Đánh giá độc tính của sodium benzoate propyl gallate tartrazine amaranth monosodium glutamate và formaldehyde trên mô hình phát triển phôi cá ngựa vằn

89 8 0
Đánh giá độc tính của sodium benzoate propyl gallate tartrazine amaranth monosodium glutamate và formaldehyde trên mô hình phát triển phôi cá ngựa vằn

Đang tải... (xem toàn văn)

Tài liệu hạn chế xem trước, để xem đầy đủ mời bạn chọn Tải xuống

Thông tin tài liệu

ĐẠI ĐẠIHỌC HỌCQUỐC QUỐCGIA GIAHÀ HÀNỘI NỘI BÌA TRƯỜNG TRƯỜNGĐẠI ĐẠIHỌC HỌCKHOA KHOAHỌC HỌCTỰ TỰNHIÊN NHIÊN - Vũ AnhTiến Tuấn Nguyễn Lung ĐÁNH GIÁ ĐỘC CỦAFISH SODIUM SỬ DỤNG KỸTÍNH THUẬT ĐỂ BENZOATE, KIỂM TRA PROPYL GALLATE, TARTRAZINE, AMARANTH, SỰ HỘI NHẬP CỦA GEN IL–6 PHÂN LẬP TỪ NGƯỜI MONOSODIUM GLUTAMATE VÀ FORMALDEHYDE TRONG BÀO GỐC PHÔI GÀCÁ CHUYỂN GEN TRÊN MƠ TẾ HÌNH PHÁT TRIỂN PHƠI NGỰA VẰN LUẬN VĂN THẠC SĨ KHOA HỌC LUẬN VĂN THẠC SĨ KHOA HỌC Hà Nội – 2015 Hà Nội – 2013 ĐẠI HỌC QUỐC GIA HÀ NỘI TRƯỜNG ĐẠI HỌC KHOA HỌC TỰ NHIÊN - Vũ Anh Tuấn ĐÁNH GIÁ ĐỘC TÍNH CỦA SODIUM BENZOATE, PROPYL GALLATE, TARTRAZINE, AMARANTH, MONOSODIUM GLUTAMATE VÀ FORMALDEHYDE TRÊN MƠ HÌNH PHÁT TRIỂN PHƠI CÁ NGỰA VẰN Chuyên ngành: Sinh học Thực nghiệm Mã số: 60.42.0114 LUẬN VĂN THẠC SĨ KHOA HỌC NGƯỜI HƯỚNG DẪN KHOA HỌC: PGS TS Nguyễn Lai Thành TS Hoàng Thị Mỹ Hạnh Hà Nội – 2015 LỜI CẢM ƠN Đầu tiên, xin gửi lời cảm ơn chân thành đến PGS TS Nguyễn Lai Thành, người thầy thu nhận, hướng dẫn, truyền đạt cho kiến thức kinh nghiệm suốt thời gian học tập nghiên cứu phịng thí nghiệm Thầy ln theo sát, bảo cho tơi góp ý q báu để tơi hồn thành tốt cơng việc Tơi biết ơn TS Hoàng Thị Mỹ Hạnh bảo, hướng dẫn tơi kiến thức, kỹ để tơi hồn thiện luận văn tốt nghiệp Tôi xin gửi lời cảm ơn đến NCS Đinh Duy Thành, người dạy, hướng dẫn cho từ ngày đầu tơi vào làm việc phịng, truyền đạt cho tơi kinh nghiệm công việc sống Tơi xin bày tỏ lịng biết ơn sâu sắc đến thầy cô công tác môn Sinh học Tế bào thầy cô khoa Sinh học truyền đạt cho kiến thức sở, làm tảng cho việc thực nghiên cứu Tôi xin cảm ơn tất anh chị, bạn em sinh viên học tập cơng tác phịng Cơng nghệ Tế bào Động vật - Trung tâm Nghiên cứu Khoa học Sự sống, đặc biệt học viên cao học Lưu Hàn Ly bên cạnh giúp đỡ, hỗ trợ thời gian thực nghiên cứu Tôi xin chân thành cảm ơn gia đình, bạn bè người thân, ln bên, động viên cho tơi có thêm nghị lực để vượt qua khó khăn suốt thời gian qua Hà Nội, tháng 12 năm 2015 Học viên Vũ Anh Tuấn MỤC LỤC DANH MỤC HÌNH DANH MỤC BẢNG BẢNG KÝ HIỆU VÀ CHỮ VIẾT TẮT MỞ ĐẦU CHƯƠNG TỔNG QUAN 1.1 THỰC TRẠNG SỬ DỤNG HÓA CHẤT 1.2 PHỤ GIA THỰC PHẨM 1.2.1 Sơ lược phụ gia thực phẩm 1.2.2 Các loại phụ gia thực phẩm sử dụng nghiên cứu 1.2.2.1 Chất bảo quản - Sodium benzoate 1.2.2.2 Chất chống xy hóa - Propyl gallate 1.2.2.3 Chất tạo màu vàng - Tartrazine 1.2.2.4 Chất tạo màu đỏ - Amaranth 1.2.2.5 Chất điều vị - Monosodium glutamate 1.2.2.6 Chất bảo quản bị cấm sử dụng - Formaldehyde 10 1.3 CÁC MƠ HÌNH ĐÁNH GIÁ ĐỘC TÍNH HÓA CHẤT 10 1.3.1 Sử dụng động vật thí nghiệm đánh giá độc tính hóa chất 11 1.3.2 Mơ hình thay động vật thí nghiệm đánh giá độc tính hóa chất 12 1.3.2.1 Mơ hình đánh giá độc tính sử dụng tế bào ni cấy in vitro 12 1.3.2.2 Mơ hình phơi cá ngựa vằn đánh giá độc tính 12 CHƯƠNG PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU .18 2.1 ĐỐI TƯỢNG NGHIÊN CỨU 18 2.2 DỤNG CỤ, HÓA CHẤT, THIẾT BỊ 18 2.2.1 Dụng cụ, thiết bị 18 2.2.2 Hóa chất 19 2.3 QUY TRÌNH THÍ NGHIỆM 21 2.3.1 Quy trình ni cá bố mẹ thu phơi 21 2.3.2 Phơi nhiễm với hóa chất 21 2.3.3 Đánh giá ảnh hưởng chất phụ gia tới phát triển phơi dựa hình thái sức sống 23 2.3.4 Đánh giá ảnh hưởng chất đến nhịp tim phôi/ấu thể cá ngựa vằn 25 2.3.5 CHƯƠNG Phân tích thống kê 25 KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN .27 3.1 SỰ BIẾN ĐỔI HÌNH THÁI VÀ SỨC SỐNG CỦA PHÔI CÁ NGỰA VẰN KHI PHƠI NHIỄM VỚI CÁC CHẤT PHỤ GIA 29 3.1.1 Hình thái phơi cá ngựa vằn đối chứng 29 3.1.2 Hình thái phơi phơi nhiễm với nhóm chất tạo màu 30 3.1.2.1 Phơi nhiễm với chất tạo màu vàng Tartrazine (E102) 30 3.1.2.2 Phơi nhiễm với chất tạo màu đỏ Amaranth (E123) .34 3.1.3 Hình thái phơi phơi nhiễm với nhóm chất bảo quản 36 3.1.3.1 Phơi nhiễm với sodium benzoate (E211) .36 3.1.3.2 Phơi nhiễm với propyl gallate (E310) 39 3.1.4 Nhóm chất điều vị - Monosodium glutamate (E621) 41 3.1.5 Chất bảo quản bị cấm sử dụng – Formaldehyde (E240) 43 3.1.6 Sự ảnh hưởng hóa chất đến tỷ lệ phơi nở 47 3.2 SỰ ẢNH HƯỞNG CỦA CÁC HÓA CHẤT THỬ NGHIỆM ĐẾN NHỊP TIM PHÔI CÁ NGỰA VẰN 49 3.3 ĐỘC TÍNH CỦA CÁC CHẤT PHỤ GIA TRONG NGHIÊN CỨU 51 KẾT LUẬN VÀ KIẾN NGHỊ 57 TÀI LIỆU THAM KHẢO 59 DANH MỤC HÌNH Hình 1.1 Sự tương đồng gen hoạt động người, chuột, gà cá ngựa vằn 13 Hình 1.2: So sánh kết từ thử nghiệm độc tính lồi cá thử nghiệm phơi cá ngựa vằn .15 Hình 1.3 Các lĩnh vực nghiên cứu sử dụng phơi cá ngựa vằn số lượng nghiên cứu công bố từ 1992 đến 2015 .17 Hình 2.1 Hình thái cá ngựa vằn trưởng thành 18 Hình 2.2 Phân bố nồng độ đĩa 24 giếng 22 Hình 2.3 Hình thái phôi cá ngựa vằn số giai đoạn theo Kimmel 24 Hình 3.1 Hình thái phơi ấu thể cá ngựa vằn đối chứng .29 Hình 3.2 Phơi cá ngựa vằn phơi nhiễm với Tartrazine nồng độ g/l 30 Hình 3.3 Tỷ lệ phơi cịn sống tỷ lệ phôi dị dạng phơi nhiễm với Tartrazine thời điểm 24, 48 72 sau thụ tinh 31 Hình 3.4 Phơi cá ngựa vằn phơi nhiễm với Tartrazine 32 Hình 3.5 Tỷ lệ phơi cịn sống tỷ lệ phôi dị dạng phơi nhiễm với Tartrazine thời điểm 96 sau thụ tinh 34 Hình 3.6 Tỷ lệ phơi cịn sống tỷ lệ phơi dị dạng phơi nhiễm với Amaranth 35 Hình 3.7 Phơi cá ngựa vằn sau 96 phơi nhiễm với Amaranth 36 Hình 3.8 Phơi cá ngựa vằn phơi nhiễm với Sodium benzoate 37 Hình 3.9 Tỷ lệ phơi sống tỷ lệ phơi dị dạng phơi nhiễm với Sodium benzoate 38 Hình 3.10 Tỷ lệ phơi sống tỷ lệ phôi dị dạng phơi nhiễm với Propyl gallate 39 Hình 3.11 Phơi cá ngựa vằn phơi nhiễm với Propyl gallate 40 Hình 3.12 Phơi cá ngựa vằn phơi nhiễm với Monosodium glutamate 41 Hình 3.13 Tỷ lệ phơi cịn sống tỷ lệ phơi dị dạng phơi nhiễm với Monosodium glutamate 42 Hình 3.14 Phơi cá ngựa vằn phơi nhiễm với Formaldehyde 44 Hình 3.15 Tỷ lệ phơi sống tỷ lệ phơi dị dạng phơi nhiễm với Formaldehyde 45 Hình 3.16 Tỷ lệ loại dị dạng quan sát 96 sau thụ tinh .46 Hình 3.17 Tỷ lệ phơi nở thời điểm 72 sau thụ tinh 48 Hình 3.18 Nhịp tim/phút ấu thể cá ngựa vằn phơi nhiễm với phụ gia 50 Hình 3.19 Chỉ số LC50 thu thời điểm chất .53 Hình 3.20 Các số độc học chất thời điểm 96 sau thụ tinh 54 Hình 3.21 Chỉ số độc học TI chất thời điểm 96 sau thụ tinh .55 DANH MỤC BẢNG Bảng 1.1 Phân loại phụ gia thực phẩm Bảng 2.1 Dụng cụ, thiết bị sử dụng luận văn 18 Bảng 2.2 Các loại hóa chất thử nghiệm 20 Bảng 2.3 Một số tiêu chí đánh giá phát triển phôi cá ngựa vằn 23 Bảng 3.1 Các dải nồng độ thí nghiệm chất 28 Bảng 3.2 Liều lượng an toàn để sử dụng hàng ngày chấp nhận .56 BẢNG KÝ HIỆU VÀ CHỮ VIẾT TẮT Từ viết tắt Viết đầy đủ ADI Acceptable Daily Intake - Lượng ăn vào hàng ngày chấp nhận EC50 Median effective concentration - Nồng độ gây ảnh hưởng 50% cá LC50 thể thí nghiệm Median lethal concentration - Nồng độ gây chết 50% cá thể thí LOEC nghiệm Lowest observed effect concentration - Nồng độ thấp quan sát NOEC thấy ảnh hưởng đáng kể so với đối chứng No Observed Effect Concentration - Nồng độ cao không quan OECD sát thấy ảnh hưởng đáng kể so với đối chứng Organization for Economic Co-operation and Development – Tổ TI chức hợp tác phát triển Kinh tế Teratogenic index – số gây quái thai 11 Das, A and Mukherjee A (2004), “Genotoxicity testing of the food colours amaranth and tartrazine”, International Journal of Human Genetics, (4), pp 277 12 De Jong, E., Barenys M., et al (2011), “Comparison of the mouse Embryonic Stem cell Test, the rat Whole Embryo Culture and the Zebrafish Embryotoxicity Test as alternative methods for developmental toxicity testing of six 1,2,4-triazoles”, Toxicology and Applied Pharmacology, 253 (2), pp 103-111 13 Ebert, A.G (2009), “Evidence that MSG does not induce obesity”, Obesity (Silver Spring), 17 (4), pp 629-630; author reply 630-621 14 EFSA (2010), “Scientific Opinion on the re-evaluation of Amaranth (E 123) as a food additive on request from the European Commission”, EFSA Journal, 8(7):1649 (41pp) 15 Efsa (2014), “Scientific Opinion on the re-evaluation of propyl gallate (E 310) as a food additive”, EFSA Journal, 12(4):3642 (46 pp) 16 El-Nouby, K.A., Hamouda H.E., Abd El Azeem M.A., and El-Ebiary A.A (2009), “Food additives and Hymenolepis nana infection: an experimental study”, Journal of the Egyptian Society of Parasitology, 39 (3), pp 10151032 17 EU (2010), “Directive 2010/63/EU of the European Parliament and of the Council of 22 September 2010 on the protection of animals used for scientific purposes”, Official Journal EU, L 276 (33-79s) 18 EU (2012), “2012/707/EU: Commission Implementing Decision of 14 November 2012 establishing a common format for the submission of the information pursuant to Directive 2010/63/EU of the European Parliament and of the Council on the protection of animals used for scientific purposes”, Official Journal of the European Union, 028 P (163 - 180) 19 Freeman, M (2006), “Reconsidering the effects of monosodium glutamate: a literature review”, Journal of the American Academy of Nurse Practitioners, 18 (10), pp 482-486 20 Gao, Y., Li C., Shen J., Yin H., An X., and Jin H (2011), “Effect of Food Azo Dye Tartrazine on Learning and Memory Functions in Mice and Rats, and the Possible Mechanisms Involved”, Journal of Food Science, 76 (6), pp T125-T129 65 21 Gerger, C., Thomas J., Janz D., and Weber L (2015), “Acute effects of βnaphthoflavone on cardiorespiratory function and metabolism in adult zebrafish (Danio rerio)”, Fish Physiology and Biochemistry, 41 (1), pp 289-298 22 Groten, J., Butler W., Feron V., Kozianowski G., Renwick A., and Walker R (2000), “An analysis of the possibility for health implications of joint actions and interactions between food additives”, Regulatory Toxicology and Pharmacology, 31 (1), pp 77-91 23 Grunow, B., Mohamet L., and Shiels H.A (2015), “Generating an in vitro 3D cell culture model from zebrafish larvae for heart research”, Journal of Experimental Biology, 218 (8), pp 1116-1121 24 Gỹngửrmỹ, C and Klỗ A (2012), The safety assessment of food additives by reproductive and developmental toxicity studies”, Food Additive, InTech., pp 31-48 25 Guo, N., Lin J., et al “Influences of acute ethanol exposure on locomotor activities of zebrafish larvae under different illumination”, Alcohol, 49 (7), pp 727-737 26 Hashem, M.M., Atta A.H., Arbid M.S., Nada S.A., Mouneir S.M., and Asaad G.F (2011), “Toxicological impact of amaranth, sunset yellow and curcumin as food coloring agents in albino rats”, Journal of Pioneering Medical Sciences, (2), pp 43 27 He, K., Zhao L., et al (2008), “Association of monosodium glutamate intake with overweight in Chinese adults: the INTERMAP Study”, Obesity (Silver Spring), 16 (8), pp 1875-1880 28 Henn, K (2011), Limits of the fish embryo toxicity test with Danio rerio as an alternative to the acute fish toxicity test, University of Heidelberg, Germany 29 Hill, A., Mesens N., Steemans M., Xu J.J., and Aleo M.D (2012), “Comparisons between in vitro whole cell imaging and in vivo zebrafishbased approaches for identifying potential human hepatotoxicants earlier in pharmaceutical development”, Drug metabolism reviews, 44 (1), pp 127-140 30 Hodgson, E (2004), "Food Additives and Contaminants", in A textbook of modern toxicology, 4ed, pp 65-66 66 31 Howe, K., Clark M.D., et al (2013), “The zebrafish reference genome sequence and its relationship to the human genome”, Nature, 496 (7446), pp 498-503 32 Howe, K., Clark M.D., et al (2013), “The zebrafish reference genome sequence and its relationship to the human genome”, Nature, 496 (7446), pp 498-503 33 Humans, I.W.G.O.T.E.O.C.R.T and Cancer I.a.F.R.O (1995), Wood dust and formaldehyde, World Health Organization, International Agency for Research on Cancer 34 Hwang, W.Y., Fu Y., Reyon D., Gonzales A.P., Joung J.K., and Yeh J.-R.J (2015), “Targeted Mutagenesis in Zebrafish Using CRISPR RNA-Guided Nucleases”, CRISPR: Methods and Protocols, pp 317-334 35 Hwang, W.Y., Fu Y., et al (2013), “Efficient genome editing in zebrafish using a CRISPR-Cas system”, Nature biotechnology, 31 (3), pp 227-229 36 IPCS (1989), “Environmental health criteria 89:Formaldehyde ”, World Health Organization, (219pp) 37 Jacoby, E and Mozzarelli A (2009), “Chemogenomic strategies to expand the bioactive chemical space”, Current medicinal chemistry, 16 (33), pp 4374-4381 38 Joint, F., Organization W.H., and Additives W.E.C.O.F (1987), “Principles for the safety assessment of food additives and contaminants in food” Geneva : World Health Organization 39 Kim, J.H and Scialli A.R (2011), “Thalidomide: the tragedy of birth defects and the effective treatment of disease”, Toxicological Sciences, 122 (1), pp 1-6 40 Kimmel, C.B., Ballard W.W., Kimmel S.R., Ullmann B., and Schilling T.F (1995), “Stages of embryonic development of the zebrafish”, Developmental Dynamics, 203 (3), pp 253-310 41 Kobayashi, H., Oikawa S., Hirakawa K., and Kawanishi S (2004), “Metalmediated oxidative damage to cellular and isolated DNA by gallic acid, a metabolite of antioxidant propyl gallate”, Mutation Research/Genetic Toxicology and Environmental Mutagenesis, 558 (1–2), pp 111-120 42 Lammer, E., Carr G.J., Wendler K., Rawlings J.M., Belanger S.E., and Braunbeck T (2009), “Is the fish embryo toxicity test (FET) with the 67 zebrafish (Danio rerio) a potential alternative for the fish acute toxicity test?”, Comparative Biochemistry and Physiology Part C: Toxicology & Pharmacology, 149 (2), pp 196-209 43 Larsen, J.C., Mortensen A., and Hallas-Møller T., Scientific Opinion on the reevaluation Tartrazine (E 102) on request from the European Commission: Question No EFSA-Q-2008-222 2009, European Food Safety Authority 44 Lau, K., Mclean W.G., Williams D.P., and Howard C.V (2006), “Synergistic interactions between commonly used food additives in a developmental neurotoxicity test”, Toxicological Sciences, 90 (1), pp 178-187 45 Lenz, W (1977), “Thalidomide and Congenital Abnormalities”, in Problems of Birth Defects, Springer, pp 199-199 46 Lieschke, G.J and Currie P.D (2007), “Animal models of human disease: zebrafish swim into view”, Nature Reviews Genetics, (5), pp 353-367 47 Lilienblum, W., Dekant W., et al (2008), “Alternative methods to safety studies in experimental animals: role in the risk assessment of chemicals under the new European Chemicals Legislation (REACH)”, Archives of toxicology, 82 (4), pp 211-236 48 Loucks, E and Ahlgren S (2012), “Assessing Teratogenic Changes in a Zebrafish Model of Fetal Alcohol Exposure”, Journal of Visualized Experiments : JoVE, (61), pp 3704 49 Mccann, D., Barrett A., et al (2007), “Food additives and hyperactive behaviour in 3-year-old and 8/9-year-old children in the community: a randomised, double-blinded, placebo-controlled trial”, The Lancet, 370 (9598), pp 1560-1567 50 Mckim, J.M (1977), “Evaluation of tests with early life stages of fish for predicting long-term toxicity”, Journal of the Fisheries Board of Canada, 34 (8), pp 1148-1154 51 Moutinho, I., Bertges L., and Assis R (2007), “Prolonged use of the food dye tartrazine (FD&C yellow n° 5) and its effects on the gastric mucosa of Wistar rats”, Brazilian journal of biology, 67 (1), pp 141-145 52 Mpountoukas, P., Pantazaki A., et al (2010), “Cytogenetic evaluation and DNA interaction studies of the food colorants amaranth, erythrosine and tartrazine”, Food and Chemical Toxicology, 48 (10), pp 2934-2944 68 53 Murray, K.E., Thomas S.M., and Bodour A.A (2010), “Prioritizing research for trace pollutants and emerging contaminants in the freshwater environment”, Environmental Pollution, 158 (12), pp 3462-3471 54 Nagel, R (2002), “DarT: The embryo test with the Zebrafish Danio rerio a general model in ecotoxicology and toxicology”, ALTEX, 19 Suppl 1, pp 38-48 55 Nagel, R and Isberner K (1998), “Testing of chemicals with fish — a critical evaluation of tests with special regard to zebrafish”, in Fish Ecotoxicology, T Braunbeck, D Hinton, and B Streit, Editors, Birkhäuser Basel, pp 337-352 56 Narayanan, S.N., Kumar R.S., Paval J., and Nayak S (2010), “Effect of ascorbic acid on the monosodium glutamate-induced neurobehavioral changes in periadolescent rats”, Bratislavske lekarske listy, 111 (5), pp 247-252 57 Nethercott, J.R., Lawrence M.J., Roy A.M., and Gibson B.L (1984), “Airborne contact urticaria due to sodium benzoate in a pharmaceutical manufacturing plant”, Journal of Occupational Medicine and Toxicology, 26 (10), pp 734-736 58 Nielsen, G.D and Wolkoff P (2010), “Cancer effects of formaldehyde: a proposal for an indoor air guideline value”, Archives of toxicology, 84 (6), pp 423-446 59 Nordbeck, R and Faust M (2003), “European chemicals regulation and its effect on innovation: an assessment of the Eu's White Paper on the strategy for a future chemicals policy”, European Environment, 13 (2), pp 79-99 60 OECD Test No 203: Fish, Acute Toxicity Test, OECD Publishing 61 OECD (2005), “Guidance Document on the Validation and International Acceptance of New or Updated Test Methods for Hazard Assessment ”, OECD Series on Testing and Assessment No 34, OECD Publishing 62 OECD (2013), “Test No 236: Fish Embryo Acute Toxicity (FET) Test”, OECD Guidelines for the Testing of Chemicals, Section 2, OECD Publishing 69 63 Organization, W.H (2002), “Concise international chemical assessment document 40: Formaldehyde”, Geneva, Switzerland: World Health Organization 64 Peterson, R.T and Fishman M.C (2011), “Designing zebrafish chemical screens”, Methods in Cell Biology, 105, pp 525-541 65 Peterson, R.T and Macrae C.A (2012), “Systematic Approaches to Toxicology in the Zebrafish”, Annual Review of Pharmacology and Toxicology, 52 (1), pp 433-453 66 Pohl, R., Balon R., Berchou R., and Yeragani V.K (1987), “Allergy to tartrazine in antidepressants”, The American Journal of Psychiatry, 144 (2), pp 237-238 67 Poul, M., Jarry G., Elhkim M.O., and Poul J.-M (2009), “Lack of genotoxic effect of food dyes amaranth, sunset yellow and tartrazine and their metabolites in the gut micronucleus assay in mice”, Food and chemical toxicology, 47 (2), pp 443-448 68 Pruvot, B., Quiroz Y., et al (2012), “Zebrafish (Danio rerio) behavioral analysis: A new tool in toxicological assays”, Toxicology Letters, 211, pp S153 69 Pruvot, B., Quiroz Y., et al (2012), “A panel of biological tests reveals developmental effects of pharmaceutical pollutants on late stage zebrafish embryos”, Reproductive Toxicology, 34 (4), pp 568-583 70 Qiao-Jia, L., Gui-Di Y., and Jing-Hong L (2005), “Application and mechanism principium research on nano-SiO_2/urea formaldehyde resin [J]”, Journal of Fujian College of Forestry, 2, pp 000 71 Raghavan, S and Hultin H.O (2005), “Model system for testing the efficacy of antioxidants in muscle foods”, Journal of Agricultural and Food Chemistry, 53 (11), pp 4572-4577 72 Renwick, A.G (1996), “Needs and methods for priority setting for estimating the intake of food additives”, Food Additives & Contaminants, 13 (4), pp 467-475 73 Reuss, G., Disteldorf W., Gamer A.O., and Hilt A (2000), “Formaldehyde”, in Ullmann's Encyclopedia of Industrial Chemistry, Wiley-VCH Verlag GmbH & Co KGaA 70 74 Rowe, K.S and Rowe K.J (1994), “Synthetic food coloring and behavior: a dose response effect in a double-blind, placebo-controlled, repeatedmeasures study”, Journal of Pediatrics, 125 (5 Pt 1), pp 691-698 75 Rubinstein, A.L (2006), “Zebrafish assays for drug toxicity screening” Expert Opinion on Drug Metabolism & Toxicology, 2(2) ppp 231-40 76 Sano, K., Inohaya K., Kawaguchi M., Yoshizaki N., Iuchi I., and Yasumasu S (2008), “Purification and characterization of zebrafish hatching enzyme an evolutionary aspect of the mechanism of egg envelope digestion”, FEBS J, 275 (23), pp 5934-5946 77 Sasaki, Y.F., Kawaguchi S., et al (2002), “The comet assay with mouse organs: results with 39 currently used food additives”, Mutation Research/Genetic Toxicology and Environmental Mutagenesis, 519 (1–2), pp 103-119 78 Schirmer, K (2006), “Proposal to improve vertebrate cell cultures to establish them as substitutes for the regulatory testing of chemicals and effluents using fish”, Toxicology, 224 (3), pp 163-183 79 Scholz, S., Fischer S., Gündel U., Küster E., Luckenbach T., and Voelker D (2008), “The zebrafish embryo model in environmental risk assessment— applications beyond acute toxicity testing”, Environmental Science and Pollution Research, 15 (5), pp 394-404 80 Segner, H (2004), “Cytotoxicity assays with fish cells as an alternative to the acute lethality test with fish”, Alternatives to laboratory animals: ATLA, 32 (4), pp 375-382 81 Siew, S.S., Kauppinen T., Kyyrönen P., Heikkilä P., and Pukkala E (2012), “Occupational exposure to wood dust and formaldehyde and risk of nasal, nasopharyngeal, and lung cancer among Finnish men”, Cancer management and research, 4, pp 223 82 Sijm, D (2001), “Benzoates” SIDS Initial Assessment Report For 13th SIAM, The Netherlands 83 Solbé, J., Mark U., et al (1998), “Analysis of the ECETOC Aquatic Toxicity (EAT) database I—general introduction”, Chemosphere, 36 (1), pp 99113 71 84 Stevenson, D.D., Simon R.A., Lumry W.R., and Mathison D.A (1986), “Adverse reactions to tartrazine”, Journal of Allergy and Clinical Immunology, 78 (1), pp 182-191 85 Tayama, S and Nakagawa Y (2001), “Cytogenetic effects of propyl gallate in CHO-K1 cells”, Mutation Research/Genetic Toxicology and Environmental Mutagenesis, 498 (1–2), pp 117-127 86 Thavarajah, R., Mudimbaimannar V.K., Elizabeth J., Rao U.K., and Ranganathan K (2012), “Chemical and physical basics of routine formaldehyde fixation”, Journal of Oral and Maxillofacial Pathology : JOMFP, 16 (3), pp 400-405 87 Turusov, V., Rakitsky V., and Tomatis L (2002), “Dichlorodiphenyltrichloroethane (DDT): ubiquity, persistence, and risks”, Environ Health Perspect, 110 (2), pp 125-128 88 Vandenberg, L.N., Colborn T., et al (2012), “Hormones and EndocrineDisrupting Chemicals: Low-Dose Effects and Nonmonotonic Dose Responses”, Endocrine Reviews, 33 (3), pp 378-455 89 Vos, J.G., Dybing E., et al (2000), “Health effects of endocrine-disrupting chemicals on wildlife, with special reference to the European situation”, CRC Critical Reviews in Toxicology, 30 (1), pp 71-133 90 Wedekind, C., Von Siebenthal B., and Gingold R (2007), “The weaker points of fish acute toxicity tests and how tests on embryos can solve some issues”, Environmental Pollution, 148 (2), pp 385-389 91 Williams, A and Woessner K (2009), “Monosodium glutamate ‘allergy’: menace or myth?”, Clinical & Experimental Allergy, 39 (5), pp 640-646 92 Zhu, C., Smith T., et al (2011), “Evaluation and application of modularly assembled zinc-finger nucleases in zebrafish”, Development, 138 (20), pp 4555-4564 93 Zurita, J.L., Jos Á., Del Peso A., Salguero M., López-Artíguez M., and Repetto G (2007), “Ecotoxicological effects of the antioxidant additive propyl gallate in five aquatic systems”, Water Research, 41 (12), pp 2599-2611 72 PHỤ LỤC Phụ lục 1: Kết thí nghiệm với Tartrazine Đối chứng nồng độ (g/l) sống phù tim 0,25 0,5 R2 R3 R1 R2 R3 R1 R2 R3 R1 R2 R3 R1 R2 R3 R1 R2 R3 R1 R2 R3 R1 R2 R3 R1 R2 R3 24h 24 24 24 20 20 20 19 20 20 20 20 20 20 19 20 18 20 19 16 16 15 10 48h 24 24 24 20 20 20 19 20 20 20 20 20 20 19 20 18 20 19 16 15 15 10 72h 24 24 24 20 20 20 19 20 20 20 20 20 20 19 20 17 20 19 16 15 15 10 96h 24 24 24 20 20 20 19 20 20 20 18 20 15 13 17 14 17 17 14 15 13 10 48h 1 7 11 12 24h Nở 12 12 48 h 1 1 1 1 3 12 1 1 2 24h 48 h 96 h Tụ máu 1 96 h hoại tử noãn 48h 96h dị tật 48 96 phù nỗn 16 R1 96h phù đầu 12 10 48 96 72h 20 R: lần thí nghiệm 20 19 - - - 14 11 10 11 13 15 12 13 14 12 12 1 16 19 16 17 20 18 18 16 18 15 16 15 12 2 Phụ lục 2: Phôi cá ngựa vằn sau phơi nhiễm với Amaranth nồng độ g/l Phụ lục 3: Kết thu phơi nhiễm với Amaranth Nồng độ (g/l) Sống Phù tim Phù đầu Phù nỗn Dị tật Hoại tử noãn Tụ máu Nở 24h 48h 72h 96h 48h 96h 48 96 24h 48h 96h 24h 48 h 96 h 48 h 96 h 48 96 72h R: lần thí nghiệm Đối chứng R1 R2 R3 20 20 20 20 20 20 20 20 20 20 20 20 R1 20 20 20 20 0,1 R2 20 20 20 20 R3 20 20 20 20 R1 20 20 20 20 0,2 R2 19 18 18 18 R3 20 20 20 20 R1 20 20 15 12 0,5 R2 20 20 18 16 18 19 16 17 16 14 13 14 R1 20 20 11 R3 19 19 13 R1 20 20 13 R2 19 19 15 R3 18 18 14 R1 18 18 2 2 12 3 3 2 1 5 6 10 R2 4 1 4 21 R3 20 20 17 13 R2 20 20 15 R3 R1 0 0 R2 0 0 R3 0 0 Phụ lục 4: Kết thí nghiệm với Sodium benzoate Nồng độ (mg/l) Sống Phù tim Phù nỗn Dị tật Hoại tử noãn Hoại tử đầu Tụ máu Nở 24h 48h 72h 96h 48h 96h 24h 48h 96h 24h 48 h 96 h 24h 48 h 96 h Đối chứng R1 R2 R3 24 24 24 24 24 24 24 24 24 24 24 24 R1 20 20 20 20 25 R2 R3 20 20 20 20 20 20 20 20 R1 20 20 20 20 45 80 145 260 350 500 R2 R3 R1 R2 R3 R1 R2 R3 R1 R2 R3 R1 R2 R3 R1 R2 R3 20 20 20 20 20 20 20 20 20 20 20 19 19 20 20 20 20 20 20 20 20 20 20 20 20 20 20 20 19 19 20 20 20 19 20 20 20 20 20 19 20 20 20 20 20 19 19 16 17 19 16 20 18 18 20 20 12 19 20 16 17 10 7 15 14 10 2 3 18 19 15 18 17 1 2 11 12 96 h 48 96 72h 12 19 24 R: lần thí nghiệm 19 24 20 18 19 20 15 17 20 10 15 19 4 10 12 20 3 10 6 19 19 10 20 17 14 17 17 3 20 20 19 3 2 10 16 12 650 R1 R2 R3 20 20 19 20 20 18 0 1 20 20 0 Phụ lục 5: kết thí nghiệm với Propyl gallate Nồng độ (mg/l) Sống Phù tim Phù nỗn Dị tật Hoại tử nỗn Đối chứng 15 20 35 45 60 75 R1 R2 R3 R1 R2 R3 R1 R2 R3 R1 R2 R3 R1 R2 R3 R1 R2 R3 R1 R2 R3 R1 R2 R3 24h 24 24 23 20 20 20 20 20 20 18 20 20 18 20 19 16 19 17 17 0 48h 24 24 23 20 20 20 20 20 20 18 20 20 17 20 18 15 18 17 16 0 72h 24 24 23 20 20 20 20 20 20 18 20 20 17 20 18 14 18 16 16 0 96h 24 24 23 20 20 20 20 20 20 18 20 20 16 20 17 11 18 15 15 0 10 12 5 4 13 2 48h 96h 24h 1 48h 96h 24h 48 h 96 h 24h 48 h 15 18 24h 48 h 96 h 96 h Hoại tử đầu 26 Tụ máu 96 Nở 72h 12 1 10 12 10 14 4 13 12 11 11 14 11 10 11 18 15 12 11 11 10 10 11 10 13 4 10 21 R: lần thí nghiệm 19 22 19 19 15 19 20 17 18 19 17 10 12 0 Phụ lục 6: Kết thí nghiệm với Monosodium glutamate Đối chứng Nồng độ (g/l) Sống Phù tim 10 15 25 40 60 R1 R2 R3 R1 R2 R3 R1 R2 R3 R1 R2 R3 R1 R2 R3 R1 R2 R3 R1 R2 R3 R1 R2 R3 24h 24 24 24 19 20 19 20 20 19 20 20 20 20 20 20 19 20 20 15 20 13 0 48h 24 24 24 19 20 19 20 20 19 20 20 20 20 20 20 19 20 20 15 20 12 0 72h 24 24 24 19 20 19 20 20 19 19 20 20 20 20 20 19 20 20 12 18 0 96h 24 24 24 19 20 19 20 20 19 17 20 20 15 20 20 19 16 0 0 2 2 1 2 14 48h 96h 24h Phù nỗn 48h 96h Dị tật 24h 48 h 96 h 13 14 13 17 24h Hoại tử người 48 h 96 h 1 4 15 22 48 h Hoại tử đầu 96 h 48 Tụ máu 96 Nở 72h 21 R: lần thí nghiệm 18 19 17 18 16 17 19 19 19 18 20 1 10 18 20 17 12 16 10 Phụ lục 7: Kết thí nghiệm với Formaldehyde Nồng độ (ppm) Sống Hình thành lớp màng kín Nỗn hồng xù xì Hoại tử thân Nở Đối chứng 140 170 200 240 290 350 420 R1 R2 R3 R1 R2 R3 R1 R2 R3 R1 R2 R3 R1 R2 R3 R1 R2 R3 R1 R2 R3 R1 R2 R3 24h 23 24 24 20 20 20 20 19 20 20 20 20 20 19 18 20 18 18 20 20 17 14 13 12 48h 23 24 24 20 20 20 20 19 20 20 20 20 20 19 18 20 18 18 15 20 15 12 10 10 72h 23 24 24 20 20 20 20 19 20 20 20 20 18 19 18 12 16 18 14 0 96h 23 24 24 20 20 20 20 19 20 20 19 20 19 0 0 0 - - 10 - 10 17 - 13 12 17 16 16 19 15 12 10 10 24h - - - 48h 96h 96h 1 20 23 20 R: lần thí nghiệm 21 20 17 17 10 1 1 18 15 19 14 11 10 13 ... - Vũ Anh Tuấn ĐÁNH GIÁ ĐỘC TÍNH CỦA SODIUM BENZOATE, PROPYL GALLATE, TARTRAZINE, AMARANTH, MONOSODIUM GLUTAMATE VÀ FORMALDEHYDE TRÊN MƠ HÌNH PHÁT TRIỂN PHƠI CÁ NGỰA VẰN Chuyên ngành: Sinh... gallate, Tartrazine, amaranth, monosodium glutamate formaldehyde mô hình phát triển phơi cá ngựa vằn? ?? nhằm mục tiêu đánh giá độc tính phụ gia thực phẩm sử dụng Sodium benzoate, Propyl gallate, Tartrazine, ... người, chuột, gà cá ngựa vằn 13 Hình 1.2: So sánh kết từ thử nghiệm độc tính lồi cá thử nghiệm phơi cá ngựa vằn .15 Hình 1.3 Các lĩnh vực nghiên cứu sử dụng phôi cá ngựa vằn số lượng nghiên

Ngày đăng: 10/03/2021, 18:00

Từ khóa liên quan

Tài liệu cùng người dùng

  • Đang cập nhật ...

Tài liệu liên quan