân lập 85 Bảng 3.14: Kết kiểm tra độc lực chủng vi khuẩn P multocida phân lập 87 Bảng 3.15: Kết kiểm tra độc lực chủng vi khuẩn S suis phân lu lập 89 an chủng vi khuẩn A pleuropneumoniae phân lập 91 n va Bảng 3.16: Kết xác định mức độ mẫn cảm với số kháng sinh gh tn to Bảng 3.17: Kết xác định mức độ mẫn cảm với số kháng sinh ie chủng vi khuẩn P multocida phân lập 93 p Bảng 3.18: Kết xác định mức độ mẫn cảm với số kháng sinh nl w chủng vi khuẩn S suis phân lập 94 d oa Bảng 3.19: Kết tổng hợp khả mẫn cảm mạnh kháng với kháng an lu sinh vi khuẩn A pleuropneumoniae, P multocida S suis 95 va Bảng 3.20: Các chủng vi khuẩn chọn để chế tạo Autovaccine 97 u nf Bảng 3.21: Kết đếm số lượng vi khuẩn có canh trùng chế tạo ll Autovaccine 99 m oi Bảng 3.22: Kết kiểm tra khiết lô canh trùng sử dụng chế tạo z at nh Autovaccine 100 Bảng 3.23: Kết kiểm tra vô trùng lô Autovaccine chế tạo thử nghiệm 101 z gm @ Bảng 3.24: Kết kiểm tra an toàn Autovaccine chuột bạch 102 Bảng 3.25: Kết xác định hiệu lực Autovaccine chuột bạch l m co công cường độc vi khuẩn A pleuropneumoniae 103 Bảng 3.26: Kết xác định hiệu lực Autovaccine chuột bạch an Lu công cường độc vi khuẩn P multocida 104 n va ac th si 126 18 Phạm Sỹ Lăng, Phan Địch Lân, Trương Văn Dung (2005), Bệnh phổ biến lợn, Nxb Nông nghiệp, tr 115-142;151-155 19 Phạm Sỹ Lăng, Trương Văn Dung, Hoàng Văn Năm, Trần Duy Khánh (2006), Các bệnh truyền nhiễm thường gặp lợn biện pháp phòng trị, Nxb Nông nghiệp, tr 88-97 20 Phạm Sỹ Lăng, Đỗ Ngọc Thúy, Nguyễn Bá Hiên, Huỳnh Thị Mỹ Lệ, Hoàng Văn Năm, Phạm Ngọc Thạch, Nguyễn Quốc Doanh, Phạm Ngọc Đính, Văn Đăng Kỳ, Nguyễn Thị Kim Oanh, Nguyễn Hữu Hưng, Phan Văn Long, Phan Quí Minh, Đỗ Hữu Dũng, Nguyễn Tùng, Trần Đức Hạnh (2012), Bệnh truyền lây từ động vật sang lu an người, Nxb Nông nghiệp, tr 168-178 n va 21 Nguyễn Thị Mến, Trần Thị Dân, Nguyễn Thị Phương Ninh, Lê Thanh Hiền, tn to Thái Quốc Hiếu, Nguyễn Văn Hân (2012), “Đặc điểm dịch tễ dịch PRRS năm 2010- 2011 số ứng dụng an toàn sinh học huyện tỉnh Tiền Giang”, p ie gh Tạp chí Khoa học kỹ thuật thú y, 19(6), tr 24- 28 22 Nguyễn Hữu Nam, Nguyễn Thị Lan (2007), Hội chứng rối loạn sinh sản nl w hô hấp lợn, Hội thảo khoa học Hội chứng rối loạn hô hấp sinh sản d oa bệnh liên cầu gây lợn 10/2007, Trường Đại học Nông nghiệp, Hà Nội an lu 23 Nguyễn Ngọc Nhiên, Khương Thị Bích Ngọc (1994), “Bệnh đường hô (4), tr 42- 46 ll u nf va hấp chăn nuôi lợn công nghiệp”, Tạp chí Khoa học kỹ thuật thú y, oi m 24 Khương Thị Bích Ngọc (1996), Bệnh cầu khuẩn số sở chăn nuôi Viện Thú y Quốc gia, Hà Nội z at nh lợn tập trung biện pháp phịng trị, Luận án PTS khoa học Nơng nghiệp, z 25 Trịnh Phú Ngọc, Lê Văn Tạo, Nguyễn Ngọc Nhiên (1999), “Một số tính @ gm chất vi khuẩn học chủng Streptococcus phân lập từ lợn tỉnh l phía Bắc Việt Nam”, Tạp chí Khoa học kỹ thuật thú y, (2), tr 47-49 m co 26 Trịnh Phú Ngọc (2002), Nghiên cứu số đặc tính sinh vật độc lực nghiệp, Viện Thú y Quốc gia, Hà Nội an Lu vi khuẩn Streptococcus gây bệnh lợn số tỉnh, Luận án tiến sĩ Nông n va ac th si 127 27 Cù Hữu Phú, Nguyễn Ngọc Nhiên, Nguyễn Thu Hằng, Âu Xuân Tuấn, Nguyễn Bích Thuỷ, Vũ Ngọc Quý, Phạm Bảo Ngọc (2005), “Xác định nguyên nhân gây bệnh đường hơ hấp lợn ni số tỉnh phía Bắc”, Tạp chí Khoa học kỹ thuật thú y, 12(4), tr 23-32 28 Cù Hữu Phú (2011), Nghiên cứu mối liên quan Hội chứng rối loạn hô hấp sinh sản lợn với vi khuẩn gây bệnh kế phát xác định biện pháp phòng, trị bệnh, Báo cáo khoa học Viện Thú y Quốc gia 2011 29 Nguyễn Vĩ nh Phước, Hồ Đình Chúc, Nguyễn Văn Hanh, Đặng Thế Huynh (1979), Giáo trình bệnh truyền nhiễm gia súc, Nxb Nông thôn, Hà Nội lu an 30 Nguyễn Vĩnh Phước, Lê Thanh Tòng, Lê Anh Phụng, Nguyễn Văn Vĩnh, va Mai Hồng Phước (1986), “Phân lập định type huyết học vi khuẩn tụ n huyết trùng trâu bị tỉnh phía Nam”, Kết hoạt động khoa học kỹ to gh tn thuật thú y 1975 - 1985, Nxb Nông nghiệp, tr 126-128 p ie 31 Phan Thanh Phượng, Trần Thị Hạnh, Phạm Công Hoạt (2006), Bốn bệnh đỏ lợn biện pháp phòng trị, Nxb Nông nghiệp, tr.76-117 nl w 32 Lê Văn Tạo (2005), “Bệnh vi khuẩn Streptococcus gây lợn”, Tạp Lê Văn Tạo (2007), Một số bệnh truyền nhiễm thường gặp lợn biện pháp an lu 33 d oa chí Khoa học kỹ thuật thú y, 12(3), tr 89-90 va phòng trị, Nxb Lao động - Xã hội, tr 7-15; 68 - 89 u nf 34 Phạm Ngọc Thạch (2007), Một số tiêu lâm sàng, tiêu máu lợn mắc ll Hội chứng rối loạn hô hấp sinh sản (bệnh Tai xanh) số đàn lợn m oi tỉnh Hải Dương Hưng Yên, Hội thảo khoa học Hội chứng rối loạn z at nh hô hấp sinh sản bệnh liên cầu gây lợn 10/2007, Trường Đại z học Nông nghiệp, Hà Nội, tr 25-34 vật thú y, Nxb Nông nghiệp, Hà Nội, tr 11-17 Nguyễn Như Thanh (2007), Hội chứng rối loạn hô hấp sinh sản, Hội m co 36 l gm @ 35 Nguyễn Như Thanh, Nguyễn Bá Hiên, Trần Thị Lan Hương (2001), Vi sinh thảo PRRS bệnh liên cầu khuẩn gây lợn tháng 10/2007, Trường an Lu Đại học Nông nghiệp Hà Nội n va ac th si 128 37 Nguyễn Như Thanh (2011), Dịch tễ học thú y, Nxb Nông nghiệp, Hà Nội 38 Tô Long Thành (2007), “Hội chứng rối loạn sinh sản hô hấp lợn”, Tạp chí Khoa học kỹ thuật thú y, 14 (3), tr 81-88 39 Tô Long Thành Nguyễn Văn Long (2008), “Kết chẩn đoán nghiên cứu virus gây Hội chứng rối lọan hô hấp sinh sản lợn Việt Nam từ tháng 3/2007 đến 5/2008”, Tạp chí Khoa học kỹ thuật thú y, 15(5), tr 5-13 40 Cao văn Thật, Trần Thị Dân, Trần Thị Bích Liên, Thái Quốc Hiếu, Nguyễn Văn Hân, Hồ Huỳnh Mai, Nguyễn Thị Mến (2012), “Mức độ nhiễm virus lu an PRRS ảnh hưởng nhiễm ghép PRRSV-Leptospira lên suất sinh sản n va heo nái tỉnh Tiền Giang”, Tạp chí Khoa học kỹ thuật thú y, 19(6), tr 17- 23 gh tn to 41 Nguyễn Văn Thiện (1997), Phương pháp nghiên cứu chăn nuôi, Nxb Nông nghiệp, Hà Nội p ie 42 Đỗ Ngọc Thúy, Âu Xuân Tuấn, Cù Hữu Phú, Lê Văn Tạo (2007), “Ứng dụng kỹ w thuật PCR để định type giáp mô chủng vi khuẩn Pasteurella multocida oa nl phân lập từ vật ni”, Tạp chí Khoa học kỹ thuật thú y, 14(1), tr 36-41 d 43 Đỗ Ngọc Thuý, Lê Thị Minh Hằng, Constance Schutz, Ngô Thị Hoa, Trần lu va an Đình Trúc, Cù Hữu Phú, Trần Việt Dũng Kiên, Âu Xuân Tuấn, Nguyễn u nf Xuân Huyên, Trần Thị Thanh Xuân (2009), “Một số đặc tính chủng ll vi khuẩn Streptococcus suis lưu hành lợn miền Bắc Việt m oi Nam”, Tạp chí Khoa học kỹ thuật thú y, 16(3), tr 24-28 z at nh 44 Nguyễn Ngọc Tiến (2011), “Tình hình dịch lợn Tai xanh (PRRS) Việt Nam cơng tác phịng chống dịch”, Tạp chí Khoa học kỹ thuật thú y, 18(1), tr 12- 20 z gm @ 45 Đỗ Quốc Tuấn, Nguyễn Quang Tuyên (2007), “Kết kiểm tra độc lực tính mẫn cảm kháng sinh Pasteurella multocida phân lập từ lợn l m co khu vực miền núi phía bắc”, Tạp chí Khoa học kỹ thuật thú y, 14(6), tr 46-51 46 Đỗ Quốc Tuấn (2008), Nghiên cứu bệnh tụ huyết trùng lợn số tỉnh miền núi an Lu phía bắc Việt Nam, Luận án tiến sĩ Nông nghiệp, Viện Thú y Quốc gia, Hà Nội n va ac th si 129 47 Nguyễn Quang Tuyên, Đỗ Quốc Tuấn (2007), “Kết phân lập vi khuẩn Pasteurella multocida lợn khu vực miền núi phía bắc”, Tạp chí Nơng nghiệp phát triển Nơng thơn, (15), tr 45- 47 48 Tiêu chuẩn Việt Nam 8669 (2011), Tiêu chuẩn kiểm nghiệm vaccine, Trung tâm kiểm nghiệm thuốc thú y Trung ương I 49 William T.Christianson, Han Soo Joo (2001), “Hội chứng rối loạn sinh sản hô hấp lợn”, Tạp chí Khoa học kỹ thuật thú y, (2), tr 74- 87 Tiếng Anh 50 Albina E., Madec F., Cariolet R., Torrison J (1994), Immune response and lu an persistence of the porcine reproductive and respiratory syndrome virus in n va infected pigs and farm units, Vet Rec 134, pp 567-573 tn to 51 Archambault M., Rioux S., Jacques M (1999), Evaluation of the hemoglobine binding activity of Actinobacillus pleuropneumoniae using p ie gh fluorescein labeled pig hemoglobin and flow cytometry FEMS Microbiol Lett;173:17-25 nl w 52 Belanger M., Dubreuil D., Harel J., Girard C., Jacques M (1990), Role of d oa lipopolysaccharides in adherence of Actinobacillus pleuropneumoniae to an lu porcine tracheal rings Infect Immun 58:3523-3530 va 53 Bergey (1974), Manual of determinative bacteriology 8th Buchanan R.E oi m Company ll u nf and Gibbsons N.E Co - editors, Saltimore, the Williams anh Wiking 54 Bertram T A (1986), Intravascular macrophages in lungs of pigs infected z at nh with Haemophilus pleuropneumoniae Vet Pathol 23: 681-691 z 55 Blackall P J., Klaasen H B L M., van den Bosch H., Kuhnert P., Frey J @ (2002), Proposal of a new serovar of Actinobacillus pleuropneumoniae: l gm serovar 15, Vet Microbiol (84) 47-52 m co 56 Bosses J T., MacInnes J I (2000), Urease activity may contribute to the ability of Actinobacillus pleuropneumoniae to establish infection Can J Vet an Lu Res Jul;64(3):145-150 n va ac th si 130 57 Carter G R (1955), Studies on Pasteurella multocida I, a haemagglutination test for indentification of serological type, American Juornal of Vet Reseach 16, pp 481 - 484 58 Carter G R (1961), A new serological type of Pasteurella multocida from central, Veterinary record, 73, pp 1052 59 Carter G.R (1984), Pasteuralla Yersinia and Franciella page: 111-121 in Diagnostic procedures in veterinary bacteriology and Mycology 4th ed (Carter G.R, ed), Charles C, Thomas Publisher, Springfield 60 Chang Y F., Shi J R., Ma D P., Shin S J., Lein D H (1993), Molercular lu analysis of the Actinobacillus pleuropneumoniae RTX Toxin-III gene an cluster DNA Cell Biol 12: 351-362 n va 61 Chiers K, Donne E, Van Overbeke I, Ducatelle R, Haesebrouck F (2002), tn to Actinobacillus pleuropneumoniae infectious in closed swine heards: infectious patterns and serological profiles Elsevier science B.V in Ghent University - Belgium gh p ie 62 Cho W S., Chae C (2001), Expression of the apx IV Gene in Pigs Naturally Infected with Actinobacillus pleupneumoniae, J Comp Path nl w 125, p 34 - 40 oa 63 Chung J Y., Wilkie I., Boyce J D., Townsend K M., Frost A J., Ghoddusi M., d Adler B (2001), “Role of capsule in the pathogenesis of fowl cholera caused by lu va an Pasteurella multocida serogroup A”, Infect Immin, 69(4), pp 2487 - 2492 u nf 64 Chung J W., Ng- Thow- Hing C., Budman L I., Gibbs B F., Nash J H., ll Jacques M., Coulton J W (2007), Outer membrane proteome of m oi Actinobacillus pleuropneumoniae: LC-MS/MS analyses validate in silico z at nh predictions Proteomics Jun; 7(11): 1854-1865 65 Clifton-Hadley F A (1983), Streptococccus suis type infection, Br Vet z J, No 139, pp 1-5 @ gm 66 Collins J E., Benfield D A., Christianson W T., Harris L., Hennings J C., Shaw l D P., Goyal S M., McCullough S., Morrison R B., Joo S H., Gorcyca D., m co Chladek D (1992), “ Isolation of swine infertility and respiratory syndrome virus (isolate ATCC VR- 2332) in North America and experimental reproduction of an Lu the disease in gnotobiotic pigs”, J Vet Diagn Invest 4: 117- 126 n va ac th si 131 67 Devenish J., Rosendal S., Bosse J T., Wilkie B N., Johnson R (1990), Prevalence of seroreactors to the 104-kilodalton hemolysin of Actinobacillus pleuropneumoniae in swine herds, J Clin Microbiol 28:789-791 68 Devenish J., Rosendal S (1991), Calcium binds to and is required for biological activity of the 104 kilodalton hemolysin of Actinobacillus pleuropneumoniae serotype 1, Can J Microbiol 37:317-321 69 Diallo I S., Frost A J., Spradbrow P B (1995), “Molecular studies on avian stranins of Pasteurella multocida in Australia”, Vet Microbiol, pp 335 - 342 lu an 70 Diarra M S., Dolence J A., Dolence E K., Darwish I., Miller M J., va Malouin F., Jacques M (1996), Growth of Actinobacillus n siderophores, Appl Environ Microbiol; 62:853-859 ie gh tn to pleuropneumoniae is promoted by exogenous hydroxamate and catechol p 71 D'Silva C G., Archibald F S., Niven D F (1995), Comparative study of iron acquisition by biotype and biotype strains of Actinobacillus w oa nl pleupneumoniae, Vet Microbiol 44: 11-23 d 72 Eiichi K., Takuo S., Tsutomu M (1997), “Evaluation of transport media for lu va an Pasteurella multocida isolates from rabbit nasal specimens”, Journal of u nf clinical microbiology, 35(8), pp 1948 - 1951 ll 73 Enright M R., Alexander T J L., Clifton-Hadley E A (1987), Role of m oi houseflies (Musca domestica) in the epidemiology of Streptococcus suis z at nh type 2, Vet Rec, No 121, pp 132-133 74 Fedorka-Cray P J., Hoffman L., Cray W C., Gray J T., Breish S A., z gm @ Anderson G A (1993), Actinobacillus (Haemophilus) pleuropneumoniae Part I History, epidemiology, serotyping, and treatment Compend Contin m co l Ed Practic Vet 15:1447-1455 75 Felmlee T., Pellett S., Welch R A (1985), Nucleotide sequence of an an Lu Escherichia coli chromosomal hemolysin J Bacteriol 163:94-105 n va ac th si 132 76 Fenwick B., Henry S (1994), Porcine pleuropneumonia J Am Vet Med Assoc 204:1334-1340 77 Frey J., Nicolet J (1988), Purification and partial characterization of a hemolysin produced by Actinobacillus pleuropneumoniae type strain 4074 FEMS Microbiol Lett 55:41-46 78 Frey J., Nicolet J (1990), Hemolysin patterns of Actinobacillus pleuropneumoniae J.Clin Microbiol 28:232-236 79 Frey J., Van Den Bosch H., Segers R., Nicolet J (1992), Identification of a second hemolysin (HlyII) in Actinobacillus pleuropneumonia e lu an serotype I and expression of the gene in Escherichia coli Infection n va and Immunity 60, 1671-1676 Uniform designation of haemolysins, cytolysins pleurotocin and their genes, J Gen Microbiol 139, p 1723 - 1728 p ie gh tn to 80 Frey J., Bosse J T (1993), Actinobacillus pleupneumoniae RTX toxins: w 81 Frey J., Kuhn R., Nicolet J (1994), Association of the CAMP phenomenon oa nl in Actinobacillus pleuropneumoniae with the RTX toxins ApxI, ApxII and d ApxIII FEMS Microbiol Lett 124 245-251 lu an 82 Frey J (1995a), Exotoxins of Actinobacillus pleuropneumoniae In: W u nf va Donachie (ed.) Haemophilus, Actinobacillus, and Pasteurella New York and London: Plenum ll oi m 83 Frey J (1995b), Virulence in Actinobacillus pleuropneumoniae and RTX z at nh toxins Trends Microbiol Jul, 3(7): 257- 261 84 Gerlach G F., Klashinsky S., Anderson C., Potter A A., Willson P J z (1992), Characterization of two genes encoding distinct transferring @ m co l Infect Immun;60: 3253-3261 gm binding proteins in different Actinobacillus pleuropneumoniae isolates 85 Gonzalez G C., Yu R H., Rosteck P R J R., Schryvers A B (1995), Microbiology (Reading) 141: 2405-2416 an Lu Sequence, genetic analysis and expression of transferrin receptor genes n va ac th si 133 86 Gottschalk M., Higgins R., Jacques M., Mittal K R., Henrichsen J (1989), Description of 14 new capsular types of Streptococcus suis, J Clin Microbiol, No 2, pp 2633- 2635 87 Gottschalk M., Lebrun A., Wisselink H., Dubreuil J D., Smith H., Vecht U (1998), Production of virulence-related proteins by Canadian strains of Streptococcus suis capsular type 2, Can J Vet Res, No 62, pp 75-79 88 Gygi D., Nicolet J., Hughes C., Frey J (1992), Functional analysis of the Ca2+ regulated hemolysin I operon of A pleuropneumoniae serotype lu Infect Immun 60: 3059-3064 an 89 Han J., Wang Y., Faaberg K S (2006), Complete genome analysis of va n RFLP 184 isolates of porcine reproductive and respiratory syndrome virus: to gh tn Virus Research 122 (1-2): pp 175-183 p ie 90 Hartmann L., Schroeder W., Luebke A (1995), Isolation of the major outer membrane proteins of Actinobacillus pleuropneumoniae and Haemophilus oa nl w parasuis J Vet Med (B) 42:59-63 91 Higgins R., Gottschalk M., Boudreau M., Lebrun A., Henrichsen J (1995) d an lu Description of six new Streptococcus suis capsular types, J Vet Diagn u nf va Invest 7: 405- 406 92 Higgins R., Gottschalk M (2002), Streptococcal diseases Diseases of ll oi m swine, pp 563-573 z at nh 93 Hunt M L., Adler B., Townsend K M (2000), “The molecular biology for Pasteurella multocida”, Vet Microbiology 72 (1), pp - 25 z @ 94 Inoue A., Yamamoto K., Hirano N., Murakami T (1984), Drug pigs Jpn J Vet Sci 46:175-180 m co l gm susceptibility of Haemophilus pleuropneumoniae strains isolated from 95 Inzana T J (1991), Virulence properties of A pleuropneumoniae an Lu Microb.Path 11:305-316 n va ac th si 134 96 Iwamatsu S., Sawada T (1988), Relationship between serotypess, dermonecrotic toxin production of Pasteurella multocida isolation and pneumonic lesions of porcine lungs, Jpn J Vet Sci 50: p 1200 - 1206 97 Jablonki P E., Jaworski M., Hovde C J (1996), “A minimal medium for growth of Pasteurella multocida”, FEMS Microbiol Lett, 140(2), pp.165 - 174 98 Jacobsen M J., Nielsen J P., Nielsen R (1996), Comparison of virulence of different A pleuropneumoniae serotypes and biotypes using an aerosol infection model Veterinary Microbiology 49: 159-168 lu an 99 Jacques M., Roy G., Mittal K R (1988), Hemmaglutinating properties of va A pleuropneumoniae Can J Microbiol 34, 1046-1049 n surface components of Streptococcus sui, J Bacteriol, No 172, pp 2833- 2838 ie gh tn to 100 Jacques M., Gottschalk M., Foiry B., Higgins R (1990), Ultrastructural study on p 101 Jacques M (2004), Surface polysaccharides and iron-uptake systems of Actinobacillus pleuropneumoniae The Canadian Journal of Veterinary w oa nl Research 68:81-85 d 102 Jensen A E., Bertram T A (1986), Morphological and biochemical lu of virulent and avirulent isolates of Haemophilus va an comparison u nf pleuropneumoniae serotype Infect Immun 51:419-424 ll 103 Jansen R., Briaire J., Kamp E M., Smits M A (1992), The cytolysin genes m oi of Actinobacillus pleuropneumoniae Proceedings 12th IPVS, The Hague z at nh The Netherlands, p 197 Abstr Proc 12th Int Pig Vet Soc 104 Jansen R., Briaire J., Kamp E M., Gielkens A., Smits M A (1993), z gm @ Structure analysis of the Actinobacillus pleuropneumoniae RTX-toxin-I (ApxI) operon Infect Immun 61: 3688-3695 l m co 105 Jones J E T (1981), Experimental streptococcal endorcaditis in the pigs: the development of lessions to 14 days after inoculation J Com Pathol, No 91, pp an Lu 51- 62 n va ac th si 135 106 Kamp E M., Popma J K., Anakotta J., Smits M A (1991), Identification of hemolytic and cytotoxic proteins of Actinobacillus pleuropneumoniae by using monoclonal antibodies Infect Immun 59:3079-3085 107 Kamp E M., Vermeulen T M., Smits M A., Haagsma J (1994), Production of Apx toxins by field strains of A pleuropneumoniae and Actinobacillus suis Infect Immun 62: 4063-4065 108 Kang-Hee O., No-Chan Park, Lee-Zun Kim, Duk-Sang Park (1990), 13(1) “Serogruop and drug susceptibility of Pasteurella multocida pneumonia in pig”, Korean J Vet Serv, pp 69-74 lu an 109 Kegong Tian, Yu X (2007), Emergence of Fatal PRRSV Varants: n va Unparalleled Outbreaks of Atypical PRRS in China and Molecular tn to Dissection of the Unique Hallmark, PloS ONE 2(6) International PRRS Symposium gh p ie 110 Kilian M (1976), A taxonomic study of the genus Haemophilus, with the proposal of a new species J Gen Microbiol 9-62 nl w 111 Kilian M., Nicolet J., Biberstein E L (1978), Biochemical and serological d oa characterization of Haemophilus pleuropneumoniae and proposal of a an lu neotypee strain Int J Syst Bacteriol 28:20-26 va 112 Kume K., Nagano I., Nakai T (1986), Bacteriological, serological and ll u nf pathological examination of Haemophilus pleuropneumoniae infection in oi m 200 slaughtered pigs Jpn J.Vet Sci 48: 965-970 113 Langford P R., Loynds B M., Kroll J S (1996), Cloning and molecular of z at nh characterisation copper-zinc superoxidase dismutase from z Actinobacillus pleuropneumoniae Inf and Imm 64: 5035-5041 @ 114 Leman A D (1992), The decision to repopulate In Proceedings Am l gm Assoc Swine Pract pp 9-12 m co 115 Liu J., Chen X., Tan C., Guo Y., Chen Y., Fu S., Bei W., Chen H (2009), In vivo induced RTX toxin ApxIVA is essential for the full virulence of Actinobacillus an Lu pleuropneumoniae Vet Microbiol 2009 Jun 12;137(3-4):282-289 n va ac th si 136 116 Lun Z R., Wang Q P., Chen X G., Li A X., Zhu X Q (2007), Streptococcus suis: an emrging zoonotic pathogen, Lancet Infect Dis 7(3), pp 201- 209 117 Macdonald J., Rycroft A N (1992), Molecular cloning and expression of ptxA, the gene encoding the 120-kilodalton cytotoxin of Actinobacillus pleuropneumoniae serotype Infection and Immunity 60: 2726- 2732 118 Macdonald J., Rycroft A N (1993), Actinobacillus pleuropneumoniae haemolysin II is secreted from Escherichia coli by Actinobacillus pleuropneumoniae pleurotoxin secretion gene products FEMS Microbiol Lett 109, 317-322 lu an 119 MacInnes J I., Rosendal S (1988), Prevention and control of n va Actinobacillus (Haemophilus) pleuropneumoniae infection in swine: A 120 Michael L P., Barbara J M., Vivek K (2002), “Transcriptinal response of Pasteurella multocida to nutrient limitation”, Journal of bacteriology, p ie gh tn to review Can Vet J 572-573 184(13), pp 3734-3739 nl w 121 Moller K., Kilian M (1990), V factor-dependent members of the family d oa Pasteurellaceae in the porcine upper respiratory tract J Clin Microbiol an lu Dec; 28(12): 2711-6 va 122 Moller K., Nielsen R., Andersen L V., Killian M (1996), Clonal analysis ll u nf of the Actinobacillus pleupneumoniae population in a geographically 623 - 627 oi m restricted area bu multilocus enzyme elctrophoresis, J Clin Micro 30, p z at nh 123 Moore G M., Basson R P., Tonkinson L V (1996), Clinical trials with z tilmicosin phosphate in feed for the control of naturally- acquired @ pleuropneumonia caused by Actinobacillus pleuropneumoniae and gm l Pasteurella multocida in swine Am J Vet Res 57:224-228 m co 124 Namioka S., Murata M (1961), Serological studies on Pasteurella multocida II, characteristic of the somatic “O” antigen of the organism, an Lu Cornell Veterinarian, 51, pp 507-512 n va ac th si 137 125 NCCLS (2002), Performance standards for antimicrobial susceptibility testing M 100-S12 Vol 22 No.1 126 Negrete-Abascal E., Tenorio V R., Serrano J J., Garcia C., de la Garza M (1994), Secreted proteases from Actinobacillus pleuropneumoniae serotype degrade porcine gelatin, hemoglobin and immunoglobulin A Can J Vet Res 58:83-86 127 Nicolet J., Schifferli D (1982), In vitro susceptibility of HaemophilusPleuropneumoniae to antimirobial substances Porc Int Congr Pig Vet Soc 7:71 lu 128 Nicolet J (1992), Actinobacillus pleuropneumoniae: In Leman AD, Straw an B, Mengeling WL, D’Allaire S, Taylor DJ (ed.): Diseases of swine Iowa va n State University Press, Ames, pp 401-408 (1997), Serological characterization of Actinobacillus pleuropneumoniae biotype ie gh tn to 129 Nielsen R., Adresen L O., Plambeck T., Nielsen J P., Krarup L T., Jorsal S V p strains isolated from pigs in two Danish herds Vet Microbiol 54, 35 - 46 nl w 130 OIE (2004), Manual of diagnostic testes and vaccines for terrestrial d oa amimals 5th edition Chapter 2.711: Eowl cholera an lu 131 O'Reilly T., Niven D F., Brown M R W (1991), Phenotypeic variotion in va the outer membrance protein compositin of Actinobacillus (H.) oi m Micro 29, p 159 - 172 ll u nf pleuropneumoniae: Non - Specific effect of exogenous pyridine supply, Vet z at nh 132 Perch B., Pedersen K B., Henrichsen J (1983), Serology of capsulated Streptococci pathogenic for pigs: Six new serotypes of Streptococcus suis, J z Clin Microbiol, No 17, pp 993-996 @ gm 133 Perry M B., Altman E., Brison J R., Beynon L M., Richards J C (1990), involved in the serological m co lipopolysaccharides l Structural characteristics of the antigenic capsular polysachharides and alaccification of Immunotherapy in Inf Dis 4, p 299 - 308 an Lu Actinobacillus (Haemophilus) pleupneumoniae strains Serodiagnosis and n va ac th si 138 134 Peter E., Marth J., Carolyn J H (1996), “A miminal medium for growth of Pasteurella multocida”, FEMS microbiology letters, 140 (2-3), pp 165 - 169 135 Pijoan C (1996), Bacterial respiratory pathogens: What is their impact? In Proc 4th Annu Swine Dis Conf Swine Pract, pp 45- 47 136 Pohl S., Bertschinger H U., Frederiksen W., Manheim W (1983), Transfer of Haemophilus Pleuropneumoniae and the Pasteurella haemolytica-like organism causing porcine necrotic pleuropneumonia to the genus Actinobacillus (Actinobacillus pleuropneumoniae comb Nov.) on the basis of phenotypeic and deoxyribonucleic acid relatedness Inst J Syst Bacteriol lu 33: 510- 514 an 137 Prescott J F., Baggot J D (1993), Antimicrobial Therapy in Medicine va n Ames: Iowa State Univ Press (2005), Development and use of a multiplex polymerase chain reaction ie gh tn to 138 Rayamajhi N., Shin S J., Kang S G., Lee D Y., Ahn J M., Yoo H S p assay based on Apx toxin genes for genotypeing of Actinobacillus pleuropneumoniae isolates J Vet Diagn Invest Jul;17(4): 359-62 w oa nl 139 Reams R Y., Glickman L T., Harrington D D., Thacker H L., Bowersock d T L (1994), Streptococcus suis infection in swine: A retrospective study of lu an 256 cases Part II Clinical signs, gross and microcopic lessions, and u nf va coexisting microorganisms, J Vet Diagn Invest, No 6, pp 326- 334 140 Rimler R B., Rhoades K R (1987), Serogroup F, a new capsule serogroup of ll oi m Pasteurella multocida, Journal of Clinical microbiology 25, pp 615 - 618 comparative pathogenicity z at nh 141 Rogers R J., Eaves L E., Blackall P J., Truman K F (1990), The of four serovars of Actinobacillus z (Haemophilus) pleuropneumoniae Australian Vet J 67: 9-12 @ gm 142 Rycroft A N., Williams D., Cullen J M., MacDonald J (1991a), The m co l cytotoxin of Actinobacillus pleuropneumoniae (pleurotoxin) is distinct from the hemolysin and is associated with a 120 kDa polypeptide J Gen an Lu Microbiol 137: 561- 568 n va ac th si 139 143 Rycroft A N., Williams D., Mccandlish I A., Taylor D J (1991b), Experimental reproduction of acute lesions of porcine pleuropneumonia with a haemolysin-deficient mutant of Actinobacillus pleuropneumoniae Veterinary Record 129, 441- 443 144 Schaller A., Kuhn R., Kuhnert P., Nicolet J., Anderson T J., MacInnes J I., Segers R P., Frey J (1999), Characterization of apxIVA, a new RTX determinant of Actinobacillus pleuropneumoniae Microbiology Aug;145(Pt 8): 2105-16 145 Shivachandra S K (2006), “Identification of avian strains of Pasteurella lu multocida in India by conventional anh PCR assays”, Vet Journal, 172 (3), an va pp 561 - 565 n 146 Smith H., Vecht H., Gielkens A L J., Smiths M A (1992), Cloning and to protein (muramidase-released protein) of Streptococcus suis type 2, ie gh tn nucleotide sequence of the gene encoding the 136-kilodalton surface p Infestion and immunity, No 60, pp 2361- 2367 nl w 147 Utrera V., Pijoan C (1991), Fimbriae in Actinobacillus pleuropneumoniae d oa strains isolated from pig respiratory tracts Vet Rec 128 (15): 357-358 an lu 148 Vandic Branka, Grgic Z., Novakovic Zorica, Stojanovic Dragica (2004), Selective media for the isolation of A pleuropneumoniae from the pig Acta va ll u nf Veterinaria (Belgrad), Vol 54, No 5- 6, 395- 401 oi m 149 Vasconcelos D., Middleton D M., Chirino Trejo J M (1994), Lesions caused by natural infection with Streptococcus suis type in weaned pigs, J z at nh Vet Diagn Invest, No 6, pp 335-341 z 150 Vecht U., Van Leengoed L A M G., Verheijen E R M (1985), @ Streptococcus suis infections in pigs in the Netherlands (part I), Vet Quart , l gm No 7, pp 315- 321 m co 151 Vecht U., Wisselink H J., Jellema M L., Smith H E (1991), Identification Infect Immun 59: 3156- 3162 an Lu of two proteins associated with virulence of Streptococcus suis type 2, n va ac th si 140 152 Vecht U., Wisselink H J., van Dijk J E., Smith H E (1992), Virulence of Streptococcus suis type strains in newborn germfree pigs depends on phenotype, Infect Immun, No 60, pp 550- 556 153 Ward C K., Inzana T J (1994), Resistance of A pleuropneumoniae to bactericidal antibody and complement is mediated by capsular polysaccharide and blocking antibody specific for lipopolysaccharide J Immunol 153: 2110- 2121 154 Ward C K., Inzana T J (1997), Identification and characterization of a DNA region involved in the export of capsular polysaccharide by A lu pleuropneumoniae serotype 5a Infect and Immun 65: 2491-2496 an 155 Wensvoort G., Terpstra C., Pol J M A (1991), “Mystery swine disease in va n the Netherlands: the isolation of Lelystad virus”, The Veterinary Quarterly, to gh tn vol 13, No 3, pp 121-130 p ie 156 Wilke M., Franz B., Gerlach G F (1997), Characterization of a large transferrin-binding protein from Actinobacillus pleuropneumoniae serotype nl w J Vet Med B; 4: 73-86 d oa 157 Windsor R S., Elliott S D (1975), Streptococcal infection in young pigs an lu IV An outbreak of Streptococcal meningitis in weaned pigs, J Hyg Camb, va No 75, pp 69-78 ll u nf 158 Willson PJ, Deneer HG, Potter A, Albritton W (1989), Characterization of oi m a streptomycin- sulfonamide resistance plasmid from Actinobacillus z at nh pleuropneumoniae Antimicrob Agents Chemother 33:235-238 159 Wu J R., Shienh H K., Gong S R., Chang P C (2003), “Molecular z charaterization of plastmis with antimicrobial resistant genes in avian @ m co l gm isolates of Pasteurella multocida”, Avian diseases, 47 (4), pp 138-142 an Lu n va ac th si